Bu araştırma projesi Alkol İstismarı ve Alkolizm Ulusal Enstitüsü Ödülü sayısı R21AA017735 (YS) tarafından desteklenmiştir. Içeriği sadece yazarların sorumluluğundadır ve mutlaka Alkol İstismarı ve Alkolizm veya Ulusal Sağlık Enstitüleri Ulusal Enstitüsü resmi görüşlerini temsil etmemektedir. Yazar ayrıca, bu yazının düzenleme için Charisse Montgomery teşekkür etmek istiyorum.

1. Hayvanlar Yetiştirme ve Trofik Peptit Tedavi <ol><li> 2 saat için erkek ev kafesleri içine dişi farelerde (~ 6 hafta eski, ortalama ağırlığı 20 g) koyarak cins C57BL/mice. </li><li> Hemen ardından bir sperm fiş ve / veya vajinal smear olup olmadığını kontrol edin. </li><li> Pozitif ise, embriyonik gün 0 (E0) bu zaman noktası belirleyin. </li><li> Son zamanlarda açıklandığı gibi E7, kontrol ve tedavi gruplarına hamile kadın ağırlık-maç (3 grup) atanır 4: 1) Alkol (etanol) sıvı diyet grubu (ALC), 2) çift-beslenen kontrol grubu (PF), 3) alkol maruz kalma sıvı diyet (ALC/ADNF-9) yanında ADNF-9 peptid intraperitoneal (ip) enjeksiyon alacaksınız peptid tedavi grubunda,. ALC ve PF diyetler hazırlanmasının ayrıntıları ve ip enjeksiyonları prosedürü son çalışmaları 4 bulunabilir. </li><li> Besinlerin tek kaynak olarak ücretsiz olarak temin edilebilir günlük alkol sıvı diyet ölçün. PF sıvı diyet tek tek t yokedo bir ALC baraj hem günlük ölçülebilir. </li><li> Bir önceki 24 saat boyunca tüketilen sıvı diyet hacmi kaydedilebilir 30-mL vida kapaklı tüpler mezun oldu ve taze hazırlanmış diyet E7 gelen E13 her gün sağlanmalıdır. </li></ol> 2. Fetusların ve Fetal Brain Mikrodisseksiyon diseksiyonu <ol><li> Derin bir servikal dislokasyon ardından CO 2 prosedüre fareler ötenazi tarafından E13 hamile fareler kurban. </li><li> % 70 etanol ile kesi karın sitesi temizleyin. </li><li> Steril makas ve forseps kullanarak karın kesi yapmak. </li><li> Karın açıldığında, bir forseps ile tutarak ve uzak rahim mesometrium gözyaşı diğer forseps kullanarak rahim teşrih. Embriyoların delinmesiyle önlemek için yavaş yavaş bu işlemi yapmak istediğinizden emin olun. </li><li> Rahim embriyo çıkarın ve Hanks &#39;Dengeli Tuz çözeltisi içeren (60 mm x 15 mm) bir hücre kültürü çanak içine aktarabilirsiniz<html> (HBSS) buz gibi soğuk suda. </li><li> Mikrodiseksiyon için stereomikroskop altında tüm embriyolardan fetal beyin parçalara ayır. </li><li> Mikrodiseksiyon için ultra-ince forseps kullanarak, kafatası ortaya çıkarmak için başın üst kısmında embriyo cilt çekin. </li><li> Bir kez kafatası maruz ve net bir şekilde daha sonra omurilik ve beyin sapı alanlarda beynin arka kısmından başlayarak kafatasının soyulabilir, mikrodiseksiyon stereomicroscope altında görüntülendi. </li><li> Başın ön kısımlarına posterior gelen parça kafatası parçası kalkmasına emin olun. </li><li> Fetal beyin görsel maruz sonra, onları ayıklamak devam. </li><li> Primordium koku ampul tabanından metencephalon en tabanına fetal beyin parçalara ayır. </li><li> Tüm sonek 2-3 gün süreyle% 4&#39;lük paraformaldehit içerisinde fetal beyinleri. Eğer Western Blot veya enzimatik deneyleri için onları test ise Ayrıca her baraj diğer fetal beyin dondurabilirsiniz. </li></ol>nt &quot;&gt; Not: Hayvan kullanımlar için prosedürler Kurumsal Hayvan Bakım tarafından onaylanmış ve Kurumsal Hayvan Bakım kurallarına uygun olarak ve Ulusal Sağlık Enstitüleri Kullanım Kurulu Toledo Üniversitesi Komitesi ve için Kılavuzu kullanın edildi Bakım ve Laboratuvar Hayvanları kullanın. 3. Kesit için Jelatin Fetal Brain katıştırma <ol><li> Jelatin sınıf A% 10 hazırlayın </li><li> Yarım bir peel-away gömme kalıp doldurun ve jelatin katılaşır kadar bekleyin. </li><li> Katılaşmış jelatin üstüne yerleştirin kontrolü ve prenatal tedavi fetal beyin yan yana. Bu deney ve kontrol gruplar arasındaki hücre ölümü İmmuno tutarlı koşulları tutmaktır. </li><li> (Jelatin çok sıcak olmadığından emin olun) tam bir kalıp yapmak için fetal beyin üstüne jelatin sıvı ekleyin. </li><li> 15 dakika fetal beyin tutan hazırlanan jelatin kalıp buzdolabında. </li><li> Soyulmakdaha sonra gömme kalıp plastik ve iki gün süreyle% 4&#39;lük paraformaldehit içine önceden hazırlanmış jelatin içeren fetal beyinleri aktarın. </li><li> Yerleştirin ve bölüm fetal beyin sabit jelatin koronal kesit için 50 mikron kalınlığında vibratome kesit makinesi (Leica VT 1000S) kullanarak. Daha iyi anatomik özellikleri sağlar, çünkü bu kalınlık bizim çalışmalarda test edilir. Buna ek olarak, 25 um kalınlıkta ve aynı zamanda daha yüksek bir% 10 jelatin fötal beyin gömülü içeren bu tekniği ile test edilebilir. Ön beyin üzerinde bazal ganglion tepe düzeyde vibratome kullanarak koronal bölümleri kesilmiş unutmayın </li><li> Fosfat tamponlu tuz (PBS) çözeltisi içinde fetal beyin bölümleri toplayın. </li><li> Suda SuperFrost Plus slaytlar fetal beyin bölümleri monte edin. </li><li> 15 dakika için monte edilmiş bölümleri kurutun. </li><li> TUNEL reaksiyon ertesi gün test için PBS slaytlar (fetal beyin bölümleri ile monte) yerleştirin. </li></ol> 4. De için TUNEL reaksiyonHücre Ölümü veya Apoptoz koruması (TUNEL: TdT-aracılı dUTP Nick Son Etiketleme; TdT: terminal deoksinükleotidil transferaz). Bu testte hücre ölümü belirlenmesi amaçlanmıştır. <ol><li> 37 ° C (20 ml PBS içerisinde karışık proteinaz K, 300 ul), 5 dakika boyunca proteinaz K (20 ug / ml) ile Superfrost Plus, slaytlar monte edilmiş fötal beyin kesitlerinin Treat. Slaytlar) 5-Plend açık maile monte edilir. </li><li> Orbital çalkalayıcı altında 5 dakika boyunca PBS ile üç kez fetal beyin kesitlerinin (slaytlar monte) yıkayın. </li><li> % 3 oda sıcaklığında, 10 dakika (3 ml% 30 27 H 2 O 2 mL% 100 metanol) (slaytlar bir karıştırıcı içinde olmamalıdır) boyunca metanol H 2 O 2 bölümleri inkübe edin. </li><li> Yörüngesel bir çalkalayıcı içinde 5 dakika boyunca PBS ile üç kez bölümleri durulayın. </li><li> Buz üzerinde 2 dakika (4 ° C) (100 ul TritonX + 0.1 gr sodyum sitrat + 99.9 ml damıtılmış için geçirgenliği çözelti içinde bölümler (% 0.1% 0.1 sodyum sitratta TritonX-100) inkübed su). </li><li> Yörüngesel bir çalkalayıcı içinde 5 dakika boyunca PBS içinde bölümler iki kez çalkalayın. </li><li> Slaytlar bölümleri civarında kuru bir alanda. </li><li> PAP Kalem kullanarak SuperFrost Plus slaytlar üzerinde bariyer çizin. Bu, herhangi bir TÜNEL-pozitif hücrelerin saptanması için bölümlere tedavi etmek için kullanılan çözeltinin sızmasını önlemek için amaçlanmıştır. </li><li> 37 ° C&#39;de 1 saat boyunca TÜNEL Reaksiyon karışımı, (şişe, 1 ila 50 ul ve şişe 2 450 ul) ° C bölümleri inkübe, kontrol şişe 2 çözeltisi içinde inkübe edilerek, kullanılacaktır. </li><li> Orbit çalkalama altında PBS üç kez 5 dakika ile durulayın. </li><li> Doku etrafında kuru bir alanda. </li><li> 37, 30 dakika için dönüştürücü-POD ile bölümler inkübe ° C. </li><li> Tris HCI (pH 7.5, 0.05 M) ile 5 dakika boyunca bölümlere üç kez yıkayın. </li><li> % 0.05 3&#39;-3&#39;-diaminobenzidin tetrahidroklorür (DAB) ve% 0.003 &#39;H 2 O 2 (25 ml Tris HCI, pH 7.5, 0.05 M + 25 ul% 3 H 2 + 2 0 500 içinde 7 dakika boyunca bölümleri inkübe ul DAB) 4 de Oribtal çalkalayıcı altında ° C (buz) ve karanlıkta () yeni 5-Plend açık mailler bu işlemi yapmak istediğinizden emin olun. </li><li> Orbital çalkalayıcı altında PBS üç kez 5 dakika ile bölümleri durulayın. </li><li> Bir sonraki bölümde protokol ayrıntılı olarak Nissl boyama için onları işlemek daha sonra, PBS içinde en fazla 24 saat için PBS içinde slaytlar bölümleri tutun. </li></ol> Not: DAB kanserojen. Eldiven kullanın ve bir kez tüm deneyler ile bitmiş çamaşır suyu ile kullanılan tüm yemekleri temizleyin. 5. Mikroskobik Gözlem için Fetal Beyin Bölüm hazırlanması için Nissl boyama <ol><li> Nissl boyama işlemi biyolojik güvenlik kabini içinde yapılmalıdır. </li><li> 2 dakika süreyle deiyonize su ile birlikte kayar bölümler durulayın. </li><li> 2 dakika süreyle% 70 etanol içinde bölümler inkübe edin. </li><li> 6 dakika boyunca% 95 etanol içinde bölümler inkübe edin. </li><li> 2 dakika süreyle% 70 etanol içinde bölümler inkübe edin. </li><li> Deiyonize wat en bölümleri durulayın2 dakika süreyle er. </li><li> Kresil Violet bölümleri 3 dakika Leke inkübe edin. </li><li> 2 dakika boyunca iyonu giderilmiş su içinde bölümleri durulayın. </li><li> 2 dakika süreyle% 70 etanol içinde bölümler inkübe edin. </li><li> 3 dakika boyunca% 95 etanol + 3 ml buzlu asetik asit içinde bölümler inkübe edin. </li><li> 2 dakika süreyle% 95 etanol içinde bölümler inkübe edin. </li><li> 2 dakika için üç kez% 100 etanol içinde bölümler inkübe edin. </li><li> 10 dakika için üç kez Ksilen bölümleri inkübe edin. </li><li> Fetal beyin bölümleri tutarak Slaytlar Permount ve kapak kayma cam slaytlar kullanılarak monte edilebilir. </li><li> Monte gecede mikroskobik gözlem ve analizler öncesinde slaytlar bırakın. </li><li> Mikroskobik gözlem ve Mikroskobik Leica dik mikroskop altında yapılabilir. </li></ol>

<ol>
	<li>Sari, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activity-dependent+neuroprotective+protein-derived+peptide,+NAP,+preventing+alcohol-induced+apoptosis+in+fetal+brain+of+C57BL/6+mouse.">Activity-dependent neuroprotective protein-derived peptide, NAP, preventing alcohol-induced apoptosis in fetal brain of C57BL/6 mouse.</a> Neuroscience. 158 (4), 1426-1435 (2009).</li><li>Sari, Y., Chiba, T., Yamada, M., Rebec, G. V., Aiso, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+peptide,+colivelin,+prevents+alcohol-induced+apoptosis+in+fetal+brain+of+C57BL/6+mice:+signaling+pathway+investigations.">A novel peptide, colivelin, prevents alcohol-induced apoptosis in fetal brain of C57BL/6 mice: signaling pathway investigations.</a> Neuroscience. 164 (4), 1653-1664 (2009).</li><li>Sari, Y., Hammad, L. A., Saleh, M. M., Rebec, G. V., Mechref, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alteration+of+selective+neurotransmitters+in+fetal+brains+of+prenatally+alcohol-treated+C57BL/6+mice:+quantitative+analysis+using+liquid+chromatography/tandem+mass+spectrometry.">Alteration of selective neurotransmitters in fetal brains of prenatally alcohol-treated C57BL/6 mice: quantitative analysis using liquid chromatography/tandem mass spectrometry.</a> Int. J. Dev. Neurosci. 28 (3), 263-269 (2010).</li><li>Sari, Y., Weedman, J. M., Ge, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activity-dependent+neurotrophic+factor-derived+peptide+prevents+alcohol-induced+apoptosis,+in+part,+through+Bcl2+and+c-Jun+N-terminal+kinase+signaling+pathways+in+fetal+brain+of+C57BL/6+mouse.">Activity-dependent neurotrophic factor-derived peptide prevents alcohol-induced apoptosis, in part, through Bcl2 and c-Jun N-terminal kinase signaling pathways in fetal brain of C57BL/6 mouse.</a> Neuroscience. 202, 465-473 (2012).</li><li>Sari, Y., Zhang, M., Mechref, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+expression+of+proteins+in+fetal+brains+of+alcohol-treated+prenatally+C57BL/6+mice:+a+proteomic+investigation.">Differential expression of proteins in fetal brains of alcohol-treated prenatally C57BL/6 mice: a proteomic investigation.</a> Electrophoresis. 31, 1-14 (2010).</li><li>Bassan, M., Zamostiano, R., Davidson, A., Pinhasov, A., Giladi, E., Perl, O., Bassan, H., Blat, C., Gibney, G., Glazner, G., Brenneman, D. E., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complete+sequence+of+a+novel+protein+containing+a+femtomolar-activity-dependent+neuroprotective+peptide.">Complete sequence of a novel protein containing a femtomolar-activity-dependent neuroprotective peptide.</a> J. Neurochem. 72 (3), 1283-1293 (1999).</li><li>Brenneman, D. E., Hauser, J., Neale, E., Rubinraut, S., Fridkin, M., Davidson, A., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activity-dependent+neurotrophic+factor:+structure-activity+relationships+of+femtomolar-acting+peptides.">Activity-dependent neurotrophic factor: structure-activity relationships of femtomolar-acting peptides.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 285 (2), 619-627 (1998).</li><li>Spong, C. Y., Abebe, D. T., Gozes, I., Brenneman, D. E., Hill, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+fetal+demise+and+growth+restriction+in+a+mouse+model+of+fetal+alcohol+syndrome.">Prevention of fetal demise and growth restriction in a mouse model of fetal alcohol syndrome.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 297 (2), 774-779 (2001).</li><li>Sari, Y., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brain+deficits+associated+with+fetal+alcohol+exposure+may+be+protected,+in+part,+by+peptides+derived+from+activity-dependent+neurotrophic+factor+and+activity-dependent+neuroprotective+protein.">Brain deficits associated with fetal alcohol exposure may be protected, in part, by peptides derived from activity-dependent neurotrophic factor and activity-dependent neuroprotective protein.</a> Brain Res. Brain Res. Rev. 52 (1), 107-118 (2006).</li><li>Brenneman, D. E., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+femtomolar-acting+neuroprotective+peptide.">A femtomolar-acting neuroprotective peptide.</a> J. Clin. Invest. 97 (10), 2299-2307 (1996).</li><li>Zamostiano, R., Pinhasov, A., Gelber, E., Steingart, R. A., Seroussi, E., Giladi, E., Bassan, M., Wollman, Y., Eyre, H. J., Mulley, J. C., Brenneman, D. E., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cloning+and+characterization+of+the+human+activity-dependent+neuroprotective+protein.">Cloning and characterization of the human activity-dependent neuroprotective protein.</a> J. Biol. Chem. 276 (1), 708-714 (2001).</li><li>Offen, D., Sherki, Y., Melamed, E., Fridkin, M., Brenneman, D. E., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vasoactive+intestinal+peptide+(VIP)+prevents+neurotoxicity+in+neuronal+cultures:+relevance+to+neuroprotection+in+Parkinson's+disease.">Vasoactive intestinal peptide (VIP) prevents neurotoxicity in neuronal cultures: relevance to neuroprotection in Parkinson's disease.</a> Brain Res. 854 (1-2), 257-262 (2000).</li><li>Steingart, R. A., Solomon, B., Brenneman, D. E., Fridkin, M., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=VIP+and+peptides+related+to+activity-dependent+neurotrophic+factor+protect+PC12+cells+against+oxidative+stress.">VIP and peptides related to activity-dependent neurotrophic factor protect PC12 cells against oxidative stress.</a> J. Mol. Neurosci. 15 (3), 137-145 (2000).</li></ol>

Hiçbir açıklama yapılacak.

Bu çalışmada yer alan yöntemleri ve teknolojisi Prenatal beyinlerinde alkole maruz kalma ve bu etkilerin önlenmesi trofik peptidlerin rolü etkilerini göstermektedir. Bu farklı gebelik dönemlerinde istismar veya fetal beyinlerinde diğer zehirli kimyasal maddelerin diğer ilaçlar çalışma hakkında bilgi sağlayabilir. Üreme paradigması ile ilgili olarak, bazı durumlarda, sperm fişin tespit gözlemlenmeyen olabilir. Bu noktada, bu mümkün sperm olumlu algılama sağlayabilir,...

Burada açıklanan deneysel yöntemlerin amacı, beslenme Microdissecting ve hücre ölümü tespit, ıslah içeren çeşitli teknikler kullanarak fetal alkol maruz modelinde trofik peptidlerin nöroprotektif etkilerini değerlendirmektir. Laboratuvarımızda çalışmak alkol miktarı vadede bir insan içme paradigma benzer olabilir ılımlı alkol içme, bir model olarak alkol ile karışık bir sıvı diyet yer vardır 1-5 tüketilen. Biz ve diğerleri fetal alkol maruz kalmanın zararlı etkilerine karşı nöroprotektif üç peptit türevleri belirledik. Hayvan modelleri kullanarak embriyonik aşamalarında alkol maruz araştıran çalışmalar nöro potansiyel mekanizmalarının belirlenmesi yol ve müdahale prosedürlerinin geliştirilmesi için izin verebilir. Bu hamilelik sırasında alkol maruz kalmanın zararlı etkileri nöroprotektif etkileri ve zayıflama hakkında geniş bilgi verebilir. Prenatal alkol maruz kalma etkileri mümkün önlenmesi in vitro ve in vivo 6,7 1,2,4,8,9 nöroproteksiyon dahil olmak gösterilmiştir peptitler ile gebe farelerin tedavisinde içerebilir. Bu peptidler arasında, ADNF-9 ya da SAL olarak bilinen SALLRSIPA, aktivite bağımlı nörotrofik faktör (ADNF) 7,10 türetilmiştir. Dizisi NAPVSIPQ peptid olarak adlandırılan NAP, başka bir peptit aktivite bağımlı nöroprotektif protein (ADNP) 6,11 elde edilen, alkol maruz kalma 12,13 ile ilişkili oksidatif strese karşı güçlü bir koruyucu etki göstermiştir. Buna ek olarak, son zamanlarda fetal alkol maruz modeli 2 önemli bir nöroprotektif rol oynadığı yeni bir sentez peptit, colivelin belirledik. Colivelin ADNF-9 ve AGA-(C8R) HNG17 (PAGASRLLLLTGEIDLP) oluşmaktadır. Bu peptidlerin kullanımının önemi onlar yeteneğine sahip olmasıdıralkole bağlı apoptoz ve beyin gelişimi açıklarının etkilerini önlemek için beyin-kan bariyeri çapraz. Deneysel yöntem alkol kaynaklı apoptoz karşı nöro-koruyucu etkisi test etmek için C57BL / 6 fareleri kullanılmıştır. Biz bir sperm fiş ve vajinal smear 1-5 tespiti ile ortaya gibi doğru, embriyonik gün 0 (E0) tahmin etmek için yerine bir gecede ıslah bir 2 saatlik pencere benimsemiştir. Bu hamile farelere stres neden olabilir gavaj yolu, ile yerine alkol teslimat ücretsiz kabul edilir gibi, besleme tüpleri ile bir sıvı diyet kullandık. Öte yandan, mikrodiseksiyon erken evrelerinde fetal beyinleri kesme karşılaşılan olabilir fetal beyin dokusunun, yumuşak olması nedeniyle zor olabilir. Burada, mikrodiseksiyon ile ilgili tüm zorlukları ile başa çıkmak için görsel teknikleri göstermektedir. Ayrıca, fetal beyin kesit de zor olabilir çünkü, benimsediğimizjelatin gömme peel-away kullanarak kalıplara fetal beyin gömme içeren bir tekniktir. Biz 50 mikron kalınlığında serbest dalgalı bölümlerde fetal beyin kesme başarılı olmuştur. Bu bizim hücre ölümü belirlenmesi de dahil olmak üzere, fetal beyin bölümlerini içeriği protein herhangi bir değişiklik araştırmak için izin verir.

<table border="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td>Name of the reagent/equipment</td>
 <td>Company</td>
 <td>Catalogue number</td>
 <td>Comments (optional)</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Superfrost Plus Slides</td>
 <td>VWR</td>
 <td>48311-703</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>PAP PEN</td>
 <td>Research Products Int. Corp.</td>
 <td>195506</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>5-Plend Open Mailer </td>
 <td>Heathrow Scientific, LLC</td>
 <td>HS 15983G</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Peel away embedding molds</td>
 <td>Electron Microscopy Sciences</td>
 <td>70182</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>In situ cell death detection kit, POD</td>
 <td>Roche Diagnostics, Inc</td>
 <td>11684817910</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Hanks' Balanced Salt Solution</td>
 <td>Invitrogen</td>
 <td>14170-120 </td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Gelatin Type A</td>
 <td>FisherScientific</td>
 <td>G8-500</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Stereomicroscope</td>
 <td>W. NUHSBAUM, Inc </td>
 <td>Leica M60, KL 200 LED</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro-Vibratome</td>
 <td>Leica, Inc </td>
 <td>Leica VT 1000S</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Moria Ultra Fine Forceps </td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>11370-40</td>
 <td>2 pairs</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Graduate 30 ml feeding tubes</td>
 <td>Dyets, Inc </td>
 <td>900012 </td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vitamin Mix </td>
 <td>Bio-Serv. Inc. </td>
 <td>F8031 </td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Mineral Mix</td>
 <td>Bio-Serv. Inc. </td>
 <td>F8598 </td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Maltose Dextrin</td>
 <td>Bio-Serv. Inc. </td>
 <td>3650 </td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Ethyl alcohol 190 Proof, 5 gallons</td>
 <td>111000190-SS05 </td>
 <td>Pharmco-AAPER</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Upright microscope</td>
 <td>W. NUHSBAUM, Inc</td>
 <td>LEICA DM 4000 </td>
 <td></td>
 </tr>
 </tbody>
</table>

experimental methods for testing the effects of neurotrophic peptide, adnf-9, against alcohol-induced apoptosis during pregnancy in c57bl/6 mice

Fetal beyin gelişimi erken embriyonik aşamalarında doğum öncesi alkol maruz kalma etkilerini araştırmak için deneysel tasarımlar zorlu. Bu daha çok fetal beyin ve alkol prenatal maruz kalma sonucu apoptotik hücrelerin belirlenmesi için kendi kesit bir mikrodiseksiyon zorluğu kaynaklanmaktadır. Deneyler fetal beyin dokusunda hücre ölümü kimlik yetiştiriciliği farelerden alınan görsel teknikler sağlar tanımlanmıştır. Bu çalışma, C57BL / kullanılan alkolün indüklediği apoptoza karşı fetal alkol maruz kalma ve trofik peptid rolü üzerinde çalışılması için hayvan modeli olarak, 6 farenin. Üreme embriyonik yaş tam evresini belirlemek için bir 2 saatlik paspas pencereden oluşur. Kurulu bir fetal alkol maruz kalma modeli fetal beyinlerinde prenatal alkol maruz kalma etkilerini belirlemek için bu çalışmada kullanılmıştır. Bu hamile fareler için besin tek kaynağı olarak alkol ya da çift-beslenen sıvı diyetler ücretsiz erişim içerir. <p class = &quot;jove_content&quot;&gt; ikinci zor olabilir çünkü fetus ve fetal beyin Mikrodisseksiyon diseksiyonu içeren teknikleri, dikkatli bir şekilde açıklanmıştır. Mikrodisseksiyon bir stereomikroskopta ve ultra-ince forseps gerektirir. Fetal beyin diseksiyon için adım adım işlemleri görsel olarak verilmektedir. Fetal beyin primordium koku ampul tabanından metencephalon en tabanına disseke edilir. Apoptoz soruşturma için, fetal beyin ilk vibratome aparatı ile kesit kolaylaştırmak için bir peel-away kalıp kullanarak jelatin gömülür. Paraformaldehit gömülü ve sabit fetal beyinleri kolayca kesitli ve serbest yüzen bölümleri apoptosis ya da hücre ölümünün belirlenmesi için Superfrost Plus, slaytlar monte edilebilir. TÜNEL (TdT-aracılı dUTP Nick uç etiketleme; TdT: terminal deoksinükleotidil transferaz) tahlili hücre ölümü ya da apoptoz hücreleri tanımlamak için kullanılmıştır. Bu dikkat çekicidir ki apoptosis ve hücre-aracılı sitotoksisite, DNA parçalanması ile karakterize edilir. Bu nedenle, görsel TÜNEL-pozitif hücrelerde hücre ölümü veya apoptotik hücrelerin bir göstergesidir. Burada deneysel tasarımlar fetal beyinlerinde gebelik sırasında alkol etkilerini araştırmak için kurulmuş bir sıvı diyet kullanımı hakkında bilgi ve nörotrofik peptidlerin rolü sağlar. Bu üreme ve hamile fareler beslenme, fetal beyin Microdissecting ve apoptoz belirlenmesi içerir. Birlikte, bu görsel ve metinsel teknikleri fetal beyinlerinde zararlı ajanların prenatal maruz araştırmak için bir kaynak olabilir.

Deneysel yöntemler 2 saat yetiştirme pencere doğru gebelik aşamasında tahmin için gerekli olduğunu göstermektedir burada açıklanan. Biz E13 yaşına embriyoların diseksiyonu göstermiştir. Ayrıca E13 fetal beyin mikrodiseksiyon gösterdi. Bu prosedür, Şekil 1 &#39;de tarif çeşitli aşamalarda (AC), içerir. Fetal beyin primordium koku ampul tabanından metencephalon baz (Şekil 1) disseke edilir. Fetal beyin sonra immunokimyasal tespiti için% 4 paraformaldehid sabitlen...

Watch this Scientific Journal Video about Experimental Methods for Testing the Effects of Neurotrophic Peptide, ADNF-9, Against Alcohol-induced Apoptosis during Pregnancy in C57BL/6 Mice at JoVE.com

Experimental Methods for Testing the Effects of Neurotrophic Peptide, ADNF-9, Against Alcohol-induced Apoptosis during Pregnancy in C57BL/6 Mice

Deneysel tasarımlar fetal beyin gebelik sırasında apoptoz ve nörotrofik peptid uygulama alkol maruz kalmanın etkilerini araştırmak burada odaklanmak önerdi. Üreme fetal beyin koleksiyonuna ayrıntılı bir açıklama açıklanmıştır. Apoptozun belirlenmesi için teknikler de detaylı bir şekilde tarif edilmektedir.

Alkole bağlı C57BL Hamilelik sırasında Apoptoz / 6 Fare Karşı, Nörotrofik Peptit, ADNF-9 Etkilerinin Test için Deneysel Yöntemler

Experimental designs for investigating the effects of prenatal alcohol exposure during early embryonic stages in fetal brain growth are challenging. This ...

experimental-methods-for-testing-effects-neurotrophic-peptide-adnf-9

Research

JoVE Journal

Neuroscience

11.6K Görüntüleme.  University of Toledo. Deneysel tasarımlar fetal beyin gebelik sırasında apoptoz ve nörotrofik peptid uygulama alkol maruz kalmanın etkilerini araştırmak burada odaklanmak önerdi. Üreme fetal beyin koleksiyonuna ayrıntılı bir açıklama açıklanmıştır. Apoptozun belirlenmesi için teknikler de detaylı bir şekilde tarif edilmektedir.

Video: Experimental Methods for Testing the Effects of Neurotrophic Peptide, ADNF-9, Against Alcohol-induced Apoptosis during Pregnancy in C57BL/6 Mice

Methods for Experimental Manipulations after Optic Nerve Transection in the Mammalian CNS

Retinal ganglion cells (RGCs) are CNS neurons that output visual information from the retina to the brain, via the optic nerve. The optic nerve can be accessed within the orbit of the eye and completely transected (axotomized), cutting the axons of the entire RGC population. Optic nerve transection is a reproducible model of apoptotic neuronal cell death in the adult CNS 1-4. This model is particularly attractive because the vitreous chamber of the eye acts as a capsule for drug delivery to the retina, permitting experimental manipulations via intraocular injections. The diffusion of chemicals through the vitreous fluid ensures that they act upon the entire RGC population. Viral vectors, plasmids or short interfering RNAs (siRNAs) can also be delivered to the vitreous chamber in order to infect or transfect retinal cells 5-12. The high tropism of Adeno-Associated Virus (AAV) vectors is beneficial to target RGCs, with an infection rate approaching 90% of cells near the injection site 6, 7, 13-15. Moreover, RGCs can be selectively transfected by applying siRNAs, plasmids, or viral vectors to the cut end of the optic nerve 16-19 or injecting vectors into their target the superior colliculus 10. This allows researchers to study apoptotic mechanisms in the injured neuronal population without confounding effects on other bystander neurons or surrounding glia. RGC apoptosis has a characteristic time-course whereby cell death is delayed 3-4 days postaxotomy, after which the cells rapidly degenerate. This provides a window for experimental manipulations directed against pathways involved in apoptosis. Manipulations that directly target RGCs from the transected optic nerve stump are performed at the time of axotomy, immediately after cutting the nerve. In contrast, when substances are delivered via an intraocular route, they can be injected prior to surgery or within the first 3 days after surgery, preceding the initiation of apoptosis in axotomized RGCs. In the present article, we demonstrate several methods for experimental manipulations after optic nerve transection.

Optic Nerve transection is a widely used model of adult CNS injury. This model is ideal for performing a number of experimental manipulations that target the retina globally or directly target the injured neuronal population of retinal ganglion cells.

Memeli MSS Optik Sinir transeksiyonu sonra Deneysel İşlemler Yöntemleri

Retinal ganglion cells (RGCs) are CNS neurons that output visual information from the retina to the brain, via the optic nerve. The optic nerve can be ...

Nörobilim

Organotypic Cerebellar Cultures: Apoptotic Challenges and Detection

Organotypic cultures of neuronal tissue were first introduced by Hogue in 1947 1,2 and have constituted a major breakthrough in the field of neuroscience. Since then, the technique was developed further and currently there are many different ways to prepare organotypic cultures. The method presented here was adapted from the one described by Stoppini et al. for the preparation of the slices and from Gogolla et al. for the staining procedure 3,4.
A unique feature of this technique is that it allows you to study different parts of the brain such as hippocampus or cerebellum in their original structure, providing a big advantage over dissociated cultures in which all the cellular organization and neuronal networks are disrupted. In the case of the cerebellum it is even more advantageous because it allows the study of Purkinje cells, extremely difficult to obtain as dissociated primary culture. This method can be used to study certain developmental features of the cerebellum in vitro, as well as for electrophysiological and pharmacological experiments in both wild type and mutant mice.
The method described here was designed to study the effect of apoptotic stimuli such as Fas ligand in the developing cerebellum, using TUNEL staining to measure apoptotic cell death. If TUNEL staining is combined with cell type specific markers, such as Calbindin for Purkinje cells, it is possible to evaluate cell death in a cell population specific manner. The Calbindin staining also serves the purpose of evaluating the quality of the cerebellar cultures.

This method describes the generation of organotypic cerebellar cultures and the effect of certain apoptotic stimuli on the viability of different cerebellar cell types.

Organotipik Serebellar Kültürler: Apoptotik Zorluklar ve Tayin

Organotypic cultures of neuronal tissue were first introduced by Hogue in 1947 1,2 and have constituted a major breakthrough in the field of neuroscience. ...

Cortex-, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- and Striatum-specific In Utero Electroporation in the C57BL/6 Mouse

In utero electroporation is a widely used technique for fast and efficient spatiotemporal manipulation of various genes in the rodent central nervous system. Overexpression of desired genes is just as possible as shRNA mediated loss-of-function studies. Therefore it offers a wide range of applications. The feasibility to target particular cells in a distinct area further increases the range of potential applications of this very useful method. For efficiently targeting specific regions knowledge about the subtleties, such as the embryonic stage, the voltage to apply and most importantly the position of the electrodes, is indispensable.
Here, we provide a detailed protocol that allows for specific and efficient in utero electroporation of several regions of the C57BL/6 mouse central nervous system. In particular it is shown how to transfect regions the develop into the retrosplenial cortex, the motor cortex, the somatosensory cortex, the piriform cortex, the cornu ammonis 1-3, the dentate gyrus, the striatum, the lateral septal nucleus, the thalamus and the hypothalamus. For this information about the appropriate embryonic stage, the appropriate voltage for the corresponding embryonic stage is provided. Most importantly an angle-map, which indicates the appropriate position of the positive pole, is depicted. This standardized protocol helps to facilitate efficient in utero electroporation, which might also lead to a reduced number of animals.

Cortex-, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- and Striatum-specific In Utero Electroporation in the C57BL/6 Mouse

This protocol describes in detail how to specifically transfect different regions in the C57BL/6 central nervous system via in utero electroporation. Included in this protocol are detailed instructions for transfections of regions that develop into the cortex, hippocampus, thalamus, hypothalamus, lateral septal nucleus and striatum.

Korteks, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- ve Striatum özgü<em&gt; In Utero</em&gt; C57BL / 6 Fare Elektroporasyon

In utero electroporation is a widely used technique for fast and efficient spatiotemporal manipulation of various genes in the rodent central nervous ...

Experimental Models to Study the Neuroprotection of Acidic Postconditioning Against Cerebral Ischemia

Stroke is one of the leading causes of mortality and disability worldwide, with limited therapeutic approaches. As an endogenous strategy for neuroprotection, postconditioning treatments have proven to be promising therapies against cerebral ischemia. However, complicated procedures and potential safety issues limit their clinical application. To overcome these disadvantages, we have developed acidic postconditioning (APC) as a therapy for experimental focal cerebral ischemia. APC refers to the mild acidosis treatment by inhaling CO2 during reperfusion following ischemia. Here we present two models to execute APC in vitro and in vivo, respectively. The oxygen-glucose deprivation (OGD) treatment of mice and the corticostriatal occlusion and middle cerebral artery occlusion (MCAO) of mice were employed to mimic cerebral ischemia. APC can be simply achieved by transferring brain slices to acidic buffer bubbled with 20% CO2, or by mice inhaling 20% CO2. APC showed significant protective effects against cerebral ischemia, as reflected by tissue viability and brain infarct volume.

Acidic postconditioning protects against cerebral ischemia. Here we present two models to execute APC. They are achieved respectively by transferring corticostriatal slices to acidic buffer after oxygen-glucose deprivation in vitro and by inhaling 20% CO2 after middle cerebral artery occlusion in vivo.

Serebral İskemiye Karşı Asitik Sonrası Sonrasyonun Sinir Korumasını Çalıştırmak için Deney Modelleri

Stroke is one of the leading causes of mortality and disability worldwide, with limited therapeutic approaches. As an endogenous strategy for ...

Sagittal Plane Kinematic Gait Analysis in C57BL/6 Mice Subjected to MOG35-55 Induced Experimental Autoimmune Encephalomyelitis

Kinematic gait analysis in the sagittal plane has frequently been used to characterize motor deficits in multiple sclerosis (MS). We describe the application of these techniques to identify gait deficits in a mouse model of MS, known as experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE). Paralysis and motor deficits in mice subjected to EAE are typically assessed using a clinical scoring scale. However, this scale yields only ordinal data that provides little information about the precise nature of the motor deficits. EAE disease severity has also been assessed by rotarod performance, which provides a measure of general motor coordination. By contrast, kinematic gait analysis of the hind limb in the sagittal plane generates highly precise information about how movement is impaired. To perform this procedure, reflective markers are placed on a hind limb to detect joint movement while a mouse is walking on a treadmill. Motion analysis software is used to measure movement of the markers during walking. Kinematic gait parameters are then derived from the resultant data. We show how these gait parameters can be used to quantify impaired movements of the hip, knee, and ankle joints in EAE. These techniques may be used to better understand disease mechanisms and identify potential treatments for MS and other neurodegenerative disorders that impair mobility.

Kinematic gait analysis in the sagittal plane yields highly precise information about how movement is executed. We describe the application of these techniques to identify gait deficits for mice subjected to autoimmune-mediated demyelination. These methods may also be used to characterize gait deficits for other mouse models featuring impaired locomotion.

Sagittal düzlem kinematik yürüyüş analizi MOG35-55 için tabi C57BL/6 farelerde deneysel otoimmun ensefalomiyelit indüklenen

Kinematic gait analysis in the sagittal plane has frequently been used to characterize motor deficits in multiple sclerosis (MS). We describe the ...

A Simple Approach to Induce Experimental Autoimmune Neuritis in C57BL/6 Mice for Functional and Neuropathological Assessments

Experimental autoimmune neuritis (EAN) is a well-appreciated experimental model of autoimmune peripheral demyelinating diseases. EAN disease is induced by immunizing mice with neurogenic peptides to direct an inflammatory attack toward components of the peripheral nervous system (PNS). Recent advances have enabled the induction of EAN in the relatively resistant C57BL/6 mouse line using myelin protein zero (P0)106-125 or P0180-199 peptides delivered in adjuvant combined with the injection of pertussis toxin. The ability to induce EAN in the C57BL/6 strain allows for the use of the numerous genetic tools that exist on this mouse background, and thus allows the sophisticated study of disease pathogenesis and interrogation of the mechanistic action of novel therapeutics in combination with transgenic approaches. In this study, we demonstrate a simple approach to successfully induce EAN using the P0180-199 peptide in C57BL/6 mice. We also outline a protocol for the assessment of functional deficits that occur in this model, accompanied by an array of neuropathological features. Thus, this model is a powerful experimental model to study the pathogenesis of human peripheral demyelinating neuropathies, and to determine the efficacy of potential therapies that aim to promote myelin repair and protect against nerve damage in autoimmune neuritis.

This report outlines a simple approach to successfully induce experimental autoimmune neuritis (EAN) using the myelin protein zero (P0)180-199 peptide in combination with Freund&#39;s complete adjuvant and pertussis toxin. We present a sophisticated paradigm capable of accurately assessing the extent of functional deficits and neuropathology that occur in this EAN.

C57BL/6 farelerde deneysel otoimmün nörite fonksiyonel ve Neuropathological değerlendirmeler için ikna etmek için basit bir yaklaşım

Experimental autoimmune neuritis (EAN) is a well-appreciated experimental model of autoimmune peripheral demyelinating diseases. EAN disease is induced by ...

Cochlear Implant Surgery and Electrically-evoked Auditory Brainstem Response Recordings in C57BL/6 Mice

Cochlear implants (CIs) are neuroprosthetic devices that can provide a sense of hearing to deaf people. However, a CI cannot restore all aspects of hearing. Improvement of the implant technology is needed if CI users are to perceive music and perform in more natural environments, such as hearing out a voice with competing talkers, reflections, and other sounds. Such improvement requires experimental animals to better understand the mechanisms of electric stimulation in the cochlea and its responses in the whole auditory system. The mouse is an increasingly attractive model due to the many genetic models available. However, the limited use of this species as a CI model is mainly due to the difficulty of implanting small electrode arrays. More details about the surgical procedure are therefore of great interest to expand the use of mice in CI research.
In this report, we describe in detail the protocol for acute deafening and cochlear implantation of an electrode array in the C57BL/6 mouse strain. We demonstrate the functional efficacy of this procedure with electrically-evoked auditory brainstem response (eABR) and show examples of facial nerve stimulation. Finally, we also discuss the importance of including a deafening procedure when using a normally hearing animal. This mouse model provides a powerful opportunity to study genetic and neurobiological mechanisms that would be of relevance for CI users.

Animal models of cochlear implants can advance knowledge of the technological bases of treating permanent sensorineural hearing loss with electrical stimulation. This study presents a surgical protocol for acute deafening and cochlear implantation of an electrode array in mice as well as the functional assessment with auditory brainstem response.

Koklear Implant ameliyatı ve elektriksel olarak uyarılmış işitsel beyin sapı yanıt kayıtları C57BL/6 farelerde

Cochlear implants (CIs) are neuroprosthetic devices that can provide a sense of hearing to deaf people. However, a CI cannot restore all aspects of ...

Quantitative Measurement of Intrathecally Synthesized Proteins in Mice

Cerebrospinal fluid (CSF), a fluid found in the brain and the spinal cord, is of great importance to both basic and clinical science. The analysis of the CSF protein composition delivers crucial information in basic neuroscience research as well as neurological diseases. One caveat is that proteins measured in CSF may derive from both intrathecal synthesis and transudation from serum, and protein analysis of CSF can only determine the sum of these two components. To discriminate between protein transudation from the blood and intrathecally produced proteins in animal models as well as in humans, CSF protein profiling measurements using conventional protein analysis tools must include the calculation of the albumin CSF/serum quotient (Qalbumin), a marker of the integrity of the blood-brain interface (BBI), and the protein index (Qprotein/Qalbumin), an estimate of intrathecal protein synthesis. This protocol illustrates the entire procedure, from CSF and blood collection to quotients and indices calculations, for the quantitative measurement of intrathecal protein synthesis and BBI impairment in mouse models of neurological disorders.

Elevated spinal fluid protein levels can either be the result of diffusion of plasma protein across an altered blood-brain barrier or intrathecal synthesis. An optimized testing protocol is presented in this article that helps to discriminate both cases and provides quantitative measurements of intrathecally synthesized proteins.

Farelerde İntrathecally Sentezlenmiş Proteinlerin Kantitatif Ölçümü

Cerebrospinal fluid (CSF), a fluid found in the brain and the spinal cord, is of great importance to both basic and clinical science. The analysis of the ...

Murine Corneal Nerve Abrasion for the Induction of Neurotrophic Keratitis

To begin corneal abrasion, place an anesthetized mouse on a table. Apply a drop of artificial tear on the eye undergoing the surgery. Apply a drop of ocular gel on the contralateral eye.Next, position the mouse on its side on a heated plate. Gently use a cotton swab to absorb the artificial tear, and brush aside the mouse's eyelashes without making contact with the eye. Turn on the ocular burr, and carefully open the mouse's eyelid with two fingers.Simultaneously shield the vibrancy to prevent them from entangling in the burr. Locate the pupil or the eye center and gently apply the ocular burr to the eye's surface in circular motions until the epithelium is removed. Alternatively, perform about 20 circular movements on the cornea.Now apply a drop of fluorescent staining solution on the abraided eye. After 20 seconds, dab the eye with a tissue to absorb the solution. Then rinse it with a drop of artificial tear.Finally, absorb the artificial tear with a tissue, and illuminate the eye using a blue cobalt lamp. Prior to the surgery, the basal epithelium was intact and the nerve fibers in the sub basal plexus formed a vortex. The burr tip removed the outer corneal layer, leaving the stroma and endothelium intact with a visible gap at the basal epithelium and sub basal plexus.Regeneration of the epithelium occurred over a week post-surgery. However, the vortex remained absent from the corneal center.

Nörotrofik Keratit İndüksiyonu için Murin Kornea Sinir Aşınması

Davranışsal Araştırma için C57BL / 6 Farelerde Ergen Sosyal Stres Paradigması

Social Defeat Stress Model for Adolescent C57BL&#47;6 Male and Female Mice

Social adversity in adolescence is prevalent and can negatively impact mental health trajectories. Modeling social stress in adolescent male and female rodents is needed to understand its effects on ongoing brain development and behavioral outcomes. The chronic social defeat stress paradigm (CSDS) has been widely used to model social stress in adult C57BL/6 male mice by leveraging on the aggressive behavior displayed by an adult male rodent to an intruder invading its territory. An advantage of this paradigm is that it allows to categorize defeated mice into resilient and susceptible groups based on their individual differences in social behavior 24 h after the last defeat session. Implementing this model in adolescent C57BL/6 mice has been challenging because adult or adolescent mice do not typically attack early adolescent male or female mice and because adolescence is a short period of life, encompassing discreet temporal windows of vulnerability. This limitation was overcome by adapting an accelerated version of the CSDS to be used for adolescent male and female mice. This 4-day stress paradigm with 2 physical attack sessions per day uses a C57BL/6 male adult to prime the CD-1 mouse for aggressiveness such that it readily attacks the male or female adolescent mouse. This model was termed accelerated social defeat stress (AcSD) for adolescent mice. Adolescent exposure to AcSD induces social avoidance 24 h later in both males and females, but only in a subset of defeated mice. This vulnerability occurs despite the number of attacks being consistent across sessions between resilient and susceptible groups. The AcSD model is short enough to allow exposure during discrete periods within adolescence, allows the segregation of mice according to the presence or absence of social avoidance behavior, and is the first model available to study social defeat stress in adolescent C57BL/6 female mice.

Yazar Spotlight: Farelerde Ergen Sosyal Sıkıntısının Nörogelişim Üzerindeki Etkilerini Anlamak

We developed an accelerated social defeat stress model for adolescent C57BL/6 mice, which works in both males and females and allows exposure during discrete adolescent periods. Exposure to this model induces social avoidance, but only in a subset of defeated male and female mice.

Ergen C57BL/6 Erkek ve Dişi Fareler için Sosyal Yenilgi Stres Modeli

Social adversity in adolescence is prevalent and can negatively impact mental health trajectories. Modeling social stress in adolescent male and female ...