Bu protokol, Wellcome Trust hibe kapsamında geliştirilmiştir. Biz sinek stoklarının muhafaza edilmesi ve yıl içinde sinek yemek pişirirken Bayan Maureen Sinclair teşekkür ederim. Biz de bu protokolün gelişmekte onun yardım ve teknik destek için Sayın Michael Aitchison teşekkür etmek istiyorum.

1. Transgenik Sinekler ve Bakım <ol><li> Transjenik Bu tanıtım kullanılan sinekleri: Ubq-gfp-Cdc20 (II), Ubq-RFP-His2B (X *); Ubq-gfp-Cdc20 (II *), Ubq-gfp-Cdc20 (II *); mad2 EY ( III *) ve Ubq-gfp-Cdc20 transgenik sinekler önce, standart bir P-eleman aracılı transgenik yaklaşım 10,11 ve Ubq-rfp-His2B UMR 144 CNRS / Enstitü Curie de Yohanns Belaïche bir tür hediye yoluyla laboratuarda üretildi Paris, Fransa. Onlar standart Drosophila genetiği üzerinden Mad2 mutant arka plan girmiştir. Mad2 EY orijinal mutant hattı Bloomington stok merkezi satın alındı. Bu protokolde transformantlar yükseltmek için kullanılan prosedür ele olmayacaktır. Not: * kromozom sayısını temsil eder. </li><li> Bakım: Transgenik sinekler 25 tutuldu plastik şişeler containin ° Cg gıda sinek ve üstüne ek kuru maya tozu ile. Flakon rutin yetişme koşulları (Şekil 1) bağlı olarak her 3-4 haftada değiştirildi. </li></ol> 2. (Laboratuar ölçekli) Gıda Hazırlama Fly <ol><li> Uçucu gıda karışımı, uygun bir miktarda bileşenleri çözünmesi için sürekli karıştırılarak ısıtıldı. </li><li> Bu orta yaklaşık 8-10 ml Jencons Bilimsel Ltd peristaltik pompa kullanarak her bir plastik şişeye (2.5 cm çap x 8 cm uzunluğunda) içine bulamaç olarak dağıtıldı. </li><li> Gıda bulamaç ayarlandı ve oda sıcaklığına kadar soğuduktan sonra, şişe bir pamuk köpük fişli takılı. Bu besinler şişeleri sonra plastik bir torbaya mühürlü ve ° C daha sonra kullanılmak üzere 4 tutulur bir tepsiye yerleştirilir. </li></ol> 3. Küçük ölçekli Yumurta Toplama <ol><li> 2-3 günlük ergin sinek yaklaşık 50 çift lay için 25 yüzeyinde ek kuru maya tozu ile birlikte taze bir sinek gıda flakon ° C aktarılmıştırembriyolar ing. </li><li> Sinekler sonra taze bir şişeye her saat aktarılır ve çekirdekler yavaş yavaş kortekse göç zaman toplanan embriyoların bazı nükleer bölünme döngüsü 8-10 yaş civarındaki emin olmak için 30 dakika şişe içinde embriyo bırakıp olarak düzenlenen Tek tek tabakalı. Genellikle koşulları döşenmesi için uygun olmadığı zaman erkek vücudunda tutuldu yaşlı embriyolar içerdiğinden ilk bir saat koleksiyonu normal atılır. </li></ol> 4. Lameller ve Slaytlar hazırlanması <ol><li> 50 x 22 mm coverslip dışarı atın ve hafif nemli bir ince kalem fırça ve bir mikroskop lamı üzerine koydu kullanarak suyun çok küçük bir miktar ile bir tarafında dört köşe ıslak böylece coverslip çünkü kılcal yüzey gerilimi hareket etmiyor ince sıvı film tarafından neden oldu. </li><li> Lameller ortasında boyunca heptan tutkal ince bir şerit uygulayın, heptan coverslip üzerine tutkal bırakmak saniye içinde buharlaşmasına gerekir. </li><li>Küçük kareler (~ 1.5 mm 2) bir elmas kalemle başka coverslip Kes, bir pick up ve tutkal şeridin bir ucunu (bu mikroenjeksiyon gerektiğinde iğne ucu açmak için kullanılır) üzerine yerleştirin ve gelecek için diğerleri kaydetmek kullanın. </li><li> Başka bir mikroskop lamı alın ve kapak kağıdı kapalı yaklaşık 2 cm ona uzun ve soyma çift taraflı yapışkan bir bant yapıştırın. (Şekil 2A ve B bakınız). </li></ol> 5.. Dechorionate Embriyolar <ol><li> Bir taze gıda şişeye aktarın ve sinekler yumurta yaymak izin vermek için uygun bir sıvı miktarı ile slayt üzerinde çift taraflı yapışkan bant üzerine yaklaşık 50 yumurta transferi için nemlendirilmiş ince kalem fırça kullanın. Sıvı buharlaşmış erdiğinde yumurta bandı sadık olacaktır. </li><li> Bir mikroskop altında dokunmatik uzun ekseni boyunca yumurta birkaç kez koryon kadar yavaşça cımbız yarısı dış tarafına kullanılarak kırık ve açık olan fakat Chor içinde embriyo terkHızlı su kaybını önlemek için iyon kabuk. Yumurta 10-20 (tek bir deney için gerekli olan yumurta sayısına bağlı olarak) muameleye tabi tutulmuş olan kadar bu işlemi devam eder. </li><li> Embriyolar daha sonra kaldırdım ve koryon kabuk kaldırılır ve yavaşça tek yapıştırıcı şerit birine yerleştirilebilir. Yumurta yerleştirilir ve embriyo paralel ya da bunların mikroenjeksiyon edilecekse bağlıdır tutkal şeridinin uzun yan, anti-paralel uzun kenarı ile ya uyum edilebilir. </li><li> Embriyosu ya hemen görüntüleme için daha da kurumaya önlemek için Voltalef 10S yağı, uygun bir miktarda (Holocarbon 700 yağ ve 27 bir yağ 05:01 karışım, Sigma) ile hemen kapalı veya 3-8 dakika boyunca kurumaya haznesi yerleştirilebilir daha fazla oda ve deney amacı neme bağlı olarak bunları kurutmak. Mikroenjeksiyon gerekli ise aşırı su kaybını önlemek için uygun olduğunda kurutulmuş embriyolar 10S yağı ile kaplanmış olmalıdır. (Bkz: Şekil. 2C, D&amp; E). </li></ol> 6. Görüntüleme Embriyolar <ol><li> Yaşayan embriyoların Time-lapse veya tek görüntüleri HCX PL APO CS 40X 1.25 immersiyon yağı objektif (60 veya 100X hedefleri çok yüksek, deney amacına bağlı olarak kullanılabilecek bir Leica TCS SP2 ters konfokal mikroskop sistemi kullanılarak toplanan büyütme meydana gelecek beyazlatma fazla fotoğraf) kullanılır. </li><li> Görüntüleme birden spektrumları örtüşen florofor ve aynı embriyo içinde bir arada ifade edilir, her floresan proteini emisyon dalgaboyu sırayla toplanmıştır. Leica TCS SP2 sisteminizde bulunan eksitasyon ve emisyon dalga boyları şunlardır: GFP, λ Ex: 488 nm ve λ Em: 500-600 nm. TÇD, λ Ex: 543 nm ve λ Em: 555-700 nm. </li><li> A tek görüntü genellikle çerçevenin 2-taramalar ortalama ile 2 scanlines bir ortalama olarak elde edildi. Bu 512x512 p taramak için 6.3 saniye minimum alırsıralı tarama modu için eşzamanlı bir tarama modu, 15.44 saniye ve artış görülebilir görüntü iyi bir sinyal-gürültü oranı üretir. Bu kez hızlandırılmış görüntü toplama için zaman çerçeveleri kurarken dikkate alınması gerekir. </li><li> Iğne deliği normalde 1-2 AU (havadar birim) kuruldu ve lazer güç önemli photobleaching önlemek için mümkün olan en düşük seviyede ayarlandı. </li></ol> 7. Uygun reaktifler ile Embriyolar Microinjecting tarafından SAC provoke <ol><li> Deneyden önce iğne hazırlayın. Parametreleri ile: ısı = 600, = 90, vel = 70 çekin: Biz alev / kahverengi mikropipet çektirmenin (P-97 Sutter Enstrüman, Modeli) kullanılarak silikonlu cam kapilerleri (GC-100-10, Harvard) gelen iğne çekmek için tercih , del = 150. </li><li> Enjeksiyon tampon içinde, uygun bir reaktif konsantrasyonu 1-2 ml ince bir yükleme ucu (: W215818J 20 ul Eppendorf çok) kullanılarak iğne Dolgu. </li><li> İğne Ho iğne monteEppendorf enjeksiyon kontrol sistemine bağlı basınçlı boru ile mikroskop lder. </li><li> 40X objektif altında bir embriyo bulun ve görüş alanının ortasına iğne hareket eden ve yavaş yavaş sağ odak düzlemi onu düşürerek odak düzlemi değiştirmeden iğne gölge bulabilirsiniz. </li><li> Kırık coverslip yapıştırıcı şerit bir ucunda önceden monte edilmiş küçük kare bulmak için nazikçe uzak embriyo taşıyın. Bu küçük kare lameller kenarına vurur ve yavaşça açın kalıncaya kadar çok nazikçe iğne ucu hareket ettirin. </li><li> Görünümüne geri embriyolar taşıyın ve enjeksiyon için doğru yaş embriyo seçin. Çekirdekler kortekse dışarıya göç önce bu gibi normalde 5-7 nükleer bölünme döngüsünde embriyo enjekte edin. Nükleer bölünmesi döngüsü aşamaları GFP-Cdc20 veya önceden enjeksiyon için 9 RFP-histon 2B Nükleer sinyalinin flüoresan sinyalleri hızlı bir tarama ile tespit edilebilir. </li><li> Dikkatle Embry hareketo iğne yakın ve embriyo ve iğne hem de odak düzlemi tekrar ayarlayın. Iğne içine embriyo hareket ettirin ve istenilen pozisyon içine reaktif bir damla enjekte ve uzak embriyo hareket (veya mikroenjeksiyon sistemi için yönergeleri izleyin). Embriyo posterior veya deney amacına bağlı taraftan enjekte edilebilir. </li><li> Bir kez embriyo uygun zamanda yansıması hazır enjekte edilir. (Şekil 2F &amp; G&#39;ye bakınız) </li></ol> 8. Temsilcisi Sonuçlar <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3763/3763fig1.jpg" /> Şekil 1.. Gerekli malzemeler: a. ince kalem fırça, b. küçük kare kırık gözlük kabı, c. 22 x 50 mm coverslip, d. mikroskop lamı, e. çift ​​taraflı yapışkan bant, f. kapağı, g delikli test tüpünde kuru maya toz. mayaGranül sineği bakım, s için kullanılır. gıda flakon, ben uçuyorum. dechorionate embriyosu için kullanılan bir cımbız bir buçuk, j. bir çift cımbız, k. heptan tutkal sıvı kabı (ölçülü balona). <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3763/3763fig2.jpg" /> Şekil 2. Diyagramları adım 4 adım 5 ve 7. adımda mikroenjeksiyon için iğne hazırlıklarına embriyo dechorionation yılında lamelleri ve slaytların hazırlanması göstermektedir. A. Üst resmi ortasından arasında heptan tutkal bir şerit ve bir ucuna yapışmış kırık lameller küçük bir kare ile bir coverslip gösterir. Alt resim coverslip tutmak için dört köşesine ince bir su tabakası ile bir mikroskop lamı gösterir. Coverslip tutmak için bir slayt kullanma nedeni slaytlar üzerinde çift taraflı bant var ve böylece mikroskop refocusing kaçınarak zaman bulundu kabaca aynı odak mesafesi tutmak size ar isee Anatomi ve teyp ve kapak arasında embriyo transferi. B. Çift taraflı bant kısa bir uzunluğu ile slayt embriyo. C dechorionating için kullanılan kapağı kağıt soyulmuştu önce uygulanır. Soldaki resimde işaretlenmiş ön ve arka uçları sağlam koryon kabukları ile embriyoları gösterir, onlar yapıştırıcı şerit ile coverslip üzerine transfer edilmeden önce sağdaki resim kırık koryon kabuklarında embriyoların gösteren D &amp; E Diyagramları iki gösteriyor.. , transfer yerleştirerek ve tutkal şeritlerin üzerine dechorionated embriyolar hizalamak için yollar. Embriyoların uygun bir kuruma süresinden sonra 10S yağı ile örtülmüştür. Bu şekilde enjekte etmek için iğne ve pozisyon ucu nasıl açılacağını gösteren F &amp; G. Diyagramları. Yukarıda açıklanan deneylerde elde Tek veya zaman atlamalı görüntüleri doğrudan Leica yazılımı kullanılarak analiz ya da açık bir fo olarak. TIF dosyalarını kaydedilebilirBu göstermek için böyle Görüntü J, Photoshop ve Metamorph vb iki örnek gibi diğer genel görüntü analiz programları kullanarak daha fazla miktar ya da düzenleme analizler için kullanılabilir rmat aşağıda tartışılmıştır: Örnek 1: Bir kez-lapse (Şekil 3) GFP-Cdc20 ve Drosophila sinsityal embriyolar yaşayan kromozom hareket dinamik kinetochore işe gösterir. Orijinal time-lapse dizisi görüntülerden ilgi Bölgede tespit / Saat ve otomatik-toplu Photoshop yazılımı kullanılarak dönüştürülür. Film QuickTime yazılımı kullanılarak toplandı. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/3763/3763fig3.jpg" /> Şekil 3. Bir zaman-lapse GFP-Cdc20 ve Drosophila sinsityal embriyolar yaşayan kromozom hareket dinamik kinetochore işe gösterir. (A) Zaman aralıklı görüntüleri GFP-Cdc20 (yeşil) co-ifade eden bir transgenik sinsityal embriyo alındıve TTT-Histon 2B (kırmızı) füzyon proteinleri ve ° C nükleer bölünmede döngüleri sırasında 7-8 18 Leica TCS SP2 konfokal sistemi kullanılarak kaydedildi. Çerçeveler her 10 saniyede çekildi. Zaten profaz hücreleri ile çerçeve sıfır zaman noktası 10 olarak kabul edilir. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/3763/3763movie3A.mov" target="_blank">Şekil 3A için filmi görmek için buraya tıklayın</a> . (B) GFP-Cdc20 kolayca profaz ve prometafaz çekirdek zarı (B3 &amp; 4, beyaz oklar) gözlenen ve olabilir metafaz ve anafaz çekirdek zarı (B5 ve 6, beyaz oklar) devam etmektedir. GFP-Cdc20 erken profaz tarafından çekirdeği girerek, interfaz çekirdeği (beyaz ok) çıkarılmıştır. Kromatin morfolojileri belirteçleri (B8-14) gibi ortak dile getirdikleri His2BmRFP kullanılarak belirlenmiştir. Barlar 5mm =. Örnek 2: SAC fonksiyonları microinjecting antikorlar, floresan ile işaretlenmiş proteinler veya kimya tarafından embriyoların manipüle ederek ele alınabilirPotansiyel SAC tetikleyecek bu ilgi l bileşikleri. Örneğin enjekte kolşisin için mikrotübüllerin depolymerize Şekil 4. 10 belirtildiği gibi SAC provoke öyle. <img alt="Şekil 4" src="/files/ftp_upload/3763/3763fig4.jpg" /> Şekil 4. Mad2 kolşisin-çağrılan SAC fonksiyonu 10 için gereklidir. gfp-cdc20; mad2 + / +, gfp-cdc20; mad2 EY (mad2 - / - boş mutant) ve gfp-mad2; mad2 EY embriyolar mikroenjeksiyon tarafından kolşisin ile tedavi edildi. Time-lapse konfokal görüntüleri (; 08-12, orta panelleri; 14-18, alt paneller 02-06, üst paneller) önce (01, 07 ve 13) veya enjeksiyon sonrasında alındı. GFP-Cdc20 (üst ve orta panelleri) veya GFP-Mad2 (alt panel) kinetochore sinyalleri hücre döngüsü ilerleme işaretleri olarak kullanılmıştır. Üst panel, oklar 02-06 yılında tutuklandı çekirdek zarı göstermektedir. 01 yılında bir okla işaretli alan kolşisin, GFP-C önce olduğunu gösterirDC20 geç interfaz çekirdeği çıkarılmıştır. Orta paneli varlığında, endojen Mad2 yokluğunda, GFP-Cdc20 sinyalleri çekirdek içinde ve dışında gidip gelmeye devam ve sitokinez arızalı olduğunu ancak çekirdek zarı açıp, gibi mikrotübüllerin yoksun embriyolarda beklenir kolşisin (07-12 yılında oklarla gösterilen) Kolşisin tedavisine yanıt hücreleri yakalamada başarısız bir SAC fonksiyonu düşündürmektedir. Kızı çekirdeğin ayrılması resim 10 başarısız oldu. Alt panel, 14-18 içinde ok uçları Mad2 mutant embriyo kurtarma SAC defekti fenotipi fonksiyonel GFP-Mad2 önermek birikmiş GFP-Mad2 füzyon proteinleri ile tutuklanan çekirdek zarı göstermektedir. 13 Arrowhead geç bir interfaz çekirdeğinde GFP-Mad2 birikimi gösterir. = 5mm Bar. Embriyolar 1 x PBS bir 100mg/ml kolşisin stok solüsyonu ~% 1 yumurta hacmi ile mikroenjeksiyon yapıldı.

<ol>
	<li>Holland, A. J., Cleveland, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Boveri+revisited:+chromosomal+instability,+aneuploidy+and+tumorigenesis.">Boveri revisited: chromosomal instability, aneuploidy and tumorigenesis.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 478-4787 (2009).</li><li>Zekanowski, C., Wojda, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aneuploidy,+chromosomal+missegregation,+and+cell+cycle+reentry+in+Alzheimer's+disease.">Aneuploidy, chromosomal missegregation, and cell cycle reentry in Alzheimer's disease.</a> Acta Neurobiol. Exp. (Wars). 69, 232-253 (2009).</li><li>Buffin, E., Emre, D., Karess, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Flies+without+a+spindle+checkpoint.">Flies without a spindle checkpoint.</a> Nat. Cell Biol. 9, 565-572 (2007).</li><li>Tang, Z., Shu, H., Oncel, D., Chen, S., Yu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phosphorylation+of+Cdc20+by+Bub1+provides+a+catalytic+mechanism+for+APC/C+inhibition+by+the+spindle+checkpoint.">Phosphorylation of Cdc20 by Bub1 provides a catalytic mechanism for APC/C inhibition by the spindle checkpoint.</a> Mol. Cell. 16, 387-397 (2004).</li><li>Huang, J., Raff, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+disappearance+of+cyclin+B+at+the+end+of+mitosis+is+regulated+spatially+in+Drosophila+cells.">The disappearance of cyclin B at the end of mitosis is regulated spatially in Drosophila cells.</a> EMBO Journal. 18, 2184-2195 (1999).</li><li>Xia, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conformation-specific+binding+of+p31(comet)+antagonizes+the+function+of+Mad2+in+the+spindle+checkpoint.">Conformation-specific binding of p31(comet) antagonizes the function of Mad2 in the spindle checkpoint.</a> Embo. J. 23, 3133-3143 (2004).</li><li>Lorca, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fizzy+is+required+for+activation+of+the+APC/cyclosome+in+Xenopus+egg+extracts.">Fizzy is required for activation of the APC/cyclosome in Xenopus egg extracts.</a> Embo. J. 17, 3565-3575 (1998).</li><li>Howell, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytoplasmic+dynein/dynactin+drives+kinetochore+protein+transport+to+the+spindle+poles+and+has+a+role+in+mitotic+spindle+checkpoint+inactivation.">Cytoplasmic dynein/dynactin drives kinetochore protein transport to the spindle poles and has a role in mitotic spindle checkpoint inactivation.</a> J. Cell Biol. 155, 1159-1172 (2001).</li><li>Foe, V. E., Alberts, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+of+nuclear+and+cytoplasmic+behaviour+during+the+five+mitotic+cycles+that+precede+gastrulation+in+Drosophila+embryogenesis.">Studies of nuclear and cytoplasmic behaviour during the five mitotic cycles that precede gastrulation in Drosophila embryogenesis.</a> Journal of cell science. 61, 31-70 (1983).</li><li>Li, D., Morley, G., Whitaker, M., Huang, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recruitment+of+Cdc20+to+the+kinetochore+requires+BubR1+but+not+Mad2+in+Drosophila+melanogaster.">Recruitment of Cdc20 to the kinetochore requires BubR1 but not Mad2 in Drosophila melanogaster.</a> Mol. Cell Biol. 30, 3384-3395 (2010).</li><li>Karess, R. E., Glover, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=P+element+mediated+germ+line+transformation+of+Drosophila.">P element mediated germ line transformation of Drosophila.</a> DNA cloning: A practical approach. 2, 121-141 (1985).</li><li>Wakefield, J. G., Huang, J. Y., Raff, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Centrosomes+have+a+role+in+regulating+the+destruction+of+cyclin+B+in+early+Drosophila+embryos.">Centrosomes have a role in regulating the destruction of cyclin B in early Drosophila embryos.</a> Current Biology. 10, 1367-1370 (2000).</li><li>Huang, J. Y., Raff, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+dynamic+localisation+of+the+Drosophila+APC/C:+evidence+for+the+existence+of+multiple+complexes+that+perform+distinct+functions+and+are+differentially+localised.">The dynamic localisation of the Drosophila APC/C: evidence for the existence of multiple complexes that perform distinct functions and are differentially localised.</a> Journal of Cell Science. 115, 2847-2856 (2002).</li><li>Raff, J. W., Jeffers, K., Huang, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+roles+of+Fzy/Cdc20+and+Fzr/Cdh1+in+regulating+the+destruction+of+cyclin+B+in+space+and+time.">The roles of Fzy/Cdc20 and Fzr/Cdh1 in regulating the destruction of cyclin B in space and time.</a> Journal of Cell Biology. 157, 1139-1149 (2002).</li><li>Brust-Mascher, I., Scholey, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microinjection+Techniques+for+Studying+Mitosis+in+the+Drosophila+melanogaster+Syncytial+Embryo.">Microinjection Techniques for Studying Mitosis in the Drosophila melanogaster Syncytial Embryo.</a> J. Vis. Exp. (31), e1382 (2009).</li><li>Figard, L., Sokac, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Imaging+Cell+Shape+Change+in+Living+Drosophila+Embryos.">Imaging Cell Shape Change in Living Drosophila Embryos.</a> J. Vis. Exp. (49), e2503 (2011).</li></ol>

Biz ifşa hiçbir şey yok.

Burada açıklanan protokol görüntüleme Leica TCS SP2 konfokal lazer tarama mikroskobu kullanılarak sinsityal embriyo sinek ve diğer mikroskop sistemleri uygun modifiye edilebilir ve aynı zamanda Drosophila sinsityal embriyoları kullanılarak diğer gen fonksiyonlarını incelemek için adapte edilebilir için genel bir yöntemdir. Biz mili montaj kontrol noktasında, protein dinamiği ve yaşam veya sabit örnekleri 4,6,12-14 protein yerelleştirme görselleştirmek için transgenik sinekleri ya da poliklonal antikorları kullanarak protein proteolizin birçok açıdan incelemek için bu protokolü kullandık. Yumurta - Küçük numaraları (100 ~ 10) alırken taze sinek gıda flakonlarda sinekler tutmak kolay olandır. Bu verme ve diğer yayınlar 15,16 açıklandığı gibi ek elma suyu agar ve yumurta toplama odaları hazırlanması gereksinimini azaltır. Coverslip üzerine yapıştırıcı şeridinin bir ucunda kırık coverslip cam küçük bir kare Ayrıca bu çok daha kolay hale getirirİğne açmak ve iğne 10S yağı daldırma iken mikroenjeksiyon sistemi ayarları ayarlayarak enjeksiyon hacmi belirlenmesi. Embriyonun kuruma derecesi kaçaklarının önlenmesi ve özellikle uzun bir süre gerektiren veya enjeksiyon sonrasında transformantlar kaldırırken bu deneyler için embriyo canlılığı sürdürmek enjeksiyon başarısı için önemlidir. Ancak, kuruma gerekli tam olarak ne kadar süre için bir altın kural yoktur. Bu deneyden deney değişir ve enjekte çözüm ve çalışma ortamının nem miktarına bağlıdır. Ilgi belirli bir proteinin işlevlerini mono-veya poli-klonal antikor yabani tip ya da genetik mutasyon arka altında belirli bir proteinin, mesajcı RNA veya floresan ile işaretlenmiş peptidler karşı, spesifik protein inhibitörleri microinjecting tarafından manipüle edilebilir. Bu mutant hatları veya GFP-etiketli transgenik hatlarının çoğu kamuya av vardırDrosophila stok merkezleri ve bunların çoğundan ailable Flybase (listelenmiştir <a href="http://flybase.org/" target="_blank">http://flybase.org/~~V</a> ) ve online olarak aranabilir.

Temel ekipman ve reaktifler: Konfokal görüntüleme sistemi: Bu protokolün açıklanan görüntüleme sistemi konfokal inverted mikroskop tarama sistemi sayesinde Leica TCS SP2 lazer. Açıklanan yöntemin başka bir görüntüleme sistemleri için bazı küçük değişikliklerle belki de uygundur. Mikroskop Kesme: Biz DF PLAPO 1X-4 lens ile Olympus SZX7 kullanın. İğne çektirmesi: / kahverengi mikropipet çektirmenin (: P-97 Sutter Enstrüman, Model itibaren) Flaming. Mikroenjeksiyon sistem: bir Eppendorf mikroenjeksiyon sistemi tarif edilmektedir fakat herhangi bir diğer uygun sistemi kullanılabilir. Jencons Bilimsel Ltd peristaltik pompa: gıda distribütörü Fly. Reaktifler: <table border="1"><tbody><tr><td> Malzemeler </td><td> Ağırlıks </td><td> Kaynaklar </td><td> Lot No </td></tr><tr><td> Mısırda yemek </td><td> 100.0g </td><td> SUMA, Birleşik Krallık </td><td></td></tr><tr><td> Esmer şeker </td><td> 50.0g </td><td> Billington s, Birleşik Krallık </td><td></td></tr><tr><td> Kuru maya </td><td> 25.0g </td><td> DCL MAYA Ltd Birleşik Krallık </td><td></td></tr><tr><td> Agar </td><td> 12.5g </td><td> Fisher Scientific </td><td> 106556 </td></tr><tr><td> Sorbik asit </td><td> 0.4g </td><td> BDH, VWR International Ltd Birleşik Krallık </td><td> 8829310 </td></tr><tr><td> Benzoik asit </td><td> 2.9g </td><td> Fisher Scientific </td><td> 1019599 </td></tr><tr><td> Nipagin (Metil-4-Hydro xybenzoate) </td><td> 0.9g </td><td> BDH, VWR International Ltd Birleşik Krallık </td><td> K35969015 </td></tr><tr><td colspan="3"> 1L H 2 O kadar </td><td></td></tr></tbody></table><pclass = &quot;jove_content&quot;&gt; Tablo 1. gıda maddeleri Fly. Holocarbon 700 ve Sigma satın alınan 27 yağlar. Kuru maya: Thomas Allison, Birleşik Krallık. Heptan tutkal hazırlama:, çift taraflı bant yaklaşık 1.5 metre atın heptan 5ml ile 15 ml Falcon tüp içine koyup 3-5 saat veya gece boyunca döndürün. O zaman 1,5 ml Eppendorf santrifüj tüpleri içinde 4 eşit kısma bölünerek ve herhangi bir enkaz kaldırmak için bir masaüstü santrifüj hızlı bir hızda 5 dakika sonra dönerler. Bir 10 ml ölçülü balonda heptan tutkal çözüm saklayın ve kullanım için saklayınız. Tutkal mukavemeti konsantrasyonu ve kullanılan tutkal miktarlarına göre değişecektir. Normalde, ince tutkal konfokal mikroskop ile taranarak daha az gürültülü arka plan üretir. <ul><li> Coverslip: BDH, VWR International Ltd Birleşik Krallık </li><li> Mikroskop slayt: BDH, VWR International Ltd Birleşik Krallık &lt;/ Li&gt; <li> Silikonlu cam kapilerleri: GC-100-10, Harvard </li><li> Güzel yükleme ipucu: 20μl eppendorf lot: W215818J </li><li> Cımbız </li><li> Güzel kalem fırça </li></ul>

studying mitotic checkpoint by illustrating dynamic kinetochore protein behavior and chromosome motion in living drosophila syncytial embryos

Mili montaj kapısı (SAC) mekanizması kromozomlar düzgün bağlanana kadar anafaz başlangıcını önlemek için kromozom çekirdek zarı ve iğ mikrotübüller arasındaki etkileşimi izler aktif bir sinyali vardır. Hücreler anöploidi veya genomik kararsızlığa ve dolayısıyla kanser ve doğum kusurları ve Alzheimer 1 gibi diğer insan hastalıkları önlemek için bu mekanizmayı kullanın. Gibi Mad1 gibi SAC birçok parça, Mad2, Bub1, BubR1, Bub3, Mps1, Zw10, Çubuk ve Aurora B kinaz tespit ve 2 tüm kinetochore dinamik proteinlerdir edilmiştir. Kanıt SAC sinyal başlatılan nerede kinetochore olduğunu göstermektedir. SAC ana düzenleyici hedef Cdc20 olduğunu. Cdc20 esansiyel APC / C (A naphase P romoting C omplex veya C yclosome) aktivatörleri 3 biridir ve aynı zamanda bir kinetochore dinamik bir protein olduğu 4-6. Aktive edildiğinde, SAC A aktivitesini inhibePC / C böylece geçiş 7,8 metafaz için metafaz engelleyen iki temel yüzeyler, siklin B ve securin yıkımı önlemek için. SAC sinyal başlatılan ve monte çekirdek zarı ve onun işlevini hala sürüncemede kalır inhibe APC / C üzerine aktarılır tam olarak nasıl. Drosophila son derece uysal deneysel sistemi; çok daha basit ve daha iyi anlaşılmış organizmanın insan ama bir oranla ortak hisse temel süreçler. Erken embriyo eşzamanlı 13 hızlı nükleer bölünmede döngüleri (8-10 dakika geçer gibi, özellikle uzay ve zaman içinde mitotik olayların görüntülenmesi için, belki de, canlı hücreler biyo-görüntüleme çalışmaları için kullanılacak en iyi organizmalardan biri olduğu 25 ° C) her döngü için ve yavaş yavaş sadece korteks 9 altında tek tek tabaka içinde çekirdekleri düzenler. Burada, transgenik Drosophila ekspresyonist kullanarak biyo-görüntüleme yöntemi sunmaksing GFP (Yeşil floresan proteini) veya faiz ve SAC bileşenlerin bazı GFP füzyon proteinleri, Cdc20 ve Mad2 görüntüleri göstererek, sinekler de SAC işlevini incelemek için bir Leica TCS SP2 konfokal lazer tarama mikroskop sistemi onun türevi hedefli proteinler , örnek olarak kullanılabilir.

Watch this Scientific Journal Video about Studying Mitotic Checkpoint by Illustrating Dynamic Kinetochore Protein Behavior and Chromosome Motion in Living Drosophila Syncytial Embryos at JoVE.com

Studying Mitotic Checkpoint by Illustrating Dynamic Kinetochore Protein Behavior and Chromosome Motion in Living Drosophila Syncytial Embryos

SAC kardeş kromatidler arasında mitotik segregasyon izlenmesi, sinyali başlatır nerede kinetochore olduğunu. A metodunda kromozom hareketi ile kinetochore proteinler ve koordinasyon birinin seçilmesi ve devir görselleştirme tarif edilmektedir<em&gt; Drosophila</em&gt; Leica lazer tarama konfokal sistemi kullanılarak embriyo.

Living Görselleştirilmesi Dinamik Kinetochore Protein Davranış ve Kromozom Hareket tarafından Mitotik Checkpoint incelenmesi<em&gt; Drosophila</em&gt; Sinsityal Embriyolar

The spindle assembly checkpoint (SAC) mechanism is an active signal, which monitors the interaction between chromosome kinetochores and spindle ...

studying-mitotic-checkpoint-illustrating-dynamic-kinetochore-protein

Research

JoVE Journal

Biology

Studying Mitotic Checkpoint by Illustrating Dynamic Kinetochore Protein Behavior and Chromosome Motion in Living Drosophila Syncytial Embryos

11.3K Görüntüleme.  University of Newcastle, United Kingdom. SAC kardeş kromatidler arasında mitotik segregasyon izlenmesi, sinyali başlatır nerede kinetochore olduğunu. A metodunda kromozom hareketi ile kinetochore proteinler ve koordinasyon birinin seçilmesi ve devir görselleştirme tarif edilmektedir Drosophila Leica lazer tarama konfokal sistemi kullanılarak embriyo.

Video: Studying Mitotic Checkpoint by Illustrating Dynamic Kinetochore Protein Behavior and Chromosome Motion in Living Drosophila Syncytial Embryos

Application of Light-cured Dental Adhesive Resin for Mounting Electrodes or Microdialysis Probes in Chronic Experiments

In chronic recording experiments, self-curing dental acrylic resins have been used as a mounting base of electrodes or microdialysis-probes. Since these acrylics do not bond to the bone, screws have been used as anchors. However, in small experimental animals like finches or mouse, their craniums are very fragile and can not successfully hold the anchors. In this report, we propose a new application of light-curing dental resins for mounting base of electrodes or microdialysis probes in chronic experiments. This material allows direct bonding to the cranium. Therefore, anchor screws are not required and surgical field can be reduced considerably. Past experiences show that the bonding effect maintains more than 2 months. Conventional resin's window of time when the materials are pliable and workable is a few minutes. However, the window of working time for these dental adhesives is significantly wider and adjustable.

In this report, we propose a new application of light-curing dental resins for mounting base of electrodes or microdialysis probes in chronic experiments. This material allows direct bonding to the cranium.

Kronik Deneyleri Montaj Elektrotlar veya mikrodiyaliz Problar Işık tedavi Diş Yapıştırıcı Reçine Uygulama

In chronic recording experiments, self-curing dental acrylic resins have been used as a mounting base of electrodes or microdialysis-probes. Since these ...

Biyoloji

High-resolution Measurement of Odor-Driven Behavior in Drosophila Larvae

Olfactory responses in Drosophila larvae have been traditionally studied in Petri dishes comprising a single peripheral odor source. In this behavioral paradigm, the experimenter usually assumes that the rapid diffusion of odorant molecules from the source leads to the creation of a stable gradient in the dish. To establish a quantitative correlation between sensory inputs and behavioral responses, it is necessary to achieve a more thorough characterization of the odorant stimulus conditions. In this video article, we describe a new method allowing the construction of odorant gradients with stable and controllable geometries. We briefly illustrate how these gradients can be used to screen for olfactory defects (full and partial anosmia) and to study more subtle features of chemotaxis behavior.

In this video article, we describe a new method allowing the construction of odorant gradients with stable and controllable geometries. We briefly illustrate how these gradients can be used to screen for olfactory defects (full and partial anosmia) and to study more subtle features of chemotaxis behavior.

Yüksek çözünürlüklü Ölçüm Drosophila Larva Koku-Driven Davranış

Olfactory responses in Drosophila larvae have been traditionally studied in Petri dishes comprising a single peripheral odor source. In this behavioral ...

Microinjection Techniques for Studying Mitosis in the Drosophila melanogaster Syncytial Embryo

This protocol describes the use of the Drosophila melanogaster syncytial embryo for studying mitosis1. Drosophila has useful genetics with a sequenced genome, and it can be easily maintained and manipulated. Many mitotic mutants exist, and transgenic flies expressing functional fluorescently (e.g. GFP) - tagged mitotic proteins have been and are being generated. Targeted gene expression is possible using the GAL4/UAS system2. 

The Drosophila early embryo carries out multiple mitoses very rapidly (cell cycle duration, &asymp;10 min). It is well suited for imaging mitosis, because during cycles 10-13, nuclei divide rapidly and synchronously without intervening cytokinesis at the surface of the embryo in a single monolayer just underneath the cortex. These rapidly dividing nuclei probably use the same mitotic machinery as other cells, but they are optimized for speed; the checkpoint is generally believed to not be stringent, allowing the study of mitotic proteins whose absence would cause cell cycle arrest in cells with a strong checkpoint. Embryos expressing GFP labeled proteins or microinjected with fluorescently labeled proteins can be easily imaged to follow live dynamics (Fig. 1). In addition, embryos can be microinjected with function-blocking antibodies or inhibitors of specific proteins to study the effect of the loss or perturbation of their function3. These reagents can diffuse throughout the embryo, reaching many spindles to produce a gradient of concentration of inhibitor, which in turn results in a gradient of defects comparable to an allelic series of mutants. Ideally, if the target protein is fluorescently labeled, the gradient of inhibition can be directly visualized4. It is assumed that the strongest phenotype is comparable to the null phenotype, although it is hard to formally exclude the possibility that the antibodies may have dominant effects in rare instances, so rigorous controls and cautious interpretation must be applied. Further away from the injection site, protein function is only partially lost allowing other functions of the target protein to become evident.

Microinjection Techniques for Studying Mitosis in the Drosophila melanogaster Syncytial Embryo

This protocol describes the use of microinjection and high resolution imaging in the Drosophila melanogaster syncytial embryo to study mitosis.

Mitoz incelenmesi için Mikroenjeksiyon Teknikleri Drosophila melanogaster Sinsityal Embriyo

This protocol describes the use of the Drosophila melanogaster syncytial embryo  for studying mitosis1.  Drosophila has useful genetics with a sequenced ...

In-vivo Centrifugation of Drosophila Embryos

A major strategy for purifying and isolating different types of intracellular organelles is to separate them from each other based on differences in buoyant density. However, when cells are disrupted prior to centrifugation, proteins and organelles in this non-native environment often inappropriately stick to each other. Here we describe a method to separate organelles by density in intact, living Drosophila embryos. Early embryos before cellularization are harvested from population cages, and their outer egg shells are removed by treatment with 50% bleach. Embryos are then transferred to a small agar plate and inserted, posterior end first, into small vertical holes in the agar. The plates containing embedded embryos are centrifuged for 30 min at 3000g. The agar supports the embryos and keeps them in a defined orientation. Afterwards, the embryos are dug out of the agar with a blunt needle. Centrifugation separates major organelles into distinct layers, a stratification easily visible by bright-field microscopy. A number of fluorescent markers are available to confirm successful stratification in living embryos. Proteins associated with certain organelles will be enriched in a particular layer, demonstrating colocalization. Individual layers can be recovered for biochemical analysis or transplantation into donor eggs. This technique is applicable for organelle separation in other large cells, including the eggs and oocytes of diverse species.

In-vivo Centrifugation of Drosophila Embryos

We describe a method to separate organelles by density in living Drosophila embryos. Embryos are embedded in agar and centrifuged. This technique yields reproducible separation of major organelles along the anterior-posterior embryo axis. This method facilitates colocalization experiments and yields organelle fractions for biochemical analysis and transplantation experiments.

In-vivo Drosophila Embriyolar Santrifüj

A major strategy for purifying and isolating different types of intracellular organelles is to separate them from each other based on differences in ...

RNAi Interference by dsRNA Injection into Drosophila Embryos

Genetic screening is one of the most powerful methods available for gaining insights into complex biological process 1. Over the years many improvements and tools for genetic manipulation have become available in Drosophila 2. Soon after the initial discovery by Frie and Mello 3 that double stranded RNA can be used to knockdown the activity of individual genes in Caenorhabditis elegans, RNA interference (RNAi) was shown to provide a powerful reverse genetic approach to analyze gene functions in Drosophila organ development 4, 5.
Many organs, including lung, kidney, liver, and vascular system, are composed of branched tubular networks that transport vital fluids or gases 6, 7. The analysis of Drosophila tracheal formation provides an excellent model system to study the morphogenesis of other tubular organs 8. The Berkeley Drosophila genome project has revealed hundreds of genes that are expressed in the tracheal system. To study the molecular and cellular mechanism of tube formation, the challenge is to understand the roles of these genes in tracheal development. Here, we described a detailed method of dsRNA injection into Drosophila embryo to knockdown individual gene expression. We successfully knocked down endogenous dysfusion(dys) gene expression by dsRNA injection. Dys is a bHLH-PAS protein expressed in tracheal fusion cells, and it is required for tracheal branch fusion 9, 10. dys-RNAi completely eliminated dys expression and resulted in tracheal fusion defect. This relatively simple method provides a tool to identify genes requried for tissure and organ development in Drosophila.

RNAi Interference by dsRNA Injection into Drosophila Embryos

RNA interference has been proven very effective to analyze gene function in Drosophila tracheal development. A detailed protocol used by Jiang lab to inject dsRNA into fly embryos to knockdown gene expression is illustrated. This technique has the potential for screening genes required for tissue and organ development in Drosophila.

DsRNA Enjeksiyon RNAi Girişim içine Drosophila Embriyolar

Genetic screening is one of the most powerful methods available for gaining insights into complex biological process 1. Over the years many improvements ...

Imaging Cell Shape Change in Living Drosophila Embryos

The developing Drosophila melanogaster embryo undergoes a number of cell shape changes that are highly amenable to live confocal imaging. Cell shape changes in the fly are analogous to those in higher organisms, and they drive tissue morphogenesis. So, in many cases, their study has direct implications for understanding human disease (Table 1)1-5. On the sub-cellular scale, these cell shape changes are the product of activities ranging from gene expression to signal transduction, cell polarity, cytoskeletal remodeling and membrane trafficking. Thus, the Drosophila embryo provides not only the context to evaluate cell shape changes as they relate to tissue morphogenesis, but also offers a completely physiological environment to study the sub-cellular activities that shape cells.
The protocol described here is designed to image a specific cell shape change called cellularization. Cellularization is a process of dramatic plasma membrane growth, and it ultimately converts the syncytial embryo into the cellular blastoderm. That is, at interphase of mitotic cycle 14, the plasma membrane simultaneously invaginates around each of ~6000 cortically anchored nuclei to generate a sheet of primary epithelial cells. Counter to previous suggestions, cellularization is not driven by Myosin-2 contractility6, but is instead fueled largely by exocytosis of membrane from internal stores7. Thus, cellularization is an excellent system for studying membrane trafficking during cell shape changes that require plasma membrane invagination or expansion, such as cytokinesis or transverse-tubule (T-tubule) morphogenesis in muscle.
Note that this protocol is easily applied to the imaging of other cell shape changes in the fly embryo, and only requires slight adaptations such as changing the stage of embryo collection, or using "embryo glue" to mount the embryo in a specific orientation (Table 1)8-19. In all cases, the workflow is basically the same (Figure 1). Standard methods for cloning and Drosophila transgenesis are used to prepare stable fly stocks that express a protein of interest, fused to Green Fluorescent Protein (GFP) or its variants, and these flies provide a renewable source of embryos. Alternatively, fluorescent proteins/probes are directly introduced into fly embryos via straightforward micro-injection techniques9-10. Then, depending on the developmental event and cell shape change to be imaged, embryos are collected and staged by morphology on a dissecting microscope, and finally positioned and mounted for time-lapse imaging on a confocal microscope.

Imaging Cell Shape Change in Living Drosophila Embryos

Early development of the fruit fly, Drosophila melanogaster, is characterized by a number of cell shape changes that are well suited for imaging approaches. This article will describe basic tools and methods required for live confocal imaging of Drosophila embryos, and will focus on a cell shape change called cellularization.

Living Görüntüleme Hücre Şekli Değiştir Drosophila Embriyolar

The developing Drosophila melanogaster embryo undergoes a number of cell shape changes that are highly amenable to live confocal imaging.  Cell shape ...

Identifying Protein-protein Interaction in Drosophila Adult Heads by Tandem Affinity Purification (TAP)

Genetic screens conducted using Drosophila melanogaster (fruit fly) have made numerous milestone discoveries in the advance of biological sciences. However, the use of biochemical screens aimed at extending the knowledge gained from genetic analysis was explored only recently. Here we describe a method to purify the protein complex that associates with any protein of interest from adult fly heads. This method takes advantage of the Drosophila GAL4/UAS system to express a bait protein fused with a Tandem Affinity Purification (TAP) tag in fly neurons in vivo, and then implements two rounds of purification using a TAP procedure similar to the one originally established in yeast1 to purify the interacting protein complex. At the end of this procedure, a mixture of multiple protein complexes is obtained whose molecular identities can be determined by mass spectrometry. Validation of the candidate proteins will benefit from the resource and ease of performing loss-of-function studies in flies. Similar approaches can be applied to other fly tissues. We believe that the combination of genetic manipulations and this proteomic approach in the fly model system holds tremendous potential for tackling fundamental problems in the field of neurobiology and beyond.

Identifying Protein-protein Interaction in Drosophila Adult Heads by Tandem Affinity Purification TAP

Drosophila is famous for its powerful genetic manipulation, but not for its suitability of in-depth biochemical analysis. Here we present a TAP-based procedure to identify interacting partners of any protein of interest from the fly brain. This procedure can potentially lead to new avenues of research.

Protein-protein etkileşimi belirlenmesi<em&gt; Drosophila</emTandem Affinity Arıtma tarafından&gt; Adult Başlar (TAP)

Genetic screens conducted using Drosophila melanogaster (fruit fly) have made numerous milestone discoveries in the advance of biological sciences. ...

An in vivo Crosslinking Approach to Isolate Protein Complexes From Drosophila Embryos

Many cellular processes are controlled by multisubunit protein complexes. Frequently these complexes form transiently and require native environment to assemble. Therefore, to identify these functional protein complexes, it is important to stabilize them in vivo before cell lysis and subsequent purification. Here we describe a method used to isolate large bona fide protein complexes from Drosophila embryos. This method is based on embryo permeabilization and stabilization of the complexes inside the embryos by in vivo crosslinking using a low concentration of formaldehyde, which can easily cross the cell membrane. Subsequently, the protein complex of interest is immunopurified followed by gel purification and analyzed by mass spectrometry. We illustrate this method using purification of a Tudor protein complex, which is essential for germline development. Tudor is a large protein, which contains multiple Tudor domains - small modules that interact with methylated arginines or lysines of target proteins. This method can be adapted for isolation of native protein complexes from different organisms and tissues.

An in vivo Crosslinking Approach to Isolate Protein Complexes From Drosophila Embryos

Multi-component protein complexes play crucial roles during cellular function and development. Here we describe a method used to isolate native protein complexes from Drosophila embryos after in vivo crosslinking followed by purification of the crosslinked complexes for subsequent structure-function analysis.

Bir In vivo</emŞu Protein Kompleksler yalıtmak için> Çapraz yaklaşım Drosophila Embriyolar

Many cellular processes are controlled by multisubunit protein complexes. Frequently these complexes form transiently and require native environment to ...

Genome-wide Protein-protein Interaction Screening by Protein-fragment Complementation Assay (PCA) in Living Cells

Proteins are the building blocks, effectors and signal mediators of cellular processes. A protein&#8217;s function, regulation and localization often depend on its interactions with other proteins. Here, we describe a protocol for the yeast protein-fragment complementation assay (PCA), a powerful method to detect direct and proximal associations between proteins in living cells. The interaction between two proteins, each fused to a dihydrofolate reductase (DHFR) protein fragment, translates into growth of yeast strains in presence of the drug methotrexate (MTX). Differential fitness, resulting from different amounts of reconstituted DHFR enzyme, can be quantified on high-density colony arrays, allowing to differentiate interacting from non-interacting bait-prey pairs. The high-throughput protocol presented here is performed using a robotic platform that parallelizes mating of bait and prey strains carrying complementary DHFR-fragment fusion proteins and the survival assay on MTX. This protocol allows to systematically test for thousands of protein-protein interactions (PPIs) involving bait proteins of interest and offers several advantages over other PPI detection assays, including the study of proteins expressed from their endogenous promoters without the need for modifying protein localization and for the assembly of complex reporter constructs.

Genome-wide Protein-protein Interaction Screening by Protein-fragment Complementation Assay PCA in Living Cells

Proteins interact with each other and these interactions determine in a large part their functions. Protein interaction partners can be identified at high-throughput in vivo using a yeast fitness assay based on the dihydrofolate reductase protein-fragment complementation assay (DHFR-PCA).

Yaşayan Hücrelerde Protein-fragmanı tamamlama Assay (PCA) ile genom Protein-protein etkileşimi Eleme

Proteins are the building blocks, effectors and signal mediators of cellular processes. A protein&#8217;s function, regulation and localization often ...

Studying Mitochondrial Structure and Function in Drosophila Ovaries

Analysis of the mitochondrial structure-function relationship is required for a thorough understanding of the regulatory mechanisms of mitochondrial functionality. Fluorescence microscopy is an indispensable tool for the direct assessment of mitochondrial structure and function in live cells and for studying the mitochondrial structure-function relationship, which is primarily modulated by the molecules governing fission and fusion events between mitochondria. This paper describes and demonstrates specific methods for studying mitochondrial structure and function in live as well as in fixed tissue in the model organism Drosophila melanogaster. The tissue of choice here is the Drosophila ovary, which can be isolated and made amenable for ex vivo live confocal microscopy. Furthermore, the paper describes how to genetically manipulate the mitochondrial fission protein, Drp1, in Drosophila ovaries to study the involvement of Drp1-driven mitochondrial fission in modulating the mitochondrial structure-function relationship. The broad use of such methods is demonstrated in already-published as well as in novel data. The described methods can be further extended towards understanding the direct impact of nutrients and/or growth factors on the mitochondrial properties ex vivo. Given that mitochondrial dysregulation underlies the etiology of various diseases, the described innovative methods developed in a genetically tractable model organism, Drosophila, are anticipated to contribute significantly to the understanding of the mechanistic details of the mitochondrial structure-function relationship and to the development of mitochondria-directed therapeutic strategies.

Studying Mitochondrial Structure and Function in Drosophila Ovaries

Analysis of the mitochondrial structure-function relationship is required for a thorough understanding of the regulatory mechanisms of mitochondrial functionality. Specific methods for studying mitochondrial structure and function in live and fixed Drosophila ovaries are described and demonstrated in this paper.

Mitokondriyal Yapısı ve İşlevi incelenmesi<em&gt; Drosophila</em&gt; Yumurtalıklar

Analysis of the mitochondrial structure-function relationship is required for a thorough understanding of the regulatory mechanisms of mitochondrial ...