Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

The use of ultra-high field MRI as a non-invasive way to obtain phenotypic information of rodent models for polycystic kidney disease and to monitor interventions is described. Compared with the traditional histological approach, MRI images can be acquired in vivo, allowing for longitudinal follow-up.

Abstract

Several in vivo pre-clinical studies in Polycystic Kidney Disease (PKD) utilize orthologous rodent models to identify and study the genetic and molecular mechanisms responsible for the disease, and are very convenient for rapid drug screening and testing of promising therapies. A limiting factor in these studies is often the lack of efficient non-invasive methods for sequentially analyzing the anatomical and functional changes in the kidney. Magnetic resonance imaging (MRI) is the current gold standard imaging technique to follow autosomal dominant polycystic kidney disease (ADPKD) patients, providing excellent soft tissue contrast and anatomic detail and allowing Total Kidney Volume (TKV) measurements.A major advantage of MRI in rodent models of PKD is the possibility for in vivo imaging allowing for longitudinal studies that use the same animal and therefore reducing the total number of animals required. In this manuscript, we will focus on using Ultra-high field (UHF) MRI to non-invasively acquire in vivo images of rodent models for PKD. The main goal of this work is to introduce the use of MRI as a tool for in vivo phenotypical characterization and drug monitoring in rodent models for PKD.

Introduction

מחלת כליות פוליציסטיות (PKD) כוללת קבוצה של הפרעות monogenic מאופיינות בהתפתחות ציסטות כליות. ביניהם אוטוזומלית דומיננטי מחלת כליות פוליציסטיות (ADPKD) ומחלת כליות פוליציסטיות אוטוזומלית רצסיבית-(ARPKD), המייצג את הסוגים הנפוצים ביותר הם 1,2. ADPKD, הצורה השכיחה ביותר של מחלות כליה תורשתיות פיברוזיס, הוא מקור על ידי מוטציות בגנים PKD1 או PKD2. הוא מאופיין על ידי הופעה מאוחרת, ציסטות כליות דו צדדיות מרובות, מלווה בציסטות במיוחד כליות משתנה, כמו גם חריגות שלד לב וכלי דם ושרירים. ARPKD, רוב התינוקות בדרך כלל משפיעים על ילדים ובני נוער, נגרמים על ידי מוטציות בPKHD1 ומאופיינת בכליות echogenic מוגדלות וסיסטיק הכבד המולדים 3.

חשוב לציין, במחלה מאופיינת בהטרוגניות, שניהם בגן (genic) ומוטציה (האללים) רמות, מה שגורם בעמ המשמעותיהשתנות henotypic. מוטציות בגן PKD1 משויכות מצגת חמורה קלינית (ציסטות רבות, אבחון מוקדם, יתר לחץ דם, והמטוריה), כמו גם התקדמות מהירה לסיום שלב מחלת כליות (20 שנים מוקדם יותר מחולים עם מוטציות PKD2) 4. מחלה קשה פוליציסטיות כבד (PLD) ומומים של כלי דם יכולים להיות קשורות למוטציות בשני PKD1 וPKD2 5. רוב סיבוכי כליות של ADPKD נובעים בעיקר כתוצאה מהרחבת ציסטה יחד עם הדלקת ופיברוזיס קשורים. פיתוח ציסטה מתחיל ברחם וממשיך דרך החיים מטופל. כליות בדרך כלל לשמור על צורתם reniform למרות שהם יכולים להגיע ליותר מ 20 פעמים נורמלי כליות נפח. רוב ההפצה דו-צדדית הנוכחית החולים של ציסטות כליות, אך במקרים יוצאי דופן, ציסטה עלולה להתפתח בתבנית חד-צדדית או א-סימטרית.

Challen גדולGE לנפרולוגים הבא חולים עם ADPKD או יישום טיפולים הוא ההיסטוריה הטבעית של המחלה. במשך רוב מסלולו, התפקוד הכלייתי נותר נורמלי ועד שהתפקוד הכלייתי מתחיל לרדת, רוב הכליות הוחלפו בציסטות. כאשר טיפולים מבוצעים בשלבים מאוחר יותר, זה פחות סביר להיות מוצלח מאז החולה עלול כבר הגיע לנקודת האל-חזור במחלת כליות כרונית. לעומת זאת, כאשר טיפולים הם התחילו בשלבים מוקדמים, קשה לזהות תגובה מבוססת אך ורק על קצב סינון גלומרולרי. כתוצאה מכך, הרעיון של כליות נפח כסמן של התקדמות מחלה זכה לתשומת לב.

קונסורציום לradiologic הדמיה מחקרים של מחלות כליה מחקר פוליציסטיות (פריך) הראה כי בחולים עם ADPKD הגידול במחזורים בכליות וציסטה ישירות בקורלציה עם הידרדרות בתפקוד הכלייתי, מדגיש את הפוטנציאל של נפח הכולל כליות (TKV) כמוסמן urrogate ל6,7 התקדמות מחלה. כתוצאה מכך, TKV משמש כיום כנקודת סיום ראשונית או משנית בניסויים קליניים מרובים לADPKD 2,8,9.

מודלים עכברי מרובים כוללים מוטציות ספונטניות ומהונדסות גנטי שפכו אור על הפתוגנזה של PKD 10,11. מודלים Pkd1 או Pkd2 (מוטציות בשני Pkd1 או Pkd2) הפכו הפופולרי ביותר, כפי שהם מחלות של בני אדם לחקות בצורה מושלמת. בנוסף, מודלים של מכרסמים עם מוטציות בגנים אחרים מאשר גני Pkd1 או Pkd2 שימשו כפלטפורמה ניסיונית להבהיר מסלולי איתות הקשורות למחלה. בנוסף, כמה ממודלים אלה היו בשימוש כדי לבחון טיפולים פוטנציאליים. עם זאת, גורם מגביל במחקרים במכרסמים רבים לPKD הוא לעתים קרובות חוסר שיטות לא פולשנית יעילים לנתח רצף השינויים אנטומיים ותפקודיים בכליות.

r המגנטיההדמיה esonance (MRI) היא טכניקת ההדמיה תקן זהב הנוכחית לעקוב חולים במחלה, מתן ניגוד רקמות רכות מעולה ופרטים אנטומיים, ומאפשר מדידות TKV. למרות שהבדיקה MRI היא מבוססת היטב להדמיה אנטומית בבעלי חיים גדולים יותר ובני אדם, מכרסמים קטנים הדמיה in vivo כרוך אתגרים טכניים נוספים, שבו היכולת לרכוש תמונות ברזולוציה גבוהה עלולה להגביל את השימושיות שלה. עם כניסתה של אולטרה-גבוה שדה (UHF) MRI (7-16.4 T) והפיתוח של שיפועים חזקים, ניתן כיום להשיג גבוה אות לרעש יחס ורזולוציה מרחבית של תמונות MRI עם איכות אבחון דומה לזה הושג בבני אדם. כתוצאה מכך, השימוש בUHF MRI הדמיה in vivo של מודלים של מכרסמים קטנים לPKD הפך לכלי רב עוצמה לחוקרים.

Protocol

לפני תחילת כל הליכים עם בעלי חיים, צריכים להיות מאושרים על פרוטוקולי ניסוי על ידי הוועדה המוסדית טיפול בבעלי החיים ושימוש (IACUC).

1. סורק תצורה

  1. לפני שתתחיל, ודא דוד הוא במצב OFF.
  2. בחר את שיפוע מיני ההדמיה וסליל RF 38 מ"מ ובעל הדמיה מיני.
  3. בנישא של בעל המרכזי התקן את מכלול הטמפרטורה משתנה.

2. הכנת בעלי החיים

  1. לניסויי MRI, להשיג הרדמה אופטימלית באמצעות isoflurane מתאדה. לאינדוקציה של הרדמה, למקם בעלי חיים בתא אינדוקציה מרופד ברקמות סופגת. התאם את מד הזרימה של מאדה isoflurane ל2.0-2.5 ליטר / דקה, וisoflurane עד 3% בחמצן.
  2. הסר את כל תג מתכת או חפץ מתכתי אחר בשלב זה. החל משחה וטרינר בעיניים של בעלי החיים כדי למנוע יובש ואילו בהרדמה.
  3. ברגע שבעלי החייםהגיע המטוס של הרדמה כירורגית (כלומר, אובדן של רפלקס נסיגה לקמצוץ הבוהן), למקם את החיה על בעל עם אפה מוכנס לתוך חרטום. הגדר את זרימת האוויר בהרדמת הבדיקה ל2.0-2.5 מיליליטר / דקה וריכוז isoflurane ל1.5-2.0% בחמצן. הרדמה תימסר באמצעות החרטום במהלך ההליך. מעת לעת להתאים ריכוז isoflurane בהתאם לגילו של בעל החיים ולשמור על משקל קצב נשימה של ~ 40 פעימות לדקה.
  4. השתמש מחזיקי בעלי חיים כדי לאבטח את בעלי החיים במקום ולמנוע תנועה במהלך ניסוי MRI. להשתנות הסוג של בעל חיים בהתאם לאזור בגוף לסריקה.
    הערה: הבעלים מותאמים אישית מפלסטיק מעבדה (פוליפרופילן, טפלון, פוליסטירן, פוליקרבונט) יכולים להתבצע כדי להתאים ניסוי ספציפי וכדי להתאים את גודל החיה (מעכבר שזה עתה נולד לחולדות 160 ז).
  5. מניחים את מדחום רקטלי בבעלי החיים כדי לפקח על טמפרטורת הגוף של בעלי החיים. במהלך Experiment, לשמור על בעלי החיים ב35-37 מעלות צלזיוס, באמצעות זרם של אוויר חם. התאם טמפרטורת אוויר (30-38 מעלות צלזיוס) וזרימה (HR / 1,200-2,000 L) המבוסס על משוב טמפרטורת גוף של בעלי החיים.
  6. צרף חיישן לחץ נשימה בלון לבטן של החיה כדי לפקח על קצב נשימה.
  7. אבטח את החיה במרכז סליל RF ולמקם את סליל RF עם בעלי חיים לסורק MRI בזהירות.

ניסוי 3. MRI

  1. מנגינה ולהתאים את סליל RF לפני תחילת הניסויים כדי למזער כוח RF משמש ועל מנת למקסם את יחס אות לרעש. כדי להפעיל את ההתאמה / הכוונון:
    1. פתח את כלי שליטת ספקטרומטר ידי לחיצה על סמל הכלים.
    2. בכלי שליטת ספקטרומטר לחץ רכישת → לנענע. חלון ACQ / Reco יפתח בו מוצגות העקומה לנענע.
    3. לחלופין להתאים את קבלי כוונון והתאמה (באמצעות הכוונון והתאמת מוטות) בצעדים קטנים עד שכוח RF משתקףממוזער. המטרה היא לראות עקומה עם מינימום בציר האנכי ממוקם באפס על הציר האופקי.
    4. כאשר הכיול של הסליל הושג בהצלחה, לחץ על כפתור העצירה בחלון ACQ / Reco.
  2. לרכוש תמונות צופים בשלושה מטוסים מאונך כדי ליצור תמונות ציריות, עטרה ועל sagittal. השתמש רצף תמונה מהיר כגון Shot זווית נמוכה מהירה (IG-FLASH) תוך השער לרכוש את תמונות הסקאוט 12. השתמש בתמונות הסקאוט להגדיר את הגיאומטריה הנכונה להדמיה בפועל.
  3. בהתאם למטרות המחקר הספציפיות, בחר תמונה ברצף נכון ופרמטרים ולהתחיל בסריקה עם רמזור. זה לכייל ערוץ RF, שים את מגנט תדר הנושא מוגדר, על-תהודה למים ולהתאים את רווח מקלט, כל באופן אוטומטי.
    1. ללימודים אנטומיים ותמונות משוקללים T2, לרכוש בפרוסה רבת 2D או 3D מצב. כדי לקצר את זמן הניסוי לרזולוציה מרחבית נתון, לשמור על השדהמעריך-נוף (FOV) קטן ככל האפשר, אך גדול מספיק כדי להימנע מחפצים בניילון סביב (2.56-3.2 סנטימטרים).
  4. שמור את המחזור של רצף נבחר מעט קצר יותר מאשר מחזור הנשימה של בעלי החיים על ידי בחירה נכונה של זמן החזרה (TR) ו / או מספר פרוסות. הדבר מבטיח כי הנתונים שנאספו במהלך התקופה השקטה "בעלי החיים.
    1. לדוגמא, עבור תמונות בטן, לשמור על קצב הנשימה של החיה ב ~ 30 פעימות לדקה; שהוא כ -2,000 אלפיות שניים לנשימה. השתמש טורבו מהירה רכישה עם שיפור ההרפיה רצף (נדיר) ולרכוש 11-19 פרוסות עטרה, עם TR / 1500/9 msec TE, גורם נדיר 8 ו( מטריצה ​​256 x 256, FOV 2.56 x 2.56 סנטימטר, עובי פרוסה 0.75 מ"מ) .
      הערה: על ידי התאמת TR 1,500 אלפיות שניים, ושמירה על קצב הנשימה של החיה ~ 30 פעימות לדקה (2,000 אלפיות שניים לנשימה), אנו מבטיחים כי הנתונים שנאספו במהלך התקופה השקטה "בעלי החיים.
  5. אחרי הכל רכישת התמונה הושלמה, למקם את החיה שנסרקהעל משטח לוהט ולפקח עד אמבולטורי. לאחר התאוששות, להחזיר את בעלי החיים לכלוב ופיקוח לפחות עבור שעה 1 לפני ההחזרה למתקן בעלי החיים.

תוצאות

בכתב היד הזה, אנו שואפים להראות את התועלת של UHF MRI ככלי לאפיון in vivo phenotypical או ניטור תרופה במודלים של מכרסמים לPKD ומחלות כליה אחרות. כל הניסויים היו חלק מפרוטוקולי ניסוי אושרו על ידי IACUC.

בphenotyping vivo של מודלים של מכרסמים קטנים ל...

Discussion

כתב יד זה מראה את הכדאיות של שימוש UHF MRI ככלי לאפיון in vivo phenotypical או ניטור תרופה במודלים של מכרסמים לPKD.

אנו מתארים ניסויים שנעשו ב16.4 T עם שעם רחב ספקטרומטר תמ"ג ברזולוציה גבוהה Avance III מצויד באבזרי הדמיה מיקרו ומיני. ספקטרומטר ?...

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Drs. Xiaofang Wang and Katharina Hopp for their invaluable help with the animal models. This work has been supported by grants from the National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases, National Institutes of Health (DK090728, DK058816).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
AVANCEIII-700 (16.4 T)BrukerBH067206Wide-bore two channel multinuclear spectrometer equipped with mini and micro-imaging accessories for in vivo small rodent imaging
TopSpin2.0PV BrukerH9088TA2Spectrometer processing software 
Paravision 5.1 BrukerT10314L5Imaging sofware
VTU BVT 3000 digitalBrukerW1101095Temperature controller

References

  1. Torres, V. E., Harris, P. C. Autosomal dominant polycystic kidney disease: the last 3 years. Kidney Int. 76, 149-168 (2009).
  2. Chapman, A. B., et al. Kidney volume and functional outcomes in autosomal dominant polycystic kidney disease. Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. 7, 479-486 (2012).
  3. Torres, V. E., Harris, P. C. Polycystic kidney disease: genes, proteins, animal models, disease mechanisms and therapeutic opportunities. J Intern Med. 261, 17-31 (2007).
  4. Hateboer, N., et al. Comparison of phenotypes of polycystic kidney disease types 1 and 2 European PKD1-PKD2 Study Group. Lancet. 353, 103-107 (1999).
  5. Rossetti, S., et al. Association of mutation position in polycystic kidney disease 1 (PKD1) gene and development of a vascular phenotype. Lancet. 361, 2196-2201 (2003).
  6. Chapman, A. B., et al. Renal structure in early autosomal-dominant polycystic kidney disease (ADPKD): The Consortium for Radiologic Imaging Studies of Polycystic Kidney Disease (CRISP) cohort. Kidney international. 64, 1035-1045 (2003).
  7. Grantham, J. J., et al. Volume progression in polycystic kidney disease. N Engl J Med. 354, 2122-2130 (2006).
  8. Schrier, R. W., et al. Blood Pressure in Early Autosomal Dominant Polycystic Kidney Disease. The New England journal of medicine. , (2014).
  9. Torres, V. E., et al. Angiotensin Blockade in Late Autosomal Dominant Polycystic Kidney Disease. The New England journal of medicine. , (2014).
  10. Wilson, P. D. Mouse models of polycystic kidney disease. Curr Top Dev Biol. 84, 311-350 (2008).
  11. Happe, H., Peters, D. J. Translational research in ADPKD: lessons from animal models. Nature reviews. Nephrology. , (2014).
  12. Frahm, J., Haase, A., Matthaei, D. Rapid NMR imaging of dynamic processes using the FLASH technique. Magnetic resonance in medicine : official journal of the Society of Magnetic Resonance in Medicine / Society of Magnetic Resonance in Medicine. 3, 321-327 (1986).
  13. Bae, K. T., et al. Magnetic resonance imaging evaluation of hepatic cysts in early autosomal-dominant polycystic kidney disease: the Consortium for Radiologic Imaging Studies of Polycystic Kidney Disease cohort. Clin J Am Soc Nephrol. 1, 64-69 (2006).
  14. Hossack, K. F., Leddy, C. L., Johnson, A. M., Schrier, R. W., Gabow, P. A. Echocardiographic findings in autosomal dominant polycystic kidney disease. N Engl J Med. 319, 907-912 (1988).
  15. Lumiaho, A., et al. Mitral valve prolapse and mitral regurgitation are common in patients with polycystic kidney disease type 1. American journal of kidney diseases : the official journal of the National Kidney Foundation. 38, 1208-1216 (2001).
  16. Vallee, J. P., Ivancevic, M. K., Nguyen, D., Morel, D. R., Jaconi, M. Current status of cardiac MRI in small animals. Magma. 17, 149-156 (2004).
  17. Epstein, F. H. MR in mouse models of cardiac disease. NMR Biomed. 20, 238-255 (2007).
  18. Bloomgarden, D. C., et al. Global cardiac function using fast breath-hold MRI: validation of new acquisition and analysis techniques. Magnetic resonance in medicine : official journal of the Society of Magnetic Resonance in Medicine / Society of Magnetic Resonance in Medicine. 37, 683-692 (1997).
  19. Larson, A. C., et al. Self-gated cardiac cine MRI. Magnetic resonance in medicine : official journal of the Society of Magnetic Resonance in Medicine / Society of Magnetic Resonance in Medicine. 51, 93-102 (2004).
  20. Smith, J. C., Corbin, T. J., McCabe, J. G., Bolon, B. Isoflurane with morphine is a suitable anaesthetic regimen for embryo transfer in the production of transgenic rats. Laboratory animals. 38, 38-43 (2004).
  21. Ahrens, E. T., Srinivas, M., Capuano, S., Simhan, H. N., Schatten, G. P. Magnetic resonance imaging of embryonic and fetal development in model systems. Methods Mol Med. 124, 87-101 (2006).
  22. Zhou, R., Pickup, S., Glickson, J. D., Scott, C. H., Ferrari, V. A. Assessment of global and regional myocardial function in the mouse using cine and tagged MRI. Magnetic resonance in medicine : official journal of the Society of Magnetic Resonance in Medicine / Society of Magnetic Resonance in Medicine. 49, 760-764 (2003).
  23. Stimpfel, T. M., Gershey, E. L. Selecting anesthetic agents for human safety and animal recovery surgery. FASEB journal : official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. 5, 2099-2104 (1991).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

100MRIUltra UHF MRIPKDADPKDAutosomal ARPKDTKV

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved