JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Donör hücre engraftman belirleme iyi tanımlanmış fenotipik belirteçlerin yoksun fare kemik iliği nakli modelleri bir meydan okuma sunuyor. Biz kadın transplant alıcı fareler erkek donör hücre uyumunu ölçmek için bir metodoloji tanımlamıştır. Bu yöntem, HSC fonksiyonların çalışması için tüm fare suşu olarak da kullanılabilir.

Özet

Mürin kemik iliği nakli modelleri hematopoetik kök hücre (HSC) fonksiyonları ve belirleyici gen / HKH'lerin düzenleyen molekülleri ölçen önemli bir araç sağlar. Bu transplant modeli sistemlerinde HKH'lerin fonksiyonu sokmak ve sulandırmak öldürücü ışınlanmış alıcı fareler için bu hücrelerinin yeteneği belirlenir. Genellikle, verici katkı hücre / melezleşmesi akış sitometrisi kullanılarak özel bir verici-hücre yüzey proteinleri, antikorlar tarafından ölçülür. Ancak, bu yöntem ağır özgüllük ve tüm fare suşları için geçerli olmayabilir alıcının kaynaklı hücreler, gelen donör kaynaklı hücreler ayırt etmek için hücre yüzey belirteci yeteneğine bağlıdır. Piyasada genetiği değiştirilmiş fare suşlarının çeşitli geçmişlere dikkate alındığında, bu hücre yüzey / akım sitometri tabanlı yöntem özellikle congenic alıcı ce ayrı donör hücreleri iyi tanımlanmış yüzey belirteçleri yoksun fare suşları önemli sınırlamaları vardırlls. Burada, transplant alıcıları farelerde donör hücre engraftman / katkısını belirlemek için PCR-temelli teknik bildirdi. Biz lethally ışınlanmış congenic dişi farelere erkek donörün kemik iliği HKH'lerin nakledilen. Periferal kan numuneleri farklı zaman noktalarında, nakil sonrası toplandı. Kemik iliği örnekleri deneyler sonunda elde edildi. Genomik DNA izole edildi ve Y kromozom özgü gen, Zfy1, kantitatif Gerçek zamanlı PCR ile amplifiye edildi. Dişi alıcı farelerde erkek donör kaynaklı hücrelerinin aşılanması erkek vs kadın DNA'ların bilinen yüzdesi, standart bir eğriye karşı hesaplanır edildi. Bcl2 toplam DNA miktarının normale döndürmek için bir gen referans olarak kullanılmıştır. Bizim verilerimiz bu yaklaşım güvenilir donör hücre uyumunu belirler ve fare kemik iliği nakli modelleri hematopoetik hücre sulandırma ölçmede yararlı, henüz basit bir yöntem sağlar önerdi. Bizim yöntemi rutin en laboratuarlarda yapılabilir çünkü hiçbirgibi flow sitometri gibi pahalı ekipman gereklidir.

Giriş

Mürin kemik iliği (Kİ) nakli model ilk 1960 1 geliştirilmiştir. Bu model yaygın donör hematopoetik kök hücre (HSC) bir ana alıcı fare biyoloji çalışma için kullanılır olmuştur. Mürin kemik iliği nakli modeli HSC fonksiyonları ve düzenlenmesi ile ilgili değerli bilgi ile bize sağladı ve HSC araştırma vazgeçilmezdir. C56Bl/6J CD45.2-B6.SJL CD45.1 gibi C57BL/6J H2b-Balb / C H2d veya congenic nakli modeli gibi Allojenik kemik iliği nakli modelinin etkisi, HSC aktivitesi 2 geninin işlevini incelemek için birçok laboratuarlarda kullanılmaktadır graft-versus-host hastalığı (GVHH) 4 olarak HSC fonksiyonu 3 veya transplantasyon ilişkili hastalıklar üzerinde ilaç tedavisi.

Bu tür MHC haplotip veya CD45.1 gibi hücre yüzey belirteçleri yaygın olarak alıcı kökenli hücrelerden ayırt verici türetilmiş hücreler için kullanılmaktadır. C57BL/6J H2b, CD45.2 vs CD45.2 veya H2b vs ölçüm akım sitometri ile tespit edilebilir, çünkü p>, Balb / C H2d ve B6.SJL CD45.1 kemik iliği nakli en yaygın olarak kullanılan fare suşları vardır H2d. Bununla birlikte, bu tür FVB / NJ 5 ve C3H gibi birçok diğer bakteriler aynı zamanda sık sık genetik mühendisliği transjenik fareler veya nakavt üretmek için kullanılır. Bu fareler, doğuştan bir hat için backcrossed ve bir karışık MHC / genetik arka plan içinde muhafaza edilebilir. Donör spesifik hücre yüzey belirteçleri mevcut olmayabilir bu durumda, donör hücre uyumunu ve HSC fonksiyonu belirlenmesi zor olabilir.

Sex-uyumsuz kemik iliği nakli güney blot donör erkek hücrelerini saptamak için Y-kromozomu-spesifik DNA prob kullanarak ilk Dr Miwa grubu 6 tarafından geliştirilmiştir. Daha sonra, cinsiyet belirleyici bölge Y için bir gerçek-zamanlı PCR ma miktarının belirlenmesi için bir doğru ve büyük ölçüde belirli bir yöntem olduğu bulundumaternal kan sistemi 7 le fetal hücreler. Bu kavram, donör hücre uyumunu 8 belirlemek için bir kemirgen kemik iliği nakli modelinde, bir gerçek-zamanlı PCR tekniğinin geliştirilmesi için Dr Schwarzenberger grubu tarafından adapte edilmiştir. Biz daha FVB / NJ fare kemik iliği nakli modelinde donör hücre engraftman ölçümü için bu yöntemi değiştirilmiş. Bu yöntem, şu anda geniş olarak HSC biyoloji Pim1 kinaz rolünü incelemek için, grup halinde kullanılmaktadır.

Protokol

1. Kemik İliği Hücre İzolasyonu

  1. Erkek donör FVB / NJ fareler ve servikal dislokasyon ile takip CO2 yöntemi kullanılarak dişi FVB / NJ fareler Euthanize. Dişi FVB / NJ kemik iliği hücreleri rekabetçi hücreler olarak kullanılır.
  2. Farelerin femur ve tibiaes üzerinden incelemek ve% 5 ısı inaktive FBS ile 6 ml buz-soğuk RPMI1640 içeren 60 mm doku kültür kaplarına koyun, küçük bir makas ve forseps kullanın. Kas ve diğer dokuları kaldırmak için Kimwipe doku kullanın. Her bir çanak içinde kemik şaftın her iki ucuna kes.
  3. 3 cc şırınga 23G iğne ile kemik ucunu, yemeğin içine% 5 ısı inaktive FBS ile RPMI1640 ile kemik iliği dışarı floş. Aynı iğne kullanılarak tekrarlanmalıdır özlemleri tarafından kemik iliği doku Ayrık. 15 ml'lik bir santrifüj tüpüne hücre süspansiyonu aktarın.
  4. 400 x g'de 5 dakika için hücreler aşağı Spin, süpernatanın kaldırmak (155 mM p oda sıcaklığında kırmızı kan hücresi lizis tamponu, 1 ml hücre tekrar süspansiyonotassium bikarbonat, 10 mM amonyum klorid, EDTA, pH = 7.4, 0.1 mM) ve 5 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edilir ve sonra% 5 ısı ile aktifliği giderilmiş FBS içeren RPMI 1640 5-10 ml eklenir.
  5. Bir hücre süzgecinden hücreleri geçirir. Yeni bir tüp aracılığıyla akış toplayın. 400 x g'de 5 dakika boyunca aşağı spin. Süpernatantı; hücre pelletini herhangi bir kırmızı renk içermemelidir. Kırmızı renk yokluğu, kırmızı kan hücrelerinin bir tam olarak çıkarılması gösterir. % 5 ısı ile aktifliği giderilmiş FBS RPMI1640 10 ml hücre pelet yeniden süspanse edin. Emin olmak için yavaşça girdap hücre süspansiyonu tamamen üniforma olduğunu. Bir kısım alın ve bir hemasitometre hücreleri saymak. Hesapla ne kadar kemik iliği transplantasyonu ve kısım yeterli hücre için gerekli hücrelerin hacim ve 05:02 oranında rakip dişi hücreleri erkek donör hücreleri karıştırın. 400 x g'de 5 dakika boyunca aşağı Spin, 2, 5 x 10 6 / ml, ve rakip hücrelerini verici hücrelerin nihai konsantrasyon ile PBS içinde, PBS ile tekrar süspansiyon yıkama x 10 6 / ml.

2. Rekabetçi Kemik İliği Transplantasyonu

  1. Kemik iliği nakli öncesi 11Gy 4-6 saat tek bir dozda 137Cs gama ışınları radyatör ile saçmak dişi alıcı fareler (yaş 8-12 hafta).
  2. Bir fare süzgeç olarak ışınlanmış dişi fareler yerleştirin. Her fare 5 × 10 5 donör hücreleri ve 2 × 10 5 yarışmacı kemik iliği hücreleri aldığı gibi toplam hacminin 0,1 ml kuyruk veni yoluyla karışık donör ve rakip hücreleri enjekte edilir.

3. Örnek Toplama

Çift hafta kemik iliği transplantasyonu sonrası, anestezi koşulu altında retroorbital kanama kadın alıcı fare periferal kan örnekleri (~ 50 ul) toplamak. Örnekleri EDTA kaplı tüpler içerisine toplanır. BM örnekleri de açıklandığı önceki aynı prosedürleri (Adım 1) ile, genellikle en az 4 ay transplantasyon sonrası, deney sonunda tahsil edilebilir; genellikle% 20-401 tibiada BM hücrelerinin DNA yeterli miktarda yapmak için yeterli. Kan veya BM örneklerinde yaş eşleştirilmiş normal dişi ve erkek farelerde de standart eğrisi hazırlamak için toplanır.

4. Genomik DNA İzolasyonu

  1. Her kan örneği oda sıcaklığında RBC lizis tamponu 4 × hacmi (~ 200 ul) ekleyin. İyice karıştırın ve 5 dakika oda sıcaklığında inkübe edin. PBS 1 ml ekleyin, daha sonra parçalanan RBC çoğunu kaldırmak için aşağı doğru döndürün.
  2. Bir kan DNA ekstraksiyon kiti (QIAmp DNA Kan ekstraksiyon kiti) kullanılarak DNA izole edin. 37 Pre-sıcak elüsyon tampon (AE) ° C Elüsyonlanan DNA verimi artırmak için. Standart eğri için Erkek ve kadın DNA'ları benzer izole edilmiştir.
  3. (İsteğe bağlı) Genomik DNA, daha ileri saflaştırıldı ve 3 M sodyum asetat (pH = 5.5) varlığında, EtOH çökeltme yöntemi kullanılarak konsantre edilebilir. DNA pelletleri hemen sonra analiz için 40-50 ul damıtık su içinde tekrar süspanse edilir veya ileride kullanılmak üzere -20 ° C'de saklanır.
  4. DNA concentr ölçünNanodrop ND-1000 spektrumları fotometre ile ation. OD 260 / 1.8-2.0 arası 280 numuneler daha fazla analiz için kullanılır.
  5. 50 ul toplam hacim içinde 4ng/μl için DNAase serbest H2O ile DNA seyreltin.

5. Standart Eğri Hazırlama

4 ng / ml 'lik bir konsantrasyon ile DNA erkek ve dişi DNA seyreltilir, ve Table1 göre DNA karışım yapmak

Kadın Arkaplan erkek DNA'sının% 4ng/μl erkek DNA'sının hacmi (ul) 4ng/μl kadın DNA hacmi (ul) Toplam hacim (ul)
0.2 1 499 500
0.5 1 199 200
2.5 5 195 200
12.5 25 175 200
50 100 100 200
87.5 175 25 200
100 200 0 200

Standart eğri için Tablo 1. Numune hazırlama. 8-12wks çağındaki Normal erkek ve dişi FVB / NJ fareler sakrifiye edildi. Kan ve BM hücrelerinin toplanmıştır. Erkek ve dişi hücreler hücrelerden DNA 4ng/μl 'lik bir konsantrasyonda izole edildi ve yeniden süspansiyon haline getirildi. Erkek ve dişi DNA'lar DNA standardının örneği karışımları üretmek için çeşitli oranlarda karıştırılmıştır.

6. Real-time PCR

  1. Astar ve genomik DNA ile SYBR Green Supermix reaktifi karıştırılarak PCR reaksiyonu plakasını yukarı ayarlayın. Reaksiyon hacmi (20 ul), her reaksiyon bölgesindeki her bir primer ve kan hücresi genomik DNA (4ng/μl x5 ul = 20 ng) 5 ul 400 nM içerir. DNA samples ve standartları üç tekrarlı olarak kurulmuştur. Primerlerin dizileri Tablo 2 'de gösterilmiştir.
Gene adı Ileri Ters
Bcl2 5'-AAGCTGTCACAGAGGGGCTA 5'-CAGGCTGGAAGGAGAAGATG
Zfy1 5-TGGAGAGCCACAAGCTAACCA 5'-CCCAGCATGAGAAAGATTCTTC

Mürin Bcl2 ve Zfy1 için Tablo 2. RT-PCR primer sekans.

  1. Aşağıdaki koşullara BioRad iQ5 PCR makinesi kullanılarak PCR reaksiyonu gerçekleştirin: 95 ° C'de 3 dakika, 95 42 amplifikasyon döngüleri ° 10 sn için C, 58 ° 15 sn 25 sn ve 72 ° C'de, bir erime eğrisi izledi adım.
  2. Bio-Rad iQ5 2.1 Standard Edition Optik Sistem tarafından Cycle threshold (Ct) değerleri elde edilir. Hesapla δCt (Ct Zfy1 </) Değeri>-Ct Bcl2 sup ve Zfy1 ekspresyon seviyesi 2-δ Ct değeri olarak hesaplanır.
  3. Bilinen kadın / erkek standart karışımlarından 2-δCt okuma kullanarak her reaksiyon serisi için standart eğrileri oluşturmak. Standart eğriler doğrusal regresyon uydurma ile karışım içinde% bilinen erkek DNA, kopyalardaki 2-δCt değer ortalama çizim tarafından oluşturulur.

Sonuçlar

Şekil 1 ve 2 standart eğri örnekleri erkek DNA yüzdeleri karşı 2-δCt ortalama değerleri ile çizilen gösterdi. Şekil 1A, sırasıyla 78.5 ° C'de ve 88.5 ° C'de lokalize Bcl2 ve Zfy1 amplikonlar için spesifik erime sıcaklığı göstermiştir. Bcl2 her bir PCR reaksiyonu içinde yüklenmiş DNA'nın toplam miktarı normalleştirmek için bir referans gen olarak kullanılır. Her standart numune için Bcl2 amplifikasyon eğrileri (Log görünümü) yü...

Tartışmalar

Mevcut çalışmanın amacı, izleyicilere rekabetçi bir kemirgen kemik iliği nakli modelinde donör hücre uyumunu ölçmek için PCR temelli bir yöntem sağlamaktır. Çeşitli çalışmalarda, transplantasyonu modelleri 9-10 donör hücrelerini saptamak için RT-PCR kullanılarak bildirilmiştir. Dr Schwarzenberger grubunun ilk y kromozomu özgü 8 yükseltmek için real-time PCR kullanarak bir kemirgen kemik iliği nakli modeli geliştirilmiştir. Bu yöntem, HSC etkinlik 11 Gli-1...

Açıklamalar

Biz hiçbir mali çıkarlarının ifşa rekabet var.

Teşekkürler

Biz onun Real Time PCR makine kullanımı için Dr Charles Greenberg ederim. Bu çalışma MUSC Hollings Kanser Merkezi Başlangıç ​​Fonu, Hollings Kanser Merkezi ACS IRG, ASCO Kanseri Vakfı Kariyer Geliştirme Ödülü Conquer, NIH 1K08HL 103780-01A1 ve NIH 3P30CA138313-01S3 tarafından desteklenmektedir. Içeriği sadece yazarların sorumluluğundadır ve mutlaka Sağlık veya diğer finansman ajanlar Ulusal Enstitüleri resmi görüşlerini temsil etmemektedir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Reaktif Adı Şirket Katalog numarası Yorumlar (isteğe bağlı)
RPMI 1640 Hyclone SH30255.01
FBS Invitrogen 16140-017 Inaktive Isı
Amonyum klorid MP Biomedicaals 194806
Potasyum Bikarbonat Balıkçı P184-500
QIAamp DNA Kan MINIKIT Qiagen 51106
Hücre süzgeç Biyobilim BD
iQ SYBR Green Supermix BioRad 170-8882
iQ5 gerçek zamanlı PCR makinesi BioRad
Spectra fotometre ND-1000 Nanodrop ND-1000

Referanslar

  1. McCulloch, E. A., Till, J. E. The radiation sensitivity of normal mouse bone marrow cells, determined by quantitative marrow transplantation into irradiated mice. Radiat. Res. 13, 115-125 (1960).
  2. Xiao, N., et al. Hematopoietic stem cells lacking Ott1 display aspects associated with aging and are unable to maintain quiescence during proliferative stress. Blood. 119, 4898-4907 (2012).
  3. Kang, Y., Chen, B. J., Deoliveira, D., Mito, J., Chao, N. J. Selective enhancement of donor hematopoietic cell engraftment by the CXCR4 antagonist AMD3100 in a mouse transplantation model. PLoS One. 5, e11316 (2010).
  4. Sadeghi, B., et al. GVHD after chemotherapy conditioning in allogeneic transplanted mice. Bone Marrow Transplant. 42, 807-818 (2008).
  5. Taketo, M., et al. FVB/N: an inbred mouse strain preferable for transgenic analyses. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88, 2065-2069 (1991).
  6. Morisaki, H., et al. Genotypic analysis using a Y-chromosome-specific probe following bone marrow transplantation. Am. J. Hematol. 27, 30-33 (1988).
  7. Lo, Y. M., et al. Quantitative analysis of fetal DNA in maternal plasma and serum: implications for noninvasive prenatal diagnosis. Am. J. Hum. Genet. 62, 768-775 (1998).
  8. Byrne, P., et al. Chimerism analysis in sex-mismatched murine transplantation using quantitative real-time PCR. Biotechniques. 32, 279-280 (2002).
  9. Ma, X., et al. Contribution of recipient-derived cells in allograft neointima formation and the response to stent implantation. PLoS One. 3, e1894 (2008).
  10. Bosio, E., et al. A comparison between real-time quantitative PCR and DNA hybridization for quantitation of male DNA following myoblast transplantation. Cell Transplant. 13, 817-821 (2004).
  11. Merchant, A., Joseph, G., Wang, Q., Brennan, S., Matsui, W. Gli1 regulates the proliferation and differentiation of HSCs and myeloid progenitors. Blood. 115, 2391-2396 (2010).
  12. Nagamine, C. M., Chan, K., Hake, L. E., Lau, Y. F. The two candidate testis-determining Y genes (Zfy-1 and Zfy-2) are differentially expressed in fetal and adult mouse tissues. Genes & development. 4, 63-74 (1990).
  13. Grundler, R., et al. Dissection of PIM serine/threonine kinases in FLT3-ITD-induced leukemogenesis reveals PIM1 as regulator of CXCL12-CXCR4-mediated homing and migration. J. Exp. Med. 206, 1957-1970 (2009).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

T pSay 73Biyomedikal M hendisli iK k H cre BiyolojiGenetikmm nolojiAnatomiFizyolojiGenel CerrahiY KromozomHematopoetik K k H crelerHSCk k h crelerKemik li i TransplantasyonuGer ek Zamanl Polimeraz Zincir ReaksiyonuRTPCRPCRKimerizmY kromozomu zg gengreftengraftmanizolasyonnaklih cre k lt rfare modelihayvan modeli

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır