Monte todo imunomarcação de Neurônios Receptores Olfatórios no<em&gt; Drosophila</em&gt; Antena

Resumo

Herein we describe the process of whole mount immunostaining of Drosophila antennae, which enables us to better understand the molecular mechanisms involved in the diversification of olfactory receptor neurons (ORN)s.

Resumo

Moléculas odoríferas ligam aos seus receptores-alvo de forma precisa e coordenada. Cada receptor reconhece um determinado sinal e retransmite essa informação para o cérebro. Como tal, a determinação de como a informação é transferida para olfactiva do cérebro, modificando tanto a percepção e comportamento, a investigação mérito. Curiosamente, não há evidências emergentes que transdução celular e transcrição fatores estão envolvidos na diversificação de neurônio receptor olfativo. Aqui nós fornecemos um todo robusto montar método de marcação imunológica do ensaio in vivo olfativo organização neurônio receptor. Usando este método, identificamos todos os neurônios receptores olfativos com o anticorpo anti-elav, um marcador pan-neural conhecido e Or49a-mCD8 :: GFP, um neurônio receptor olfativo especificamente expressos em Nba neurônio usando anticorpo anti-GFP.

Introdução

O sistema olfactivo é usado para distinguir entre uma imensa variedade de moléculas de odor e, subsequentemente, para enviar a informação resultante para os centros do cérebro superior. Esta entrada é usada para controlar com precisão os comportamentos animais fundamentais, como alimentação e acasalamento ^1-6. Como cada tipo de neurônio olfativo está associada a um conjunto específico de odores, a diversificação de neurônios receptores olfativos (ORN) s é essencial para o bom funcionamento do sistema olfativo ^7.

Genética de Drosophila nos permite realizar investigação único nível celular que envolve mecanismos moleculares associados ao desenvolvimento de ORN e função fisiológica ^8-16. Whole immunostaining montagem de Drosophila antenas nos permitiu compreender em maior detalhe os mecanismos moleculares envolvidos na diversificação de neurônios receptores olfativos (ORN) s ^7. Aqui nós fornecemos uma descrição completa de um método simples para achieve este.

Protocolo

1. Prepare placa maçã

1. Misture 12,5 g de agar, 125 ml de sumo de 100% disponível comercialmente de maçã, 12,5 g de glucose, e 375 ml de H ₂ O. Microondas a mistura durante 1 a 2 minutos e derramar para o prato de cultura de 3 centímetros de células. Armazenar a 4 ° C.

2. Cruzamento genético

1. Use o seguinte cruzamento genético representativo:

Or49a-mCD8 :: GFP / cyo x w ¹¹¹⁸

3. Dissecção e coloração protocolo

1. Anestesiar a voar e, em seguida, cortar a cabeça voar verticalmente, segurando-o com uma pinça.
2. Com cuidado, coloque a parte que contém antenas em uma placa de maçã.
3. Corte o terceiro segmento da antena com uma tesoura de dissecção finas.
4. Colocar 90 mL de solução de fixação (4% de paraformaldeído em 0,1% de PBST (PBS com 0,1% de Triton X-100)) para o meio de um prato de cultura de fundo de vidro.
5. Gentilmente transferir o antenn dissecadoae com uma agulha fina diretamente para a solução de fixação. Se necessário, submergir fisicamente as antenas na solução usando agulha.
6. Incubar durante 40 minutos à temperatura ambiente (RT). Lava-se a antenas de 0,4% de PBST (PBS com 0,4% de Triton X-100), 3 x 10 minutos em cada um, mantê-los no mesmo prato. Utilize pontas amarelas para remover e adicionar solução PBST. Utilizar 90 mL de solução de lavagem de cada vez.
   NOTA: Não coloque o prato em um shaker durante imunohistoquímica. Antes de retirar ou acrescentar a solução para o prato, trazer todas as antenas para o centro do prato utilizando a agulha e cuidadosamente adicionar ou retirar a solução a partir da borda do prato.
7. Bloquear as antenas com 90 ul de 5% de soro normal de cavalo a 0,1% em PBST, durante 20 minutos à RT.
8. Após a remoção da solução de bloqueamento, incubar as antenas com 90μl de anticorpos primários em PBST contendo 0,1% a 5% de soro de cavalo durante 48 horas a 4 ° C em um recipiente tal como descrito previamente humedecida 8.
9. Lava-se a antenas de 6x 10 minutos em 0,4% de PBST.
10. Incubar a antenas com 90 ul de anticorpos secundários em PBST contendo 0,1% a 5% de soro de cavalo durante 48 horas a 4 ° C. Lavar 6x 10 minutos usando 0,4% de PBST.
11. Para montar as antenas, remover PBST a partir do prato de cultura, tanto quanto possível, e, gradualmente, apresentar duas concentrações diferentes de glicerol às antenas. Primeiro adicionar 40% de glicerol para o prato durante 1 a 2 minutos; em seguida, retire este e adicionar 80% de glicerol.
12. Extrair cuidadosamente as antenas (incluindo 80% de glicerol) da placa de cultura com ponta amarela e colocá-las em um slide. Delicadamente, coloque uma lamela em cima e selar as bordas lamela com unha polonês. As antenas estão agora prontos a ser trabalhada por meio de microscopia de fluorescência.

Resultados

A garantia de que tanto a dissecção e fixação são realizadas rapidamente é um fator chave para alcançar o sucesso com este protocolo. Usando uma tesoura fina e pinças também é crucial. Após imunocoloração, fluorescentes rotulado antenas foram examinados sob um microscópio confocal. Nós, normalmente, seções 1 Hm usando uma lente de 20x. Nós rotulado Nba ⁷ ORNs usando Or49a-mCD8 :: GFP e contou o número de Nba ORNs no tipo selvagem antena. O repórter mCD8-GFP está localizada membrana celula...

Discussão

A dissecção da antena Drosophila descrevemos é simples e fácil de executar em um ambiente de laboratório. Para garantir uma dissecção bem sucedido, é essencial utilizar uma tesoura fina gumes. Enquanto a antena imunocoloração dissecado, que é importante para incubar em um recipiente cheio de humidade para evitar a evaporação da solução de anticorpo. A antena dissecados tem uma tendência para flutuar na solução. Utilizando 0,1% de Triton em PBS, durante a fixação e bloqueio passos irá facili...

Materiais

Name	Company	Catalog Number	Comments
Stemi DV4 dissection microscope	Zeiss	Stemi DV4
Glass bottom culture dishes	MatTek corporation	P35G-0-10-C
Dissection scissor	Fine Science Tools	15000-08
Rat anti-ELAV	Developmental Studies Hybridoma Bank	7E8A10	Dilution 1:200
Mouse anti-GFP	Invitrogen	A11122	Dilution 1:400
Donkey Anti-Rabbit IgG	Jackson ImmunoResearch Laboratories	711-225-152	Dilution 1:200
Donkey Anti-Rat IgG	Jackson ImmunoResearch Laboratories	712-165-150	Dilution 1:200