Biz özellikle Aline Yonezawa Mari laboratuar ve Godenschwege laboratuar, üyeleri tanımak istiyoruz, yorum ve bu protokol ile yardımcı olacaktır. Bu çalışma Nörolojik Hastalıklar Ulusal Enstitüsü ve FM ve TAG İnme hibe R21NS06637 tarafından finanse edildi; AB Ulusal Bilim Vakfı ödülü sayısı 082.925, URM tarafından finanse edildi: Gelecekte araştırmacılar için Bütünleştirici Biyoloji.

1. Elektrofizyoloji Rig Set-up <ol><li> Elektrofizyoloji kulesi kurulumu için gerekli ekipman Augustin ve arkadaşları tarafından detaylı olarak tarif edilmektedir. Bu Dergisi 14. Gerekli elektrofizyolojik aparatlarının ayrıntılı bir açıklama için bu makaleye bakın. </li><li> Nanoinjector tutan altıncı mikromanipülatör, ekleyerek daha önce açıklanan elektrofizyoloji platformu set-up 14 değiştirin. Şekil 2 de gösterildiği gibi, iki uyarıcı elektrod mikromanipülatörler arasında yer almalıdır hayvanın kafası kolay erişim için. </li><li> Deney başlamadan önce, bütün mikromanipülatörler ile birlikte dönüş her eksende rahat bir aralığında olmasını sağlamak, ve tüm elektrotlar hem de enjeksiyon mikropipet (adım 2&#39;ye bakınız) hayvan ulaşabileceği. </li></ol> 2. Nanoinjection Set-up <ol><li> Nanoinjection set-up bir Nanoliter2000 (Dünya precisi gerektirirAraçlardan, Sarasota, FL, ABD) veya nanoliter miktarlarda kontrollü enjeksiyon sağlar enjektör benzer tip. </li><li> Bir elektrot çektirmesi ile MΩ 80-100 bir direnç çekerek enjektör ile birlikte cam mikropipetler kullanarak enjeksiyon iğnesi hazırlayın. </li><li> Düz enjeksiyonları için konik bir 45 derecelik bir açıda bir 11-17 um açıklığı (Şekil 3) mikropipetler için gereklidir. </li><li> Yavaşça Nanoliter2000 kılavuzda anlatıldığı gibi sentetik yağ hava kabarcıkları olmasını sağlayarak, bir Hamilton şırınga kullanarak enjeksiyon mikropipet dolgu. </li><li> Dikkatle nanoinjector üzerine mikropipet güvenli ve Nanoliter2000 kılavuzda belirtildiği gibi aşırı yağı boşaltılması sırasında bileşik yüklemek için hazırlayın. </li><li> Mikromanipülatör üzerine enjektör yerleştirin ve Nanoliter2000 kılavuzunda anlatıldığı gibi bileşik yükleyin. Mikropipet ucu bu dönemde sonu yok emin olunprosedürü. </li><li> Nanoliter2000 el tarafından talimat olarak enjektörün kontrol kutusu enjekte edilmek üzere nanoliters istenilen miktarda ayarlayın. Toplam miktar enjekte 100 nl geçmemelidir unutmayın. Biz serum fizyolojik kontrol çözümleri büyük miktarlarda GFS devresinin fonksiyonunu etkileyebileceğini bulundu. </li><li> Bu nanoinjector bir güç kaynağı arka plan gürültü (Şekil 4) olarak görünür kayıtları, müdahale yana enjektör, enjeksiyon kendisi dışında kayıt edinimi sırasında kontrol kutusu bağlantısının olması önemlidir. Onu yeniden koyacaktır Ancak, kontrol kutusuna güç kaynağı bağlantısını kesmeyin. </li></ol> 3. Drosophila melanogaster Hazırlık <ol><li> Daha önce tarif edildiği gibi 14,15 CO 2 veya buz üzerinde 2-6 günlük sinekler uyuşturmak. </li><li> Bir kere hareketsiz, küçük bir tabak wi için hayvan aktarmak için cımbız kullanınayakları onu toplayarak inci yumuşak diş mumu. Bir erkek meyve sineği yaklaşık 1.0 mg ağırlığında ve bir bayan meyve sineği 1.2 mg ağırlığındadır, böylece bileşik-to-vücut ağırlığı oranının erkek karşısında erkek sineklerin farklı olduğunu unutmayın. Bu nedenle, bu deneyler için sadece tek bir cinsiyet kullanılması tavsiye edilir. </li><li> Daha önce 14,15 açıklandığı gibi, dikkatli bir sinek dorsal yüzü yukarı takmak ve toraks ve baş gövde etrafına yerleştirilen yumuşak diş mumu ile immobilize emin olun. Dikkatle onlar toraks (Şekil 2, C) dik yatıyordu böylece kanatları yayıldı. Sinek mümkün olduğu kadar az zarar ile monte edilmelidir. </li></ol> 4. Eşleştirilmiş Nanoinjection / elektrofizyoloji <ol><li> Uyarıcı elektrotlar yönelik kafa ile elektrofizyoloji teçhizat monte sinek yerleştirin. </li><li> Daha önce 14,15 (F tarif edildiği gibi, karşılık gelen uyarıcı, zemin ve kayıt elektrotlar ile hayvan kazığa oturtmakigure 2, C). TTM kas içine DLM ve diğer içine aksi istenen sürece, yerini bir kayıt elektrot. DLM kas anterior dorso-Merkez saçlar ve sineğin orta hat arasında toraks yer almaktadır. TTM kas sinek 7 anterior ve posterior Supra-Alar kıllar arasında, kanat ekleri yakınında bulunmaktadır. </li><li> Kafa posterior kısmının üzerinde yer ama (Şekil 2, C) henüz enjekte olmayan üç ocelli merkezine sahip bileşiği içeren enjeksiyon mikropipet hizalama. </li><li> Bileşik enjeksiyon beyin stimülasyonu ile Dev Fiber Sistemi (GDS, Şekil 1) yollarının DLM TTM ve GF için GF bir temel kayıt edinin. Önce Bunu yapmak için, 10 uyaranların 10 trenler (40-50 mV) trenler 14,15 (Şekil 4) arasında 1 saniyelik bir gecikme ile 100 Hz&#39;de 0.03 ms bir süre için verilen her ile Dev Elyaf (GF&#39;lerin) etkinleştirin. Yabani tip sh uçarould DLM ve TTM yollar hem de uyarım bu oran bire bir takip edebileceksiniz. TTM yollara DLM ve GF için GF 1:1 oranında 100 Hz uyarımı uymayan sinek atın. </li><li> 1 Hz&#39;de tek bakliyat (Şekil 4) ile GF sürekli uyarılması geçin. </li><li> Hızla kontrol kutusu içine enjektör takın. Arka plan gürültü 1 Hz stimülasyon kayıtları engel olacak olsa da, kesmeyen. </li><li> Sadece derisinden köklerine aşağıda sineğin baş kapsülü içine enjeksiyon mikropipet dikkatle takın ve 1 Hz stimülasyonu (Şekil 4) korurken sineğin hemolimf içine bileşiğin istenen miktarda enjekte. Sineği açık dolaşım sistemi nedeniyle, tüm sinir sistemi saniye içinde bileşiğine maruz kalan edilecektir. Belirli bir enjeksiyon hemolimf içine maddeleri ulaştırmak için kritik olmasa da, biz lokalize olan ocelli bölgesini bulmakd bileşiğin hızlı ve eşit dağılım yol açar kolay bir enjeksiyon için olanak uygun bir sitesi olması kafa kapsül en dorsal tarafı, at medyal. </li><li> Hemen enjeksiyon sitesinden enjeksiyon mikropipet kaldırmak ve yukarı enjeksiyondan sonra 1 dk (Şekil 4) 1 Hz GF stimülasyonu devam ederken, kontrol kutusundaki enjektör çıkarın. </li><li> GFS üzerindeki bileşiklerin daha ince etkilerini ortaya çıkarmak amacıyla, trenler arasında 1 saniyelik bir gecikme ile 100 Hz&#39;de 10 uyaranların 10 trenler ile Dev Elyaf (GF&#39;lerin) vurgulamak. 15 dakikaya kadar (Şekil 4) bu paradigmanın her 5 dakika GF yollarının işlevini test etmek için devam edin. Ancak, daha kısa aralıklarla veya daha uzun izleme süreleri de mümkündür. </li><li> Bileşik GFS&#39;nin nöromüsküler eklemleri (NMJs) bir etkiye sahiptir, ve muhtemelen bileşiğinin etkileri daraltmak olmadığını test etmek için, motor nöron doğrultularda aktif hale getirmek için devamtly torasik uyarılarak. 100 Hz&#39;de 10 uyaranların 10 trenler ile motor nöronları uyarmak amacıyla Bunun için, gözlerden uyarıcı elektrotlar ve toraks ön tarafta bunları değiştirin. </li></ol> Not: Video gösterilen elektrofizyoloji izleri saf boya enjeksiyon etkilerine karşılık gelmez. 5.. Temsilcisi Sonuçlar Dev Fiber Sistemi sinaps DLM PSI bir antagonisti etkisi Methyllycaconitine sitrat (MLA) α7 nAChR alt tipi için spesifik olan bir nAChR antagonistidir. Dα7 nAChR alt genetik çıkarılması GF-TTM yolu 5,6 üzerinde hiçbir etkisi yoktur ederken GF-DLM yolunda sinaps DLMn için PSI, düzgün fonksiyonu için Dα7 nAChR alt bağlıdır. Bizim testinin özgüllük ve duyarlılık göstermek için farklı konsantrasyonlarda (0, 0.02, 0.04, 0 MLA enjekte.Tuzlu su tedavisi için n = 15); 08, 0.12 ng / mg, 46 nl bir hayvanın kafası (n = 10 bileşiğin tedavi başına içine) enjekte edildi. Sadece erkek sinekler (vahşi tip genotipine yabani 10E of) kullanılmıştır, ve bileşiğin etkisi enjeksiyonundan sonra 15 dakikalık bir toplam izlenmiştir. Şekil 5 temel enjeksiyon önce elde edilen kayıtlar ve MLA ve serum fizyolojik yanıt olarak enjeksiyon sonrası elde edilen arasındaki farkı gösteriyor. Biz MLA bu enjeksiyon GF-TTM yolu etkilenmemiş kalırken beyinde GF&#39;lerin ve uyarılarla 100 Hz de bire bir takip GF-DLM yolunun yetersizliği sonuçlandı bulundu. (Şekil 5, Üst ve orta izleme, veri parametrik olmayan [test normallik ve eşit değişkenlerle] olmadıkça tuzlu kontrolleri [0 ng / mg] ve her zaman noktasında MLA farklı konsantrasyonları arasında yapılan t-testi, aksi takdirde bizim kullandığımız Mann-Whitney Rank Sum testi. * p &lt;0,001). Bununla birlikte, bir tek-bir rmotor nöron (Şekil 5, alt iz) doğrudan uyarılmış edildiğinde DLM arasında esponse DLM ve TTM&#39;nin NMJ fonksiyonu MLA etkilenmez gösteren, gözlenmiştir. MLA başka önemli değişiklikler test döneminde aşağıdaki 15 dakika kaydedildi gibi, 0.04, 0.08 ve 0.12 ng / enjekte MLA mg enjeksiyon sonra maksimum etkisi 1 dakika ulaşmak için ortaya çıktı. Güçlü yanıtları 0.12 ng / mg daha yüksek doz ile gözlenmemiştir Dahası, bileşik, 0.08 ng / mg azından bir maksimum etki ulaşmıştır. <img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1.. Dev Fiber Sistemi Dev Fiber Sistemi (GDS) diyagramı. (Yeşil renkte PSI) Dev Elyaf (kırmızı ile gösterilen GF&#39;lerin), elektriksel sinaps (Gap Kavşaklar) ve kimyasal (kolinerjik) üzerine bir Periferik Synapsing internöron ve Tergo Trochanteral Muscle nöron (TTMN, sarı gösterilir) 5. PSBen DLMn (mavi ile Dorsal longitudinal kas nöron) bağlantı Dα7 nAChR alt tipi 6 bağlıdır. Son olarak atlama (TTM, mor gösterildiği) ve uçuş kasları üzerine TTMN ve DLMn (DSB, mor görüntülenir) nöromüsküler bileşke (NMJ) glutamaterjik olduğunu. Not: PSI bağlantısı GF elektriksel ve kimyasal hem de. Bununla birlikte, shakB mutantları (ara bağlantılar yoksun olan), hiçbir tepki elektrik bağlantıları yokluğunda kimyasal bileşen olarak bir aksiyon potansiyelinin uyandırmak için yeterli değildir gösteren, beyinde GFs stimülasyonu üzerine DLM gelen kaydedilebilir PSI 5,16-18. PSI bağlantısı GF gap junction bağlı olduğundan, bu rakam basit nedenlerden dolayı sinaps sadece GAP kavşak gösterir. <img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig2.jpg" alt="Şekil 2" /> Şekil 2. Mikromanipülatörler set-up. <ol class="ualpha"><li> Bir protokol daha önce yayınlanmış 14 değiştirilmiş bir ayar eşzamanlı nanoinjections ile eşleştirilmiş GFS kayıtlar için enjeksiyon mikromanipülatör uyması için kullanılır. Monte sinek hazırlık deneyci doğru sineğin kafa ile yönlendirilmiş edilir. Enjeksiyon mikromanipülatör (# 1) tungsten uyarıcı elektrod (2 # # ve 3) için olan iki manipülatör arasındaki deneyi önüne yerleştirilir. Cam kayıt elektrotlar (# # 4 ve 5) için iki mikromanipülatörler, sırasıyla, sol ve sağ tarafında yer alır. Tungsten toprak elektrot (# 6) için mikromanipülatör ya sol tarafında (burada gösterildiği gibi) veya sağ tarafta uzak geri konur. </li><li> Çeşitli elektrotlar ve enjeksiyon mikropipet ilişkin düzenlemeler üst A görüntülemek yakın. </li><li> Düzgün monte D. melanogaster elektrotlar ve enjeksiyon için hazır olan enjeksiyon mikropipet impaled. Dikkat edin hayvan vücudununyatay olarak göğüs ve kanat ile monte edilir yayıldı. Bal mumu güvenli bir şekilde hareket etmesini önlemek hayvan gövdesi etrafına sarılır. Ayrıca, toprak elektrot (# 6, karın), cam kayıt elektrotları (karanlık hatları vurgulanan toraks içerisinde 4 ve # 5,) ve uyarıcı elektrotlar (# 2 ve # 3, her iki göz bir Daha önce tarif edildiği gibi 14), bir yerde impaled edilir. Enjeksiyon mikropipet (# 1) doğru üç ocelli (daire) merkezi ile hizalanır. Enjeksiyon mikropipet yerleştirilmesi, bu alanda yer almalıdır. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig3.jpg" alt="Şekil 3" /> Şekil 3. Eğimli enjeksiyon mikropipet. Düzgün eğimli mikropipet şeması burada gösterilir. Elektrot açıklığı 45 derecelik açıyla eğimli ve 11 ila 17 mm arasında bir açıklığa sahip olmalıdır. Uygun bir Eğimli enjeksiyon mikropipet az d ile pürüzsüz bir enjeksiyon için çok önemlidirfly Amage. <img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig4.jpg" alt="Şekil 4" /> Şekil 4. Nanoinjection / elektrofizyoloji protokolü Genel şeması. Nanoinjection / elektrofizyoloji protokolü için genel planın bir temsilci diyagramı. 10 uyaranlara her (sadece bir tren Burada gösterilen) 10 trenler ile 100 Hz Dev Elyaf (GF&#39;lerin) uyararak bir temel kayıt alarak başlayın. Enjeksiyon öncesinde, apart 1 Hz uyarımlar bir saniye başlar. Enjeksiyon süresi (enjektör kontrol kutusuna takılı iken) sırasında, önemli bir arka plan gürültü uyacağız, ancak kayıtları kesmeyen. Enjeksiyondan sonra (ve enjektör kontrol kutusu çıkarıldığından), yaklaşık 1 dakika daha 1 Hz uyarımı devam. Son olarak, 100 Hz&#39;de 10 uyaranların 10 trenler ile GF&#39;lerin vurgulamak ve 15 dakika kadar bu paradigma her 5 dakika GF yollarının fonksiyonunu test etmeye devam geçin. Not: kayıtları were genel düzeni oluşturmak için manipüle ve elde edilen özel bir sonucu temsil etmemektedir. Ölçeksiz değil, bütün izleri görülmektedir. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/3597/3597fig4large.jpg">Büyük resim için tıklayınız</a> . <img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig5.jpg" alt="Şekil 5," /> Şekil 5. GFS içinde MLA etkileri. <ol class="ualpha"><li> Farklı konsantrasyonlarda (0, 0.02, 0.04, 0.08, at sineği GF-DLM yolu üzerinde α7 nAChR antagonisti Methyllycaconitine sitrat (MLA) etkilerinin grafiksel bir anlatımı 0.12 ng / mg n = 10 bileşik tedavi başına.; n salin tedavisi için = 15). Enjeksiyon sonrası sadece bir dakika, bir önemli ve derhal yürürlüğe MLA 0.04 ng / mg görüldü. Önemli bir etkisi de GF&#39;lerin ve 100Hz uyarılması az 0.8ng/mg ve MLA 0.12ng/mg görüldü. Anlamlı bir fark tuzlu kontrolleri ve MLA 0.02 ng / mg arasında bir fark görülmedi. Ayrıca, i değiştirmek yokn etkisi (15 dakika) test süresince 1 dakika sonrası enjeksiyon sonra görüldü. Bir t-testi fizyolojik kontroller (0 ng / mg), ve her bir zaman noktasında MLA farklı konsantrasyonları arasında yapıldı. SEM, * p &lt;0.001 - Düzeyleri + / ortalama olarak bildirilmiştir. </li><li> 100 Hz stimülasyon de DLM yanıtları Örnek izleri. En iz beyinde GF stimülasyonu üzerine MLA enjeksiyon öncesinde kas tepkilerini gösterir. Kas Her uyaran 100 Hz az bir-bir cevap verebilmek olduğuna dikkat edin. Orta iz MLA enjeksiyonu (0.12 ng / mg), sonra DLM tepkilerini gösterir. Kas Her uyaran 100 Hz az bir-bir yanıt mümkün değildir dikkat edin. (Yıldız). Taban iz toraksta motor nöron doğrudan stimülasyonu üzerine aynı hazırlanması (0.12 ng / mg) DLM tepkilerini gösterir. DLM torasik stimülasyon ile 100 Hz az bir-bir yanıt nedeniyle, beyin uyaranlar ile tepkiler başarısızlığı kolinerjik PSI-DLMn bağlantısı atfedilebilir. </li><li> GF-TTM yolu üzerinde farklı MLA konsantrasyonlarda (0, 0.02, 0.04, 0.08, 0.12 ng / mg) ile bir grafik efektleri tasviri. Anlamlı etkileri herhangi bir zaman noktasında tuzlu (0 ng / mg) ve bileşik enjeksiyonlar arasındaki görüldü. Bir t-testi * p &lt;0.001, her bir zaman noktasında salin kontroller (0 ng / mg) ve MLA farklı konsantrasyonları arasında yapıldı. </li><li> 100 Hz stimülasyon de TTM yanıtları Örnek izleri. En iz beyinde uyarılması ile GF etkinleşme ile MLA enjeksiyon öncesinde kas tepkilerini gösterir. Kas 100 Hz tüm uyarılara cevap mümkün olduğuna dikkat edin. Orta iz MLA enjeksiyonu (0.12 ng / mg), sonra DLM tepkilerini gösterir. TTM kas beyinde GF uyarılması cevapları bire bir kalır. Taban iz toraksta motor nöron (0.12 ng / mg) 100 Hz uyarılması için aynı hazırlanması TTM&#39;nin tepkilerini gösterir. </li></ol>

<ol>
	<li>Koehn, F. E., Carter, G. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+evolving+role+of+natural+products+in+drug+discovery.">The evolving role of natural products in drug discovery.</a> Nat. Rev. Drug Discov. 4, 206-220 (2005).</li><li>Miljanich, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ziconotide:+neuronal+calcium+channel+blocker+for+treating+severe+chronic+pain.">Ziconotide: neuronal calcium channel blocker for treating severe chronic pain.</a> Curr. Med. Chem. 11, 3029-3040 (2004).</li><li>Layer, R. T., Wagstaff, J. D., White, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conantokins:+peptide+antagonists+of+NMDA+receptors.">Conantokins: peptide antagonists of NMDA receptors.</a> Curr. Med. Chem. 11, 3073-3084 (2004).</li><li>Lewis, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conotoxins+as+selective+inhibitors+of+neuronal+ion+channels,+receptors+and+transporters.">Conotoxins as selective inhibitors of neuronal ion channels, receptors and transporters.</a> IUBMB Life. 56, 89-93 (2004).</li><li>Allen, M. J., Godenschwege, T. A., Tanouye, M. A., Phelan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Making+an+escape:+development+and+function+of+the+Drosophila+giant+fibre+system.">Making an escape: development and function of the Drosophila giant fibre system.</a> Semin. Cell Dev. Biol. 17, 31-41 (2006).</li><li>Fayyazuddin, A., Zaheer, M. A., Hiesinger, P. R., Bellen, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+nicotinic+acetylcholine+receptor+Dalpha7+is+required+for+an+escape+behavior+in+Drosophila.">The nicotinic acetylcholine receptor Dalpha7 is required for an escape behavior in Drosophila.</a> PLoS biology. 4, e63 (2006).</li><li>Jan, L. Y., Jan, Y. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=L-glutamate+as+an+excitatory+transmitter+at+the+Drosophila+larval+neuromuscular+junction.">L-glutamate as an excitatory transmitter at the Drosophila larval neuromuscular junction.</a> The Journal of physiology. 262, 215-236 (1976).</li><li>Usherwood, P. N., Machili, P., Leaf, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=L-Glutamate+at+insect+excitatory+nerve-muscle+synapses.">L-Glutamate at insect excitatory nerve-muscle synapses.</a> Nature. 219, 1169-1172 (1968).</li><li>Marrus, S. B., Portman, S. L., Allen, M. J., Moffat, K. G., DiAntonio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+localization+of+glutamate+receptor+subunits+at+the+Drosophila+neuromuscular+junction.">Differential localization of glutamate receptor subunits at the Drosophila neuromuscular junction.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 24, 1406-1415 (2004).</li><li>Petersen, S. A., Fetter, R. D., Noordermeer, J. N., Goodman, C. S., DiAntonio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+analysis+of+glutamate+receptors+in+Drosophila+reveals+a+retrograde+signal+regulating+presynaptic+transmitter+release.">Genetic analysis of glutamate receptors in Drosophila reveals a retrograde signal regulating presynaptic transmitter release.</a> Neuron. 19, 1237-1248 (1997).</li><li>Qin, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Four+different+subunits+are+essential+for+expressing+the+synaptic+glutamate+receptor+at+neuromuscular+junctions+of+Drosophila.">Four different subunits are essential for expressing the synaptic glutamate receptor at neuromuscular junctions of Drosophila.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 25, 3209-3218 (2005).</li><li>Schuster, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+cloning+of+an+invertebrate+glutamate+receptor+subunit+expressed+in+Drosophila+muscle.">Molecular cloning of an invertebrate glutamate receptor subunit expressed in Drosophila muscle.</a> Science. 254, 112-114 (1991).</li><li>Tanouye, M. A., Wyman, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Motor+outputs+of+giant+nerve+fiber+in+Drosophila.">Motor outputs of giant nerve fiber in Drosophila.</a> Journal of. 44, 405-421 (1980).</li><li>Augustin, H., Allen, M. J., Partridge, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophysiological+Recordings+from+the+Giant+Fiber+Pathway+of+D.+melanogaster.">Electrophysiological Recordings from the Giant Fiber Pathway of D. melanogaster.</a> J. Vis. Exp. (47), e2412 (2011).</li><li>Allen, M. J., Godenschwege, T., Zhang, B., Freeman, M. R., Waddell, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila Neurobiology. , 215-224 (2010).</li><li>Blagburn, J. M., Alexopoulos, H., Davies, J. A., Bacon, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Null+mutation+in+shaking-B+eliminates+electrical,+but+not+chemical,+synapses+in+the+Drosophila+giant+fiber+system:+a+structural+study.">Null mutation in shaking-B eliminates electrical, but not chemical, synapses in the Drosophila giant fiber system: a structural study.</a> J. Comp. Neurol. 404, 449-458 (1999).</li><li>Thomas, J. B., Wyman, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mutations+altering+synaptic+connectivity+between+identified+neurons+in+Drosophila.">Mutations altering synaptic connectivity between identified neurons in Drosophila.</a> J. Neurosci. 4, 530-538 (1984).</li><li>Baird, D. H., Schalet, A. P., Wyman, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Passover+locus+in+Drosophila+melanogaster:+complex+complementation+and+different+effects+on+the+giant+fiber+neural+pathway.">The Passover locus in Drosophila melanogaster: complex complementation and different effects on the giant fiber neural pathway.</a> Genetics. 126, 1045-1059 (1990).</li><li>Gorczyca, M., Hall, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+a+cholinergic+synapse+in+the+giant+fiber+pathway+of+Drosophila+using+conditional+mutations+of+acetylcholine+synthesis.">Identification of a cholinergic synapse in the giant fiber pathway of Drosophila using conditional mutations of acetylcholine synthesis.</a> J. Neurogenet. 1, 289-313 (1984).</li><li>Allen, M. J., Murphey, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+chemical+component+of+the+mixed+GF-TTMn+synapse+in+Drosophila+melanogaster+uses+acetylcholine+as+its+neurotransmitter.">The chemical component of the mixed GF-TTMn synapse in Drosophila melanogaster uses acetylcholine as its neurotransmitter.</a> The European journal of neuroscience. 26, 439-445 (2007).</li><li>Mejia, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+approach+for+in+vivo+screening+of+toxins+using+the+Drosophila+Giant+Fiber+circuit.">A novel approach for in vivo screening of toxins using the Drosophila Giant Fiber circuit.</a> Toxicon. 56, 1398-1407 (2010).</li><li>Stork, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Organization+and+function+of+the+blood-brain+barrier+in+Drosophila.">Organization and function of the blood-brain barrier in Drosophila.</a> J. Neurosci. 28, 587-597 (2008).</li></ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Burada sunulan nanoinjection / elektrofizyoloji bioassay meyve sineği sinir sisteminde bileşiklerin hızlı bir tarama için olanak sağlar. Bu, iyi karakterize nöronal devrenin moleküler hedefler çeşitli üzerinde bir etki ortaya çıkarmak üzere bir bileşik küçük miktarlarda gerektirir vivo tekniğin bir yenilik arzetmektedir. Bu yöntem, bilinmeyen toksinler ticari olarak temin farmakolojik maddeler için farklı bileşiklerin biyoaktivitenin test etmek için kullanılabilir. <p class...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> Kayıt cam elektrotlar: borosilikat cam kılcal </td><td> Dünya Hassas Aletler </td><td> 1B100F-4 </td><td> 1.0mm OD, 0.58mm ID </td></tr><tr><td> Stimülatör </td><td> Çim Aletleri </td><td> Model S48 </td><td></td></tr><tr><td> Amplifikatör </td><td> Instruments Inc Başlarken </td><td> Model 5A </td><td></td></tr><tr><td> Veri toplama Yazılım: Digidata </td><td> Molecular Devices </td><td> Model 1440A </td><td></td></tr><tr><td> Veri toplama yazılımı: pCLAMP </td><td> Molecular Devices </td><td> Sürüm 10 </td><td></td></tr><tr><td> Stereomikroskop wi fiber optik mikroskop halka aydınlatıcı </td><td> AmScope </td><td> SM-4T Model HL250-AR </td><td></td></tr><tr><td> Montaj için kapsamı Kesme </td><td> AmScope </td><td> SM-2TZ </td><td></td></tr><tr><td> Uçurtma Manuel Mikromanipülatör &amp; Devrilir Tabanı </td><td> Dünya Hassas Aletler </td><td> Model # M3301 Kite: Model # KITE-M3-L </td><td></td></tr><tr><td> Drosophila melanogaster Vahşi 10E genotipi (yabani suşu) </td><td> Bloomington Stok merkezi </td><td> Stok # 3892 </td><td></td></tr><tr><td> Dikey pipet çektirmenin </td><td> David Kopf Aletleri </td><td> 700C modeli </td><td></td></tr><tr><td> Enjeksiyon cam mikropipetler: borosilikat cam kılcal </td><td> Dünya Hassas Aletler </td><td> Katalog # 4878 </td&gt; <td> 1.14mm OD, 0.5mm ID </td></tr><tr><td> Silikon yağı </td><td> Balıkçı </td><td> Katalog # S159-500 </td><td></td></tr><tr><td> Beveler </td><td> Sutter Instrument Co </td><td> KT Kahverengi Tip Model # BV-10 </td><td></td></tr><tr><td> Nanoliter2000 </td><td> Dünya Hassas Aletler </td><td> Katalog # B203XVY </td><td></td></tr><tr><td> Mavi gıda boyası </td><td> McCormick </td><td> N / A </td><td> İçindekiler: Su, propilen glikol, FD &amp; C Mavi 1 ve% 0.1 propilparaben (koruyucu). </td></tr><tr><td> Methyllycaconitine sitrat (MLA) </td><td> Bioscience Tocris </td><td> Katalog # 1029 </td><td></td></tr><tr><td> Plastik balmumu sopa </td><td> Hijyenik Corporation (Akron Ohio USA) </td><td></td><td></td></tr></tbody&gt; </table>

paired nanoinjection and electrophysiology assay to screen for bioactivity of compounds using the drosophila melanogaster giant fiber system

In vivo aktivitesi in bileşikleri için tarama farmakolojik maddeler 1,2 haline edilebilir aday tanımlamak için bir birinci adım olarak kullanılabilir. Biz aracılık Drosophila melanogaster 3,4 olarak kaçış yanıt nöronal devrenin fonksiyonu üzerine bileşiklerin biyoaktif düzenleyici etkileri tespiti sağlayan bir roman nanoinjection / elektrofizyoloji testi geliştirdi. Bizim Drosophila Dev Fiber Sistemi (GDS, Şekil 1) gibi küçük moleküller veya peptitler gibi bileşikler, farklı türde taranmasına izin verir kullanır ve ancak çok az miktarlarda bir etki uyandırmak gerektirir in vivo test içinde. Buna ek olarak, Drosophila GFS nöronlar veya kas potansiyel hedefler moleküler büyük bir sunar. Bir Çevre Synapsing internöron (PSI) ve Tergo Trochanteral Muscle nöron (TTMN) 5 üzerine kimyasal Dev Elyaf (GF&#39;lerin) elektriksel sinaps (Gap Kavşaklar) yanı sıra (kolinerjik) </&gt; sup. DLMn (Dorsal longitudinal kas nöron) bağlantı PSI Dα7 nikotinik asetilkolin reseptörleri (nAChRs) 6 bağlıdır. Son olarak, atlamadan (TTM) ve uçuş kaslarına (DSB) ile TTMN ve DLMn ve kas kavşağı (NMJ) 7-12 glutamaterjik vardır. Burada, Dev Fiber Sistem 13 ve ne kadar bu devrenin işlevi üzerindeki bileşiğinin etkileri izlemek için gelen elektrofizyolojik intraselüler kayıtlar elde ederken, bir bileşiğin nanoliter miktarlarda enjekte etmek için nasıl gösterilmektedir. Biz bağlantı DLMn için PSI ancak bağlantı veya atlama veya uçuş kasları az NMJ işlevini TTMN için GF bozan methyllycaconitine sitrat (MLA), bir nAChR antagonisti ile testin özgüllük gösterirler. Bu video başlamadan önce bunu dikkatle izlemek ve D. Melan ve Dev Fiber Yolu gelen &quot;Elektrofizyolojik Kayıtlar başlıklı Jüpiter Video aşina olmak çok önemlidirVideo Burada vermiş olduğumuz Augustin ve ark 7, gelen ogaster &quot;Bu mevcut teknik bir genişleme olarak tasarlanmıştır. Burada biz sadece eşleştirilmiş nanoinjections ve izleme tekniğinin yanı sıra üzerinde ayrıntılı elektrofizyolojik yöntem ve odak kullanın.

Watch this Scientific Journal Video about Paired Nanoinjection and Electrophysiology Assay to Screen for Bioactivity of Compounds using the Drosophila melanogaster Giant Fiber System at JoVE.com

Paired Nanoinjection and Electrophysiology Assay to Screen for Bioactivity of Compounds using the Drosophila melanogaster Giant Fiber System

A hızlı<em&gt; In vivo</em&gt; Testinin Dev Fiber Sistemi (GDS) kullanılarak nöromodülatör bileşikleri test etmek için<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Tarif edilmektedir. GFS elektrofizyolojik kayıtları ile birlikte hayvanın kafasına Nanoinjections nöronlar veya kasları üzerinde bileşiklerin biyoaktivite ortaya çıkarabilir.

Kullanarak Bileşiklerin Biyoaktivite için eşli Nanoinjection ve Ekran için Elektrofizyoloji Testi Drosophila melanogaster Dev Elyaf Sistemi

Screening compounds for in vivo activity can be used as a first step to identify candidates that may be developed into pharmacological agents1,2. We ...

paired-nanoinjection-electrophysiology-assay-to-screen-for

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Paired Nanoinjection and Electrophysiology Assay to Screen for Bioactivity of Compounds using the Drosophila melanogaster Giant Fiber System

13.0K Görüntüleme.  Florida Atlantic University. A hızlı In vivo Testinin Dev Fiber Sistemi (GDS) kullanılarak nöromodülatör bileşikleri test etmek için Drosophila melanogaster Tarif edilmektedir. GFS elektrofizyolojik kayıtları ile birlikte hayvanın kafasına Nanoinjections nöronlar veya kasları üzerinde bileşiklerin biyoaktivite ortaya çıkarabilir.

Video: Paired Nanoinjection and Electrophysiology Assay to Screen for Bioactivity of Compounds using the Drosophila melanogaster Giant Fiber System

Electrophysiological Recordings from the Giant Fiber Pathway of D. melanogaster

When startled adult D. melanogaster react by jumping into the air and flying away. In many invertebrate species, including D. melanogaster, the "escape" (or "startle") response during the adult stage is mediated by the multi-component neuronal circuit called the Giant Fiber System (GFS). The comparative large size of the neurons, their distinctive morphology and simple connectivity make the GFS an attractive model system for studying neuronal circuitry. The GFS pathway is composed of two bilaterally symmetrical Giant Fiber (GF) interneurons whose axons descend from the brain along the midline into the thoracic ganglion via the cervical connective. In the mesothoracic neuromere (T2) of the ventral ganglia the GFs form electro-chemical synapses with 1) the large medial dendrite of the ipsilateral motorneuron (TTMn) which drives the tergotrochanteral muscle (TTM), the main extensor for the mesothoracic femur/leg, and 2) the contralateral peripherally synapsing interneuron (PSI) which in turn forms chemical (cholinergic) synapses with the motorneurons (DLMns) of the dorsal longitudinal muscles (DLMs), the wing depressors. The neuronal pathway(s) to the dorsovental muscles (DVMs), the wing elevators, has not yet been worked out (the DLMs and DVMs are known jointly as indirect flight muscles - they are not attached directly to the wings, but rather move the wings indirectly by distorting the nearby thoracic cuticle) (King and Wyman, 1980; Allen et al., 2006). The di-synaptic activation of the DLMs (via PSI) causes a small but important delay in the timing of the contraction of these muscles relative to the monosynaptic activation of TTM (~0.5 ms) allowing the TTMs to first extend the femur and propel the fly off the ground. The TTMs simultaneously stretch-activate the DLMs which in turn mutually stretch-activate the DVMs for the duration of the flight. The GF pathway can be activated either indirectly by applying a sensory (e.g."air-puff" or "lights-off") stimulus, or directly by a supra-threshold electrical stimulus to the brain (described here). In both cases, an action potential reaches the TTMs and DLMs solely via the GFs, PSIs, and TTM/DLM motoneurons, although the TTMns and DLMns do have other, as yet unidentified, sensory inputs. Measuring "latency response" (the time between the stimulation and muscle depolarization) and the "following to high frequency stimulation" (the number of successful responses to a certain number of high frequency stimuli) provides a way to reproducibly and quantitatively assess the functional status of the GFS components, including both central synapses (GF-TTMn, GF-PSI, PSI-DLMn) and the chemical (glutamatergic) neuromuscular junctions (TTMn-TTM and DLMn-DLM). It has been used to identify genes involved in central synapse formation and to assess CNS function.

Electrophysiological Recordings from the Giant Fiber Pathway of D. melanogaster

The Giant Fiber System is a simple neuronal circuit of adult Drosophila melanogaster containing the largest neurons in the fly. We describe the protocol for monitoring synaptic transmission through this pathway by recording post synaptic potentials in dorsal longitudinal (DLM) and tergotrochanteral (TTM) muscles following direct stimulation of the Giant Fiber interneurons.

Dev Fiber Pathway Elektrofizyolojik Kayıtlar D. melanogaster</em

When startled adult D. melanogaster react by jumping into the air and flying away. In many invertebrate species, including D. melanogaster, the "escape" ...

Nörobilim

Whole Mount Preparation of the Adult Drosophila Ventral Nerve Cord for Giant Fiber Dye Injection

To analyze the axonal and dendritic morphology of neurons, it is essential to obtain accurate labeling of neuronal structures. Preparing well labeled samples with little to no tissue damage enables us to analyze cell morphology and to compare individual samples to each other, hence allowing the identification of mutant anomalies.
In the demonstrated dissection method the nervous system remains mostly inside the adult fly. Through a dorsal incision, the abdomen and thorax are opened and most of the internal organs are removed. Only the dorsal side of the ventral nerve cord (VNC) and the cervical connective 
(CvC) containing the big axons of the giant fibers (GFs)1 are exposed, while the brain containing the GF cell body and dendrites remains2 in the 
intact head. In this preparation most nerves of the VNC should remain attached to their muscles. 
Following the dissection, the intracellular filling of the giant fiber (GF) with a fluorescent dye is demonstrated. In the CvC the GF axons are located at the dorsal surface and thus can be easily visualized under a microscope with differential interference contrast (DIC) optics. This allows the injection of the GF axons with dye at this site to label the entire GF including the axons and their terminals in the VNC. This method results in reliable and strong staining of the GFs allowing the neurons to be imaged immediately after filling with an epifluorescent microscope. Alternatively, the fluorescent signal can be enhanced using standard immunohistochemistry procedures3 suitable for high resolution confocal microscopy.

Whole Mount Preparation of the Adult Drosophila Ventral Nerve Cord for Giant Fiber Dye Injection

An in vivo dissection of the adult Drosophila ventral nerve cord (VNC) is demonstrated. This particular dissection method causes little damage to the VNC allowing the subsequent labeling of the giant fiber neurons with fluorescent dye for high resolution imaging.

Yetişkin Tüm Dağı Hazırlık Drosophila Dev Fiber Boya Enjeksiyon Ventral Sinir Kablosu

To analyze the axonal and dendritic morphology of neurons, it is essential to obtain accurate labeling of neuronal structures. Preparing well labeled ...

Labeling of Single Cells in the Central Nervous System of Drosophila melanogaster

In this article we describe how to individually label neurons in the embryonic CNS of Drosophila melanogaster by juxtacellular injection of the lipophilic fluorescent membrane marker DiI. This method allows the visualization of neuronal cell morphology in great detail. It is possible to label any cell in the CNS: cell bodies of target neurons are visualized under DIC optics or by expression of a fluorescent genetic marker such as GFP. After labeling, the DiI can be transformed into a permanent brown stain by photoconversion to allow visualization of cell morphology with transmitted light and DIC optics. Alternatively, the DiI-labeled cells can be observed directly with confocal microscopy, enabling genetically introduced fluorescent reporter proteins to be colocalised. The technique can be used in any animal, irrespective of genotype, making it possible to analyze mutant phenotypes at single cell resolution.

Labeling of Single Cells in the Central Nervous System of Drosophila melanogaster

We present a technique for labeling single neurons in the central nervous system (CNS) of Drosophila embryos, which allows the analysis of neuronal morphology by either transmitted light or confocal microscopy.

Merkez Sinir Sistemi Tek Hücreler Etiketleme<em&gt; Drosophila melanogaster</em

In this  article we describe how to individually label neurons in the embryonic CNS of Drosophila melanogaster by juxtacellular injection of the ...

Determination of the Spontaneous Locomotor Activity in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster has been used as an excellent model organism to study environmental and genetic manipulations that affect behavior. One such behavior is spontaneous locomotor activity. Here we describe our protocol that utilizes Drosophila population monitors and a tracking system that allows continuous monitoring of the spontaneous locomotor activity of flies for several days at a time. This method is simple, reliable, and objective and can be used to examine the effects of aging, sex, changes in caloric content of food, addition of drugs, or genetic manipulations that mimic human diseases.

Determination of the Spontaneous Locomotor Activity in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster are useful in studying genetic or environmental manipulations that affect behaviors such as spontaneous locomotor activity.&#160; Here we describe a protocol that utilizes monitors with infrared beams and data analysis software to quantify spontaneous locomotor activity.&#160;

Olarak spontan lokomotor aktivitenin belirlenmesi<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Drosophila melanogaster has been used as an excellent model organism to study environmental and genetic manipulations that affect behavior. One such ...

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by stressed conspecifics due to an odorant released during stress known as the Drosophila stress odorant (dSO). Through the use of the T-maze apparatus, one can quantify the avoidance of the dSO by responder flies in a very affordable and robust assay. Conditions necessary to obtain a strong performance are presented here. A stressful experience is necessary for the flies to emit dSO, as well as enough emitter flies to cause a robust avoidance response to the presence of dSO. Genetic background, but not their group size, strongly altered the avoidance of the dSO by the responder flies. Canton-S and Elwood display a higher performance in avoiding the dSO than Oregon and Samarkand strains. This behavioral assay will allow identification of mechanisms underlying this social behavior, and the assessment of the influence of genes and environmental conditions on both emission and avoidance of the dSO. Such an assay can be included in batteries of simple diagnostic tests used to identify social deficiencies of mutants or environmental conditions of interest.

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Here, we present a protocol to quantify the avoidance of stressed individuals. This paradigm is powerful yet user-friendly and can be used to assess the influence of genes and environment on one kind of social interaction in Drosophila melanogaster.

Sosyal Kaçınma Niceleme için Basit Testi<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by ...

High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To complicate matters even further, the odors detected by the insect nervous system usually are not single compounds but mixtures whose composition and concentration ratios vary. This leads to an almost infinite amount of different olfactory stimuli which have to be evaluated by the nervous system.
To understand which aspects of an odor stimulus determine its evaluation by the fly, it is therefore desirable to efficiently examine odor-guided behavior towards many odorants and odor mixtures. To directly correlate behavior to neuronal activity, behavior should be quantified in a comparable time frame and under identical stimulus conditions as in neurophysiological experiments. However, many currently used olfactory bioassays in Drosophila neuroethology are rather specialized either towards efficiency or towards resolution.
Flywalk, an automated odor delivery and tracking system, bridges the gap between efficiency and resolution. It allows the determination of exactly when an odor packet stimulated a freely walking fly, and to determine the animal&#180;s dynamic behavioral reaction.

High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

The automated tracking system Flywalk is used for high-resolution quantification of odor-guided behavior in Drosophila melanogaster.

Koku kılavuzluğunda Davranış Yüksek çözünürlüklü Niceleme<em&gt; Drosophila melanogaster</emKullanma&gt;<em&gt; Flywalk</em&gt; Paradigma

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To ...

A Behavioral Assay for Mechanosensation of MARCM-based Clones in Drosophila melanogaster

Because of the structural and functional homology to the hair cells of the mammalian inner ear, the neurons that innervate the Drosophila external sense organs provide an excellent model system for the study of mechanosensation. This protocol describes a simple touch behavior in fruit flies which can be used to identify mutations that interfere with mechanosensation. The tactile stimulation of a macrochaete bristle on the thorax of flies elicits a grooming reflex from either the first or third leg. Mutations that interfere with mechanotransduction (such as NOMPC), or with other aspects of the reflex arc, can inhibit the grooming response. A traditional screen of adult behaviors would have missed mutants that have essential roles during development. Instead, this protocol combines the touch screen with mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) to allow for only limited regions of homozygous mutant cells to be generated and marked by the expression of green fluorescent protein (GFP). By testing MARCM clones for abnormal behavioral responses, it is possible to screen a collection of lethal p-element mutations to search for new genes involved in mechanosensation that would have been missed by more traditional methods.

A Behavioral Assay for Mechanosensation of MARCM-based Clones in Drosophila melanogaster

In order to identify novel mutations affecting mechanosensation, we designed an assay that measures the behavioral response to tactile stimulation of fly bristles in mutant clones generated by the MARCM method. The combination of techniques allows for the identification of mechanosensitive mutations that would otherwise be lethal.

Arasında Mechanosensation için bir davranış tahlilinde klonlarda MARCM tabanlı<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Because of the structural and functional homology to the hair cells of the mammalian inner ear, the neurons that innervate the Drosophila external sense ...

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. When selecting sites to deposit their eggs, female flies are capable of ranking the relative attractiveness of their options and choosing the &#34;greater of two goods.&#34; However, most egg-laying preference assays are not practical if one wants to take a systematic genetic screening approach to search for the circuit basis underlying this simple decision-making process, as they are population-based and laborious to set up. To increase the throughput of studying of egg-laying preferences of single females, we developed custom chambers that each can simultaneously assay egg-laying preferences of up to thirty individual flies as well as a protocol that ensures each female has a high egg-laying rate (so that their preference is readily discernable and more convincing). Our approach is simple to execute and produces very consistent results. Additionally, these chambers can be equipped with different attachments to allow video recording the egg-laying animals and to deliver light for optogenetics studies. This article provides the blueprints for fabricating these chambers and the procedure for preparing the flies to be assayed in these chambers.

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

This protocol describes a high throughput assay for testing egg-laying preferences of Drosophila melanogaster at single-animal resolution. This assay provides a simple, efficient, and scalable platform to identify genes and circuit components that control a simple decision-making process.

Yüksek Verimli Testi Bireyin Yumurta Yumurtlayan Tercihler incelemek için<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. ...

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We demonstrate a simple way to tap into the fly reward system, modify experiences related to natural reward, and use voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states. The approach serves as a relevant tool to study the neurons and genes that play a role in experience-mediated changes of internal state. The protocol is composed of two discrete parts: exposing the flies to rewarding and nonrewarding experiences, and assaying voluntary ethanol consumption as a measure of the motivation to obtain a drug reward. The two parts can be used independently to induce the modulation of experience as an initial step for further downstream assays or as an independent two-choice feeding assay, respectively. The protocol does not require a complicated setup and can therefore be applied in any laboratory with basic fly culture tools.

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for inducing rewarding and nonrewarding experiences in fruit flies (Drosophila melanogaster) using voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states.

Kullanımı Ödül arayan davranış değişiklikleri Tedbir Basit Yolu<em&gt; Drosophila melanogaster</em

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We ...

The CApillary FEeder Assay Measures Food Intake in Drosophila melanogaster

For most animals, feeding is an essential behavior for securing survival, and it influences development, locomotion, health and reproduction. Ingestion of the right type and quantity of food therefore has a major influence on quality of life. Research on feeding behavior focuses on the underlying processes that ensure actual feeding and unravels the role of factors regulating internal energy homeostasis and the neuronal bases of decision-making. The model organism Drosophila melanogaster, with its great variety of genetically traceable tools for labeling and manipulating single neurons, allows mapping of neuronal networks and identification of molecular signaling cascades involved in the regulation of food intake. This report demonstrates the CApillary FEeder assay (CAFE) and shows how to measure food intake in a group of flies for time spans ranging from hours to days. This easy-to-use assay consists of glass capillaries filled with liquid food that flies can freely access and feed on. Food consumption in the assay is accurately determined using simple measurement tools. Herein we describe step-by-step the method from setup to successful execution of the CAFE assay, and provide practical examples to analyze the food intake of a group of flies under controlled conditions. The reader is guided through possible limitations of the assay, and advantages and disadvantages of the method compared to other feeding assays in D. melanogaster are evaluated.

The CApillary FEeder Assay Measures Food Intake in Drosophila melanogaster

The CApillary FEeder (CAFE) assay is a simple, budget-friendly, highly reliable method for investigating mechanisms underlying food intake. Used with the highly versatile genetic model organism Drosophila melanogaster, it provides a powerful means of gaining new insights into regulatory mechanisms of food intake.

Kılcal Besleyici Testi Gıda Alımını içinde Tedbirler<em&gt; Drosophila melanogaster</em

For most animals, feeding is an essential behavior for securing survival, and it influences development, locomotion, health and reproduction. Ingestion of ...