In Koku Reseptör Nöronlar Tüm Dağı ile immün<em&gt; Drosophila</em&gt; Anten

Özet

Herein we describe the process of whole mount immunostaining of Drosophila antennae, which enables us to better understand the molecular mechanisms involved in the diversification of olfactory receptor neurons (ORN)s.

Özet

Odorant molekülleri hassas ve koordineli bir şekilde hedef reseptörlerine bağlanır. Her bir reseptör belirli bir sinyal algılar ve beyne bu bilgileri aktarır. Gibi, koku bilgi algı ve davranışlarını, yararları soruşturma hem değiştirerek, beyne transfer edilir nasıl belirlenmesi. İlginçtir, hücresel iletimi ve transkripsiyon faktörleri koku reseptör nöron çeşitlendirilmesi dahil olduğunu yeni kanıtlar vardır. Burada bir bütün in vivo güçlü bir koku reseptör nöron organizasyon tahlil için immünolojik etiketleme yöntemi montaj kısmı temin etmektedirler. Bu yöntemi kullanarak, anti-ELAV antikoru, bilinen pan-sinir işaret ve Or49a-mCD8 :: GFP, özellikle anti-GFP antikoru kullanılarak NBA nöron içinde ifade edilen bir koku alıcı nöron Tüm olfaktori reseptör nöronlar tespit edilmiştir.

Giriş

Koku sistemi koku molekülleri çok büyük bir çeşitlilik ayırt etmek ve daha sonra, yüksek beyin merkezlerine elde edilen bilgi göndermek için kullanılır. Bu giriş, kesinlikle böyle beslenme ve çiftleşme ^1-6 gibi temel hayvan davranışlarını kontrol etmek için kullanılır. Her koku nöron tipi kokuların bir dizi özel, koku reseptör nöronların çeşitlendirilmesi ile ilişkili olarak (ORN) ler doğru koku alma sistemi fonksiyonu ⁷ için gereklidir.

Drosophila genetiği ORN gelişimi ve fizyolojik fonksiyonu ^8-16 ile ilişkili moleküler mekanizmaları içeren tek hücre düzeyinde soruşturma yapmak için bize sağlar. Drosophila antenlerin Tüm montaj immünoboyamasıdır daha detaylı koku reseptör nöronların çeşitlendirilmesi dahil moleküler mekanizmaları (ORN) s ⁷ anlamak sağladı. Bu yazıda ac için basit bir yöntem kapsamlı bir açıklama sağlamakBu hieve.

Protokol

1.. Elma tabak hazırlayın

1. 12.5 g agar karıştırılır, 125 ml% 100 ticari olarak temin edilebilen elma suyu, 12.5 g glukoz ve 375 ml ₂ H O. 1-2 dakika için karışımın mikrodalga ve 3 cm hücre kültürü tabağına dökülür. 4 ° C'de saklayın

2.. Genetik çapraz

1. Aşağıdaki temsilcisi genetik haç kullanın:

Or49a-mCD8 :: GFP / cyo x ¹¹¹⁸ w

3.. Diseksiyon ve boyama protokolü

1. Sinek uyutmak ve daha sonra bir forseps kullanarak tutarak dikey sinek kafasını kesti.
2. Dikkatli bir elma plaka üzerinde antenleri içeren kısmını yerleştirin.
3. Ince diseksiyon makas kullanılarak antenin üçüncü bölümü kesmek.
4. Bir cam alt kültür çanağı ortasına ()% 0.1 Triton X-100 ile% 0.1 PBST (PBS içinde% 4 paraformaldehid) sabitleme çözeltisi 90 ul koyun.
5. Yavaşça disseke ANTENN transferidoğrudan sabitleme çözüm için keskin bir iğne ile ae. Gerekirse, fiziksel olarak bir iğne kullanılarak çözelti içine anten daldırın.
6. Oda sıcaklığında (RT) 40 dakika süreyle inkübe edin. Aynı çanak tutarak, (% 0.4 Triton X-100 ile PBS)% 0.4 PBST içinde her 3x 10 dakika anten yıkayın. PBST çözüm kaldırmak ve eklemek için sarı ipuçlarını kullanın. Her süresi, yıkama çözeltisi 90 ul kullanın.
   NOT: immünohistokimyada sırasında karıştırıcı içine çanak koymayın. Çanak içine alınarak, veya eklemeden önce, iğne kullanılarak çanağın merkezine tüm antenler getirmek ve dikkatli bir yemeğin kenarından çözeltisi eklemek veya çıkarmak.
7. Oda sıcaklığında 20 dakika süreyle% 0.1 'lik PBST içinde% 5 normal at serumu ve 90 ul anten bloke eder.
8. Bloklama çözeltisi uzaklaştırıldıktan sonra, daha önce tarif edildiği gibi bir kap içinde nemli 4 ° C'de 48 saat boyunca% 5 at serumu ihtiva eden% 0.1 'lik PBST içinde birincil antikor 90μl ile antenler inkübe 8.
9. % 0.4 PBST içinde 10 dakika 6x anten yıkayın.
10. 4 ° C'de 48 saat boyunca% 5 at serumu ihtiva eden% 0.1 'lik PBST içinde sekonder antikor 90 ul ile inkübe antenler % 0.4 PBST kullanarak 6x 10 dakika yıkayın.
11. , Antenler monte mümkün olduğunca kültürü çanak PBST kaldırmak ve yavaş yavaş antenine gliserol iki farklı konsantrasyonları tanıtmak. İlk olarak 1-2 dakika için çanak% 40 gliserol ekleyin; sonra bu kaldırmak ve% 80 gliserol ekleyin.
12. Dikkatle sarı ucunu kullanarak kültürü çanak (% 80 gliserol dahil) antenleri ayıklamak ve bir slayt üzerine koyun. Yavaşça üstüne lamel yerleştirin ve tırnak cilası ile lamel kenarları mühür. Antenler artık floresan mikroskop ile görüntülü hazırız.

Sonuçlar

Diseksiyon ve sabitleme hem de hızlı yapılabilmesinin sağlanması, bu protokol ile başarıya ulaşmada önemli bir faktördür. Ince makas ve forseps kullanılması da önemlidir. İmmunosteyn sonra, floresan etiketli antenleri konfokal mikroskop altında incelendi. Biz normalde 20x lens kullanarak 1 Pm'lik bölümleri alır. Biz NBA Or49a-mCD8 :: GFP kullanarak ⁷ Örns etiketli ve vahşi-tip anten Nba Örns sayısını sayılır. Bunun ardından mCD8-GFP raportör hücre zarı lokalize ve böylece e...

Tartışmalar

Biz tarif Drosophila anten diseksiyonu basit ve bir laboratuvar ortamında gerçekleştirmek kolaydır. Başarılı bir diseksiyon sağlamak için, bu ince kenarlı makas kullanmak için gereklidir. Parçalara anten immün da, bu antikor çözeltisi buharlaşmasını önlemek için bir nem dolu kap içinde inkübe etmek önemlidir. Kesilmiş anten çözeltide yüzer bir eğilimi vardır. Tespit sırasında PBS içinde% 0.1 Triton kullanılarak ve adım bloke çözeltisi içinde antenin suya batmaya kolaylaştı...

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
Stemi DV4 dissection microscope	Zeiss	Stemi DV4
Glass bottom culture dishes	MatTek corporation	P35G-0-10-C
Dissection scissor	Fine Science Tools	15000-08
Rat anti-ELAV	Developmental Studies Hybridoma Bank	7E8A10	Dilution 1:200
Mouse anti-GFP	Invitrogen	A11122	Dilution 1:400
Donkey Anti-Rabbit IgG	Jackson ImmunoResearch Laboratories	711-225-152	Dilution 1:200
Donkey Anti-Rat IgG	Jackson ImmunoResearch Laboratories	712-165-150	Dilution 1:200