JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

A novel reactor design, coined a high density bioreactor (HDBR), is presented for the cultivation and study of high density microbial communities. Here, the HDBR is successfully applied in a photobioreactor (PBR) configuration for the study of nitrogen metabolism by a mixed high density algal community.

Özet

A novel reactor design, coined a high density bioreactor (HDBR), is presented for the cultivation and study of high density microbial communities. Past studies have evaluated the performance of the reactor for the removal of COD1 and nitrogen species2-4 by heterotrophic and chemoautotrophic bacteria, respectively. The HDBR design eliminates the requirement for external flocculation/sedimentation processes while still yielding effluent containing low suspended solids. In this study, the HDBR is applied as a photobioreactor (PBR) in order to characterize the nitrogen removal characteristics of an algae-based photosynthetic microbial community. As previously reported for this HDBR design, a stable biomass zone was established with a clear delineation between the biologically active portion of the reactor and the recycling reactor fluid, which resulted in a low suspended solid effluent. The algal community in the HDBR was observed to remove 18.4% of total nitrogen species in the influent. Varying NH4+ and NO3- concentrations in the feed did not have an effect on NH4+ removal (n=44, p=0.993 and n=44, p=0.610 respectively) while NH4+ feed concentration was found to be negatively related with NO3- removal (n=44, p=0.000) and NO3- feed concentration was found to be positively correlated with NO3- removal (n=44, p=0.000). Consistent removal of NH4+, combined with the accumulation of oxidized nitrogen species at high NH4+ fluxes indicates the presence of ammonia- and nitrite-oxidizing bacteria within the microbial community.

Giriş

Kentsel atık su genellikle askıda katı madde (SS), biyolojik oksijen talebi (BOD), organik ve inorganik azot ve fosfor içeriği 5,6 azaltmak amacıyla aktif çamur işlemleri ile muamele edilir. Aktif çamur yöntemi, sekonder atık su işleme için bir araç, gelen atık ve geri dönüşümlü heterotrofik mikroorganizmanın karışık sıvısı ile doldurulmuş bir havalandırma tankında organik karbon oksidasyonunu gerektirir 5-7 (yaygın aktif çamur olarak da adlandırılır). Karışık likör sonra çamur için, daha kolay toplanması için yerleşir nispeten büyük arıtıcı (dinlendirme tankı) girer elden çıkarılması veya açıklık, arıtılmış atık su üçüncül tedavi veya dezenfeksiyon devam edebilirsiniz ederken salınan önce, geri havalandırma tankına geri dönüştürülebilir ya alan sular 5-7. İkincil arıtıcı tedavi atıksu ve katı (çamur) Verimli ayrılması oldu düzgün fonksiyonu için gereklidirtewater arıtma sistemi, herhangi bir aktif çamur atık 5-8 BOİ ve SS artacak Çöktürme ötesine devam olarak.

Alternatif biyolojik süreçlerin bir dizi azaltmak veya ekli-büyüme (biyofilm) reaktörler, membran Biyoreaktörlerin (MBR'leri) ve granül çamur reaktörler de dahil olmak üzere geniş açıklığa kavuşturulması tankları, ihtiyacını ortadan kaldırmak atıksuyun ikincil tedavisi için mevcuttur. Biyofilm reaktör, doğal agrega mikroorganizmalar ve katı bir yüzey üzerinde bir katman olarak bağlandıkları biyofilmlerin oluşumuyla olarak, açıklık tankın gerek kalmadan biyokütle tutma ve birikimi sağlar. Biyofilm reaktörler üç tip halinde sınıflandırılabilir: paketlenmiş yataklı reaktörler, akışkan yataklı reaktörler ve dönen biyolojik. Böyle bir trickling filtreleri ve biyolojik kuleleri Paketli yataklı reaktörler, sabit bir katı büyüme yüzeyi 5,6 kullanmaktadır. Akışkan yataklı reaktörler, (FBRs), parçacıkların Mikroorganizmaların bağlanması bağlıdırkum gibi granül karbon (GAC) ya da yüksek yukarı doğru akış oranı 9,10 ile süspansiyon içinde muhafaza edilmiştir cam boncuk, aktif. Döner biyolojik reaktörler biyofilm sağlayan bir döner şaftına bağlı ortam üzerinde oluşturulmuş biyofilm alternatif olarak havaya maruz kalma ve sıvı 5,6 tedavi edilen bağlıdır. MBR'leri biyoreaktör (batık konfigürasyonunda) içinde veya dışarıdan devridaim (yan-akım konfigürasyonu) 5,11 vasıtasıyla ya, membran filtrasyon üniteleri kullanın. Membranlar tedavi sıvı 11,12 den biyokütle ve katı parçacıkların iyi ayrılmasını sağlamak için hizmet vermektedir. Granül çamur reaktörler içinde mikroorganizmaların çok yoğun ve iyi yerleşme granüllerin oluşumu yüksek yüzeysel hava yukarı doğru çıktığı maruz kaldığında ortaya çıkar 13 hızlar yukarı akış reaktörlerdir.

