Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada şiddetli akut pankreatit fare modeli açıklanmıştır. Burada sunulan prosedür çok hızlı, basit ve erişilebilirdir, böylece akut pankreatitteki moleküler mekanizmaların ve farklı terapötik müdahalelerin uygun bir şekilde incelenmesine izin verir.

Özet

Akut pankreatit (AP), özellikle şiddetli akut pankreatit (SAP) prevalansı her yıl genç yaş gruplarında artmaktadır. Ancak mevcut klinik uygulamada etkili tedavi eksikliği vardır. Transgenik ve nakavt suşlarının kolay erişilebilirliği ve in vivo değerlendirme için gereken minimum dozda ilaç sağlayan küçük boyutları ile AP araştırmaları için farelerde köklü bir deneysel model tercih edilir. Ayrıca, sodyum taurocholate (TC) yoluyla indüklenen SAP şu anda en yaygın kullanılan ve en iyi karakterize edilen modellerden biridir. Bu model AP sürecinde yeni tedaviler ve olası moleküler olaylar için araştırılmıştır. Burada, sodyum taurocholate ve basit bir ev yapımı mikrosyringe kullanarak bir AP fare modelinin neslini sunuyoruz. Ayrıca, sonraki histoloji ve serolojik testler için metodoloji de sağlıyoruz.

Giriş

Akut pankreatit (AP), ana pankreasın tıkanması ve daha sonra düktal distansiyon ve pankreas otodijsiyonunun anormal şekilde aktive edilen enzimleri tarafından engellenmesi ile karakterize pankreasın akut iltihabıdır. Klinik bulguları lokal veya sistemik inflamasyon, karın ağrısı ve serum amilaz yüksekliği1,2'dir. Şiddet sınıflandırmasına göre3, AP hafif, orta ve şiddetli formlarda ortaya çıkabilir ve bunların arasında şiddetli akut pankreatit (SAP), % 30'dan fazla ölüm oranı nedeniyle en endişe verici durumdur 4.. Amerika Birleşik Devletleri'nde AP, 200.000'den fazla hastayı etkileyen hastaneye yatışın en yaygın nedenlerinden biridir5. Ayrıca, AP, özellikle SAP, her yıl artmakta ve genç yaş gruplarını etkilememaktadır6. Ancak mevcut klinik pratikte etkili tedavi seçenekleri eksikliği vardır6,7. Bu nedenle, AP'de yer alan moleküler mekanizmaları araştırmak ve böylece tedavi iyileştirmesini kolaylaştırmak gerekir.

AP'de yer alan mekanizmaları incelemek ve farklı tedavi yöntemlerinin etkinliğini değerlendirmek için köklü deneysel hayvan modelleri gereklidir. Transgenik ve nakavt suşlarının kolay erişilebilirliği ve in vivo değerlendirme için gerekli ilaç dozlarını en aza indiren küçük boyutları ile AP araştırmaları için fareler tercih edilmektedir. Bu nedenle, farelerde birkaç AP modeli geliştirilmiştir8,9.

Caerulein10 intravenöz uygulama yoluyla indüklenen hafif bir pankreatit sıçan modelinden çalışan Niederau ve arkadaşları, aynı ilaç ve enjeksiyon yolu11 kullanılarak indüklenen acınar hücre nekrozu ile sunulan bir SAP fare modeli geliştirdi. Bu model noninvazivlik, hızlı indüksiyon, geniş tekrarlanabilirlik ve uygulanabilirlik dahil olmak üzere çeşitli avantajlara sahip olsa da, en büyük dezavantaj, çoğu durumda sadece hafif bir AP formunun geliştirilmesi ve böylece klinik alaka düzeyini sınırlamasıdır. Alkol AP'nin başlıca etiyolojik faktörlerinden biri olarak kabul edilir; Bununla birlikte, Foitzik ve arkadaşları pankreas hasarına sadece ekzokrin hiperstimülasyon12 gibi diğer faktörlerle birleştirildiğinde neden olduğunu bildirdi. Ayrıca, alkol kaynaklı AP modelleri farklı yönetim yolları üzerinden geliştirilmiş ve ilaç dozları 13,14,15 bildirilmiştir, ancak en büyük dezavantajları bunları yeniden üretmenin zorluğudur. L-arginin intraperitoneal yönetimi de farelerde AP'ye neden olabilir16; ancak düşük klinik ilgisi uygulamasını engellemez. Bir safra tuzu olan taurocholate, ilk olarak 1965 yılında Creutzfeld ve arkadaşları tarafından pankreas kanalı infüzyonu yoluyla insan AP'lerine benzeyen bir durumu teşvik ettiği için önerildi17. Patofizyolojide klinik ilgisi ile ilgili tartışmalar olsa da18,19, taurocholate kaynaklı pankreatit SAP için vazgeçilmez bir model olmaya devam etmektedir.

Bu modelin farkına varmak basit olduğundan ve farelerde de etkili olduğundan, şimdi küçük hayvan in vivo çalışmaları için en çok kullanılan AP modellerinden biridir. Perides ve arkadaşları, mice20'de SAP'yi teşvik etmek için sodyum taurocholate (TC) çalıştırdı ve patolojisini anlamak için içgörüler sağladı. Genetik modifikasyon teknikleri ile birlikte, bu model AP'de yer alan birkaç spesifik geni doğrulamamızı sağladı. Örneğin, Bicozo ve ark. CD38 geninin bir nakavtının BIR TC-infüzyon pankreatit modeline karşı korunduğunu gösterdi ve mekanizmaları hücre içi Ca2+ sinyalizasyonundaki değişikliklere bağladı21. Fanczal ve ark., fare pankreas acinar ve düktal hücrelerin plazma zarında TRPM2 ekspresyonunun fizyolojik etkilerini araştırdı ve TRPM2 nakavt farelerinde TC kaynaklı SAP'nin şiddetinin azaldığını gösterdi22. Ayrıca, bu model aynı zamanda birçok yeni ilacı vivo olarak test etmek için basit ve etkili bir yol sağlar. Örneğin, bu yöntem kafeinin terapötik etkilerinin doğrulanmasını sağladı23, dehidrokolik asit24 ve çeşitli antioksidanlar ve antikoagülanlar25,26. Bu kanıt, TC kaynaklı SAP modelinin çok yönlülüğünü göstermektedir. Wittel ve arkadaşları benzer bir fare modeli27 tanımlasa da, uygulama prosedürleriyle ilgili ayrıntıların eksikliği bulguların yeniden üretilememesine neden olabilir. Bu makalede, basit bir ev yapımı mikrosentemi kullanarak yöntemlere odaklanıyoruz ve TC kaynaklı SAP'yi inceliyoruz, böylece sadece AP patogenezinin ve tedavisinin daha fazla incelenmesi için değil, aynı zamanda diğer birçok madde için mükemmel bir şekilde uyarlanabilir deneysel bir yöntem için de olası rehberlik sağlıyoruz.

Protokol

Hayvanları içeren tüm deneyler Soochow Üniversitesi Hayvan Etik Kurulu tarafından onaylandı. Tüm cerrahi işlemler tam anestezi altında yapıldı. Analjezikler, önceki literatürlere göre hastalığın doğal seyrine müdahaleyi önlemek için kullanılmamıştır28,29. Analjezi eksikliği için onay, Soochow Üniversitesi Hayvan Etik Kurulu tarafından da verildi.

1. Hazırlık

  1. Ameliyattan önce C57BL/6 vahşi tip fareyi 8-12 saat hızlı kullanın.
  2. %0,9 sodyum klorüre seyreltilmiş %5 (w/v) TC çözeltisi (93 mM) hazırlayın. Çözeltiyi 0,22 μm filtreden filtreleyin.
  3. Forseps, makas, bıçak tutucu, iğne tutucu, hemostatik klips, vasküler kelepçeler ve steril perdeler de dahil olmak üzere cerrahi aletleri ve malzemeleri 30 dakika boyunca 121 °C sıcaklıkta basınç sterilizatörü kullanarak otoklavlayın.
  4. Ev yapımı bir mikrosentez hazırlayın. Bunu yapmak için, 25 μL düz uç Microliter şırıngasına manuel olarak tek kullanımlık bir insülin ucu ve uzun süreli bir plastik pipet ucu takın. Işıtlama yoluyla sterilize edin.

