Bu çalışma Tıbbi Araştırma Konseyi hibe G1000299 tarafından finanse edildi. İlgili yazar ameliyat sırasında yardım için Gary Borthwick, University of Edinburgh, teşekkür etmek istiyorum. Yazarlar Helen Douglas ve Iain Mackay tavsiye kabul etmek gibi ve bize Derin İnferior Epigastrik (DIEP) flep prosedürü (Canniesburn Plastik Cerrahi Ünitesi, Glasgow Kraliyet Hastanesi, 84 Castle Street, Glasgow G4 0SF, UK) gözlemlemek için izin istiyorum. Yazarlar ayrıca bu yazı için video üretiminde yaptığı yardım için Edinburgh Üniversitesi&#39;nde Gary Blackie teşekkür etmek istiyorum.

Tüm cerrahi Birleşik Krallık&#39;ın İçişleri Bakanlığı ve Edinburgh Veteriner Hizmetleri Dairesi Üniversitesi tarafından belirlenen esaslara uygun olarak yapılır. 1. Cerrahi Prosedür Kurulum Notları <ol><li> Temiz cerrahi scrubs, elbisesi, bodur kap ve maske içine değiştirin. % 70 izopropil alkol% 2 klorheksidin ile ekipmanları da dahil olmak üzere ameliyathane tüm yüzeylerini temizleyin. </li><li> Ameliyat öncesinde, tüm cerrahi malzeme ve prosedüründe kullanılacak araçlar otoklav. Işletme başına steril paketleri içermelidir: 3 perdeler, gazlı bez, pamuk uçlu aplikatörler, silikon kaplama ve cerrahi aletler, Özel Cerrahi Malzemeler ve Araçlar ve Şekil 1 Tablo bakın. Sıçan tartılır ve işlem tamamlanmadan önce deri altından, 1 saat tatbik edilecek buprenorfinin uygun bir hacmi (0.04 mg / kg) ölçün. Yerleşimi; edici sırasında deri altı sıvı yönetimi için 3 x 1 ml şırıngaery, 2 x 6-0 Vicryl dikiş, 1 x 5-0 Ethilon sütür, cetvel ve bir 10-bıçak tek neşter, 4 ile steril bir işaretleyici - 5 steril eldiven çiftleri ve bir el koter ünitesi. </li><li> Yer 4 x 10 ml steril, bir su banyosu içinde% 0.9 &#39;luk tuzlu su şişeleri 37 ° C ye ısıtıldı Bu deri altı sıvı değiştirilmesi için kullanılacaktır (1 mL / kg / saat) ve cerrahi bölgenin durulayın. Homeothermic battaniye, rektal prob, ısı lambası, çalışma mikroskop ve anestezi teçhizat ayarlayın. Lazer ve yazılımı açın, başka bir anestezi teçhizat kurulum ve hayvan tarama sırasında koyacak üzerinde siyah mat altında bir ısı pedi yerleştirin. </li><li> 250-300 g ağırlığında erkek Lewis fareleri kullanır. Herhangi bir cerrahi öncesi 12 saat ışık-karanlık çevrimi ile yiyecek ve su ad libitum ile 7 gün boyunca ev sıçan gerçekleştirilir. </li></ol> 2. Anestezi ve Cilt Hazırlık <ol><li> Anestezi teçhizat en indüksiyon odasında sıçan yerleştirin ve için 1L/min O 2 ile% 4 izofluran yönetmekAnestezi ikna etmek 2-3 dk. Odasından anestezi sıçan çıkarın ve temiz, ısıtmalı mat sırtüstü yerleştirin. Bir burun konisi kullanılarak% 1.5 izofluran koruyun. İşlem sırasında kornea aşınmaya önlemek için lacrilube veya benzeri madde uygulayın. Hayvan geçmeden önce yeterli anestezi sağlamak için bir ayak-pad tutam testi yapın. Prosedür her önemli bir adım önce bu son testi tekrarlayın ve buna göre inhalasyon anestezik konsantrasyonu ayarlayın. </li><li> Tüm karın yüzeyi maruz kaldığı çok yakından bir elektrikli tıraş makinesi kullanarak karın ön tıraş. Tedarikçi tarafından önerilen süresince krem ​​depilating uygulayın. Krem çıkarın ve iyice krem ​​tüm izlerini silmek için ısıtılmış steril serum fizyolojik ile cilt durulayın. Cilde% 70 izopropil alkol% 2 klorheksidin uygulayın ve devam etmeden önce kurumasını bekleyin. Bu cerrahi alan enfeksiyonu için geçerli kanıtlara dayalı ünitemizde standart cilt hazırlıktır. 34 Lütfen dsizin Veteriner Bölümü ile iscuss bir cilt hazırlığı protokol seçilmesi önce ünitesinde standart prosedür budur. </li><li> Place 2 perdeler ya da sıçan yan ve steril tutmak için özen. Steril eldiven giyin ve bir asistan yardımı ile steril paketleri açmak. Tek bir örtü üzerinde araçlar ve dikişler, gazlı bez, pamuk aplikatör, silikon kaplama ve diğer cetvel ile steril marker kalem yerleştirin. </li><li> Referans noktaları olarak xiphisternum ve kuyruk kullanarak orta hat belirlemek. Orta hat işaretleyin. Xiphisternum altında 0.8 cm boyutlarında ve bu noktada işaretleyin. Bu noktadan orta hatta bir çizgi dik çizin. 1 cm ve 2 cm sola ve orta hat doğru dışarı kapağı işareti merkezi olarak orta hat almak. Noktalarından orta hatta paralel dikey çizgiler çizin. Orijinal yatay sınırının altında 4 cm ölçmek ve başka bir paralel çizin. Bu talimatları izleyerek 4 eşit şeritler halinde bölünmüş bir 4 x 4 cm flep tarif edilir(Bkz. Şekil 2). </li></ol> 3. Lazer Doppler Görüntüleme <ol><li> Dikkatlice LDI tarayıcı, ikinci anestezi teçhizat burun konisi için fare hareket ettirin. Izofluran% 1.5, 1L/min O 2 anestezi devam edin. Lazer açın ve taramayı başlatmak için üreticinin yönergelerini izleyin. Taranan dosyayı kaydettikten sonra ilk teçhizat geri sıçan dönmek ve bir yağ gibi yumuşak beyaz parafin kullanarak homeothermic battaniye rektal prob yeniden takın. </li></ol> . 4 in situ TRAM flep - IRI miyokutanöz Model <ol><li> Yeniden fırçalayın elleri ve taze steril eldiven koymak. Kalan steril örtü ortasında bir 5 cm çapında daire kesip ve bol dökümlü steril alan oluşturmak için maruz karın üzerinde bu yerleştirin. </li><li> Sol lateral işaretlenmiş kenar (Şekil 3A ve B) aşağı bir kesi yapmak. Hemostaz sağlamak. Yatay çizgiler aşağı benzer kesiler olunorta hat solunda. Hemostaz sağlamak. </li><li> Yağ örten sol alt rektus kılıf görünür olmalıdır. Dikkatli forseps ve ince iris makası kullanarak bu yağ altına almak. Sol, ön rektus kılıf üzerinden gelen deliciler zarar vermemeye dikkat edin. Bu diseksiyon tarafından açıldı uçak olduğunu hemen karın ön duvarı fasya üzerindedir. Sınırları çizilmiş kenar boşlukları etrafında bu düzlemde diseksiyon devam edin. Sol iliak fossada büyük, yüzeysel sirkumfleks iliak damarları-bu bağlı veya koterize edilebilir yatıyor. Daha sonra dikkatli medial diseksiyon genişletmek ve sadece kadar sol rektus kasının lateral kenar gibi. Pembe yakın beyaz (Şekil 3C) için bu noktada açık bir renk değişimi mevcuttur. Dikkatlice steril serum fizyolojik ile alanı sulamak ve hemostaz alana nemli gazlı bez koymadan önce elde edildiğini kontrol edin. </li><li> Karşı tarafta aynı işlemi tekrarlayın ama bu kez t uzatmaklinea alba (orta hat) o. Sağ rektus abdominis kas (Şekil 3D) merkezinde ortaya çıkan tüm musculocutaneus deliciler belirlemek ve dağlamak için özen gösterin. Bu düzgün yapılmazsa değilse bir postoperatif hematom ve sahte sonuçları neden olabilir. Benzer şekilde, Hemostaz sağlamak sulamak ve yükseltilmiş flep üzerine nemli gazlı bez yerleştirin. </li><li> Sol ön rektus en alt marjı (Şekil 3E ve F) geri dönün. Görülen en aşağı delme dağlamak. Microscissors kullanarak ön rektus kılıf küçük bir (yaklaşık 0,6 cm x 0,6 cm) pencere kesmek ve Graeffe forseps kavisli sivri devam edin. Arka kılıf ihlal önce kas incelir ama kadar kas lateral kenar yavaşça teşrih künt. Daha sonra forseps döndürmek ve kas karın forseps kavisli kenar üstünde ve ipuçları medial marjı ücretsiz kadar mediale teşrih künt. Yaklaşık Yemly 6 forseps pençesinden içine 5-0 Ethilon bir cm ve alt rektus kılıf kapalı kravat. Bu adımın tamamlanmasının ardından kaldırılan kas deri flebi bir baskın damar-derin üstün epigastrik damarlar üzerinde izole edilmiştir. Nemli bir gazlı bez ile örtün. </li><li> Düzgün köşeleri, (Şekil 3G) ile oval içine silikon kaplama kesin. Bu flep fasyokutan bölümlerini altında açık kalan alanın çoğunu kapsayacak kadar büyük olmalıdır. Ancak, dikkatli cilt kenarı oval herhangi bir gerginlik ve medial eğrisi olmadan kapatılabilir sağlamak için alınması gereken kalan deliciler aracılığıyla bozarak akışını önlemek için geri eşleştirilmiş gerekebilir. Bunlar daha sonra 6-0 Vicryl (Şekil 3H) ile yerine dikilir. Nemli gazlı bez ile kaplayın. </li><li> Basit kullanarak ısı ve su kaybı (Şekil 3I) azaltmak için flep dışarı rejimi &#39;5-0 Ethilon sütür. Nemli bir gazlı bez ile örtün. </li><li> Solundaki superior yara uzatınxiphisternum (Şekil 3I). Alan-of-görünümü geliştirmek için sol üst kadranda bu dikin. </li><li> Üstün, sol, ön rektus kılıf ortaya çıkarmak için herhangi bir örten yağ kesip. Bu kılıf küçük (0.6 cm x 0.6 cm) penceresi (Şekil 3J) kesin. Dikey sıkı gevşek fibriller için dolu gelen eğik ve tutarlılık görülür kas lifi yörünge bir değişiklik kadar medial yara uzatın. </li><li> Bu iki kas arasındaki dikkatle kavisli bir forseps yerleştirin ve künt diseksiyon ile bir uçak kadar açık. Sadece kadar altta yatan derin, üstün epigastrik arter ve ven (Şekil 3K) ortaya çıkarmak için sol rektus abdominis kas karın ile kesme bu kavisli bir forseps üstün yüzey olarak dikkatli bir şekilde azaltmak. </li><li> , Işletim mikroskopta mikro araçlar ve yüksek güç kullanılarak dikkatlice arter ve ven ayrı ve herhangi bir çevre yağ kapalı şerit. </li><li> Bir için atravmatik Acland kelepçeleri uygulayınrtery ve ven (B-1, &quot;V&quot; tipi) ve 30 dakika iskemik süre geri sayıma Sayacı başlatmak. Kenetli pedikül sulamak ve gazlı bez ile kapatın. Biz verapamil veya pabavarine gibi damar dilatörler istihdam yoktu ama gemi spazm bir sorun olmalı, bu ilaçlar düşünülmelidir. </li><li> Buprenorfin (0.04 mg / kg) ve ısıtılmış, steril tuzlu su (1 mL / kg / saat) uygulayın. </li><li> Sol üst köşeden başlayarak, 6-0 Vicryl subkütiküler sütür durdurma ve xiphisternum kapalı bağlama ile yerde flep sütür. </li><li> 30 dakika iskemi süresi sona erdiğinde, dikkatle kelepçeleri çıkarın ve ılık tuzlu su ile pedikül sulamak. Bu akış yeniden kurulmuştur kontrol edin. Bu iskemik kez İngiltere İçişleri Bakanlığı yetkilisi tarafından öngörülen olduğunu lütfen unutmayın. Diğer yetkililer çalışan araştırmacılar bu süreyi uzatmak mümkün olabilir. Iskemi süresi uzatılması muhtemel daha kötü klinik sonuca yol açacaktır. </li><li> 6-0 Vicryl ile yeniden rektus ve kesme kenarları dikin.Bu gemilerin bükülme yol gibi çok fazla gerginlik uygulamak için dikkat edin. </li><li> (Şekil 3K) cilt altındaki tüm knot gömmek bakımı cilt altı dikiş tamamlayın. </li><li> Yara alan temizleyin ve kurutun. Kapağı üzerindeki bölgeleri yeniden çizin. </li><li> Bir ameliyat sonrası görüntü elde etmek için hayvan yeniden tarayın. </li><li> Hayvancılık birim dönmeden önce kurtarmak için 1 saat için ısıtılmış bir inkübatör (37 ° C) olarak hayvanın gözleri ve yere lacrilube yeniden uygulayın. </li></ol> Protokol içinde kritik adımlar Prosedürün dönüm noktası derin, üstün epigastrik damarları tespit bulunmaktadır. Bu ekli filmde açıkça gösterilmiştir. Kısacası, bir pencere boyuna yayınlanmaya başlayacak temel kas lifleri ortaya çıkarmak için ön rektus kılıf kesilir. Medial kas lifi yörünge bir değişiklik ön rektus kılıf yüzeysel diseksiyonu uzatarak f görülmektedireğik için boyuna rom. Kas liflerinin bu iki demetleri kesiştiği sona erdi, kavisli, Graeffe forseps (veya benzeri) künt takın. Yanal teşrih künt. Kas lif demetleri arasındaki bu düzlemde düzenlenen kavisli bir forseps üst yüzeyi üzerine, mikro makas kullanılarak, kes. Graeffe çıkarılması üzerine derin, üstün epigastrik arter forseps ve ven rektus abdominis kas vücudun orta noktasında gözlenecektir. Yağ örten mikro araçlar kullanarak damarları kapalı şerit ve kelepçeler geçerlidir. Sıçan TRAM flep fasyokutan bölümlerini kapağı tam kalınlıkta deri grefti olarak almaya izin verecek kadar ince. Bunu önlemek için ve bu IRI ince, esnek bir silikon sac kapağının fasyokutan bölümlerini altına yerleştirilir. 35 Bu adım kabul edilmiştir sıçan TRAMVAY modelleri üstlenerek diğer araştırmacılar tarafından. 17,21,25 gerçek bir model olmasını sağlamak için Sıçanlar throu çiğnemekgh knot böylece tüm dikişler subkütiküler olduğundan emin olun ve tüm knot gömülüdür. Diğer araştırmacılar tarafından bildirilen kapakları titiz dikiş autocannabilism yürüten önlenebilir. 24 Buprenorfin ardından yönetim İsofluranın 1% (1L/min O 2) bakım anestezi azaltır.

Biz hiçbir açıklama yok.

Değişiklikler ve sorun giderme Burada sunulan protokol bu sürecin daha iyi anlaşılmasını sağlayan deneysel sistemde serbest doku transferi görülen IRI üretir ve IRI iyileştirmede ve sonuç geliştirme araçları araştırmak için bir araç sağlar. Bu baskın olmayan, derin, aşağı pedikül epigastrik veya iskemik zaman artış olsaydı dayanmaktadır, bu kolayca daha ağır yaralanma üretmek için değiştirilebilir. Teknik sınırlamaları <p clas...

Bu protokolün amacı girişimsel stratejiler araştırılması sağlamak için serbest doku transferi gözlenen iskemi-reperfüzyon hasarı bir güvenilir ve tekrarlanabilir bir model göstermektir. Serbest doku transferi alıcı yerinde yerel damarlara kapağın nakledilmiş kapların anastomozunun otolog doku nakli takiben doku izole edilmiş bir bloğun vasküler kopma olarak tanımlanır. Prosedür FTT olarak bilinir ve bu dokudan serbest kanadı olarak adlandırılır transfer edilmektedir. Ücretsiz doku transferi yerel seçenekler uygun olmayan veya kullanılamaz karmaşık, kompozit kusurların düzeltilmesi için altın standart yaklaşımdır. 1-4 iskemi reperfüzyon hasarı (IRI), serbest doku transferi kaçınılmaz başarısızlık 5,6 flap katkıda bulunmamakta, etkili bir tedavi. Serbest flep ameliyatları seçime dayalı yapısını farmakolojik yönetimi izin verirIRI karşı ön koşul için cal ajanlar. Endotel aktivasyonu ve metabolik fonksiyon bozukluğu ile mikro ile engelli akışı IRI sonuçları, 7 kapiller geçirgenliği ve sonraki interstisyel ödem 7, inflamatuar hücrelerin akını, inflamatuvar mediatörlerin 8 sürümü, reaktif oksijen türleri 9 ve tamamlayıcı birikimi artmıştır. 10 hipoksi Bu karmaşık bir süreç ve takip eden reperfüzyon sonunda hücre ölümüne yol açar. Miyokutanöz IRI modeli değerlendirilmesi gereken klinik sonuçlar üzerine stratejiler ön koşullandırma etkisini sağlar. Son çalışmalar insan denekler ve mevcut hayvan veri gözlenen moleküler değişiklikler karşılaştırarak insan IRI için bir vekil olarak IRI çalışmaların hayvan modellerinin kullanımı teyit edilmiştir. 10,11 Sıçan enine rektus abdominis kas deri (TRAM) flep olanlar önce Almanca 12 ve 1993 yılında 1987 yılında tanımlanmıştırİngilizce 13. Bu model IRI serbest doku transferi ile ilgili azaltmak için farklı stratejiler araştırmak için ucuz, sağlam model olarak geniş popülerlik 13-25 kazandı. Bu çalışmaların 14,17-22 çoğunluğu, derin, alt dayalı unipedicled TRAM flep olarak tasarlanmıştır . ve postoperatif takip farklı uzunlukta (2 - 10 gün) - Bu çalışmalardan elde edilen verilerin epigastrik vasküler pedikül 15-18,20-22 Karşılaştırma farklı büyüklükte deri adaları (30 cm 2 10.5) kullanımı ile karmaşıktır. Bu çalışmaların kontrol kolundaki ortalama toplam yüzde alanı flep nekrozu 69 ± 6.2% (ortalama ± SEM) &#39;dir. Bu altı kağıtları tüm vasküler pedikül için bir taşıyıcı olarak rektus abdominis kas istihdam ama bölmek ve damarları microanastomose veya kelepçe, maruz bırakmayın unutulmamalıdır. Zhang ve arkadaşları. 23 üstün epigastrik damarları dayalı gerçek, ücretsiz sıçan TRAM flep tarif ettiğim hangi ftur, kaldırdı gemi bölünmüş ve miyokutanöz flep transfer ve kasık gemilere microanastomosed edildi. 0.5 mm çapında gemi - Bu zor bir teknik 0.45 microanastomosis gerekli. Sadece on beş yapılır ve bu% 67 hayatta. 23 Zhang ve ark modeli. Gerçekten FTT sırasında oluşan yaralanma aynalar gibi 23 insan ücretsiz TRAM flep için mükemmel bir modeldir. Edildi Bir sıçan TRAM flep diğer yayınlanmış modelleri daha doğru bir insan pediküllü TRAM sırasında oluşan yaralanmalar yansıtan ama doğru vasküler kelepçeli ya da bölünmüş asla pedikül ve gibi reperfüzyon ardından bir iskemik süre uğramayan bu flep olarak IRI yansıtmaz microanastomosis yapıldı. Bu protokol ve video IRI microclamps kullanılarak çoğaltılmış olduğu sıçan TRAMVAY kullanarak serbest doku transferi yeni bir model tarif. Bu daha sadık pedikül TRAMVAY öncekilerden daha IRI çoğaltır ama performi daha teknik olarak daha kolaydırng microanastomosis. Microclamps yaygın IRI solid organ nakli ile ilgili yeniden nakli araştırmacılar tarafından istihdam edilmiştir, 26-33 ancak, bu sıçan TRAM flep tarif edilmiştir ilk kez.

<table border="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td>Name of Reagent/Material</td>
 <td>Company</td>
 <td>Catalog Number</td>
 <td>Comments</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Moor LD12 laser doppler imaging scanner</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8" target="_blank">http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Complete homeothermic blanket system with flexible probe. Small. 230 VAC, 50 Hz</td>
 <td></td>
 <td>507221F</td>
 <td><a href="http://www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Graeffe forceps 0.8 mm tips curved</td>
 <td></td>
 <td>11052-10</td>
 <td>2, <a href="http://www.finescience.de" target="_blank">http://www.finescience.de</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Acland clamps</td>
 <td></td>
 <td>00398 V</td>
 <td>B-1 'V' pattern clamps used on both artery and vein. <a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Clamp applicator</td>
 <td></td>
 <td>CAF-4</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Gemini cautery unit</td>
 <td></td>
 <td>726067</td>
 <td><a href="www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro-vessel dilators 11 cm 0.3 mm tips 00124</td>
 <td></td>
 <td>D-5a.2</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Jewellers Forceps 11cm angulated 00109</td>
 <td></td>
 <td>JFA-5b</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Jewellers Forceps 11 cm straight 00108</td>
 <td></td>
 <td>JF-5</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Acland Single Clamps B-1V (Pair)</td>
 <td></td>
 <td>396</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Scissors Round Handles 15 cm Straight</td>
 <td></td>
 <td>67</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Iris Scissors 11.5 cm Curves EASY-CUT</td>
 <td></td>
 <td>EA7613-11</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Mayo Scissors 14 cm Straight Chamfered Blades EASY-CUT</td>
 <td></td>
 <td>EA7652-14</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Derf Needle Holders 12 cm TC</td>
 <td></td>
 <td>703DE12</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Ethilon 5-0</td>
 <td></td>
 <td>W1618</td>
 <td><a href="http://www.farlamedical.co.uk/" target="_blank">http://www.farlamedical.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vicryl rapide 6-0</td>
 <td></td>
 <td>W9913</td>
 <td><a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Instrapac - Adson Toothed Forceps (Extra Fine)</td>
 <td></td>
 <td>7973</td>
 <td><a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Castroviejo needle holders</td>
 <td></td>
 <td>12565-14</td>
 <td><a href="http://s-and-t.ne" target="_blank">http://s-and-t.ne</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Heat Lamp</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.chicken-house.co.uk" target="_blank">http://www.chicken-house.co.uk</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Silicone sheeting 0.3 mm translucent</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.silex.co.uk/" target="_blank">http://www.silex.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Image J software</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Zeiss OPMI pico</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.zeiss.co.uk/" target="_blank">http://www.zeiss.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Operating microscope</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vet tech solution isofluorane rig</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vet tech solution isofluorane rig</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td>
 </tr>
 </tbody>
</table>

in situ transverse rectus abdominis myocutaneous flap: a rat model of myocutaneous ischemia reperfusion injury

Ücretsiz doku transferi yerel seçenekler ya da bu gerektiren kompozit doku için uygun olmayan karmaşık hataları onarmak için rekonstrüktif cerrahi altın standarttır. Iskemi reperfüzyon hasarı (IRI) kısmi serbest flep başarısızlık bilinen bir nedenidir ve etkili bir tedavi vardır. Bu yaralanma bir laboratuvar modeli kurulması pahalı kanıtlayabilirim hem maddi büyük memeliler geleneksel bu işlemlerin teknik zorluk genellikle deneyimli bir microsurgeon istihdam gerektirir tarafından kullanılan ve uzmanlık gereklidir gibi. Bu yayın ve video mikrocerrahi uzmanlık gerektirmez sıçanlarda IRI bir modelinin etkin kullanımını göstermektedir. Bu işlem atravmatik kelepçeler bu ameliyatı ile ilişkili iskemi-reperfüzyon hasarı üretmek için kullanılmaktadır enine abdominis kas deri (TRAM) flep in situ modelinde bir olduğunu. Bir lazer Doppler Görüntüleme (LDI) tarayıcı flep perfüzyon ve görüntü işleme softwa değerlendirmek için kullanılıryeniden, yaralanma birincil sonuç ölçütü olarak yüzde alanı cilt hayatta değerlendirmek için Resim J.

Sıçan modelleri büyük hayvanların modellere göre daha ekonomiktir, 36 doğada hastalığa dayanıklı ve genetik olarak manipüle edilebilir. Kemirgenler gibi gevşek derili hayvan, böyle insan ve domuz gibi sabit tenli hayvanlara kıyasla deri kan akımı farklı bir düzenleme var düşünüldü. Gevşek derili Hayvanlarda, deri aksine örten deri (Şekil 4) deri altı yağ geçerek doğrudan deri kan damarları tarafından öncelikle verilir, sabit derili hayvan altta yatan kasları...

Watch this Scientific Journal Video about In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury at JoVE.com

In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

Ücretsiz doku transferi yaygın olarak onkolojik rezeksiyon ve travma sonrası form ve fonksiyon geri rekonstrüktif cerrahide kullanılmaktadır. Ameliyat öncesi bu doku ön hazırlık sonucu iyileştirebilir. Bu makalede, bir açıklar<em&gt; In situ</emÖn koşullandırma stratejileri test etmek için bir araç olarak sıçanlarda&gt; enine rektus abdominis kas deri flebi (TRAM).

Miyokutanöz İskemi Reperfüzyon Hasarı Rat Modeli: in situ Enine Rektus abdominis kas deri Flap

Free tissue transfer is the gold standard of reconstructive surgery to repair complex defects not amenable to local options or those requiring composite ...

in-situ-transverse-rectus-abdominis-myocutaneous-flap-rat-model

Research

JoVE Journal

Medicine

In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

13.7K Görüntüleme.  Royal Infirmary of Edinburgh. Ücretsiz doku transferi yaygın olarak onkolojik rezeksiyon ve travma sonrası form ve fonksiyon geri rekonstrüktif cerrahide kullanılmaktadır. Ameliyat öncesi bu doku ön hazırlık sonucu iyileştirebilir. Bu makalede, bir açıklar In situ enine rektus abdominis kas deri flebi (TRAM).

Video: In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

Normothermic Cardiac Arrest and Cardiopulmonary Resuscitation: A Mouse Model of Ischemia-Reperfusion Injury

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused by whole-body hypoperfusion.5,6 Successful reproduction of whole-body hypoperfusion in rodent models has been fraught with 
difficulty.7-9,9,10 Models which employ focal ischemia have repeatedly demonstrated results which do not translate to the clinical setting, and larger 
animal models which allow for whole body hypoperfusion lack access to the full toolset of genetic manipulation possible in the mouse.11,12 However, in recent 
years a mouse model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation has emerged which can be adapted to model AKI.13 This model reliably reproduces 
physiologic, functional, anatomic, and histologic outcomes seen in clinical AKI, is rapidly repeatable, and offers all of the significant advantages of a murine surgical 
model, including access to genetic manipulative techniques, low cost relative to large animals, and ease of use. Our group has developed extensive experience 
with use of this model to assess a number of organ-specific outcomes in AKI.14,15

A powerful model for perioperative and critical care related acute kidney injury is presented. Using whole body hypoperfusion induced by cardiac arrest it is possible to nearly replicate the histologic and functional changes of clinical AKI.

Normotermik Kardiyak Arrest ve Kardiyopulmoner Resusitasyon: İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

Tıp

Ischemia-reperfusion Model of Acute Kidney Injury and Post Injury Fibrosis in Mice

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often unreported mortality rates that may confound analyses. Bilateral renal pedicle clamping is commonly used to induce IR-AKI, but differences between effective clamp pressures and/or renal responses to ischemia between kidneys often lead to more variable results. In addition, shorter clamp times are known to induce more variable tubular injury, and while mice undergoing bilateral injury with longer clamp times develop more consistent tubular injury, they often die within the first 3 days after injury due to severe renal insufficiency. To improve post-injury survival and obtain more consistent and predictable results, we have developed two models of unilateral ischemia-reperfusion injury followed by contralateral nephrectomy. Both surgeries are performed using a dorsal approach, reducing surgical stress resulting from ventral laparotomy, commonly used for mouse IR-AKI surgeries. For induction of moderate injury BALB/c mice undergo unilateral clamping of the renal pedicle for 26 min and also undergo simultaneous contralateral nephrectomy. Using this approach, 50-60% of mice develop moderate AKI 24 hr after injury but 90-100% of mice survive. To induce more severe AKI, BALB/c mice undergo renal pedicle clamping for 30 min followed by contralateral nephrectomy 8 days after injury. This allows functional assessment of renal recovery after injury with 90-100% survival. Early post-injury tubular damage as well as post injury fibrosis are highly consistent using this model.

We describe models of moderate and severe ischemia-reperfusion-induced kidney injury in which the mice undergo unilateral renal pedicle clamping followed by simultaneous or delayed contralateral nephrectomy, respectively. These models consistently give rise to renal dysfunction and post-injury fibrosis, but injury severity and survival are dependent on mouse background, age and surgical equipment.

Farelerde Akut Böbrek Hasarı ve Post Yaralanma Fibrozis iskemi-reperfüzyon Model

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often ...

Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for myocardial infarction and cardiac complications of thoracic surgery. The ability of certain drugs to precondition the myocardium against ischemia reperfusion injury has led to multiple clinical trials, with little success. The isolated heart model allows acute observation of the functional effects of ischemia reperfusion injury in real time, including the effects of various pharmacological interventions administered at any time-point before or within the ischemia-reperfusion injury window. Since brief periods of ischemia can precondition the heart against ischemic injury, in situ aortic cannulation is performed to allow for functional assessment of non-preconditioned myocardium. A saline filled balloon is placed into the left ventricle to allow for real-time measurement of pressure generation. Ischemic injury is simulated by the cessation of perfusion buffer flow, followed by reperfusion. The duration of both ischemia and reperfusion can be modulated to examine biochemical events at any given time-point. Although the Langendorff isolated heart model does not allow for the consideration of systemic events affecting ischemia and reperfusion, it is an excellent model for the examination of acute functional and biochemical events within the window of ischemia reperfusion injury as well as the effect of pharmacological intervention on cardiac pre- and postconditioning. The goal of this protocol is to demonstrate how to perform in situ aortic cannulation and heart excision followed by ischemia/reperfusion injury in the Langendorff model.

The isolated rat heart is an enduring model for ischemia reperfusion injury. Here, we describe the process of harvesting the beating heart from a rat via in situ aortic cannulation, Langendorff perfusion of the heart, simulated ischemia-reperfusion injury, and infarct staining to confirm the extent of ischemic insult.

Langendorff-perfüze sıçan Hearts indüksiyon ve İskemi-reperfüzyon Hasarı Değerlendirilmesi

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for ...

Murine Model of Intestinal Ischemia-reperfusion Injury

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, hypotension, necrotizing enterocolitis, bowel transplantation, trauma and chronic inflammation. Intestinal ischemia-reperfusion (IR) injury is a consequence of acute mesenteric ischemia, caused by inadequate blood flow through the mesenteric vessels, resulting in intestinal damage. Reperfusion following ischemia can further exacerbate damage of the intestine. The mechanisms of IR injury are complex and poorly understood. Therefore, experimental small animal models are critical for understanding the pathophysiology of IR injury and the development of novel therapies.
Here we describe a mouse model of acute intestinal IR injury that provides reproducible injury of the small intestine without mortality. This is achieved by inducing ischemia in the region of the distal ileum by temporally occluding the peripheral and terminal collateral branches of the superior mesenteric artery for 60 min using microvascular clips. Reperfusion for 1 hr, or 2 hr after injury results in reproducible injury of the intestine examined by histological analysis. Proper position of the microvascular clips is critical for the procedure. Therefore the video clip provides a detailed visual step-by-step description of this technique. This model of intestinal IR injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Here we describe the detailed procedure of intestinal ischemia-reperfusion in mice which results in reproducible injury without mortality to encourage the standardization of this technique across the field. This model of intestinal ischemia-reperfusion injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Bağırsak İskemi-reperfüzyon Hasarı Murin Modeli

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, ...

A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, diabetic retinopathy, and retinal vascular occlusions. Rodent models of I/R injury are providing significant insights into mechanisms and treatment strategies for human I/R injury, especially with regard to neurodegenerative damage in the retinal neurovascular unit. Presented here is a protocol for inducing retinal I/R injury in mice through elevation of intraocular pressure (IOP). In this protocol, the ocular anterior chamber is cannulated with a needle, through which flows the drip of an elevated saline reservoir. Using this drip to raise IOP above systolic arterial blood pressure, a practitioner temporarily halts inner retinal blood flow (ischemia). When circulation is reinstated (reperfusion) by removal of the cannula, severe cellular damage ensues, resulting ultimately in retinal neurodegeneration. Recent studies demonstrate inflammation, vascular permeability, and capillary degeneration as additional elements of this model. Compared to alternative retinal I/R methodologies, such as retinal arterial ligation, retinal I/R injury by elevated IOP offers advantages in its&#160;anatomical specificity, experimental tractability, and technical accessibility, presenting itself as a valuable tool for examining neuronal pathogenesis and therapy in the retinal neurovascular unit.

This article describes a procedure for inducing retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure in mice. Retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure serves to model human pathologies characterized by compromised oxygen and nutrient delivery in the retina, enabling researchers to examine potential cellular mechanisms and treatments for human diseases of the retinal neurovascular unit.

Göz İçi Basıncı Yükselmesi ile Retina İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, ...

Evaluation of Coronary Flow Reserve After Myocardial Ischemia Reperfusion in Rats

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via recanalization of the coronary artery is the most effective strategy for reducing the size of ischemic myocardium. The coronary microvasculature cannot be visualized and imaged&#160;in vivo, but there are several invasive and noninvasive techniques that can be used to assess parameters which depend directly on coronary microvascular function. The endothelial function after ischemia reperfusion can be assessed also at the level of the coronary circulation via the coronary flow reserve (CFR).&#160;In this study, peak velocity of left anterior descending (LAD) coronary arteries was measured in rats in vivo via Transthoracic Doppler Echocardiography during resting and stress challenge (induced by Dobutamine). A normal heart can increase its coronary blood flow up to four times above the resting values during stress induction. Following ischemia reperfusion, we found a significantly diminished CFR, which can be used as a marker of coronary microvascular dysfunction. CFR has opened a window on the importance of microvascular dysfunction and has been shown to predict cardiovascular risk independent of whether the severe obstructive disease is present.

Coronary flow reserve (CFR), is defined as the ratio of maximal coronary blood flow to the resting coronary blood flow. We present a protocol for evaluating CFR in rats via ultrasound, which offers the opportunity to predict cardiovascular risk factors in the absence of obstructive coronary disease.

Farelerde miyokardiyal Iskemi reperfüzyon sonrası koroner akış rezervi değerlendirilmesi

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via ...

Modified Heterotopic Hindlimb Osteomyocutaneous Flap Model in the Rat for Translational Vascularized Composite Allotransplantation Research

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand and face transplants and, more recently, abdominal wall, uterus, and urogenital transplants. Functional outcomes have exceeded initial expectations, and most recipients enjoy an improved quality of life. However, as clinical experience accumulates, chronic rejection and complications from the immunosuppression must be addressed. In many cases where grafts have failed, the causative pathology has been ischemic vasculopathy. <span style="font-size: 11pt; line-height: 115%; font-family: Arial, sans-serif; color: rgb(41, 43, 49); background-image: initial; background-position: initial; background-size: initial; background-repeat: initial; background-attachment: initial; background-origin: initial; background-clip: initial;">The biological mechanisms of the acute and chronic rejection associated with VCA, especially ischemic vasculopathy, are important areas of research. However, due to the very small number of VCA patients, the evaluation of proposed mechanisms is better addressed in an experimental model. Multiple groups have used animal models to address some of the relevant unsolved questions in VCA rejection and vasculopathy. Several model designs involving a variety of species are described in the literature. Here we present a reproducible model of VCA heterotopic hindlimb osteomyocutaneous flap in the rat that can be utilized for translational VCA research. This model allows for the serial evaluation of the graft, including biopsies and different imaging modalities, while maintaining a low level of morbidity.

Vascularized composite allograft offers life-altering benefits to transplant recipients, but the biological causes of graft rejection and vasculopathy remain poorly understood. The rodent surgical model presented here offers a reproducible, clinically relevant model of transplantation, allowing researchers to evaluate rejection events and potential therapeutic strategies to prevent their occurrence.

Translasyonel vaskülarize kompozit allotransplantasyon araştırmaları için Rat 'ta değiştirilmiş heterotopik Hindekstremite Osteomokutanöz Flap modeli

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand ...

A Pre-clinical Rat Model for the Study of Ischemia-reperfusion Injury in Reconstructive Microsurgery

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many areas of biomedical research due to its cost-effectiveness and its translation to humans. This protocol describes a method to create a preclinical free skin flap model in rats with ischemia-reperfusion injury. The described 3 cm x 6 cm rat free skin flap model is easily obtained after the placement of several vascular ligatures and the section of the vascular pedicle. Then, 8 h after the ischemic insult and completion of the microsurgical anastomosis, the free skin flap develops the tissue damage. These ischemia-reperfusion injury-related damages can be studied in this model, making it a suitable model for evaluating therapeutic agents to address this pathophysiological process. Furthermore, two main monitoring techniques are described in the protocol for the assessment of this animal model: transit-time ultrasound technology and laser speckle contrast analysis.

Here, we describe a pre-clinical animal model for studying the pathophysiology of ischemia-reperfusion injury in reconstructive microsurgery. This free skin flap model based on the superficial caudal epigastric vessels in the rat may also allow for the evaluation of different therapies and compounds to counteract ischemia-reperfusion injury-related damage.

Rekonstrüktif Mikrocerrahide İskemi-Reperfüzyon Hasarı Nın İnceleştirilmesinde Klinik Öncesi Sıçan Modeli

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many ...

Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, cardiac stem cell therapy is studied by delivering SCs concurrently with the induction of myocardial injury. However, this approach presents two significant limitations: the early hostile pro-inflammatory ischemic environment may affect the survival of transplanted SCs, and it does not represent the subacute infarction scenario where SCs will likely be used. Here we describe a two-part series of surgical procedures for the induction of ischemia-reperfusion injury and delivery of mesenchymal stem cells (MSCs). This method of stem cell administration may allow for the longer viability and retention around damaged tissue by circumventing the initial immune response. A model of ischemia reperfusion injury was induced in mice accompanied by the delivery of mesenchymal stem cells (3.0 x 105), stably expressing the reporter gene firefly luciferase under the constitutively expressed CMV promoter, intramyocardially 7 days later. The animals were imaged via ultrasound and bioluminescent imaging for confirmation of injury and injection of cells, respectively. Importantly, there was no added complication rate when performing this two-procedure approach for SC delivery. This method of stem cell administration, collectively with the utilization of state-of-the-art reporter genes, may allow for the in vivo study of viability and retention of transplanted SCs in a situation of chronic ischemia commonly seen clinically, while also circumventing the initial pro-inflammatory response. In summary, we established a protocol for the delayed delivery of stem cells into the myocardium, which can be used as a potential new approach in promoting regeneration of the damaged tissue.

Stems cells are continuously investigated as potential treatments for individuals with myocardial damage, however, their decreased viability and retention within injured tissue can impact their long-term efficacy. In this manuscript we describe an alternative method for stem cell delivery in a murine model of ischemia reperfusion injury.

Bir Murine Modelinde İskemi Reperfüzyon Yaralanması Sonrası Kök Hücrelerin Gecikmiş İntramiyokardiyal Teslimi

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, ...

Organ Ischemia-Reperfusion Injury by Simulating Hemodynamic Changes in Rat Liver Transplant Model

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, including ischemia-reperfusion injury (IRI) of extrahepatic organs. This model requires numerous experiments and devices. The duration of anhepatic phase is closely related to the time to develop IRI after transplantation. In this experiment, we used hemodynamic changes to induce extrahepatic organ damage in rats and determined the maximum tolerance time. The time until the most severe organ injury varied for different organs. This method can easily be replicated and can also be used to study IRI of the extrahepatic organs after liver transplantation.

This paper provides a detailed description of how to build an animal model of the anhepatic phase (liver ischemia) in rats to facilitate basic research into ischemia-reperfusion injury after liver transplantation.

Sıçan Karaciğer Nakli Modelinde Hemodinamik Değişiklikleri Simüle Ederek Organ İskemi-Reperfüzyon Yaralanması

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, ...