Aktif çamur işlemi, yeni bir yukarı akış reaktör sistemi için başka bir alternatif olarak, hemen yüksek yoğunluklu biyoreaktör (HDBR) olarak adlandırılan, designe oldud ve yoksul yerleşim çamur oluşmasına neden olduğu bilinmektedir düşük F / M koşullarında sentetik atık akışları (yani, kabarma çamur) 1,7,14 dan aktif çamur tarafından KOİ giderimi incelemek için Satış ve (2006) Shieh tarafından inşa. Kullanılan HDBR sistemi tipik olarak, bir yukarı akış reaktörü ve bir dış devri daim tank, akışkan yataklı reaktörler modifiye. Biyofilm kaplı substrat tutulacak şekilde Akışkan yataklı reaktörler tipik olarak yeterince süspansiyon haline biyofilm büyüme alt katmanı tutmak için yeterince yüksek, fakat düşük yeniden çevrim akımı, akış oranları ile çalıştırılır. Akışkan yataklı reaktörlerde aksine, HDBR Satış anlatılan ve (2006) Shieh dış havalandırma ile birlikte, reaktörün 1 bünyesinde oluşturulan biyokütle bölgenin bozulması önlenir, nispeten düşük devri daim akımı debileri kullanılır. Daha sonraki çalışmalar başarıyla bakteri 3,4 denitrifikasyon / nitrifikasyon kullanarak azot akışlarının bir dizi tedavi etmek için bu reaktör tasarımın yeteneğini göstermiştir. Tüm saplamaHDBR içinde istikrarlı, yoğun biyokütle bölgenin oluşumu harici flokülasyon / sedimantasyon süreci 1-4 ihtiyacını ortadan ies.

Burada rapor olarak yoğun kültürleri büyümeye HDBR kullanımı da alg yetiştirilmesi için bir foto-biyo (PBR) konfigürasyonunda olarak test edilmiştir. Biz yararları ve alg ekimi için bu yeni reaktör sisteminin sakıncalarını ve biyokütle toplama (yani, iyi katı-sıvı ayırma 15,16) ile ilişkili Alg biyoyakıt ticarileştirilmesi büyük bir engel üstesinden gelmek için potansiyel tartışmak. Aşağıdaki protokol başlatma, örnek, monte ve ilgi mikrobiyal topluluk olarak yosun ile HDBR korumak için gerekli adımları açıklar. Heterotrofik ve nitrifikasyon / Azot salan kültürlerinin başlangıç ​​ve işletme protokolü değişimler de söz edilecektir. Son olarak, genel avantajları, dezavantajları, ve bu yeni reaktör tasarımının bilinmeyenler vurgulanır.

Protokol

1. Reaktör Meclisi

  1. Şekil 1'de şematik göre reaktör parçaları düzenleyin.
    1. Bir karıştırma plaka üzerinde reaktör (R) koyun reaktöre bir karıştırma çubuğu ekleyin. Tankın çıkış (üst) bağlantı noktası laboratuarlarında kenarına doğru yönlendirilir ve böylece heyecan plaka ve reaktörün yanında geri dönüşüm tankı (RT) yerleştirin.
    2. Geri dönüşüm tankı (RT) çıkış (üst) port altına atık kabını (W) yerleştirin. Geri dönüşüm tankı (RT) sonraki besleme tankı (FT) yerleştirin.
      Not: Besleme tankı 5 L. toplam kapasitesi
  2. Uygun büyüklükte bir standı ve kelepçe ile devrilmeye karşı reaktör (R) sabitleyin. Aynı şekilde, hareket etmesini önlemek için geri dönüşüm tankı (RT) sabitleyin.
  3. Recycle (Pompa A) neopren peristaltik pompa hortumunu takın ve (Pompa B) pompa kafaları beslenirler. Ek boru spesifikasyonları için malzemeler tablosuna bakın. Vidalar yazarlara ile pompa sürücüler üzerine pompa kafaları yükleyinPompa sürücülerle ded.
  4. Reaktör ve geri dönüşüm tankı üzerinde limanlarına Pompa A'nın boru bağlayın. Besleme tankı ve geri dönüşüm tankına Pompa B'nin hortumun ucunu. Boru ile geri dönüşüm deposuna üst reaktör noktasını bağlayın. Reaktör limanlarında tüp kıskaçları uygulayın.
    Not: Fotosentetik topluluklar lambalar tarafından sağlanan yapay aydınlatma yararlanabilir.

Stok Solutions, Akan / Yem Çözümleri ve Yosun Aşılayıcı 2. Hazırlık

  1. Mineral stok çözelti hazırlayın. 200 g sodyum bikarbonat, 40 g monobazik potasyum fosfat, 4 g magnezyum sülfat, 4 g demir klorür, 4 g kalsiyum klorür, 1 g bakır klorür, 1 g kobalt: deiyonize su, 500 ml bir 1 L'lik bir volumetrik balona aşağıdakileri ekleyin klorür hekzahidrat, 1 g nikel klorür heksahidrat, 1 g çinko sülfat heptahidrat. Iyonu giderilmiş su ilave 400 ml ilave edilir. Tuzların çözülmesini teşvik etmek zorla girdap. Aşağıdaki disstuzların ların çözüme, 1 L. çözeltisinin toplam hacmi getirmek için iyonu giderilmiş su ilave
  2. Amonyak stok çözelti hazırlayın. 1 L'lik bir volumetrik bir şişede, iyonu giderilmiş su, yaklaşık 900 ml amonyum klorit 38,214 gram çözülür. Dağılmasından sonra, 1000 ml toplam hacmi getirmek için deiyonize su ilave edilir.
    Not: 1 L'ye seyreltilmiş stok çözeltisi 1 ml 10 mg L-verir -1 NH4 + -N çözeltisi.
  3. Nitrat stok çözelti hazırlayın. 1 L'lik bir volumetrik bir şişede, iyonu giderilmiş su, yaklaşık 900 ml potasyum nitrat 72,413 g çözülür. Dağılmasından sonra, 1000 ml toplam hacmi getirmek için deiyonize su ilave edilir.
    Not: - N çözeltisi 1 L'ye seyreltilmiş stok çözeltisi 1 mi -1 Resim 3, bir 10 mg L-verir.
  4. Besleme / akın çözüm hazırlayın. Bir 2 ml sulandırmak, N - 20 mg L içeren bir besleme solüsyonu -1 NH 4 + N ve 20 mg L-1 NO 3 yapmak içinmmonia stok çözeltisi ve 1 L'lik toplam hacme kadar nitrat stok çözeltisi 2 mi. Seyreltmeden öne, 0.5 ml mineral çözeltisi / çözeltinin L yapılan ekleyin. Reaktörü başlatmak için toplamda akan 5 L hazırlayın.
  5. Yosun aşı malzemesi hazırlayın.
    1. Böyle bir akarsu veya gölet gibi bir yosun içeren su vücuttan su büyük bir hacmi (en az 10 L) toplayın. Alg 24 saat rahatsız su örnekleri bırakarak yerleşmek için izin verin.
    2. Numune şişeleri içinde konsantre yosun süspansiyonu bırakarak, Durusu ve örneklerin üstündeki net (içermeyen yosun) su atın. Bir konteyner içine numunelerin tüm alg süspansiyon birleştirin ve çökmesini ve şişeden adımları tekrarlayın.
    3. Konsantre numune içinde biyokütle ölçün.
      1. Co ölçmek oda sıcaklığında 30 dakika boyunca bir kurutucuda soğutmadan sonra 103 ° C'ye ayarlanmış bir fırın içinde tekne O / N ağırlık kağıt vakum filtresi (0.45 um MCE vakum filtresi) ve alüminyum KuruFiltrenin kitle mbined ve tekne tartın.
      2. Vakum konsantre yosun süspansiyonu 20 ml filtresi ve filtre dönmek ve / N O kurumaya fırın tekne tartın.
      3. Filtrenin kombine kitle ölçün ve tekne tartın. Konsantre numune içinde biyokütle yoğunluğunu hesaplar.
        Not: Araştırmacılar kaynak suyu vücudun bağlıdır toplamak gerekir su numunesi toplam hacmi.

3. Tohum ve Reaktör Başlangıç

  1. Reaktöre besleme çözeltisinin 750 ml ilave edilir. Besleme çözeltisinin 500 ml 'si ile yeniden doldurun.
  2. Yavaşça reaktörün tabanına yakın yosun 1.5 g ihtiva eden bir süspansiyon inoküle eklemek için uzun bir pipet kullanın. Aşı bir sonraki aşamaya geçmeden önce, reaktörün dibine çöker görsel gözlem ile Bunu sağlamak için izin verir.
  3. Hücreler yerleşmiş sonra, (10 Revolutio tüp kelepçelerini çıkarın ve yavaş akış hızına Pompa A açmakns min -1 / 38 ml dk -1). Hortumun içinde sıkışıp Hava reaktörüne ihraç edilecektir.
    Not: reaktöre 750 ml ilave reaktörü terk pompa tarafından rahatsız herhangi bir biyokütle önleyecektir. Tüm hava sınırdışı edilmiş olmasını sağlamak için boru sıkın.
  4. Çözelti, reaktör içine pompalanır Yavaş yavaş devri daim tankı besleme çözeltisi ilave edilir. Reaktör ve geri dönüşüm deposu hem kapasite ve üst port üzerinden geri dönüşüm tankı çıkmak için atık başlar olana kadar eklenmesini devam edin.
    Not: besleme çözeltisinin hacmi reaktöre ilâve edilen inokulantın hacmine bağlı olarak değişecektir devri daim tankı eklenmesi.
  5. Besleme tankına geri kalan besleme solüsyonu dökün.
  6. 72.5 ml dk bir geri dönüşüm akış hızı kuran, -1 dk 19 devrimlere geri dönüşüm pompası (Pompa A) Set -1. Yosun reaktörün tabanından loft başlar dikkate alınmalıdır. Reaktörün üzerinde geçişleri kullanarak, yosun bi belirlemekomass bölge yüksekliği. Yükseklik sonraki adıma geçmeden önce sabit olduğundan emin olun.
  7. Çok düşük hızlarda karıştırma plakası açın; 1 ya da 2 ayarı başlatmak için uygun değildir. Karıştırma çubuğu ayrıca biyokütle lofting yardımcı olacaktır, ama agresif karıştırma, reaktör bırakın geri dönüşüm tankı girin ve atık bırakmak için yosun neden olur. Reaktör (Şekil 2A) içinde net bir alg sınır kurmak için gerekli bir ayar hızını karıştırma ayarlayın; alg biyokütle bölgesi yüksekliği yaklaşık 10-15 cm olmalıdır.
  8. Alg fiş ve reaktör sıvısı arasında net bir sınır gözlemledikten sonra besleme pompasını başlatın. 1,5 ml dakika akış oranı oluşturulması, 1 dak 25 devir Pompayı -1. Nedeniyle gelen içeri giren akımının neden olduğu ağırlık ve yer değiştirmesine reaktör sıvı çıkış portu çıkış gözlemleyin.

4. Numune Toplama ve Analizi

  1. Numune toplama faaliyetleri pri yürütmekveya reaktör sistemi üzerinde bakım yapmadan için. Günlük atık ve içeri giren numunelerin 20 ml toplayın. Geri dönüşüm tankı içinde gelen atık örnekleri toplayın. Besleme tankının doğrudan içeri giren örneklerini toplayın.
  2. Vakum filtre örnekleri depolama ve analiz öncesinde askıda katı kaldırmak için.
  3. Daha analize kadar -20 ° C 'de ve dışarıya akanların örnekleri saklayın. Numuneler maruz kalan donma çözülme döngüsü sayısını sınırlayın. Gerekirse, örnekler örnek bütünlüğünü korumak için kısma bölünebilir.
  4. Standart teknikler kullanılarak 17 nitrat, nitrit, amonyak ve örnek analizi yürütmek.
    Not: İyon Kromatografi (IC) kullanılan yazarlar burada sunulan sonuçlar üretmek için. Şartnamede için malzemeler tablosuna bakın.

Sonuçlar

40 mg -NL -1 beslemedeki toplam nitrojen içeriğine korurken HDBR, içeri giren amonyak ve sodyum nitrat konsantrasyonlarında çeşitli oranları üzerinden yosun yetiştirmek için kullanıldı. Akın ve atık numuneleri günlük alındı; biyokütle yoğunluğu numuneleri her durumun başında ve sonunda alındı. Reaktör koşulları değiştirildi sonra kararlı durum dengeye ulaşmak için ortalama 3-5 gün sürdü. Içeri giren koşulları geniş bir yelpazede üzerinde belirgin bir biyokütle bölges...

Tartışmalar

Bu bölüm olası operasyonel konularda yanı sıra farklı mikrobiyal topluluklar kullanarak çözmek için gerekli protokol varyasyonları bir tartışma başlayacak. Bu reaktör tasarımının güçlü oksijen akı kontrolü ve reaktör içinde yüksek yoğunluklu flocs oluşumunu yönetme yeteneği dahil olmak üzere, ele alınacaktır. Güncel sorunlar ve soruşturmanın olası caddeleri de söz edilecektir.

Protokol nüansları ve çeşitleri
Kültürlerin farklı yeti?...

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose and declare that they have no competing financial interests.

Teşekkürler

The authors would like to acknowledge Aspen Walker at the University of Pennsylvania for her assistance in reactor maintenance and sample collection.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Aeration stoneAlitaAS-3015C
AeratorTop FinAir-1000
Ammonium chlorideSigma AldrichA9434
Anion analysis columnShodexIC SI-52 4E
Beaker (600 ml)Corning Pyrex1000-600Used as mixing vessel (MV). Addition of hose barbs at the bottom and 500 ml levels. Outside diameter of hose barbs 3/8".
Calcium chlorideSigma AldrichC5670
Cation analysis columnShodexIC YS-50
Cobalt chloride hexahydrateSigma AldrichC8661
Copper chlorideSigma Aldrich222011
Ferric chlorideSigma Aldrich157740
Filter (vacuum)Fisherbrand09-719-2E0.45 μm membrane filter, MCE, 47 mm diameter
Graduated cylinder (1,000 ml)Corning Pyrex3025-1LUsed as reactor vessel (R). Addition of hose barbs at bottom, 500 ml, and 1 L levels. Outside diameter of hose barbs 3/8".
HPLC/ICShimadzuProminence
Magnesium sulfateSigma AldrichM2643
Masterflex L/S variable speed driveMasterflex07553-50Drive for recycle and feed pumps (2 needed)
Nickel chloride hexahydrateSigma AldrichN6136
Potassium nitrateSigma AldrichP8291
(Monobasic) Potassium phosphateSigma AldrichP5655
Pump headMasterflex07018-20Recycle pump head
Pump headMasterflex07013-20Feed pump head
Pump tubingMasterflex6404-18Recycle pump tubing
Pump tubingMasterflex6404-13Feed pump tubing
Sodium bicarbonateSigma AldrichS5761
Zinc sulfate heptahydrateSigma AldrichZ0251

Referanslar

  1. Sales, C. M., Shieh, W. K. Performance of an aerobic/anaerobic hybrid bioreactor under the nitrogen deficient and low F/M conditions. Water Res. 40 (7), 1442-1448 (2006).
  2. Nootong, K. . Performance and kinetic evaluations of a novel bioreactor system in the low-oxygen/low-fluid shear reaction environments. , 3225514 (2006).
  3. Nootong, K., Shieh, W. K. Analysis of an upflow bioreactor system for nitrogen removal via autotrophic nitrification and denitrification. Bioresour Technol. 99 (14), 6292-6298 (2008).
  4. Ramanathan, G., Sales, C. M., Shieh, W. K. Simultaneous autotrophic denitrification and nitrification in a low-oxygen reaction environment. Water Sci Technol. 70 (4), 729-735 (2014).
  5. Rittmann, B. E., McCarty, P. L. . Environmental Biotechnology: Principles and Applications. , (2001).
  6. Tchobanoglous, G., Burton, F. L., Stensel, H. D. . Wastewater Engineering: Treatment and Reuse. , (2002).
  7. Palm, J. C., Jenkins, D., Parker, D. S. Relationship between Organic Loading, Dissolved-Oxygen Concentration and Sludge Settleability in the Completely-Mixed Activated-Sludge Process. Journal Water Pollution Control Federation. 52 (10), 2484-2506 (1980).
  8. Jenkins, D. Towards a Comprehensive Model of Activated-Sludge Bulking and Foaming. Water Science and Technology. 25 (6), 215-230 (1992).
  9. Shieh, W., Keenan, J. Ch. 5 Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology. Bioproducts. 33, 131-169 (1986).
  10. Shieh, W. K., Li, C. T. Performance and Kinetics of Aerated Fluidized-Bed Biofilm Reactor. Journal of Environmental Engineering-Asce. 115 (1), 65-79 (1989).
  11. Alvarez-Vazquez, H., Jefferson, B., Judd, S. J. Membrane bioreactors vs conventional biological treatment of landfill leachate: a brief review. Journal of Chemical Technology & Biotechnology. 79 (10), 1043-1049 (2004).
  12. Fenu, A., et al. Activated sludge model (ASM) based modelling of membrane bioreactor (MBR) processes: a critical review with special regard to MBR specificities. Water Res. 44 (15), 4272-4294 (2010).
  13. Liu, Y., Tay, J. H. The essential role of hydrodynamic shear force in the formation of biofilm and granular sludge. Water Res. 36 (7), 1653-1665 (2002).
  14. Chudoba, J., Grau, P., Ottová, V. Control of activated-sludge filamentous bulking-II. Selection of microorganisms by means of a selector. Water Research. 7 (10), 1389-1406 (1973).
  15. Christenson, L., Sims, R. Production and harvesting of microalgae for wastewater treatment, biofuels, and bioproducts. Biotechnol Adv. 29 (6), 686-702 (2011).
  16. Henderson, R., Parsons, S. A., Jefferson, B. The impact of algal properties and pre-oxidation on solid-liquid separation of algae. Water Res. 42 (8-9), 8-9 (2008).
  17. Jackson, P. E., Meyers, R. A. . Encyclopedia of Analytical Chemistry. , (2000).
  18. Wilkinson, G. N., Rogers, C. E. Symbolic descriptions of factorial models for analysis of variance. Applied Statistics. 22, 392-399 (1973).
  19. Chambers, J. M., Chambers, J. M., Hastie, T. J. Ch. 4. Statistical Models in S. , (1992).
  20. R Core Team. . R: A Language and Environment for Statistical Computing. , (2015).
  21. Ramanathan, G., Sales, C. M., Shieh, W. K. Apendix:Simultaneous autotrophic denitrification and nitrification in a low-oxygen reaction environment. Water Science & Technology. 70 (4), 729-735 (2014).
  22. . . Wastewater Management Fact Sheet - Energy Conservation. 832F06024, 1-7 (2006).
  23. Curtis, T. P., Mitchell, R., Gu, J. D. Ch 13. Environmental Biotechnology. , (2010).
  24. Asada, K. THE WATER-WATER CYCLE IN CHLOROPLASTS: Scavenging of Active Oxygens and Dissipation of Excess Photons. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol. 50, 601-639 (1999).
  25. Mullineaux, P., Karpinski, S. Signal transduction in response to excess light: getting out of the chloroplast. Curr Opin Plant Biol. 5 (1), 43-48 (2002).
  26. Mallick, N., Mohn, F. H. Reactive oxygen species: response of algal cells. Journal of Plant Physiology. 157 (2), 183-193 (2000).
  27. Fridovich, I. Oxygen toxicity: a radical explanation. J Exp Biol. 201 ((Pt 8)), 1203-1209 (1998).
  28. Doyle, S. M., Diamond, M., McCabe, P. F. Chloroplast and reactive oxygen species involvement in apoptotic-like programmed cell death in Arabidopsis suspension cultures. J Exp Bot. 61 (2), 473-482 (2010).
  29. Eisma, D., et al. Suspended-matter particle size in some West-European estuaries; part II: A review on floc formation and break-up. Netherlands Journal of Sea Research. 28 (3), 215-220 (1991).
  30. Thomas, D. N., Judd, S. J., Fawcett, N. Flocculation modelling: A review. Water Research. 33 (7), 1579-1592 (1999).
  31. Harris, R. H., Mitchell, R. The role of polymers in microbial aggregation. Annu Rev Microbiol. 27, 27-50 (1973).
  32. Raszka, A., Chorvatova, M., Wanner, J. The role and significance of extracellular polymers in activated sludge. Part I: Literature review. Acta Hydrochimica Et Hydrobiologica. 34 (5), 411-424 (2006).
  33. Lakaniemi, A. M., Intihar, V. M., Tuovinen, O. H., Puhakka, J. A. Growth of Dunaliella tertiolecta and associated bacteria in photobioreactors. J Ind Microbiol Biotechnol. 39 (9), 1357-1365 (2012).
  34. Lakaniemi, A. M., Intihar, V. M., Tuovinen, O. H., Puhakka, J. A. Growth of Chlorella vulgaris and associated bacteria in photobioreactors. Microb Biotechnol. 5 (1), 69-78 (2012).
  35. Natrah, F. M. I., Bossier, P., Sorgeloos, P., Yusoff, F. M., Defoirdt, T. Significance of microalgal-bacterial interactions for aquaculture. Reviews in Aquaculture. 6 (1), 48-61 (2014).
  36. Dittami, S. M., Eveillard, D., Tonon, T. A metabolic approach to study algal-bacterial interactions in changing environments. Mol Ecol. 23 (7), 1656-1660 (2014).
  37. Watanabe, K., et al. Symbiotic association in Chlorella culture. FEMS Microbiol Ecol. 51 (2), 187-196 (2005).
  38. Burke, C., Thomas, T., Lewis, M., Steinberg, P., Kjelleberg, S. Composition, uniqueness and variability of the epiphytic bacterial community of the green alga Ulva australis. ISME J. 5 (4), 590-600 (2011).
  39. Krohn-Molt, I., et al. Metagenome survey of a multispecies and alga-associated biofilm revealed key elements of bacterial-algal interactions in photobioreactors. Appl Environ Microbiol. 79 (20), 6196-6206 (2013).
  40. Cooper, E. D., Bentlage, B., Gibbons, T. R., Bachvaroff, T. R., Delwiche, C. F. Metatranscriptome profiling of a harmful algal bloom. Harmful Algae. 37, 75-83 (2014).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Biyom hendislikSay 106Reakt rreakt r tasar mbiyoreakt rat k ar tmayosunaktif amurfermantasyonbesin dinamiklerimikrobiyal metabolizmabiyoproses

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır