JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

A protocol to screen for endocrine activity in organic extracts of water samples, including treated wastewater effluent and surface (receiving) water, was adapted using commercially available division-arrested ("freeze and thaw") in vitro transactivation bioassays.

Аннотация

В пробирке трансактивации биопроб показали обещание в качестве инструментов мониторинга качества воды, однако их принятие и широкое применение было затруднено отчасти из - за отсутствия стандартизированных методов и наличия надежной, удобной технологии. В этом исследовании, имеющиеся в продаже, подразделение арестованы клеточные линии были использованы для количественного скрининга эндокринной активности химических веществ, присутствующих в пробах воды, представляющих интерес для профессионалов качества окружающей среды. Единый, стандартизированный протокол, который включал гарантии всеобъемлющего качества / контроля качества (QA / QC) проверяет, был разработан для активности Эстроген и глюкокортикоидных рецепторов (ER и ГР, соответственно) с использованием клеток на основе флуоресцентного резонанса переноса энергии (FRET) анализа. Образцы очищенных коммунально-бытовых сточных вод стоков и поверхностных вод из пресноводных систем в Калифорнии (США), были извлечены с использованием экстракции твердой фазы и анализировали на эндокринную активность с использованием стандартизированного протоцвет Предпосылки и доза-реакция для конечных конкретных эталонных химических веществ встретились руководящие принципы ОК / КК считаются необходимыми для надежного измерения. Реакция биопроба скрининг проб поверхностных вод был в значительной степени не обнаруживается. В отличие от стоков пробы из вторичных очистных сооружений имели самую высокую активность измеримое, с оцениваемыми биопроб эквивалентных концентрациях (BEQs) до 392 нг / л дексаметазон для GR и 17 нг 17β-эстрадиол / L для ER. Ответ на количественное определение биологической активности третичного отходящем образца была ниже, чем измеренная для вторичных стоках, что указывает на меньшую остаточную эндокринных активных химических веществ, после того, как доочистку. Этот протокол показал , что в пробирке трансактивации биопроб , которые используют коммерчески доступный, разделением задержан клетка "наборы", могут быть приспособлены для скрининга на эндокринную активность в воде.

Введение

Текущий контроль за качеством воды основывается на способности точно и точно измерить возникновение химических загрязнителей в качестве прокси для воздействия на диких животных и людей. Тем не менее, это химическое вещество, по-химического мониторинга и оценки парадигма не может идти в ногу с постоянно меняющейся химической вселенной, что мы сталкиваемся. Чем больше мы узнаем о судьбе и воздействии синтетических и природных химических веществ, мы продолжаем искать средства измерения, которые касаются ожидаемых биологических воздействий, и что в то же время имеют иммунитет к изменениям в химическом производстве, эксплуатации и окружающей среды ввода. Такие инструменты особенно важны для понимания того, неизвестные или новые химические вещества и продукты преобразования, заслуживают нашего внимания. Кроме того, сложные смеси химических веществ, присутствующих в воде плохо решаются в рамках отдельных химического мониторинга. Таким образом, перед нами стоит задача модернизации существующего инструментария мониторинга для более эффективного решения этих проблем в поверхностных водах тхат получают сброс очищенных сточных вод сточных вод и городского / ливневых стоков.

В последние годы Биоаналитическая методы показали обещание как скрининг инструменты для оценки качества воды. В частности, in'vitro биопроб , которые реагируют на химические вещества , действующие с помощью известно, конкретные способы действия 1,2 представляют большой интерес для мониторинга окружающей среды сообщества 3. Многочисленные исследования использовали в пробирке биопроб для количественного определения эндокринную активность питьевой, поверхностных и сточных водах 4 -6. Кроме того, ряд биопробы целевых молекулярных исходных событий (например, активация рецептора) , которые потенциально могут быть связаны с пагубными последствиями через неблагоприятный исход пути анализа 7,8.

Эволюция биологического скрининга для оценки качества воды было относительно быстрым, с сотнями различных в пробирке биопроб конечных точек будучи оценены по ихУтилита 9,10. В настоящее время лишь несколько биопробы было показано , для достижения хорошей точности измерений ( в пределах лаборатории), демонстрируя при этом способность различать среди водных качеств 5,6. Для получения очищенных сточных вод сточных вод , в частности, возникновение эстрогенов и глюкокортикоидных стероидов было успешно учитываются с использованием в пробирке трансактивации 11,12. Тем не менее, большинство исследований на сегодняшний день использовали биопробы, чьи клеточные линии, являются собственностью компании (и, следовательно, не получили широкого распространения), требуют постоянного ухода и манипуляции, или обоих. В результате, возможность стандартизации протоколов, выполнять межлабораторных калиброванию, и в конечном итоге передать эту технологию скрининга в водных ресурсах сообщества по-прежнему затруднены.

По крайней мере один поставщик биопроб в пробирке , прошедших проверку в рамках программы США ToxCast является коммерчески доступным 13 в простой в использовании "замораживании и оттаивании4; форматов. Эти разделением арестованы клетка "наборы" , как было показано , чтобы быть надежными в измерении активности химических веществ , извлеченных из воды , представляющих различные уровни обработки 14. Хотя протоколы поставщика доступны для скрининга биоактивности отдельных химических веществ или смесей, некоторые из них требуют доработки, прежде чем они могут быть применены к проб воды. Очищенные сточные воды сточные 15, ливневые стоки 16, получая воды 17,18 и совсем недавно оборотной воды 19,20 являются главными примерами водных сред, представляющих интерес для сообщества качества воды.

Данное исследование представляет собой единый, стандартизированный протокол для измерения эндокринную активность в пробах воды с использованием коммерчески доступного, разделением арестован в пробирке трансактивации биопробы. Мы продемонстрировали надежность протокола посредством комплексной оценки фона, дозы и чувствительностью повторяемости ответа на ТВтO конечные точки, представляющие особый интерес к эстрогенам и глюкокортикоидных рецепторов трансактивацией (ER и ГР, соответственно). Протокол был применен к образцам экрана очищенных сточных вод стоков и поверхностных вод из пресноводных систем в Калифорнии.

протокол

1. Собрать и обработать пробы воды (Modified из Эшера и др. 9)

  1. Заполните чистую 1 L янтарный стеклянный флакон, содержащий 1 г азида натрия и 50 мг аскорбиновой кислоты в верхней части с образцом воды, представляющей интерес. образец Хранить при температуре 4 ° С и процесс в течение 72 часов.
    Примечание: Азид натрия является высокотоксичным и должны быть обработаны с осторожностью. Используйте защитную одежду (для глаз / лица, перчатки, одежда) и весят должным образом функционирующего вытяжного шкафа. Не используйте металлический шпатель для взвешивания.
  2. Пропускают через образец стекловолоконный фильтр 1,6 мкм, а затем через выдержано твердофазной экстракции (SPE) картриджа при скорости потока 5-10 мл / мин. Отрегулировать давление вакуумного насоса для управления скоростью потока.
  3. Вакуумный сухой картридж в течение 15 мин.
  4. Элюции картридж с 10 мл метанола, затем 10 мл ацетона и гексана (1: 1, об / об).
  5. Концентрат элюата до ~ 1 мл в слабом потоке азота высокой чистоты. растворительобмен путем добавления 500 мкл диметилсульфоксида (ДМСО) и упаривание экстракта до 500 мкл.
  6. Перенесите экстракт флакон автосамплера из янтарного стекла. Хранить при -20 ° C.

2. Подготовить разведениях Пробирной конкретной ссылки Химическая и водный экстракт

  1. Подготовка 9 разведений для калибровочной кривой.
    1. Сделать исходного раствора для анализа конкретного исходного химического вещества в 100% ДМСО. Конечная концентрация должна быть 2 мкМ 17β-эстрадиола для анализа ER и 100 мкМ дексаметазона для анализа GR. Хранить растворы при -20 ° С.
    2. Добавьте 15 мкл соответствующего опорного запаса химических веществ до 285 мкл среды для анализа в стерильную пробирку (труба # 1). Смешайте образец с помощью пипетки вверх и вниз.
    3. Добавьте 200 мкл раствора 5% ДМСО в среде для анализа в 8 дополнительных трубок (трубок # 2-9).
    4. Передача 100 мкл аликвоты из пробирки № 1 к трубке № 2 через ваннуе # 9 для выполнения серии разведений 3 раза. Каждый разбавленный образец необходимо тщательно перемешать с помощью пипетки, прежде чем принимать аликвоты и добавить его к следующей трубе.
  2. Приготовьте растворителя контрольного образца путем смешивания 10 мкл ДМСО в 190 мкл среды для анализа.
  3. Подготовьте четыре разведений для каждого водного экстракта.
    1. В первую пробирку, добавляют 5 мкл водного экстракта в 95 мкл среды для анализа и тщательно перемешать. Добавляют 50 мкл 5% ДМСО в среде для анализа в трех других трубок.
    2. Выполнить разбавление 2-кратное путем переноса 50 мкл раствора из одной трубы в другую.

3. Подготовка суспензии клеток для проведения FRET биоанализа

  1. Подготовьте для анализа конкретного носителя в соответствии с инструкциями изготовителя. Среды для анализа необходимо хранить при температуре 4 ° С и нагревали до 37 ° С в водяной бане перед использованием.
  2. Возьмите флакон ER или GR-деления клеток арестовано из криогенной бесплатноЗер и оттаивать клетки быстро, поместив флакон в водяную баню при 37 ° С в течение 2 мин при осторожном перемешивании. Обеззараживайте флакон с 70% этанола и поместить его в кабинете биологической безопасности II класса.
  3. Открыть флакон с использованием асептических методов и переноса клеток в 10 мл среды для анализа.
  4. Центрифуга при 200 х г в течение 5 мин.
  5. Аспирируйте супернатант, используя стерильную стеклянную пипетку и ресуспендируют осадок клеток в 6 мл среды для анализа.
  6. Смешайте 5 мкл клеточной суспензии с 5 мкл раствора витального красителя и добавляют аликвоты в счетной камере.
  7. Подсчитайте количество живых клеток с помощью светового микроскопа или автоматизированного счетчика клеток и оценить плотность живых клеток в клеточной суспензии. Развести в случае необходимости, чтобы получить конечную плотность 550,000 живых клеток на мл среды для анализа.

4. Пластина клеток в 96-луночного Black Wall Clear-нижней плиты и добавить Разводненная Водный экстракт

  1. Создать пластинумакет, который включает в себя 9-балльной анализа конкретных калибровочной кривой, образцы QA / QC и несколько разведений для каждого водного экстракта. Пример компоновки пластины 96-луночного показана на рисунке 1.
  2. Добавьте 90 мкл среды для анализа с повторными бесклеточных контрольных лунках.
  3. Налейте клеточной суспензии в стерильной пипетки резервуар и добавить 90 мкл суспензии клеток в другие лунки с помощью многоканальной пипетки.
  4. Добавляют 10 мкл разбавленных образцов, полученных на стадии 2 в соответствующие лунки. Конечная концентрация ДМСО на лунку должна составлять 0,5% максимум.
  5. Закройте планшет крышкой и поместить его в 5% CO 2 инкубаторе при температуре 37 ° С в течение 16 часов.

figure-protocol-5100
Рисунок 1:. Пример 96-луночного Layout высевания многоскважинных пластина предназначена для включения системы анализа конкретную калибровочную кривую, 3 видаорганов управления QA / QC (СМИ только клетки в чистой среде и клетки в ДМСО подскочили среды) и 4 разведений за водной вытяжке. Каждый элемент управления и разбавление водного экстракта анализируется в трех экземплярах скважин. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

5. Подготовьте Загрузка раствора и добавить в каждую лунку

  1. После инкубации позволяют планшет уравновешиваться до комнатной температуры. Для этого FRET биопроб, шаги с 5.2 по 5.6 следует проводить при отсутствии прямого света.
  2. Подготовьте 6х загрузки раствор в соответствии с инструкциями изготовителя.
  3. Добавьте 20 мкл 6х загрузки раствора в каждую лунку.
  4. Добавьте 10 мкл реагента жизнеспособность клеток в каждую лунку, чтобы оценить цитотоксичность разбавленного водного экстракта.
  5. Уплотнение пластины с алюминиевым клеевой пленки.
  6. Инкубируйте планшет в темноте при комнатной температуре в течение 2 часов.

6. Мера цитотоксичность и эндокринная активность Response

  1. Настройка микропланшет-ридера с возможностями снизу чтения следующие инструкции изготовителя.
  2. Для трансактивации биопроб FRET, измерения флуоресценции в голубой (409/460 нм, возбуждение (Ex) / излучение (Em) длины волны) и зеленый (409 Ex / 530 нм ЕМ) каналов.
  3. Для анализа цитотоксичности, измерения флуоресценции при 560 Ex / 590 Em нм.

7. Оценка качества / проверки КК для определения качества данных

  1. Сравните среднюю сырую флуоресценцию бесклеточной (носителя) и клетки-только (клетки в чистой среде для анализа) управления. Средства массовой информации только фон флуоресценции должен быть по меньшей мере на 25% ниже, чем реакция контрольных клеток-только.
  2. Процесс необработанных данных ладу. Для обоих «синих» и «зеленых» наборов данных, вычесть среднее флуоресценции клеток-контрольных лунках от всей клетки, содержащей хорошо. Вычислитьсиний / зеленый отношение для каждой экспериментальной скважины.
  3. Сравнить синий / зеленый соотношение количества клеток-только и клеток с контролем ДМСО. Флуоресцентные значения этих элементов управления должно быть в пределах 15% относительного стандартного отклонения (RSD).
  4. Постройте анализа специфической калибровочной кривой, как синий / зеленый отношение по отношению к концентрации образца, выраженное в лог молекулярной массы (журнал М). Вычислить наклон, R 2 и войти EC 50 (50% концентрации Эффект). Параметры калибровки должны быть в пределах ожидаемого диапазона , перечисленных в таблице 1.
  5. Вычислить RSD для всех трех лунок. Вариабельность между повторами должен быть менее чем на 20%.
  6. Для получения данных цитотоксичности (560 Ex / 590 Эм нм), вычесть бесклеточной среднее контрольное (т.е. фоновый носитель) из всех клеток, содержащих лунок.
  7. Рассчитывают среднее фоновое-вычитали флуоресценции для каждого образца. Plot полученные данные флуоресценции в процентах от контроля ДМСО. Примеры разбавление не должныдемонстрируют смертность клеток более чем на 20% по сравнению с клетками-только и ДМСО контроля.

8. Анализ данных

  1. Рассчитывают анализа Предел обнаружения (LOD) в качестве минимального ответа калибровки плюс два стандартных отклонения от среднего значения этого ответа.
  2. Для образцов , показывающих реакции от дозы, вывести ЕС 50   водной вытяжки, используя наклон линейной регрессии калибровочной кривой от 10 до 50% концентрации эффект от эталонного химического вещества.
  3. Вычислить эквивалентную концентрацию Биоаналитический (BEQ) , используя формулу: BEQ = ЕС 50 эталонного химического вещества / EC 50 пробы воды.

Результаты

В настоящем исследовании, были выбраны 4x 24 ч образцы композита из очищенных коммунально-бытовых сточных вод сточных вод, 6 разовых проб поверхностных вод из пресноводных систем в южной Калифорнии и поле пустым, состоящий из сверхчистой воды, чтобы проиллюстрировать э?...

Обсуждение

Хорошо документированы активность экологических эстрогенов, таких как эстрадиол-17 & beta ; (E2) гарантирует скрининг для этих химических веществ в концентрациях нг / л 23,24. В данном исследовании реакция ER для очистки сточных вод стоков (диапазон BEQ: от 2,3 до 17 нг E2 / л) была несколько вы?...

Раскрытие информации

The authors have nothing to disclose.

Благодарности

Funding was provided by State Water Resources Control Board (Agreements No. 10-096-250 and 14-090-270). We thank S. Abbasi, M. Connor, S. Engelage, K. North, J. Armstrong, S. Asato, M. Dojiri, D. Schlenk, S. Snyder, S. Westerheide, B. Escher, F. Leusch, G. Pelanek, K. Bi, and J. Printen. The authors declare no conflict of interest, and reference to trade names does not imply endorsement.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
GeneBLAzer ER alpha DA assay kitThermoFisherK1393Kit includes ER division arrested (DA) cells and LiveBLAzer FRET loading kit.
GeneBLAzer GR DA assay kitThermoFisherK1391Kit includes GR division arrested (DA) cells and LiveBLAzer FRET loading kit.
PrestoBlue cell viability reagent ThermoFisherA-13261
Trypan blue, 0.4% in PBSSigma-Aldrich T8154Also available at ThermoFisher
Corning 96-well black wall, clear-bottom plateCorning3603Individually wrapped, sterile with lid
Whatman glass fiber filters, GF/A, 1.6 µMSigma-Aldrich WHA1820025
Microplate aluminum sealing filmE&K ScientificT592100
Oasis HLB 6 cc cartridge, 200 mg sorbentWatersWAT106202
17β EstradiolSigma-Aldrich E2758CAS #50-28-2
Ascorbic acidFisher ScientificA61-100Also available at Sigma-Aldrich
Dexamethasone Sigma-Aldrich D4902CAS #50-02-2
Dimethyl sulfoxide (DMSO)Sigma-Aldrich D8418Molecular grade
Solvents (acetone, hexane, methanol)Fisher ScientificHPLC grade
Sodium azideSigma-Aldrich S2002Chemical is highly toxic and must be handled with caution. Use protective clothing and weigh under a fume-hood. Also available at EMD Millipore.
Automated cell counter or hemocytometerVarious*Suppliers include Bio-Rad, Fisher Scientific, Sigma-Aldrich and ThermoFisher.
Class II biological safety cabinetVarious*
CO2 incubatorVarious*
Cryogenic freezer Various*Liquid nitrogen storage dewar is recommended. 
Fluorescence microplate-readerVarious* The reader must have bottom read capabilities.
* No recommended source, the choice of this equipment depends on budget, frequency of use, and lab space.

Ссылки

  1. Dix, D. J., Houck, K. A., Martin, M. T., Richard, M. A., Setzer, R. W., Kavlock, R. J. The ToxCast program for prioritizing toxicity testing of environmental chemicals. Toxicol. Sci. 95 (1), 5-12 (2007).
  2. Reif, D. M., et al. Endocrine profiling and prioritization of environmental chemicals using ToxCast data. Environ. Health Perspect. 118 (12), 1714-1720 (2010).
  3. Maruya, K. A., et al. A tiered, integrated biological and chemical monitoring framework for contaminants of emerging concern (CECs) in aquatic ecosystems. Integr. Environ. Assess. Manag. , (2015).
  4. Van der Linden, S. C., et al. Detection of multiple hormonal activities in wastewater effluents, surface water, using a panel of steroid receptor CALUX bioassays. Environ. Sci. Technol. 42 (15), 5814-5820 (2008).
  5. Leusch, F. D. L., et al. Comparison of five in vitro bioassays to measure estrogenic activity in environmental waters. Environ. Sci. Technol. 44 (10), 3853-3860 (2010).
  6. Jarosova, B., et al. Europe-wide survey of estrogenicity in wastewater treatment plant effluents: the need for effect-based monitoring. Environ. Sci. Pollut. Res. 21 (18), 10970-10982 (2014).
  7. Sonneveld, E., et al. Comparison of in vitro and in vivo screening models for androgenic and estrogenic activities. Toxicol. Sci. 89 (1), 173-187 (2006).
  8. Piersma, A. H., et al. Evaluation of an alternative in vitro test battery for detecting reproductive toxicants. Reprod. Toxicol. 38, 53-64 (2013).
  9. Escher, B. I., et al. Benchmarking organic micropollutants in wastewater, recycled water and drinking water with in vitro bioassays. Environ. Sci. Technol. 48 (3), 1940-1956 (2014).
  10. U.S. Environmental Protection Agency (USEPA) Endocrine Disruptor Screening Program. . Prioritization of the endocrine disruptor screening program universe of chemicals for an estrogen receptor adverse outcome pathway using computational toxicology tools. , (2012).
  11. Leusch, F. D. L., et al. Assessment of wastewater and recycled water quality: a comparison of lines of evidence from in vitro, in vivo and chemical analyses. Water Res. 50, 420-431 (2014).
  12. Jia, A., Wu, S., Daniels, K. D., Snyder, S. A. Balancing the budget: accounting for glucocorticoid bioactivity and fate during water treatment. Environ. Sci. Technol. 50 (6), 2870-2880 (2016).
  13. Huang, R., et al. Chemical genomics profiling of environmental chemical modulation of human nuclear receptors. Environ. Health Perspect. 119 (8), 1142-1148 (2011).
  14. Mehinto, A. C., et al. Interlaboratory comparison of in vitro bioassays for screening of endocrine active chemicals in recycled water. Water Res. 83, 303-309 (2015).
  15. Ternes, T. A., Joss, A., Siegrist, H. Scrutinizing pharmaceuticals and personal care products in wastewater treatment. Environ. Sci. Technol. 38 (20), 392A-399A (2004).
  16. Tang, J. Y. M., et al. Toxicity characterization of urban stormwater with bioanalytical tools. Water Res. 47, 5594-5606 (2013).
  17. Scott, P. D., et al. An assessment of endocrine activity in Australian rivers using chemical and in vitro analyses. Environ. Sci. Pollut. Res. 21 (22), 12951-12967 (2014).
  18. Vidal-Dorsch, D. E., Bay, S. M., Maruya, K., Snyder, S. A., Trenholm, R. A., Vanderford, B. J. Contaminants of emerging concern in municipal wastewater effluents and marine receiving water. Environ. Toxicol. Chem. 31 (12), 2674-2682 (2012).
  19. WateReuse Research Foundation (WRRF). . Direct potable reuse: a path forward. , (2011).
  20. Leusch, F. D. L., et al. Assessment of the application of bioanalytical tools as surrogate measure of chemical contaminants in recycled water. Water Res. 49, 300-315 (2014).
  21. Schriks, M., et al. Occurrence of glucocorticoid activity in various surface waters in the Netherlands. Chemosphere. 93 (2), 450-454 (2013).
  22. Suzuki, G., Sato, K., Isobe, T., Takigami, H., Brouwer, A., Nakayama, K. Detection of glucocorticoid receptor agonist in effluents from sewage treatment plants in Japan. Sci. Tot. Environ. 527-528, 328-334 (2015).
  23. Purdom, C. E., Hardiman, P. A., Byea, V. V. J., Enoa, N. C., Tyler, C. R., Sumpter, J. P. Estrogenic effects of effluents from sewage treatment works. Chemistry and Ecology. 8 (4), 275-285 (1994).
  24. Kidd, K. A., et al. Collapse of a fish population after exposure to a synthetic estrogen. Proc. Natl. Acad. Sci. 104 (21), 8897-8901 (2007).
  25. Kojima, H., Katsura, E., Takeuchi, S., Niiyama, K., Kobayashi, K. Screening of estrogen and androgen receptor activities in 200 pesticides by in vitro reporter gene assays using Chinese hamster ovary cells. Environ. Health Perspect. 112 (5), 524-531 (2004).
  26. Kugathas, S., Sumpter, J. P. Synthetic glucocorticoids in the environment: First results on their potential impacts on fish. Environ. Sci. Technol. 45, 2377-2383 (2011).
  27. Van der Linden, S. C., et al. Development of a panel of high-throughput reporter-gene assays to detect genotoxicity and oxidative stress. Mutat. Res. Genet. Toxicol. Environ. Mutagen. 760, 23-32 (2014).
  28. Cwiertny, D. M., Snyder, S. A., Schlenk, D., Kolodziej, E. P. Environmental designer drugs: when transformation may not eliminate risk. Environ. Sci. Technol. 48, 11737-11745 (2014).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

118

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены