Распознавание последовательности ДНК с помощью высокопроходимых профилирований primase

Резюме

Эксперименты по связыванию белков (PBM) в сочетании с биохимическими анализами связывают связывающие и каталитические свойства примаза ДНК, фермента, который синтезирует РНК-праймеры на шаблоне ДНК. Этот метод, обозначенный как высокопроизводительный профилирование примаза (HTPP), может быть использован для выявления ДНК-связывающих моделей различных ферментов.

Аннотация

Прима засовка ДНК синтезирует короткие РНК-праймеры, которые инициируют синтез фрагментов ДНК фрагментов Окадзаки на отстающей нити путем полимераза ДНК во время репликации ДНК. Привязка прокариотических примаз, похожих на днк, происходит в определенной последовательности распознавания тринуклеотидов. Это ключевой шаг в формировании фрагментов Окадзаки. Обычные биохимические инструменты, которые используются для определения последовательности распознавания ДНК примаза ДНК, предоставляют лишь ограниченную информацию. Использование высокой пропускной способности микроаррей на основе связывания анализа и последовательных биохимических анализов, было показано, что 1) конкретный обязательный контекст (фланговые последовательности сайта распознавания) влияет на силу прима ДНК к его шаблону ДНК, и 2) сильнее связывания примаза к ДНК дает больше РНК праймеров, что свидетельствует о более высокой processivity фермента. Этот метод сочетает в себе PBM и primase деятельности анализа и обозначен как высокой пропускной способности примаза профилирования (HTPP), и это позволяет характеристика конкретной последовательности распознавания примаза ДНК в беспрецедентное время и масштабируемости.

Введение

HTPP использует технологию связывания МИКРОаррей ДНК в сочетании с биохимическим анализом(рисунок 1) для статистическиго определения специфических особенностей шаблонов ДНК, влияющих на ферментативную активность примазы ДНК. Таким образом, HTPP обеспечивает технологическую платформу, которая облегчает скачок знаний в этой области. Классические инструменты, используемые для определения сайтов распознавания приносов, не имеют возможности давать огромное количество данных, в то время как HTPP делает.

PBM метод, обычно используемый для определения обязательных предпочтений транскрипционных факторов к ДНК^1,2; однако, он не подходит для обнаружения слабого/переходного связывания белков к ДНК. В отличие от универсального PBM, который предоставляет информацию о средней специфичности связывания белка ко всем возможным последовательностям, состоящим из восьми базовых пар, HTPP основан на библиотеке одноцепочечных шаблонов ДНК, включающих уникальные элементы последовательности. Такие элементы последовательности ДНК включают десятки тысяч коротких (несколько десятков вт) геномных последовательностей, а также вычислительно разработанные последовательности ДНК, обогащенные определенными репетитными элементами последовательности ДНК, присутствующими в геноме, которые обладают разным средним содержанием GC . Такой высокопроизводительный подход позволяет определить, в систематическом, количественных и гипотезы инициативе образом, последовательности, связанные свойства, которые важны для примкассвязи и его ферментативной деятельности³. В частности, для этой ферментативной системы⁴была определена важная связь между примазно-ДНК связывающими предпочтениями (модулированными последовательностями ДНК, обрамляющими конкретные тринуклеотидные связывающие участки) и процессивой примазы.

Новая технология была применена, чтобы вернуться к нашему пониманию сайтов признания примаза даже для прима T7 ДНК, которая была широко изучена⁵. В частности, пересмотр классических концепций, таких как сайты распознавания ДНК примаза T7 DNA (которые были определены почти четыре десятилетия назад ⁶⁾с использованием белково-ДНК связывающего микроаррей (PBM) привело к беспрецедентному пониманию особенностей, связанных с фланговой последовательности этих сайтов распознавания³. Ожидалось, что последовательности фланговых трехнуклеотидных признания сайта прима задневок T7 (5'-GTC-3') будут случайными. Вместо этого, мы обнаружили, что TG богатых фланговых последовательностей увеличить шансы T7 ДНК прима синтезировать больше РНК праймеров, указывающих на увеличение процессоцивистии.

Другие методы, которые могут быть использованы для изучения ДНК-связывающих свойств белков in vitro включают электрофоретический перекос анализа (EMSA)⁷, DNase I^след8, поверхностно-плазмон резонанс (SPR)⁹, и юго-западной blotting ¹⁰. Это, однако, методы низкой пропускной необходимости применимы только к исследованию небольшого числа последовательностей ДНК. Кроме того, точность и чувствительность некоторых из этих методов (например, EMSA) является низкой. С другой стороны, in vitro selection¹¹ является методом, который, подобно PBM, может быть использован для идентификации многочисленных связывающих последовательностей. Тем не менее, низкие последовательности сродства, как правило, исключены в большинстве приложений в пробирке выбор; поэтому этот подход не подходит для получения сравнительных обязательных данных по всем имеющимся последовательностям. Универсальный PBM^1,2 в основном используется для характеристики связывающей специфики транскрипционных факторов от прокариот и эукариот, а также специфические факторы (например, наличие определенных лигандов, кофакторов и т.д.), которые могут повлиять на это взаимодействие¹².

HTPP расширяет применение PBM для ферментов обработки ДНК, сочетая беспрецедентную высокопроизводительную статистическую мощность с высокой точностью, чтобы предоставить информацию о контексте связывающей последовательности. Такие данные еще не получены по примазам и связанным с ними ферментам (которые имеют слабую/переходную связующую к ДНК) из-за вышеупомянутых технических ограничений других доступных методов.

протокол

1. Дизайн микроаррей

ПРИМЕЧАНИЕ: ДНК-зонды представляют обычай 36-нуклеотидных последовательностей, состоящий из места распознавания для T7 ДНК примазы (GTC), расположенных между двумя переменными фланговых регионах, а затем постоянная 24-нуклеотидной последовательности привязывается к стеклянной слайд³. Мы использовали формат microarray 4 x 180 000, который позволял обнаруживать каждую последовательность ДНК в шести репликациях, случайным образом распределенными на слайде.

1. Дизайн библиотеки ДНК для примас с известными последовательностями распознавания
   1. Убедитесь, что каждая последовательность состоит из 60 нуклеотидов. Держите первые 24 нуклеотидов постоянными (должны быть прикреплены к стеклянной горке). Переменные области должны иметь следующую общую форму: (N)₁₆GTC (N)_17; где N представляет любой желаемый нуклеотид.
   2. Дизайн фланговой области для решения конкретного научного вопроса (пример дизайна представлен в следующем тексте). Области фланга могут быть разработаны таким образом, чтобы содержать определенные объекты, такие как повторяющиеся элементы или специфическая симметрия.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Мы создали восемь категорий различных фланговых последовательностей, состоящих из двух или трех конкретных нуклеотидов: T и G (группа 1); T и C (группа 2); C и A (группа 3); A и G (группа 4); G, C и T (группа 5); C, T и A (группа 6); G, A и T (группа 7); G, A и C (группа 8). Для каждой группы было разработано 2000 различных последовательностей. Каждая группа имела подгруппы последовательностей с различными типами и различными числами повторов последовательности.
   3. Включите набор отрицательных последовательностей управления (отсутствие конкретного сайта связывания)⁴. Наличие таких последовательностей позволяет проверить возникновение специфической привязки в эксперименте.
2. Дизайн библиотеки ДНК для примас с неизвестными последовательностями распознавания
   1. Если последовательность распознавания неизвестна, создайте библиотеку ДНК, выбрав последовательности (с упомянутыми ранее или без нее) из генома желаемого организма (бактерии, грибки и т.д.).
3. Дизайн слайда microarray
   1. Приобретите пользовательские слайды (например, 4x180K, AMADID #78366) у коммерческого поставщика (для получения более подробной информации см. Таблица материалов). Закажите каждую последовательность в шести репликациях, где каждая реплика должна быть прикреплена к случайно выбранному месту на слайде.

2. Primase ДНК связывания эксперимент

ПРИМЕЧАНИЕ: За день до (или по крайней мере 2 ч до) PBM, подготовить блокирующий раствор »2% w/v обезжиренное молоко в фосфатном буфере солевая (PBS)) и перемешать его на магнитном мешалке. Перед использованием отфильтруй терешения фильтром 0,45 мкм. Чтобы обнаружить привязку примя к нитей ДНК, следует выполнить несколько шагов в следующем порядке.

1. Процедура блокировки
   1. Предварительно влажный microarray слайд в банку Коплин с 0,01% V / V Triton X-100 в PBS (5 мин при 125 об/мин на лабораторном ротаторе).
   2. Кратко промыть прокладку слайд (также называемый coverslip) с водой и этанолом и высушить с помощью сжатого воздуха.
   3. Соберите нижнюю часть камеры гибридизации стали (PBM камеры) с прокладкой слайд вверх (коммерческая этикетка вверх). Для получения более подробной информации о сборке, обратитесь к таблице материалов.
   4. Трубопровод блокирующий раствор (2% w/v обезжиренное молоко в PBS) в каждую камеру.
   5. Удалите microarray слайд из банка Коплин, а затем высушить не-ДНК стороне (ДНК должна быть на той же стороне, как этикетка компании) и края с помощью тонкой салфетки. Медленно поместите microarray на слайд прокладки, избегая пузырьков (компания этикетки вниз). Немедленно соберите и затяните стальной гибридизацию камерного аппарата. Инкубировать 1 ч при комнатной температуре (RT).
   6. Заполните одно окрашивание блюдо ("PBS" блюдо) с 800 мл свежего PBS. Заполните второе блюдо для окрашивания (блюдо "WASH") с 800 мл свежеприготовленного 0,5% v/v Tween-20 в PBS.
   7. Отвиньте камеру PBM и удалите microarray слайд-обложку "сэндвич", заботясь, чтобы не сломать печать. Разобрать его под водой в тарелке WASH, поместив щипчинки между горкой и крышкой.
   8. Встряхните microarray слайд под водой и быстро перейти к банку Коплин.
   9. Вымойте один раз с 0,1% v/v Tween-20 в PBS (5 мин при 125 об/мин на лабораторном ротаторе).
   10. Вымойте один раз с 0,01% V / V Triton X-100 в PBS (2 мин при 125 об/мин на лабораторном ротаторе).
   11. Быстро перенесите слайд в банку Coplin, содержащую PBS.
2. Связывание белка
   1. Соберите камеру PBM, как описано ранее (шаги 2.1.2-2.1.3).
   2. Пипетка белка связывающая смесь, содержащая 5 мкм T7 ДНК примаза, 30 мМ Tris-HCl pH 7.5, 6.5 mM MgCl_2,30 мМ K-глютамат, 6 мМ дитиотрейтол (DTT), 65 мкм ribonucleoside трифосфат (rNTP), 2% w/vskim milk, 100 нг/L зубчатый сывороточный альбом (BSA), 50 ng лосось яички ДНК, и 0,02% v/v Triton X-100 (TX-100) в каждой камере слайда прокладки (без касания резиновых сторон и без введения пузырьков).
   3. Промыть microarray слайд кратко, окунув его в блюдо PBS, который удаляет избыток моющего средства с поверхности слайдов. Протрите не-ДНК поверхностей слайда с тонкой салфеткой.
   4. Медленно опустите слайд microarray (лицом вниз) на слайд прокладки, стараясь предотвратить утечку из одной камеры в другую. Немедленно соберите и затяните аппарат PBM камеры без введения пузырей. Если пузырьки образуются, они могут быть удалены, мягко нажав стальной камеры на твердую поверхность.
   5. Инкубировать в течение 30 минут при комнатной температуре (RT).
3. Флуоресцентные антитела крепления
   1. Отвиньте камеру PBM и удалите microarray слайд-обложку "сэндвич", заботясь, чтобы не сломать печать. Разобрать под водой в тарелке WASH с помощью щипков. Встряхните слайд под водой и быстро перенесите в банку Коплин, содержащую PBS.
   2. Соберите камеру PBM с слайдом прокладки, как описано ранее (шаги 2.1.2-2.1.3).
   3. Добавьте Alexa 488-конъюгированное анти-его антитело (10 нг/л в связывающем буфере) к слайду прокладки.
   4. Промыть слайд кратко, окунув его в блюдо PBS, как и раньше, а затем удалить слайд из PBS медленно, протрите не-ДНК поверхности и поместить его лицом вниз на прокладку слайд.
   5. Инкубировать 30 мин на RT в темноте (флуоресценция зонд светочувствительных), чтобы уменьшить фото-отбеливания.
   6. Разобрать камеру PBM и coverslip, как и раньше, удалив крышку под водой в тарелке WASH.
   7. Промыть слайды кратко, окунув их в блюдо PBS. Сухие горки со сжатым воздухом. Хранить в темноте в слайд-поле до готовности к сканированию.
4. Сканирование слайда microarray
   1. Сканирование чипа с помощью сканера microarray (относится к таблице материалов)с возбуждением 495 нм и выбросом 519 нм и собирать среднюю интенсивность флуоресценции.

3. Анализ данных Microarray

ПРИМЕЧАНИЕ: Вся обработка данных была выполнена с использованием пользовательских письменных скриптов в MATLAB.

1. Выполните первоначальную обработку данных PBM с помощью уилкоксона ранга сумма тест р-значение, как описано ранее⁴.
2. Используйте медианное значение интенсивности связывания для каждой последовательности ДНК для дальнейшего анализа.
3. Далее, используя односторонние aNOVA p-значения, сравните статистическую значимость наблюдаемых различий в прима-ДНК связывающей интенсивности, полученных для различных групп зондов ДНК, как указано выше в разделе дизайна библиотеки ДНК³.

4. Шаблон-направленный синтез РНК катализируется примаза ДНК T7

1. Приготовление денатурного полиакриламидного геля
   1. Для приготовления 100 мл гелевой смеси смешайте 62,5 мл 40% акриламида-бисакриламидада (19:1), 42 г мочевины, 1,1 г основания Трис (2-амино-2--(гидроксиметил)-1,3-пропанедиол), 0,55 г борной кислоты и 0,4 мл 0,5 М этиленденаминтетраацетической кислоты (ЭДТА).
   2. Разделите смесь на 14 мл aliquots (количество, необходимое для одного геля 16,5 см х 26 см х 0,03 см) и держать их защищены от света при 4 градусах По Цельсию в течение 1 месяца.
   3. Чтобы подготовить один денатурный гель полиакриламид, добавьте 4 злte TEMED и 40 л 10% w/v амгармония persulfate к 14 мл ранее приготовленной смеси, отлить его, и оставить его полимеризировать, по крайней мере 2 ч на RT. Гель можно хранить в течение одного дня при 4 градусах Цельсия.
2. Подготовка образцов
   ПРИМЕЧАНИЕ: Храните реагенты, реакционную смесь и образцы на льду.
   1. Для подготовки реакционной смеси, необходимой для десяти реакций, комбинируйте 11 qL 5x-буфер активности (200 мм Tris-HCl, рН 7,5; 50 ММ дитиотрейтол, 250 мм глутамата калия, 50 мМ МГКл_2),5,5 мл л из 2,5 мМ смеси нуклеотида трифосфата (NTNt.phosp. радиомаркированный рибонуклеотид (например, АТФ, (З-32P) 3000 Ci/mmol.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Все суммы были увеличены на 10% из-за возможных ошибок трубач. Радиомаркированные рибонуклеотиды следует разбавлять в зависимости от силы радиоактивного сигнала (первоначальное разбавление обычно 1:10 или более).
   2. Передача 2 ЗЛ реакционной смеси в десять пЦР-труб.
   3. Добавьте 1 юл из 100 шаблонов ДНК мКм в соответствующую трубку ПЦР и раскрутитесь вниз.
   4. Добавьте 2 зЛ из 16 прима ДНК T7, вращайтесь, аккуратно перемешайте и снова вращайтесь.
   5. Инкубировать реакцию на RT в течение 20 мин.
   6. Остановите реакцию, добавив 5 зЛ раствора для закалки (95% формамида, 20 мМ ЭДТА, 0,05% ж/в ксилена цианола и бромофенола синего), перемешайте и раскрутите вниз.
3. Разделение РНК-продуктов электрофорезом через денатурирующий полиакриламидный гель и последующее обнаружение сигнала
   1. Предварительно запустить гель на 1 ч (10 мА, 600 В) в буфере 1x TBE (90 мм Трис-борат, 2 мМ EDTA).
   2. Загрузите до 2 кл/с каждого образца и выполните электрофорекс (20 мА, 1100 В) в буфере 1x TBE (90 мм Трис-борат, 2 мМ ЭДТА).
   3. Высушите гель в течение 2 ч при 80 градусах Цельсия под вакуумом.
   4. Выставить фосфорную пластину для радиоактивного геля в течение нескольких часов до ночи, в зависимости от силы радиоактивного сигнала.
   5. Запись сигнала (фотостимулированное люминесценция) с помощью фосфорайгера (см. Таблица материалов).

Результаты

Этот технологический прогресс для отображения привязки примоза позволяет получить свойства связывания ДНК, которые трудно, если не невозможно, наблюдать с помощью классических инструментов. Что еще более важно, HTPP позволяет пересмотреть традиционное понимание прим?...

Обсуждение

Метод PBM широко используется для исследования связывающих свойств транскрипционных факторов, а также может быть применен к ферментам обработки ДНК, таким как прима закваска ДНК, которые связываются с ДНК с низким сродством. Однако необходимы определенные изменения экспериментальных ?...

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
40% acrylamide-bisacrylamide (19:1) solution	Merck	1006401000
95% formamide	Sigma-Aldrich	F9037-100ML
Alexa 488-conjugated anti-his antibody	Qiagen	35310
Ammonuium persulfate (APS)	Sigma-Aldrich	A3678-100G
ATP, [α-32P] – 3000 Ci/mmol	Perkin Elmer	NEG003H250UC
Boric acid, granular	Glentham Life Sciences	GE4425
Bovine Serum Albumin (BSA)	Roche	10735094001
Bromophenol blue	Sigma-Aldrich	B0126-25G
Coplin jar
Dithiothreitol (DTT)	Sigma-Aldrich	D0632-25G
DNA microarray	Agilent		4x180K (AMADID #78366) https://www.agilent.com
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)	Acros Organics	AC118430010
Fujifilm FLA-5100 phosphorimager	FUJIFILM Life Science
Glass slide staining rack	Thermo Scientific	12869995	If several slides are used
Lab rotator	Thermo Scientific	88880025
Magnesium chloride	Sigma-Aldrich	63064-500G
Microarray Hybridization Chamber	Agilent	G2534A	https://www.agilent.com/cs/library/usermanuals/Public/G2534-90004_HybridizationChamber_User.pdf
Microarray scanner (GenePix 4400A)	Molecular Devices
Phosphate Buffered Saline (PBS)	Sigma-Aldrich	P4417-100TAB
Potassium glutamate	Alfa Aesar	A172232
Ribonucleotide Solution Mix (rNTPs)	New England BioLabs	N0466S
Salmon testes DNA	Sigma-Aldrich	D1626-1G
Skim milk powder	Sigma-Aldrich	70166-500G
Staining dish	Thermo Scientific	12657696
Tetramethylethylenediamine (TEMED)	Bio-Rad	1610800
Tris base (2-Amino-2-(hydroxymethyl)-1,3-propanediol)	Sigma-Aldrich	93362-500G
Triton X-100	Sigma-Aldrich	X100-500ML
Tween-20	Sigma-Aldrich	P9416-50ML
Urea	Sigma-Aldrich	U6504-1KG
Xylene cyanol	Alfa Aesar	B21530