2. Anestezi ve ameliyat öncesi hazırlık

  1. 6 ila 8 haftalık erkek C57BL/6 vahşi tip fare (yaklaşık 21-23 g) ağırlığındadır. 50 mg/kg dozda %1 pentobarbital sodyum çözeltisinin intraperitoneal enjeksiyonu ile genel anesteziye neden olabilir.
  2. Fareyi bantla anirradiatedfoam düz plaka üzerinde sırtüstü pozisyonda sabitleyin.
  3. Sol ve sağ tarafları ön aksiller çizgiye paralel olarak, xiphoid proses seviyesinden bilateral ön üst iliak omurganın bağlantı hattına kadar bir depilasyon kremi ile kürkünü çıkararak her hayvanın operasyon bölgesini hazırlayın.
  4. Özellikle cerrahi alana odaklanan, hayvan üzerinde ve cerrahın önünde hazırlanan alandan oluşan steril bir cerrahi alan hazırlayın.
    1. Tezgah üstü dezenfekte edin.
    2. Kesi bölgesini birden fazla cerrahi ovma solüsyonu uygulaması ile temizleyin. Cildi% 0,5 iodoforla iki ila üç kez silin ve her seferinde 1-2 dakika kurumasını bekleyin.
    3. Fareyi steril perdelerle örtün.

3. Cerrahi prosedür

NOT: Şekil 1'de , TC'nin mikroenjeksiyon ile biliopankreatik kanala retrograd enjeksiyonundan önce ve sonra fare pankreasının anatomisi ve morfolojisi açıkalmaktadır.

  1. Yaklaşık 2 ila 3 cm uzunluğunda ortanca karın kesiği yapın.
  2. Duodenumu mide boyunca soldan sağa doğru bulun. Pankreası, biliopankreatik kanalı ve duodenal papillayı açığa çıkarmak için cerrahi tokmaklar ve dezenfektanla ıslatılmış pamuklu çubuk kullanarak duodenumu yavaşça dışarı ve sol tarafa çekin. Bağırsak duvarına veya ilgili damarlara yaralanmamaya dikkat edin.
  3. 8-0 kullan papillanın etrafındaki duodenum ve pankreas arasındaki bağlantıdan geçmek için dikişler ve duodenumu düzeltmek için fare gövdesinin sol tarafına çekin.
  4. Cildi ve karaciğerin alt kenarını yavaşça kenara çekin. Portal damarı veya pankreası sıkıştırmamaya dikkat larak ortak hepatik kanalı kelepçeleyin. Proksimal biliopankreatik kanalı kelepçeleyin.
  5. Mikroenjektörü distal biliopankreatik kanala geriye dönük olarak delin. İğne ucunu duodenal papillanın yakınına bir kelepçe ile sabitleyin. Pankreas kanalına 5 μL/dk hızında %5 TC'nin 10 μL'sini aşılayın.
  6. Sabit bir basınç elde etmek için biliopankreatik kanalı 5 dakika kapalı tutun. Ardından, mikroenjektörü çıkarın ve kelepçeleri çıkarın.
  7. Duodenumu orijinal anatomik konuma getirin ve kanamayı kontrol edin.
  8. Yarayı 6-0 dikişle kapatın ve% 0.5 iodofor ile dezenfekte edin.

4. İyileşme ve ameliyat sonrası yönetim

  1. Hayvanları 37 °C termal ped üzerinde anesteziden kurtarın. Tüm hayvanlar uyanana kadar ameliyat edilen hayvanları zamansal ameliyat sonrası odaya göndermeyin.
  2. Sıvı takviyesi için 0,8 mL%0,9 salin deri altı ve yavaşça yönetin.
  3. Hayvanları ameliyat sonrası genel durumları ve enfeksiyon veya hastalık belirtileri açısından izleyin.

5. Serolojik test ve histoloji değerlendirmesi

  1. Ameliyat sonrası 24 saat, aynı doz ve enjeksiyon rotasını kullanarak fareleri pentobarbital sodyum ile uyuşturun.
  2. Tüm kanı abdominal aorttan toplayın (fare başına yaklaşık 0,8 mL) ve serumu daha fazla test için izole etmek için 15 dakika boyunca 1.500 x g'da döndürün.
  3. Pankreas dokularını toplayın.
  4. Akciğer dokularını toplamak için göğüs boşluğunu açın.
  5. Amilaz, lipaz, karaciğer fonksiyonu (alanin transaminaz (ALT) ve aspartat transaminaz (AST)) ve böbrek fonksiyonu (üre ve kreatin) dahil olmak üzere serumdan biyokimya fonksiyon indekslerini, üreticilerin talimatlarına göre ticari kitler kullanarak ölçün.
  6. Akciğer ve pankreas dokularını homojenize edin ve üreticinin talimatlarına göre ticari bir kit kullanarak miyeoperoksidaz (MPO) seviyesini ölçün.
  7. Torasik boşluğu açın ve 20 mL fosfat tamponlu salin (PBS) ile iki kez perfüze edin, ardından pankreası toplayın. 24 saat boyunca% 4 paraformaldehit çözeltisine dalın. Bir dizi alkol konsantrasyonunda susuz kalsın ve parafin içine gömün.
  8. 5 μm kalınlığında pankreas dokusu bölümleri hazırlamak için bir mikrotom kullanın.
  9. Pankreasın histolojik değerlendirmesi için H&E lekeleme gerçekleştirin.
  10. Patolojik puanları Schmidt ve ark.30 tarafından önerilen kriterlere göre değerlendirin.

Sonuçlar

Yukarıdaki talimatları dikkatle izleyerek, yaklaşık 40 dakikalık ortalama bir ameliyat süresi elde ettik. Fareler hafif hareketsizdi ve operasyon sonrası sırasıyla 24 saat, 48 saat ve 72 saat'te yaklaşık 0.5-1.75 g, 0.85-1.85 g ve 0.5-4.73 g ağırlık kaybetmişti (Şekil 2).

Ameliyat tamamlandığından ameliyat sonrası 24 saate kadar, hastalık geliştikçe fareler aktif hale geldi ve yavaş yanıtlar ve eylemler gösterdi.

Tartışmalar

TC kaynaklı SAP modeli mükemmel bir araştırma aracıdır. Bu çalışmada gösterildiği gibi, bu model belirli cihazlar kullanmadan genel laboratuvarlarda çok kolay bir şekilde gerçekleştirilir. Histoloji ve biyokimyasal analiz ile birlikte kullanıldığında, AP'yi indükleme ve değerlendirme için maliyet -(ucuz reaktifler) ve zaman kazandıran (24 saat aralığı) bir yaklaşım sağlar. TC konsantrasyonunun ayarlanması aynı zamanda hafif ve ılımlı AP üretme imkanı da sunar. Perides ve diğerleri ayr...

Açıklamalar

Hiç kimse.

Teşekkürler

Aşağıdaki hibelerden gelen destek için minnettarız: NCRCH Çevirisel Araştırma Hibesi [2020WSA01], Suzhou Genç Alimler için Sağlık Komisyonu'ndan KJXW Bilimsel Hibesi [KJXW2020002], Suzhou Şehri Bilim ve Teknoloji Planı (SKY2021038 ve SKJY2021050), Jiangsu Yükseköğretim Kurumlarının Öncelikli Akademik Program Geliştirmesinden (PAPD) bir hibe ve Jiangsu Eyaleti Birincil Araştırma ve Sosyal Gelişim Planı (BE2018659).

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
0.5% iodophorShanghai Likang Disinfectant3101024 mL/mouse
0.9% sodium chlorideSinopharm Group Co., Ltd.100193180.8 mL/mouse
1% Pentobarbital sodiumSigmaP37610.2 -0.25 mL/mouse
25 μL flat tip Microliter syringeGaoge, ShanghaiA124019
4% ParaformaldehydeBeyotime, Nantong, ChinaP0099-500ml
5% sodium taurocholate (TC)AladdinS100834-5g10 μL/SAP mouse
6-0 Sterile nylon microsuture with threaded needle (1/2 circle)Cheng-He20093
75% alcoholSinopharm Group Co., Ltd.100092184 mL/mouse
8-0 Sterile nylon microsuture with threaded needle (3/8 circle)Cheng-He19064
ALT Activity Assay KitEPNK, Anhui, ChinaALT0012
Amylase Assay KitEPNK, Anhui, ChinaAMY0012
Angled small bulldog clamp with 12 mm jaw (3 cm)Cheng-HeHC-X022
aspen shavings or shreds for mouse beddingBeijing Vital River Laboratory Animal TechnologyVR03015
AST Activity Assay KitEPNK, Anhui, ChinaAST0012
Blood Urea Nitrogen (BUN) Assay KitEPNK, Anhui, ChinaBUN0011
C57BL/6 mouseBeijing Vital River Laboratory Animal Technology213
Creatine Assay KitEPNK, Anhui, ChinaCRE0012
Feature microtome bladeBeyotime, Nantong, ChinaE0994
Hemostatic Forceps (9.5 cm, Curved)JZ, Shanghai Medical Instruments Co. Ltd.JC3901
Lipase Assay KitJiancheng, Nanjing, ChinaA054-2-1
MicrotomeLeica biosystem, GermanyRM2245
Mindray biochemistry analyzerMindray, Shenzhen, ChinaBS-420
MPO Assay KitJiancheng, Nanjing, ChinaA044-1-1
Normal mouse chowTrophic, Nantong, ChinaLAD 1000
Phosphate buffered salineBeyotime, Nantong, ChinaC0221A
Straight micro-bulldog clamp with 5 mm jaw (1.5 cm)JZ, Shanghai Medical Instruments Co. Ltd.W40130
Straight or curved forceps (11.0 cm)Cheng-HeHC-X091A or HC-X090A
Straight Scissors (10.0 cm)Cheng-He, Ningbo, ChinaHC-J039102
Thermo Scientific CentrifugeThermo Scientific, USAMultifuge X1R

Referanslar

  1. Lee, P. J., Papachristou, G. I. New insights into acute pancreatitis. Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology. 16 (8), 479-496 (2019).
  2. Mandalia, A., Wamsteker, E. J., DiMagno, M. J. Recent advances in understanding and managing acute pancreatitis. F1000Research. 7, 959 (2018).
  3. Banks, P. A., et al. Classification of acute pancreatitis-2012: revision of the Atlanta classification and definitions by international consensus. Gut. 62 (1), 102-111 (2013).
  4. Munir, F., et al. Advances in immunomodulatory therapy for severe acute pancreatitis. Immunology Letters. 217, 72-76 (2020).
  5. Peery, A. F., et al. Burden of gastrointestinal disease in the United States: 2012 update. Gastroenterology. 143 (5), 1179-1187 (2012).
  6. Hines, O. J., Pandol, S. J. Management of severe acute pancreatitis. BMJ. 367, 6227 (2019).
  7. James, T. W., Crockett, S. D. Management of acute pancreatitis in the first 72 hours. Current Opinion in Gastroenterology. 34 (5), 330-335 (2018).
  8. Silva-Vaz, P., et al. Murine models of acute pancreatitis: a critical appraisal of clinical relevance. International Journal of Molecular Sciences. 20 (11), 2794 (2019).
  9. Hyun, J. J., Lee, H. S. Experimental models of pancreatitis. Clinical Endoscopy. 47 (3), 212-216 (2014).
  10. Renner, I. G., Wisner, J. R., Rinderknecht, H. Protective effects of exogenous secretin on ceruletide-induced acute pancreatitis in the rat. Journal of Clinical Investigation. 72 (3), 1081-1092 (1983).
  11. Niederau, C., Ferrell, L. D., Grendell, J. H. Caerulein-induced acute necrotizing pancreatitis in mice: protective effects of proglumide, benzotript, and secretin. Gastroenterology. 88 (5), 1192-1204 (1985).
  12. Foitzik, T., et al. Exocrine hyperstimulation but not pancreatic duct obstruction increases the susceptibility to alcohol-related pancreatic injury. Archives in Surgery. 129 (10), 1081-1085 (1994).
  13. Schneider, L., Dieckmann, R., Hackert, T., Gebhard, M. M., Werner, J. Acute alcohol-induced pancreatic injury is similar with intravenous and intragastric routes of alcohol administration. Pancreas. 43 (1), 69-74 (2014).
  14. Huang, W., et al. Fatty acid ethyl ester synthase inhibition ameliorates ethanol-induced Ca2+-dependent mitochondrial dysfunction and acute pancreatitis. Gut. 63 (8), 1313-1324 (2014).
  15. Sun, J., et al. NRF2 mitigates acute alcohol-induced hepatic and pancreatic injury in mice. Food and Chemical Toxicology. 121, 495-503 (2018).
  16. Kui, B., et al. New insights into the methodology of L-arginine-induced acute pancreatitis. PLoS One. 10 (2), 0117588 (2015).
  17. Creutzfeldt, W., Schmidt, H., Horbach, I. Studies on the effects of a trypsin inhibitor (Trasylol) on Enzyme activities and morphology in taurocholate and calciphylaxis pancreatitis of the rat (a contribution to the pathogenesis of pancreatitis). Klin Wochenschr. 43, 15-22 (1965).
  18. Liu, Z. H., et al. A simple taurocholate-induced model of severe acute pancreatitis in rats. World Journal of Gastroenterology. 15 (45), 5732-5739 (2009).
  19. Cavdar, F., et al. Controversial issues in biliary pancreatitis: when should we perform MRCP and ERCP. Pancreatology. 14 (5), 411-414 (2014).
  20. Perides, G., van Acker, G. J., Laukkarinen, J. M., Steer, M. L. Experimental acute biliary pancreatitis induced by retrograde infusion of bile acids into the mouse pancreatic duct. Nature Protocols. 5 (2), 335-341 (2010).
  21. Orabi, A. I., et al. Cluster of differentiation 38 (CD38) mediates bile acid-induced acinar cell injury and pancreatitis through cyclic ADP-ribose and intracellular calcium release. Journal of Biological Chemistry. 288 (38), 27128-27137 (2013).
  22. Fanczal, J., et al. TRPM2-mediated extracellular Ca(2+) entry promotes acinar cell necrosis in biliary acute pancreatitis. Journal of Physiology. 598 (6), 1253-1270 (2020).
  23. Huang, W., et al. Caffeine protects against experimental acute pancreatitis by inhibition of inositol 1,4,5-trisphosphate receptor-mediated Ca2+ release. Gut. 66 (2), 301-313 (2017).
  24. Zhang, X., et al. Dehydrocholic acid ameliorates sodium taurocholate-induced acute biliary pancreatitis in mice. Biology and Pharmaceutical Bulletin. 43 (6), 985-993 (2020).
  25. Hagiwara, S., et al. Antithrombin III prevents cerulein-induced acute pancreatitis in rats. Pancreas. 38 (7), 746-751 (2009).
  26. Hagiwara, S., et al. Danaparoid sodium prevents cerulein-induced acute pancreatitis in rats. Shock. 32 (1), 94-99 (2009).
  27. Wittel, U. A., et al. Taurocholate-induced pancreatitis: a model of severe necrotizing pancreatitis in mice. Pancreas. 36 (2), 9-21 (2008).
  28. Barlass, U., et al. Morphine worsens the severity and prevents pancreatic regeneration in mouse models of acute pancreatitis. Gut. 67 (4), 600-602 (2018).
  29. Wu, D., et al. A systematic review of NSAIDs treatment for acute pancreatitis in animal studies and clinical trials. Clinical Research in Hepatology and Gastroenterology. 44, 100002 (2020).
  30. Schmidt, J., et al. A better model of acute pancreatitis for evaluating therapy. Annals in Surgery. 215 (1), 44-56 (1992).
  31. Junyuan, Z., et al. Quercetin protects against intestinal barrier disruption and inflammation in acute necrotizing pancreatitis through TLR4/MyD88/p38MAPK and ERS inhibition. Pancreatology. 18 (7), 742-752 (2018).
  32. Waldron, R. T., et al. The Orai Ca(2+) channel inhibitor CM4620 targets both parenchymal and immune cells to reduce inflammation in experimental acute pancreatitis. Journal of Physiology. 597 (12), 3085-3105 (2019).
  33. Petersen, O. H., Gerasimenko, J. V., Gerasimenko, O. V., Gryshchenko, O., Peng, S. The roles of calcium and ATP in the physiology and pathology of the exocrine pancreas. Physiological Reviews. 101 (4), 1691-1744 (2021).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

T pSay 182

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır