Yazarlar Lonza Walkersville kapalı bir sistem bilgisi, çanta tasarımı, çanta Avcılar ve kaynakçılar kredi, çanta gibi HYPERStack şemadaki oluşturarak onların yardım için teşekkür etmek istiyorum.

1. HYPERStack Gemi - Gaz Geçirgen Malzeme Teknolojisi Arkaplan <ol><li> HYPERStack Gemi hücre metabolizması için bir 76.2micron gaz geçirgen polimer film ile gaz alışverişi dayanmaktadır hücreleri kapalı sistem kültür için çok katmanlı bir gemi. </li><li> HYPERStack damar damar içindeki hücreler üzerinde bir &quot;headspace&quot; sahip olmadığını daha geleneksel hücre kültürü gemileri farklıdır. Damar içinde gaz değişimi için bu &quot;headspace&quot; yerine, gaz geçirgen ürünleri, atmosfere açık, her kültür odası altında hava boşluk (&quot;trakea&quot; alanları &quot;olarak anılacaktır) var. </li><li> Bu trakeal alan eşdeğer gaz değişimi, geminin her bir hücre kültürü bölmesi büyüyen hücreleri sağlar. </li><li> Gaz geçirgen film, steril bir ortamda korurken gaz değişimi meydana sağlar. Çoklu katmanlardan her biri için tüm sıvı manipülasyonlar tek bir giriş portu aracılığıyla oluşur. </li></ol> 2. HYPERStack Gemi Bileşen Özet <ol><li> Stackette üst plaka ve gaz geçirgen film oluşan tek bir hücre kültürü bölmesi. Hücreleri bu bölmesi içinde kültür. </li><li> Sıvı Manifold, 12 stackette katmanlarının her bir HYPERStack modül içinde birlikte bağlanır. Modüller, 12 katmanları katları gemilerin oluşturmak için boru ile bağlanır. Manifoldu kullanıcı bir sıvı manipülasyon yapmak için tüm gemi sağlar. </li><li> Hava Manifold stackette katmanları bir araya bağlanır, ama sıvı eklemeler meydana geldiğinde, geminin hava yerinden. Bu dolgu sırasında kullanılmak üzere bir dolgu hattı içerir. </li><li> Trakeal Uzay gaz değişimi her katmanları &#39;gaz geçirgen film yoluyla gerçekleşmesini sağlayan, her stackette katmanı arasında açık hava alanıdır. </li><li> Sıvı taşıma boru sıvı manifolduna bağlı olan ve tüm kapalı sistem sıvı manipülasyonlar yapmak için kullanılır. Bu bileşen, özelleştirilebilir. </li><li> Havalandırma hortumu, hava manifolduna bağlı bir hava filtresi içeren ve sterilite korurken aşırı hava serbest bırakmak için kullanılır. </li><li> Kovalamak boru, filtre ve kelepçe ve sıvı taşıma boru bağlanır ve geminin doldurduktan sonra sıvı taşıma boru içindeki sıvıyı tahliye etmek için kullanılır. </li><li> Corning Yığın Manipulator veya CSM gemilerin kullanım sırasında doğru pozisyonlara yerleştirerek yardımcı olmak için bir işleme cihazı. </li><li> Dolum Kama, bir paslanmaz çelik, el ile HYPERStack damarları doldururken kullanılan yardımcı. </li></ol> 3. Gaz Geçirgen Film HYPERStack gemiler kullanılır sayesinde Gaz Difüzyon Sonuçlar <ol><li> Bacalı headspace geleneksel hücre büyümesi sistemleri, medya oksijen, kültür 3 gün içinde ortalama% 50 tükenmiş. (Şekil 1) </li><li> Aynı hücre büyümesi sistemi, medya 3mm yüksekliğinde oksijen gradiyenti hücre katmanı daha headspace kavşak medya neredeyse% 50 daha fazla. (Şekil 2) </li><li> 76.2micron gaz geçirgen polistiren film aracılığıyla oksijen difüzyon, medya 2.6mm aracılığıyla difüzyon eşit. HYPERStack damarlarda kullanılan gaz geçirgen film gaz alışverişi hücre tabakasının ortaya sağlar. </li><li> Trakeal HYPERStack gemilerin uzayda oksijen% hücreleri izdiham büyüdükçe sabit kalır. (Şekil 3) </li></ol> 4. Medya Çanta Hazırlık <ol><li> HYPERStack-12 katman damar medya 1.3L HYPERStack-36 kat gemi alır ve medya 3.9L alır. </li><li> Torbalı medya aşılamak için önce serum kullanılacak ise, tüp medya çanta serum çanta kaynak ve iyice karıştırın. </li><li> Kelepçe medya yaklaşık 300 ml, büyük çanta kelepçeler kullanarak çanta. Bu inoküle edilen tüm hücrelerin hiçbiri medya torba içinde kalan ve dolum sırasında kullanılan sağlayacaktır. Yeri medya çanta çanta standında. </li></ol> 5. Aşılamak Medya <ol><li> Hücre süspansiyonu ile bağlı tüp ile bir şırınga doldurun. Tüp kaynak medya çanta hücre süspansiyonu içeren bir şırınga 3 / 16 &quot;boru. </li><li> Medya Çanta Hücre Süspansiyon içine enjekte edilir ve iyice karıştırın. </li></ol> 6. Prosedür doldurun <ol><li> Tüp HYPERStack geminin 3 / 8 &quot;sıvı taşıma boru (bağlar Steril veya Çok Amaçlı (MPCs) bağlanır, aynı zamanda damar medya çanta ekleyebilirsiniz) inoküle medya çanta kaynak. </li><li> HYPERStack sıvı taşıma ve kovalamaca tüpler kelepçeler kapatın. </li><li> Kanca havalandırma filtresi tüp CSM tutan kelepçe, yük pozisyonda CSM HYPERStack 36 Katman Gemi yerleştirin. Kapağı sıkın ve CSM dolgu konumu taşımak. Gemi doğru dolgu pozisyon içine koyarak; hava filtresi dolgu işlemi sırasında ıslanma önlemek için en yüksek konumda şu anda. 10 ° açı izinleri equilibrdolum esnasında sıvı katmanları ation. Dolum kama yan yerleştirilen HYPERStack-12 tabaka damar doldurmak için doğru pozisyonda. </li><li> Çanta HYPERStack gemi (yüksek olmayan) olarak aynı seviyede konumlandırarak doldurma çizgisine temizleyin hava. Kovalamaca tüp kelepçe kapalı tutulması; gemi girmek için sıvının sıvı taşıma tüp kelepçe ve medya çanta kelepçe açmak. </li><li> Çanta standı kullanarak, kabına hücre süspansiyonu akışını yardımcı olmak için medya çanta yükseltmek. </li><li> Gemi inoküle medyanın tüm gemi girinceye kadar doldurun; 300 ml medya hala medya çanta üst kısmında kalmalıdır. Gemi dolum devam etmek için medya çanta kelepçeyi çıkarın. Sıvı üst hava manifoldu yaklaşırken, dolgu üzerinde önlemek için medya çanta düşürerek dolgu hızını yavaşlatır. Yavaş yavaş sıvı seviyesi doldurma çizgisine getirmek ve sıvı taşıma boru kelepçe. </li></ol> 7. Into Katmanlar Sıvı Lock İzolasyon Prosedürü <ol><li> Manifoldu, her iki seti de en yüksek konumda böylece izolasyon konumuna CSM HYPERStack gemi getirin ve altındaki medya çanta geminin yüksekliği daha düşük. HYPERStack-12 katman gemi, geminin yan tarafında bir el koyarak ve diğer dolum kama asansör kullanarak izolasyon pozisyona kaldırılabilir. </li><li> Dik bir pozisyonda yapılan kovalamaca filtresi ile kovalayan, tüp kelepçe açın. Bu medya torbaya geri sıvı tüp içinde ele medya boş ya da kovalamak olacak. Hortumun boş sonra medya çanta boru, kelepçe kapatın. </li><li> Takip tüp filtre dik bir pozisyonda tutmak, kalan herhangi bir kap içinde sıvı girin ve denge sağlaması için izin HYPERStack sıvı taşıma boru kelepçe açmak. Bunun gerçekleşmesi için 1-2 dakika bekleyin. </li><li> Manifoldlar soldaki böylece CSM HYPERStack gemi açın. CSM üzerindeki yükü konumuna geminin indirin. HYPEStack-12 kat gemi biraz sola Sallanır dolum kama kaldırılması izin verecektir. Kovalamak ve sıvı taşıma boru kelepçeleri kapatın. </li><li> Şimdi medya çanta gemiden kaldırılır ya da daha sonra hasat yordamı kullanmak için bağlı kalır. Ekli medya çanta saklamak için HYPERStack geminin depolama tepsisi tespit bantları altında boş çanta ve torba içinde kalan herhangi bir medya, yer ve döndürün. </li><li> Inkübatör HYPERStack geminin hareket ettirin. Gemi bakım taşırken havalandırma filtreye giren sıvı tutmak için önlemler alınmalıdır. Bu biraz yukarı HYPERStack manifoldu sonuna devrilme tarafından gerçekleştirilir. </li></ol> 8. Hasat Protokolü <ol><li> Hasat işlemi başlatmak için, tüp hasat çanta montaj oluşturmak üzere bir araya hücre disosiasyon çözüm ve quench çanta kaynak. Tüm boru kelepçeleri kapalı olduğundan emin olun. (Göstermek için karikatür) </li><li> Inkübatör HYPERStack gemi çıkarın tespit bantları altında medya çanta bırakın ve çanta standı asmak. Geminin yük pozisyonda CSM geminin güvenli kapak yerleştirin ve sıkın. Holding kıskaç içine havalandırma boru Kanca CSM ve dolgu konumuna taşımak. </li><li> Medya çanta boru ve medya ekli torba içine akmasını sağlamak için geminin sıvı taşıma boru kelepçe açık; medya çanta çanta standında HYPERStack daha asılı emin olun. </li><li> Sonra gemi hakkında ¾ boş, son boş pozisyon CSM ayarlarını değiştirmek. HYPERStack gemi ve sıvı taşıma boru boş zaman, harcanan medya çanta boru kelepçe geçmişte medya kovalamak için boru kaldırın, sonra sıvı taşıma boru, kelepçe ve harcanan medya çanta boru kelepçe kapatın. </li><li> Harcanan medya çanta boru kaynağı ile hasat çanta montaj ile değiştirin ve çanta standı kullanarak HYPERStack yüksekliği yukarıda hücre disosiasyon torba montaj yüksekliği yükseltmek. </li><li> CSM dengeleme pozisyonda yerleştirin. Hücre disosiasyon çözüm tüp HYPERStack çözüm kelepçe ve transfer açın. Transfer tamamlandığında, sıvı taşıma boru ve hücre disosiasyon çözüm boru kelepçeleri kapatın. </li><li> CSM yük konumuna getirin. Yatay konumlandırma kolu açık tutarak, yavaşça hücre katmanları üzerinden çözüm dağıtmak, geminin yan tarafına tekerleğini kullanarak kaya. Gemi zaman zaman çözümün eşit dağılımını sağlamak için sallanan sırasında dengeleme konumuna iade edilebilir. Katmanları tamamen kaplı olduğunu görsel olarak belirgin olmayabilir, ancak ayrışma çözümü hücrelerin yüzeye eşit dağılmış olacak. Çözüm yeterince dağıtılan edildikten sonra, yük konumu HYPERStack kilitlemek için CSM kolunu serbest bırakın. Bu pozisyonda HYPERStack bırakınhücreleri için gerekli disosiasyon süre içinde. </li><li> Sonra hücreleri müstakil, bir kılavuz olarak bulanıklık kullanarak, dengeleme konumuna CSM taşımak. Bakım hücreler üzerinde sindirmek için alınmalıdır. Quench medya gemi girmesine izin quench çanta kelepçe ve HYPERStack sıvı taşıma boru kelepçe açın. HYPERStack sıvı taşıma boru kelepçe transferi tamamlandıktan sonra kapatın. </li><li> CSM yük pozisyonuna dönün ve geminin yan tarafına rock yatay konumlandırma kolunu tutun. </li><li> Çanta standı HYPERStack seviyesinin altında hasat torba montaj konumunu kullanarak, daha düşüktür. Damar sıvı taşıma tüpü söndürmeye torbaya geri hücre çözümü kelepçe ve transfer açık, boş pozisyon için CSM ayarlayın. CSM yük pozisyonuna dönün ve bir tüp macunu kullanarak geminin hasat çanta montaj bağlantısını. Hücre çözümü işlem için hazırdır. </li></ol> 9 - Temsilcisi Sonuçlar <ul><li> Hasat zamanı, standart bir polistiren yüzeyinden gaz geçirgen polistiren yüzeye dönüştürürken optimize edilmesi gerekiyor. Hücreler HYPERStack ürünü daha hızlı serbest eğilimindedir. </li><li> Hücreleri mikroskop altında görmek için havalandırma ve sıvı taşıma boru bağlanarak gerekir. Manifoldlar mikroskop sahnede aşağı dönük HYPERStack geminin baş aşağı yerleştirin. </li><li> Önleme adımları çalışmamasına neden olacak kullanım sırasında filtreler ıslatma önlemek için alınabilir. Değil HYPERStack gemi doldurma ve kelepçeler açık olduğunda, havalandırma ve kovalamaca tüp yüksekte tutmak içinde, hiçbir ıslatma meydana gelmelidir. </li><li> Tüp kapalı kelepçeler basınç kelepçeler açıldıktan sonra kapalı kalmaya neden olur. Ters yönde boru pinching açacaktır. </li><li> Medya akış süresi giren ve yerçekimi linki üzerinden HYPERStack gemi çıkmadan HYPERStack damar medyanın üst düzey ve üst düzey medya konteyner medya medya arasındaki yükseklik farkı dayanmaktadır. Daha fazla mesafe, daha hızlı akışını. Maksimum akış 1.5L/min filtreleri derece sınırlıdır. </li><li> HYPERStack geminin uygun dolgu hacmi bakımı, hücre büyümesi odaları hava kabarcığı oluşumunu önlemek. Evaporatif su kaybı nedeniyle unhumidified ortamda alma ya da kuluçka için hava kabarcıkları nedeniyle oluşabilir. Son kullanıcı tarafından ek sıvı eklenmelidir inkübasyon koşullarının yanı sıra, örnekleme miktarı ve sıklığı belirleyecektir. </li></ul><img src="/files/ftp_upload/2499/2499fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1, standart hücre kültürü damar medya Oksijen tükenmesi . Bu rakam, 3 gün içinde hücreleri düzeyinde mg / L oksijen azalması gösterir. <img src="/files/ftp_upload/2499/2499fig2.jpg" alt="Şekil 2" /> Şekil 2, standart hücre kültürü gemisi medya Oksijen degrade . Bu rakam, Oksijen mg / L medya headspace kesiştiği hücre tabakasının daha büyük gösterir. <img src="/files/ftp_upload/2499/2499fig3.jpg" alt="Şekil 3" /> Şekil 3 HYPERStack hücre büyümesi sırasında trakeal boşluk Oksijen yüzdesi. Bu rakam, 96 saat boyunca, her bir gaz geçirgen film alt malzemeleri katmanları arasındaki oksijen yüzdesi, sabit kaldığını gösteriyor. Bu hücrelerin büyüme confluency sırasında oksijen erişim yeteneğini göstermektedir.

7745209: HYPERStack gemi gaz geçirgen teknoloji, ABD Patent # kapsamında. Yazarlar, bu yazıda kullanılan alet üreten Corning, Yaşam Bilimleri, Inc çalışanları.

HYPERStack damar başarılı bir şekilde büyüdü, birincil ve kök hücre mühendislik vardır. Agirlik yem ve steril bir ortam konteyner pompalama aseptik torbada bağlantıları aracılığıyla damar içine Akışkan eklemeler yapılmıştır. Geminin büyüme alanında daha fazla 2.5X artış vs aynı hacimsel ayak izi yığılmış plaka ürünü sağlar. HYPERStack-12 6.000 cm 2 büyüme alanı, HYPERStack-36 18.000 cm 2 büyüme alanı ve HYPERStack-120 60.000 cm 2 büyüme alanı vardır. Yüzey alanını arttırarak, kullanıcıların aynı hücrede nüfus veya çok daha fazla hücre üretmek ve değişkenliği azaltmak mümkün. Ayrıca, aynı hücre çıkışı elde, ya da insanların, temiz oda suit, veya inkübatör eklemeden hücre çıkış artırmak için daha az damarları kullanarak, uzay ve / veya işçilikten tasarruf edebiliyoruz. Sistem, düşük partikül montaj yöntemleri ve yapıştırıcı kullanılmadan üretilmektedir. Üçlü Torbalı ve steril sağlanan boru setleri ve filtreler ile önceden monte edilmiş kapalı bir sistem.

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>1.5L Bagged Media</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Lonza</td>
<td>TBD</td>
<td>1350ml media + 150ml serum (if required)</td>
</tr>
<tr>
<td>4.0L Bagged Media</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Lonza</td>
<td>TBD</td>
<td>3600ml media + 400ml serum (if required)</td>
</tr>
<tr>
<td>HYPERStack Vessel-12</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Corning</td>
<td>10012</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>HYPERStack Vessel-36</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Corning</td>
<td>10036</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Filling Wedge</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Corning</td>
<td>10040</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Stack Manipulator</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Corning</td>
<td>TBD</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>HyQtainer Sub-Assembly Sampling Device</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>HyClone/LonzA</td>
<td>SH3B0324.01</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>600ml Bagged Media Quencher (10% FBS IMDM)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Lonza</td>
<td>TBD</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>600ml Cell Dissociation Solution</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Lonza</td>
<td>TBD</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

closed system cell culture protocol using hyperstack vessels with gas permeable material technology

Büyük hacimli yapışık hücre kültürü microcarrier boncuk optimal bir tercih değildir yığılmış plaka hücre büyümesi ürünler üzerinde standardize edilmiştir. HYPERStack gemiler mevcut yığılmış plaka ürünleri kapalı sistem ölçekli kadar izin verir ve aynı hacimsel ayak izi&gt; 2.5X daha fazla hücre sunar. Bu nedenle HYPERStack damarları gaz değişimi meydana sağlar gaz geçirgen malzeme ile fonksiyon, bir geminin içinde iç headspace ihtiyacını ortadan kaldırır. Headspace ortadan kaldırılması, hücre büyümesini en aza indirilecektir oluşur bölmesi aynı hacimsel ayak izi içinde hücre büyümesi yüzey alanı daha fazla katman izin azaltmak için, uzay sağlar. Hücre tedavi veya aşı üretimi gibi birçok uygulama için, kapalı bir sistem, hücre büyümesi ve hasat için gereklidir. HYPERStack damar medya çanta veya diğer yöntemlerle tüp yoluyla hücre ve reaktif ekleme ve çıkarma sağlar. Bu protokol HYPERStack kaplar, gaz difüzyon sonuçları hücreleri, kapalı sistem hücre büyümesi protokolleri ve çeşitli hasat yöntemleri metabolik ihtiyaçlarını karşılamak için kullanılan gaz geçirgen malzeme arkasındaki teknoloji açıklayacağız.

Watch this Scientific Journal Video about Closed System Cell Culture Protocol Using HYPERStack Vessels with Gas Permeable Material Technology at JoVE.com

Closed System Cell Culture Protocol Using HYPERStack Vessels with Gas Permeable Material Technology

Teknoloji, protokol ve yüksek verim yapışık hücre kültürü için kullanılan Corning HYPERStack gemiler ve aksesuarları işlenmesi halinde bir giriş. Protokol, mevcut yığılmış plaka ürünler üzerinde artan hücre hasat için kapalı sistem gemileri nasıl kullanılacağını gösterecektir.

Gaz Geçirgen Malzeme Teknolojisi HYPERStack gemiler Kapalı Sistem Hücre Kültürü Protokolü

Large volume adherent cell culture is currently standardized on stacked plate cell growth products when microcarrier beads are not an optimal choice.   ...

closed-system-cell-culture-protocol-using-hyperstack-vessels-with-gas

Research

JoVE Journal

Biology

18.7K Görüntüleme.  Corning Life Science. Teknoloji, protokol ve yüksek verim yapışık hücre kültürü için kullanılan Corning HYPERStack gemiler ve aksesuarları işlenmesi halinde bir giriş. Protokol, mevcut yığılmış plaka ürünler üzerinde artan hücre hasat için kapalı sistem gemileri nasıl kullanılacağını gösterecektir.

Video: Closed System Cell Culture Protocol Using HYPERStack Vessels with Gas Permeable Material Technology

Principles of Site-Specific Recombinase (SSR) Technology

Site-specific recombinase (SSR) technology allows the manipulation of gene structure to explore gene function and has become an integral tool of molecular biology. Site-specific recombinases are proteins that bind to distinct DNA target sequences. The Cre/lox system was first described in bacteriophages during the 1980's. Cre recombinase is a Type I topoisomerase that catalyzes site-specific recombination of DNA between two loxP (locus of X-over P1) sites. The Cre/lox system does not require any cofactors. LoxP sequences contain distinct binding sites for Cre recombinases that surround a directional core sequence where recombination and rearrangement takes place. When cells contain loxP sites and express the Cre recombinase, a recombination event occurs. Double-stranded DNA is cut at both loxP sites by the Cre recombinase, rearranged, and ligated ("scissors and glue"). Products of the recombination event depend on the relative orientation of the asymmetric sequences.
SSR technology is frequently used as a tool to explore gene function. Here the gene of interest is flanked with Cre target sites loxP ("floxed"). Animals are then crossed with animals expressing the Cre recombinase under the control of a tissue-specific promoter. In tissues that express the Cre recombinase it binds to target sequences and excises the floxed gene. Controlled gene deletion allows the investigation of gene function in specific tissues and at distinct time points. Analysis of gene function employing SSR technology --- conditional mutagenesis -- has significant advantages over traditional knock-outs where gene deletion is frequently lethal.

Principles of Site-Specific Recombinase SSR Technology

The advent of site-specific recombinase (SSR) technology and the Cre/lox system has led to numerous advances in molecular biology, and has proven itself as a valuable tool for assessing gene function in transgenic animals. This interview discusses the mechanism of site specific recombination by Cyclization recombinase (Cre) and how the use of this enzyme has led to the development of conditional mutagenesis, which has significant advantages over traditional knock out strategies.

Site Özel Recombinase (SSR) Teknoloji İlkeleri

Site-specific recombinase (SSR) technology allows the manipulation of gene structure to explore gene function and has become an integral tool of molecular ...

Biyoloji

Engineering Cell-permeable Protein

The protein transduction technique enables the direct delivery of biologically active material into mammalian cells [for review see 1,2]. For this one can make use of the translocating ability of so-called cell penetrating peptides (CPPs), also designated as protein transduction domains (PTDs). The TAT-CPP derived from the human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) Tat (trans-activator of transcription) protein has been widely used. The positively charged TAT promotes cell permeability thereby overcoming the barriers of the cellular membrane by endocytosis or/and direct membrane penetration2. In combination with a nuclear localization signal (NLS) fusion proteins are able to enter the nucleus exhibiting functionality. Our video presentation demonstrates, as an exemplification for the engineering of cell-permeable proteins, the construction, production and application of a cell-permeable version of the DNA-modifying enzyme Cre.
Cre is a site-specific recombinase that is able to recognize and recombine 34 base pair loxP sites in mammalian cells in vitro and in vivo. Therefore the Cre/loxP system is widely used to conditionally induce mutations in the genome of living cells3,4. The delivery of active Cre recombinase to cells, however, represents a limitation.
We describe the pSESAME vector system, which allows a direct insertion of the gene-of-interest and provides a platform to rapidly clone different domains and tags used within the vector in a convenient and standardized manner. Rearranging of the different tags has been shown to modify the biochemical properties of the fusion proteins providing a possibility to achieve higher yield and better solubility. We demonstrate how to express and purify recombinant cell-permeant proteins in and from E. coli. The functionality of the recombinant Cre protein is finally validated in cell culture by assessing its intracellular recombinase activity.

Protein transduction enables the direct delivery of biologically active proteins into cells. In contrast to conventional methods such as DNA transfection or viral transduction this non-invasive paradigm allows highly efficient cellular manipulation in a titratable manner circumventing cellular toxicity and the risk of oncogenic transformation by permanent genetic modification.

Mühendislik Hücre geçirgen Protein

The protein transduction technique enables the direct delivery of biologically active material into mammalian cells [for review see 1,2]. For this one can ...

The Method of Rodent Whole Embryo Culture using the Rotator-type Bottle Culture System

Whole embryo culture (WEC) technique has been developed in 1950's by New and his colleagues, and applied for developmental biology 1. Although development and growth of mammalian embryos are critically dependent on the function of the placenta, WEC technique allows us to culture mouse and rat embryos ex vivo condition during limited periods corresponding to midgestation stages during embryonic day (E) 6.5-E12.5 in the mouse or E8.5-E14.5 in the rat 2, 3, 4. In WEC, we can directly target desired areas of embryos using fine glass capillaries because embryos can be manipulated under the microscope. Therefore, rodent WEC is very useful technique when we want to study dynamic developmental processes of postimplanted mammalian embryos. Up to date, several types of WEC systems have been developed 1. Among those, the rotator-type bottle culture system is most popular and suitable for long-term culture of embryos at midgestation, i.e., after E9.5 and E11.5 in the mouse and rat, respectively 1. In this video protocol, we demonstrate our standard procedures of rat WEC after E12.5 using a refined model of the original rotator system, which was designed by New and Cockroft 5, 6, and introduce various applications of WEC technique for studies in mammalian developmental biology.

Whole embryo culture technique allows us to culture mouse and rat embryos ex vivo condition during limited periods corresponding to midgestation stages. In this video protocol, we demonstrate our standard procedures of rat whole embryo culture after E12.5 using the rotator-type bottle culture system.

Rotator-tipi Şişe Kültür Sistemi kullanılarak Kemirgen Tüm Embriyo Kültürü Yöntemi

Whole embryo culture (WEC) technique has been developed in 1950's by New and his colleagues, and applied for developmental biology 1. Although development ...

Determining Cell Number During Cell Culture using the Scepter Cell Counter

Counting cells is often a necessary but tedious step for in vitro cell culture. Consistent cell concentrations ensure experimental reproducibility and accuracy. Cell counts are important for monitoring cell health and proliferation rate, assessing immortalization or transformation, seeding cells for subsequent experiments, transfection or infection, and preparing for cell-based assays. It is important that cell counts be accurate, consistent, and fast, particularly for quantitative measurements of cellular responses.
Despite this need for speed and accuracy in cell counting, 71% of 400 researchers surveyed1 who count cells using a hemocytometer. While hemocytometry is inexpensive, it is laborious and subject to user bias and misuse, which results in inaccurate counts. Hemocytometers are made of special optical glass on which cell suspensions are loaded in specified volumes and counted under a microscope. Sources of errors in hemocytometry include: uneven cell distribution in the sample, too many or too few cells in the sample, subjective decisions as to whether a given cell falls within the defined counting area, contamination of the hemocytometer, user-to-user variation, and variation of hemocytometer filling rate2.
To alleviate the tedium associated with manual counting, 29% of researchers count cells using automated cell counting devices; these include vision-based counters, systems that detect cells using the Coulter principle, or flow cytometry1. For most researchers, the main barrier to using an automated system is the price associated with these large benchtop instruments1.
The Scepter cell counter is an automated handheld device that offers the automation and accuracy of Coulter counting at a relatively low cost. The system employs the Coulter principle of impedance-based particle detection3 in a miniaturized format using a combination of analog and digital hardware for sensing, signal processing, data storage, and graphical display. The disposable tip is engineered with a microfabricated, cell- sensing zone that enables discrimination by cell size and cell volume at sub-micron and sub-picoliter resolution. Enhanced with precision liquid-handling channels and electronics, the Scepter cell counter reports cell population statistics graphically displayed as a histogram.

The Scepter Cell Counter is a handheld automated device that can be used to count cells, monitor cell diameter and volume, and be used to check the health and quality of cellular populations from one culture to the next.

Hücre Kültürü sırasında Hücre Sayısını Belirleme Scepter Hücre Sayıcı

Counting cells is often a necessary but tedious step for in vitro cell culture. Consistent cell concentrations ensure experimental reproducibility and ...

A Chemical Screening Procedure for Glucocorticoid Signaling with a Zebrafish Larva Luciferase Reporter System

Glucocorticoid stress hormones and their artificial derivatives are widely used drugs to treat inflammation, but long-term treatment with glucocorticoids can lead to severe side effects. Test systems are needed to search for novel compounds influencing glucocorticoid signaling in vivo or to determine unwanted effects of compounds on the glucocorticoid signaling pathway. We have established a transgenic zebrafish assay which allows the measurement of glucocorticoid signaling activity in vivo and in real-time, the GRIZLY assay (Glucocorticoid Responsive In vivo Zebrafish Luciferase activitY). The luciferase-based assay detects effects on glucocorticoid signaling with high sensitivity and specificity, including effects by compounds that require metabolization or affect endogenous glucocorticoid production. We present here a detailed protocol for conducting chemical screens with this assay. We describe data acquisition, normalization, and analysis, placing a focus on quality control and data visualization. The assay provides a simple, time-resolved, and quantitative readout. It can be operated as a stand-alone platform, but is also easily integrated into high-throughput screening workflows. It furthermore allows for many applications beyond chemical screening, such as environmental monitoring of endocrine disruptors or stress research.

We describe the procedure and data analysis of a chemical screening system for glucocorticoid stress hormone signaling using zebrafish larvae: the Glucocorticoid Responsive In vivo Zebrafish Luciferase activitY (GRIZLY) assay. The assay sensitively and specifically detects effects on glucocorticoid signaling by compounds that require metabolization or affect endogenous glucocorticoid production.

Bir Zebra balığı Larva Lusıferaz Muhabir Sistemi ile glukokortikoid Signaling&#39;den için bir Kimyasal Tarama Prosedürü

Glucocorticoid stress hormones and their artificial derivatives are widely used drugs to treat inflammation, but long-term treatment with glucocorticoids ...

An Ex vivo Culture System to Study Thyroid Development

The thyroid is a bilobated endocrine gland localized at the base of the neck, producing the thyroid hormones T3, T4, and calcitonin. T3 and T4 are produced by differentiated thyrocytes, organized in closed spheres called follicles, while calcitonin is synthesized by C-cells, interspersed in between the follicles and a dense network of blood capillaries. Although adult thyroid architecture and functions have been extensively described and studied, the formation of the &#8220;angio-follicular&#8221; units, the distribution of C-cells in the parenchyma and the paracrine communications between epithelial and endothelial cells is far from being understood.
This method describes the sequential steps of mouse embryonic thyroid anlagen dissection and its culture on semiporous filters or on microscopy plastic slides. Within a period of four days, this culture system faithfully recapitulates in vivo thyroid development. Indeed, (i) bilobation of the organ occurs (for e12.5 explants), (ii) thyrocytes precursors organize into follicles and polarize, (iii) thyrocytes and C-cells differentiate, and (iv) endothelial cells present in the microdissected tissue proliferate, migrate into the thyroid lobes, and closely associate with the epithelial cells, as they do in vivo.
Thyroid tissues can be obtained from wild type, knockout or fluorescent transgenic embryos. Moreover, explants culture can be manipulated by addition of inhibitors, blocking antibodies, growth factors, or even cells or conditioned medium. Ex vivo development can be analyzed in real-time, or at any time of the culture by immunostaining and RT-qPCR.
In conclusion, thyroid explant culture combined with downstream whole-mount or on sections imaging and gene expression profiling provides a powerful system for manipulating and studying morphogenetic and differentiation events of thyroid organogenesis.

An Ex vivo Culture System to Study Thyroid Development

This protocol describes dissection of mouse embryonic thyroid anlagen and the culture of explants on semiporous filters or on microscopy plastic slides. This system is ideal to study morphogenetic or differentiation events occurring during thyroid development of wild type or knockout embryos, and is amenable to gain- and loss-of-function experiments.

Bir<em&gt; Ex vivo</em&gt; Kültür Sistemi Tiroid Geliştirme Çalışması

The thyroid is a bilobated endocrine gland localized at the base of the neck, producing the thyroid hormones T3, T4, and calcitonin. T3 and T4 are ...

A Video Protocol of Retroviral Infection in Primary Intestinal Organoid Culture

Lgr5-positive stem cells can be supplemented with the essential growth factors Egf, Noggin, and R-Spondin, which allows us to culture ever-expanding primary 3D epithelial structures in vitro. Both the architecture and physiological properties of these &#39;mini-guts&#39;, also called organoids, closely resemble their in vivo counterparts. This makes them an attractive model system for the small intestinal epithelium. Using retroviral transduction, functional genetics can now be performed by conditional gene overexpression or knockdown. This video demonstrates the procedure of organoid culture, the generation of retroviruses, and the retroviral transduction of organoids to assist phenotypic analysis of the small intestinal epithelium in vitro. This novel organotypic model system in combination with retroviral mediated gene expression provides a valuable tool for rapid analysis of gene function in vitro without the need of costly and time-consuming generation for transgenic animals.

This protocol explains primary Lgr5-positve organoid culture and the subsequent performance of retroviral transduction. This enables Cre-inducible overexpression or knockdown of the delivered transgene and allows functional studies to be carried out in the novel in vitro organotypic model system.

İlköğretim Bağırsak organoid Kültür Retrovirütik Enfeksiyon Bir Video Protokolü

Lgr5-positive stem cells can be supplemented with the essential growth factors Egf, Noggin, and R-Spondin, which allows us to culture ever-expanding ...

Direct Protein Delivery to Mammalian Cells Using Cell-permeable Cys2-His2 Zinc-finger Domains

Due to their modularity and ability to be reprogrammed to recognize a wide range of DNA sequences, Cys2-His2 zinc-finger DNA-binding domains have emerged as useful tools for targeted genome engineering. Like many other DNA-binding proteins, zinc-fingers also possess the innate ability to cross cell membranes. We recently demonstrated that this intrinsic cell-permeability could be leveraged for intracellular protein delivery. Genetic fusion of zinc-finger motifs leads to efficient transport of protein and enzyme cargo into a broad range of mammalian cell types. Unlike other protein transduction technologies, delivery via zinc-finger domains does not inhibit enzyme activity and leads to high levels of cytosolic delivery. Here a detailed step-by-step protocol is presented for the implementation of zinc-finger technology for protein delivery into mammalian cells. Key steps for achieving high levels of intracellular zinc-finger-mediated delivery are highlighted and strategies for maximizing the performance of this system are discussed.

Direct Protein Delivery to Mammalian Cells Using Cell-permeable Cys2-His2 Zinc-finger Domains

Zinc-finger domains are intrinsically cell-permeable and capable of mediating protein delivery into a broad range of mammalian cell types. Here, a detailed step-by-step protocol for implementing zinc-finger technology for intracellular protein delivery is presented.

Hücre geçirgen Cys kullanılarak memeli hücrelerinde doğrudan protein teslim<sub&gt; 2</sub&gt; His<sub&gt; 2</sub&gt; Çinko-parmak Alanlar

Due to their modularity and ability to be reprogrammed to recognize a wide range of DNA sequences, Cys2-His2 zinc-finger DNA-binding domains have emerged ...

Development of an Insert Co-culture System of Two Cellular Types in the Absence of Cell-Cell Contact

The role of secreted soluble factors in the modification of cellular responses is a recurrent theme in the study of all tissues and systems. In an attempt to make straightforward the very complex relationships between the several cellular subtypes that compose multicellular organisms, in vitro techniques have been developed to help researchers acquire a detailed understanding of single cell populations. One of these techniques uses inserts with a permeable membrane allowing secreted soluble factors to diffuse. Thus, a population of cells grown in inserts can be co-cultured in a well or dish containing a different cell type for evaluating cellular changes following paracrine signaling in the absence of cell-cell contact. Such insert co-culture systems offer various advantages over other co-culture techniques, namely bidirectional signaling, conserved cell polarity and population-specific detection of cellular changes. In addition to being utilized in the field of inflammation, cancer, angiogenesis and differentiation, these co-culture systems are of prime importance in the study of the intricate relationships that exist between the different cellular subtypes present in the central nervous system, particularly in the context of neuroinflammation. This article offers general methodological guidelines in order to set up an experiment in order to evaluating cellular changes mediated by secreted soluble factors using an insert co-culture system. Moreover, a specific protocol to measure the neuroinflammatory effects of cytokines secreted by lipopolysaccharide-activated N9 microglia on neuronal PC12 cells will be detailed, offering a concrete understanding of insert co-culture methodology.

In multicellular organisms, secreted soluble factors elicit responses from different cell types as a result of paracrine signaling. Insert co-culture systems offer a simple way to assess the changes mediated by secreted soluble factors in the absence of cell-cell contact.

Hücre-Hücre İletişim Yokluğunda iki Hücresel Türleri Ekleme Co-kültür Sisteminin Geliştirilmesi

The role of secreted soluble factors in the modification of cellular responses is a recurrent theme in the study of all tissues and systems. In an attempt ...

Laboratory Protocol for Genetic Gut Content Analyses of Aquatic Macroinvertebrates Using Group-specific rDNA Primers

Analyzing food webs is essential for a better understanding of ecosystems. For example, food web interactions can undergo severe changes caused by the invasion of non-indigenous species. However, an exact identification of field predator-prey interactions is difficult in many cases. These analyses are often based on a visual evaluation of gut content or the analysis of stable isotope ratios (&#948;15N and &#948;13C). Such methods require comprehensive knowledge about, respectively, morphologic diversity or isotopic signature from individual prey organisms, leading to obstacles in the exact identification of prey organisms. Visual gut content analyses especially underestimate soft bodied prey organisms, because maceration, ingestion and digestion of prey organisms make identification of specific species difficult. Hence, polymerase chain reaction (PCR) based strategies, for example the use of group-specific primer sets, provide a powerful tool for the investigation of food web interactions. Here, we describe detailed protocols to investigate the gut contents of macroinvertebrate consumers from the field using group-specific primer sets for nuclear ribosomal deoxyribonucleic acid (rDNA). DNA can be extracted either from whole specimens (in the case of small taxa) or out of gut contents of specimens collected in the field. Presence and functional efficiency of the DNA templates need to be confirmed directly from the tested individual using universal primer sets targeting the respective subunit of DNA. We also demonstrate that consumed prey can be determined further down to species level via PCR with unmodified group-specific primers combined with subsequent single strand conformation polymorphism (SSCP) analyses using polyacrylamide gels. Furthermore, we show that the use of different fluorescent dyes as labels enables parallel screening for DNA fragments of different prey groups from multiple gut content samples via automated fragment analysis.

Most common gut content analyses of macroinvertebrates are visual. Requiring intense knowledge about morphological diversity of prey organisms, they miss soft bodied prey and, due to strong comminution of prey, are nearly impossible for some organisms, including amphipods. We provide detailed, novel genetic approaches for macroinvertebrate prey identification in the diet of amphipods.

Su Macroinvertebrates kullanma gruba özel rDNA astar genetik Gut içerik analizleri için laboratuvar iletişim kuralı

Analyzing food webs is essential for a better understanding of ecosystems. For example, food web interactions can undergo severe changes caused by the ...