The authors would like to acknowledge funding support from the University of South Florida, Department of Surgery (Mack Wu, MD, PhD).

NOT: Aşağıda sunulan tüm hayvan prosedürleri için onay Güney Florida&#39;nın Hayvan Bakım Komitesi (IACUC) Üniversitesi elde ve Hayvan Refahı Yasası ve Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım Kılavuzu için tüm gereksinimleri uymak edildi. Silikon Levha ve Cerrahi Aletler 1. Hazırlık <ol><li> Hazır kesilmiş şeritler ve (10.5 cm x 3.0 cm) 0.01 kalınlığında, tıbbi silikon çarşaf olmayan takviyeli ve bir otoklav kullanarak sterilize. </li><li> Temizleyin ve (ameliyat sırasında steril bir alan oluşturmak için makas, forseps ve perdeler veya havlu) uygun cerrahi aletler sterilize. </li></ol> 2. Deney Hayvanları <ol><li> Yetişkin erkek veya ticari bir yetiştiriciden edilen 250-350 g aralığında ağırlığındaki dişi farelerin kullanın. Yaşlı sıçan kullanıldı, bunlar daha iyi hayatta kalma ameliyat sonrasında olmak üzere ≥350 gram olması gerekmektedir. Herhangi bir deney başlamadan önce en az seyahati hayvanlar alışmalarıYemek ve su ad libitum ile 12 saatlik bir ışık-karanlık döngüsü standart koşullar altında 7 gün. </li></ol> 3. Anestezi, preoperatif Analjezi ve Operatif Hazırlık <ol><li> Indüksiyon odasında aracılığıyla% 3 -4% izofluran ile genel anestezi øndükle ve cilt hazırlığı ve ameliyat sırasında O 2 ile% 1 (bir burun konisi kullanımı yoluyla) -2% korumak. Oranı ve solunum, interdijital tutam veya palpebral kırpma refleksinin derinliği gözlem yoluyla anestezi derinliği izleyin. NOT: Şu anda, bir veteriner merhem hayvan anestezi altında iken kuruluğu önlemek için göze yerleştirilebilir. </li><li> Steril cerrahi alanında bir konum uzak, yüzüstü pozisyonda sıçan yerleştirin ve aşağı boyun yaklaşık 11 cm tabanından kesme makineleri ile dorsumuna tıraş. Kalıcı bir kalem ile Stencil, 3,0 cm x 10,5 cm flep için anahat (Şekil 1A bakınız). </li><li> Temiz, belirlenen Surgica sıçan taşıonaylanmış bir ısıtma yastığı ve steril cerrahi örtüler ya da havlu ile donatılmış l alanı. Ağrı yönetimi için ilk cerrahi kesiler 5 mg / kg Ketoprofen deri önce enjekte. Gerektiğinde ek sıvıların (tuzlu su), deri altından (5 cc) verilebilir. </li><li> Steril bir alan oluşturmak için steril örtüler uygulamak, sonra,% 70 izopropil alkol ve% 0.2 klorheksidin ile ikinci ilk sürüntü daha da cildi hazırlayın. % 10 povidon-iyodin (Betadinede) de kullanılabilir. NOT: antibiyotik (15 mg / kg ampisilin) ​​deri altından tatbik edilebilir, ama iyi aseptik teknikler kullanılır ise, bu gerekli değildir. </li></ol> 4. Hastaya yaralar ve bipediküllü Kanatçığını oluşturma <ol><li> Steril, tek kullanımlık 6 mm biyopsi yumruk aracını kullanarak, belirlenen flep alanı (Şekil 1B) merkezinde iki dairesel &quot;iskemik&quot; yaraları oluşturun. Yaranın derinliği (değil aracılığıyla) panniculus Carno altında yatan fasya olmalıdırsus kas (Şekil 1B ek). </li><li> Forseps punch biyopsi tarafından oluşturulan yara anahat ortasında cilt kaldırın ve daha sonra (panniculus carnosus kas dahil) doku dairesel parça çıkarılması için (kavisli ipuçları) iris makas kullanın. Sonuç yara üs olarak fasya ile yara tam kalınlıkta olacak. Not: eksize edilen doku (yara fişler) sıvı azot içinde dondurulmuş ya da kontrol olarak, daha sonra işlemci, normal bir cilt için 10% tamponlu formalin O / N sabit ek bileşeni olabilir. </li><li> Ayrı uzunluğu 10,5 cm ve 3.0 cm önceden çizgilerle (Şekil 1C) boyunca iskemik yaraların her bir yanı üzerinde, steril bir bisturi ile insizyon yaparak bipediküllü kanatçık oluşturur. kesiler derinliği aşağı paraspinöz kaslara olmalıdır. Iris makas kullanarak, (6 mm yumruklar &quot;üs&quot; olarak sağlam fasya tutmak için dikkatli olmak, paraspinöz kaslarının F panniculus carnosus fasya ayrıigure 1D). </li><li> 1 steril önceden kesilmiş silikon levha alın ve panniculus carnosus fasya ve levha toka veya kat etmediğini sağlanması paraspinöz kasların (Şekil 1E) arasına yerleştirmek. Siyah, emilemeyen sütürler (boyut 4.0) kullanılarak flep (Şekil 1F ve 1G) uzunluğu boyunca, her iki tarafta en az 8 kesintiye dikiş ile cilt silikon tabakanın demirleme her iki kesiler kapatın. </li><li> Steril, tek kullanımlık biyopsi yumruk aracını kullanarak, 1 cm flep (Şekil 1G) her iki tarafında iskemik yaralara yanal (panniculus carnosus kasının ön fasya aşağı) iki iç kontrol &quot;non-iskemik&quot; yaraları oluşturun. </li><li> Yaralar altında bir cetvel yerleştirin ve yara ölçüm amaçları (Şekil 3A bakınız) dijital fotoğraf çekmek. Bu zamanda, kan akışı (perfüzyon) lazer Doppler ya da yapılan diğer manipülasyonlar (topikal ilaç yerleştirme) kullanılması ile izlenir.</li><li> Kranial ve kaudal yaralara ve nemli ve (steril) temiz yara ortamı tutmak için soyunma şeffaf bir film hem de onaylı bir sıvı yapıştırıcı uygulayın. Ek soyunma en kaudal sütür kaldırmasını hayvan önlemek için flep kaudal ucunda yerleştirilebilir. </li></ol> 5. Post-operatif Prosedürleri <ol><li> Besleyici karşı sürtünme gelen cerrahi siteyi önleyecek şekilde sığ besleyiciler ile donatılmış kafeslere (tek başına ev sahipliği) hayvanları yerleştirin. Hayvanlar katılımsız sol ya da sternum yatma korumak ve maksatlı hareket sergilemek için yeterli bilince yeniden kadar diğer hayvanların şirkete iade edilmemelidir. Isıtma paspaslar kurtarma sırasında en fazla 2 gün kafesin yarısı altına alınmalıdır. </li><li> Operasyon sonrası ağrı yönetmek için, en fazla 48 saat sonrası ameliyat için ertesi sabah ve günde 1x hayvanlara deri altından Ketoprofen (5 mg / kg) yönetmek. Hayvanlar ayrıca, her gün izlenmelidirağrı, kilo kaybı veya cerrahi alan infeksiyonlarının uzun işaretler. </li></ol> 6. sonraki Yara Ölçümleri ve Soyunma Değişiklikler <ol><li> Indüksiyon odasında aracılığıyla% 3 izofluran kullanarak genel anestezi altında sık sık -4% iskemik ve non-iskemik yaraları ölçün ve adım 3.1 gibi O 2 ile% 1 -2% (a burun konisi yoluyla) yapılmaktadır. </li><li> Yapıştırıcıyı deriden çekmeyin olarak yavaşça soyunma çıkarın. Ek dijital fotoğraf yara ölçümleri için alınan bu anda, topikal tedaviler yeniden uygulanan lazer Doppler görüntüleme (LDI) veya araştırmacının ihtiyaçlarını karşılamak üzere yapılan diğer manipülasyonlar. </li><li> Yapışkan ve temiz bir pansuman uygulayın ve hayvan adım 5.1 olarak kurtarmak için izin verir. </li></ol> 7. Yara Toplama ve Ötenazi <ol><li> Hayvan bir ind üzerinden% 3 -4% izofluran kullanarak genel anestezi altında iken Hasat iskemik ve non-iskemik yaralar (günlerde araştırmacı uygun gördüğü)uction bölmesi ve adım 3.1 olarak O 2 ile% 1-% 2 (a burun konisi ile) korunur. </li><li> Bir neşter kullanarak, yaranın etrafındaki sağlıklı dokuların dahil yaranın etrafında bir kare şekilli eksizyon yapmak. 1.5 ml eksizyon yerleştirin başlıklı bir tüp içerisinde ek ve gelecekteki moleküler analiz için (-80 ° C&#39;de saklayın) sıvı azot içinde dondurularak bileşenini veya histolojik inceleme için oda sıcaklığında% 10 tamponlu formalin O&#39;da / N inkübe edin. NOT: yara eksizyon da analiz için daha fazla örnek sağlamak için yarıya olabilir. </li><li> Yara doku çıkarıldıktan sonra, CO 2 inhalasyon onaylanmış yöntemi kullanarak hayvan euthanize. </li></ol>

<ol>
	<li>Ansell, D. M., Holden, K. A., Hardman, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+wound+repair:+Are+they+cutting+it.">Animal models of wound repair: Are they cutting it.</a> Experimental dermatology. 21 (8), 581-585 (2012).</li><li>Dorsett-Martin, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rat+models+of+skin+wound+healing:+a+review.">Rat models of skin wound healing: a review.</a> Wound repair and regeneration : official publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 12 (6), 591-599 (2003).</li><li>Davidson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+for+wound+repair.">Animal models for wound repair.</a> Arch Dermatol Res. 290 (S1-11), (1998).</li><li>Finn, G., Magnus, S. A., Tonny, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Models+for+use+in+wound+healing+research:+A+survey+focusing+on+in+vitro+and+in+vivo+adult+soft+tissue).">Models for use in wound healing research: A survey focusing on in vitro and in vivo adult soft tissue).</a> Wound Repair and Regeneration. 8, (2000).</li><li>Gould, L. J., Leong, M., Sonstein, J., Wilson, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimization+and+validation+of+an+ischemic+wound+model.">Optimization and validation of an ischemic wound model.</a> Wound repair and regeneration : official publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 13 (6), 576-582 (2004).</li><li>Loots, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differences+in+cellular+infiltrate+and+extracellular+matrix+of+chronic+diabetic+and+venous+ulcers+versus+acute+wounds.">Differences in cellular infiltrate and extracellular matrix of chronic diabetic and venous ulcers versus acute wounds.</a> The Journal of investigative dermatology. 111 (5), 850-857 (1998).</li><li>Schwartz, D. A., Lindblad, W. J., Rees, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Altered+collagen+metabolism+and+delayed+healing+in+a+novel+model+of+ischemic+wounds.">Altered collagen metabolism and delayed healing in a novel model of ischemic wounds.</a> Wound Repair Regen. 3 (2), 204-212 (1995).</li><li>Chen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+and+mechanistic+validation+of+delayed+healing+rat+wounds+as+a+model+for+human+chronic+wounds.">Molecular and mechanistic validation of delayed healing rat wounds as a model for human chronic wounds.</a> Wound Repair and Regeneration. 7, (1999).</li><li>Zhang, Q., Chang, Q., Cox, R. A., Gong, X., Gould, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hyperbaric+oxygen+attenuates+apoptosis+and+decreases+inflammation+in+an+ischemic+wound+model.">Hyperbaric oxygen attenuates apoptosis and decreases inflammation in an ischemic wound model.</a> The Journal of investigative dermatology. 128 (8), 2102-2112 (2008).</li><li>Zhang, Q., Gould, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hyperbaric+oxygen+reduces+matrix+metalloproteinases+in+ischemic+wounds+through+a+redox-dependent+mechanism.">Hyperbaric oxygen reduces matrix metalloproteinases in ischemic wounds through a redox-dependent mechanism.</a> The Journal of investigative dermatology. 134 (1), 237-246 (2013).</li><li>Moor, A. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Consequences+of+age+on+ischemic+wound+healing+in+rats:+altered+antioxidant+activity+and+delayed+wound+closure.">Consequences of age on ischemic wound healing in rats: altered antioxidant activity and delayed wound closure.</a> Age (Dordrecht, Netherlands). 36 (2), 733-748 (2014).</li><li>Roy, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+a+preclinical+model+of+chronic+ischemic+wound).">Characterization of a preclinical model of chronic ischemic wound).</a> Physiological genomics. 37 (3), 211-224 (2009).</li><li>Biswas, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypoxia+inducible+microRNA+210+attenuates+keratinocyte+proliferation+and+impairs+closure+in+a+murine+model+of+ischemic+wounds.">Hypoxia inducible microRNA 210 attenuates keratinocyte proliferation and impairs closure in a murine model of ischemic wounds.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (15), 6976-6981 (2010).</li><li>Winocour, S., Vorstenbosch, J., Trzeciak, A., Lessard, L., Philip, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD109,+a+novel+TGF-beta+antagonist,+decreases+fibrotic+responses+in+a+hypoxic+wound+model.">CD109, a novel TGF-beta antagonist, decreases fibrotic responses in a hypoxic wound model.</a> Exp Dermatol. 23 (7), 475-479 (2014).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

<html> Sıçanlarda yara iyileşmesi nedeniyle genellikle enfekte yaralar ve interanimal değişkenlik 5 yüksek oranda iyileşmek için kendi yeteneklerine tartışma konusu olmuştur. Gelişimi sırasında modelin orijinal hedeflerinden biri bu varyasyonu azaltmak oldu. Belirli yerleştirme ile yaraların sayısını azaltarak kanadın genişliği Değişiklikler, silikon levha ve giriş (tutarlı kranyokaudal konumu ile kapağın merkezli) Bu hedefe gerçekleştirmiştir. Daralma Yara iyileşmesi de insanla...

Etkili ilaç geliştirme ve diğer yara iyileştirici terapötik insan tedavilere 1 hayvan modellerinde bulguları çevirisinde bilinen sorunlara rağmen, in vivo modellerde uygun gerektirir. Aşağıda mekanizmaları patolojik yara iyileşmesi daha anlayış araştırmak için iskemik deri yara iyileşmesi bir sıçan modelinde kullanımı için detaylı bir protokol bir açıklama. fare türleri, genellikle geniş kullanılabilirliği, boyuta bağlı olarak kullanılan ve kesik ve eksizyon yaralama, görüntüleme ve doku toplanması 2 için uygun bir deri alanı sağlamak için yeterince büyük olduğu uysal yapısı yara iyileşmesi çalışmaları için kullanılır. Ancak sıçanlar, gevşek derili hayvanlar ifade edilen ile, fare ve insan cilt anatomik farklı dikkatli dikkate alınmalıdır. Bu farklı karakteristik sıçan derisi kapanış w ölçüde katkıda yerine epitelizasyona çok yara kasılması sağlarbileşiklerdir 2. Buna ek olarak, sıçanlarda deri altından istemsiz kas carnosus varlığı, hem de daralma ve kolajen oluşumunda 3,4 ile iyileşmeye katkıda bulunur. Bunlar çok önemli anatomik farklar sıçan iskemik deri yara modelinin geliştirilmesi dikkate alınmıştır ve belirli değişiklikler yara daralma azaltmak ve panniculus carnosus kas 5 etkisini azaltmak için uygulanmıştır. Diyabetik ayak ülserleri, venöz bacak ülseri ve basınç ülserlerinde, şifa gecikir ve bu yaralar, kronik olarak kabul edilir. yaralar yara onarımı 6 sonraki aşamalarında dönüşmesini engeller yara aşırı enflamasyon ile karakterize edilir. Kronik yara gelişiminde en önemli faktörlerden biri iltihabı temizlemek için yetersizlik katkıda lokalize doku iskemisi (düşük kan akışı) 5&#39;tir. Bu model, 2003-4 yılında (geliştirilmiş ve valide ediliyordu sırasında zaman), Yara yatağında, normal yara iyileşmesi sırasında önemli bir aşama ve bu modeli 5 geliştirilmesi için motivasyon anjiyogenez indüksiyonu test etmek için yeterli doku sağlayabilir standart bir hayvan modelleri vardı. Burada sunulan modeli Chen ve arkadaşları tarafından değiştirilmiş bir biçimde kullanılan orijinal Schwartz ve diğerleri., 7 ve daha sonra tarif edilen iskemik yara modeli bir değişiklik, adı geçen. 8 Modifiye iskemik yara modelinde değişiklikler yerine epitelizasyona daha kasılması ile şifa yol sıçan yukarıda belirtilen anatomik özelliklerini aşmak için yapılmıştır: (1) İki tam kalınlıkta eksizyonel yaralar bir bipediküllü dorsal deri flebi ve içinde oluşturulan panniculus carnosus kas sadece kas fasya üzerinde diseksiyon ile yara yatağı çıkarılır. (2) kapağı kendisi t orta noktasında yer alan daha dar bir kan temini rastgele sağlamak boyutları ve yaralar vardırO flep iskemik bulunmaktadır. (3) silikon tabaka, alt dokularla kanadın readherence ve reperfüzyon önlenmesi, dalgalanmanın altına sokulur. Yara daralma ankraj veya silikon tabaka 5 kapağı dikilerek (elimine değil) sınırlıdır. Model son zamanlarda yaşlı sıçanlarda 11 karşı genç iskemik yara iyileşmesi için 9,10 şifa iskemik yara üzerinde hiperbarik oksijen etkileri arasında değişen çalışmalarda kullanılmıştır ve uzun süreli doku iskemi güvenilir bir model olarak kanıtlanmıştır. bipediküllü flep boyutları da domuz 12 ve fareler olmak üzere ve diğer türler, (3,0-3,5 cm genişliğinde 10.5 cm uzunluğunda) ve F344 sıçanlarda (2 cm genişliğinde 11 cm uzunluğunda) Sprague Dawley sıçan dahil olmak üzere farklı suşları, adapte edilmiş 13,14. Bu video iskemik deri yara modeli gösteriye F344 doğuştan sıçan gerginlik kullanır. Aşağıda sunulan tüm hayvan prosedürleri için onay almak olduGüney Florida Hayvan Bakım Komitesi (IACUC) Üniversitesi ed ve Hayvan Refahı Yasası ve Bakım Kılavuzu ve Laboratuvar Hayvanları Kullanım tüm gereksinimleri uymak.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="605">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:103px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:216px;">Sil-Tec medical grade sheeting</td>
			<td style="width:103px;">Technical Products Inc.</td>
			<td style="width:119px;">500-3</td>
			<td>nonreinforced, 0.01 inches in thickness</td>
		</tr>
		<tr height="61">
			<td height="61" style="height:61px;width:216px;">Mini Iris scissors, 8cm, curved, SS</td>
			<td style="width:103px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:119px;">#503671</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Ethilon Nylon Sutures</td>
			<td style="width:103px;">Ethicon</td>
			<td style="width:119px;">1964G</td>
			<td>black, size 4.0, PC-3 16mm needles (3/8 circle)</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:216px;">Laser Doppler Imager</td>
			<td style="width:103px;">Moor Instruments</td>
			<td style="width:119px;">moorLDI2-IR</td>
			<td>Standard blood flow imager: http://us.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">ImageJ</td>
			<td style="width:103px;">NIH</td>
			<td style="width:119px;">free download</td>
			<td>http://rsb.info.nih.gov/ij/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Mastisol</td>
			<td style="width:103px;">Henry Schein</td>
			<td style="width:119px;">Cat # 7289210</td>
			<td>Fisher Scientific NC9774929</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:216px;">Tegaderm</td>
			<td style="width:103px;">Medical Specialties&#160;</td>
			<td style="width:119px;">3M1624W</td>
			<td>Fisher Scientific NC9922128</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

demonstration of the rat ischemic skin wound model

İnsanlarda kronik yaralar için eğilimi gibi bağlı hareketsizlik diyabet ve bozulmuş kardiyovasküler fonksiyonu, ve bası gibi yaşlanma, hastalık durumlarında artar. Hayvan modelleri, kronik yaraların karmaşıklığı anlayışını ileri götürmek amacıyla bu koşulları taklit etmek için bu girişimi geliştirilmiştir. Burada açıklanan model, iskemik hale gelir ve kronik yara fenotipi (indirgenmiş vaskülarizasyon, artmış enflamasyon ve gecikmiş yara kapatma) benzer yaralarda elde edilen kan akımının uzun bir azalma sağlayan bir fare iskemik flep modelidir. Bu kontroller olarak flep ile yanal merkezi olarak yerleştirilmiş 2 iskemik yara ve 2 iskemik olmayan yaralar bir bipediküllü dorsal flep oluşur. Bu iskemik deri flep modeli bir roman ilave bir bariyer ve revaskülarizasyon önlemek ve yaralar iyileşecek gibi daralmayı azaltmak için bir atel olarak işlev flep altına silikon tabakanın yerleştirilmesidir. Rağmennedeniyle insanlara kıyasla oldukça farklı anatomik ve fizyolojik farklılıklar çalışmalar yara iyileşmesi için sıçanları kullanarak tartışma (yani, bir panniculus carnosus kas, kısa ömrü varlığı, saç köklerinin sayısı artmış, ve enfekte yaralar iyileşecek onların yeteneği) Bu modelde kullanılan modifikasyonlar daha önce geliştirilen iskemik flep modelleri için değerli bir alternatif yapmak.

verimli yapıldığı takdirde sıçan iskemik yara iyileşmesi modeli protokol hayvan başına yaklaşık 20 dakika sürer. Önce bir Şekil 1G temsil gibi görünmelidir modeli soyunma uygulanması. Bu bipediküllü flep ve yaralar içinde iskemik olduğunu doğrulamak için önemli olacaktır. Yaraların düzeyinde Subkutan oksijen basıncı (PSCO 2) iki iskemik yaralarda arasındaki deri altı dokuda bir polarografik elektrot yerleştirerek bu modelin 5 doğrulama sırasında ?...

Watch this Scientific Journal Video about Demonstration of the Rat Ischemic Skin Wound Model at JoVE.com

Demonstration of the Rat Ischemic Skin Wound Model

sıçan nedeniyle onun büyüklüğü, kullanılabilirlik ve oldukça uysal davranış, yıllardır bir araştırma modeli olarak kullanılmıştır. Bu protokolün amacı, kronik yaraların patofizyolojisi değerli bilgiler sağlamak için bir iskemik deri yara iyileşmesi modeli olarak sıçan kullanmaktır.

Sıçan İskemik Cilt Yara Modeli Gösteri

The propensity for chronic wounds in humans increases with ageing, disease conditions such as diabetes and impaired cardiovascular function, and ...

demonstration-of-the-rat-ischemic-skin-wound-model

Research

JoVE Journal

Medicine

21.1K Görüntüleme.  University of South Florida.  sıçan nedeniyle onun büyüklüğü, kullanılabilirlik ve oldukça uysal davranış, yıllardır bir araştırma modeli olarak kullanılmıştır. Bu protokolün amacı, kronik yaraların patofizyolojisi değerli bilgiler sağlamak için bir iskemik deri yara iyileşmesi modeli olarak sıçan kullanmaktır. 

Video: Demonstration of the Rat Ischemic Skin Wound Model

Accurate and Simple Measurement of the Pro-inflammatory Cytokine IL-1&beta; using a Whole Blood Stimulation Assay

Inflammatory processes resulting from the secretion of soluble mediators by immune cells, lead to various manifestations in skin, joints and other tissues as well as altered cytokine homeostasis. The innate immune system plays a crucial role in recognizing pathogens and other endogenous danger stimuli. One of the major cytokines released by innate immune cells is Interleukin (IL)-1. Therefore, we utilize a whole blood stimulation assay in order to measure the secretion of inflammatory cytokines and specifically of the pro-inflammatory cytokine IL-1&beta; 1, 2, 3.
Patients with genetic dysfunctions of the innate immune system causing autoinflammatory syndromes show an exaggerated release of mature IL-1&beta; upon stimulation with LPS alone. In order to evaluate the innate immune component of patients who present with inflammatory-associated pathologies, we use a specific immunoassay to detect cellular immune responses to pathogen-associated molecular patterns (PAMPs), such as the gram-negative bacterial endotoxin, lipopolysaccharide (LPS). These PAMPs are recognized by pathogen recognition receptors (PRRs), which are found on the cells of the innate immune system 4, 5, 6, 7. A primary signal, LPS, in conjunction with a secondary signal, ATP, is necessary for the activation of the inflammasome, a multiprotein complex that processes pro-IL-1&beta; to its mature, bioactive form 4, 5, 6, 8, 9, 10.
The whole blood assay requires minimal sample manipulation to assess cytokine production when compared to other methods that require labor intensive isolation and culturing of specific cell populations. This method differs from other whole blood stimulation assays; rather than diluting samples with a ratio of RPMI media, we perform a white blood cell count directly from diluted whole blood and therefore, stimulate a known number of white blood cells in culture 2. The results of this particular whole blood assay demonstrate a novel technique useful in elucidating patient cohorts presenting with autoinflammatory pathophysiologies.

Accurate and Simple Measurement of the Pro-inflammatory Cytokine IL-1&amp;#946; using a Whole Blood Stimulation Assay

We describe a simple immunoassay to measure the production of pro-inflammatory cytokines, such as IL-1 beta production, in patients presenting with autoinflammatory phenotypes. By activating cells in whole blood cultures with pathogen-associated molecular patterns, specifically with lipopolysaccharide, cytokine secretion can be conveniently evaluated in whole blood supernatants.

Tam Kan Stimülasyon Testi kullanarak Pro-inflamatuar sitokin IL-1β Doğru ve Basit Ölçme

Inflammatory processes resulting from the secretion of soluble mediators by immune cells, lead to various manifestations in skin, joints and other tissues ...

Tıp

A Simplified Technique for Producing an Ischemic Wound Model

One major obstacle in current diabetic wound research is a lack of an ischemic wound model that can be safely used in diabetic animals. Drugs that work well in non-ischemic wounds may not work in human diabetic wounds because vasculopathy is one major factor that hinders healing of these wounds. We published an article in 2007 describing a rabbit ear ischemic wound model created by a minimally invasive surgical technique. Since then, we have further simplified the procedure for easier operation. On one ear, three small skin incisions were made on the vascular pedicles, 1-2 cm from the ear base. The central artery was ligated and cut along with the nerve. The whole cranial bundle was cut and ligated, leaving only the caudal branch intact. A circumferential subcutaneous tunnel was made through the incisions, to cut subcutaneous tissues, muscles, nerves, and small vessels. The other ear was used as a non-ischemic control. Four wounds were made on the ventral side of each ear. This technique produces 4 ischemic wounds and 4 non-ischemic wounds in one animal for paired comparisons. After surgery, the ischemic ear was cool and cyanotic, and showed reduced movement and a lack of pulse in the ear artery. Skin temperature of the ischemic ear was 1-10 &deg;C lower than that on the normal ear and this difference was maintained for more than one month. Ear tissue high-energy phosphate contents were lower in the ischemic ear than the control ear. Wound healing times were longer in the ischemic ear than in the non-ischemic ear when the same treatment was used. The technique has now been used on more than 80 rabbits in which 23 were diabetic (diabetes time ranging from 2 weeks to 2 years). No single rabbit has developed any surgical complications such as bleeding, infection, or rupture in the skin incisions. The model has many advantages, such as little skin disruption, longer ischemic time, and higher success rate, when compared to many other models. It can be safely used in animals with reduced resistance, and can also be modified to meet different testing requirements.

We have developed a minimally invasive technique to create a rabbit ischemic ear wound model by dividing the central artery and nerve and the cranial neurovascular bundle. A subcutaneous tunnel then cuts all subcutaneous tissues. This procedure causes minimal skin disruption and can be safely used in diabetic animals.

Bir İskemik Yara Model üretmek için Basitleştirilmiş Tekniği

One major obstacle in current diabetic wound research is a lack of an ischemic wound model that can be safely used in diabetic animals. Drugs that work ...

Endothelin-1 Induced Middle Cerebral Artery Occlusion Model for Ischemic Stroke with Laser Doppler Flowmetry Guidance in Rat

Stroke is the number one cause of disability and third leading cause of death in the world, costing an estimated $70 billion in the United States in 20091, 2. Several models of cerebral ischemia have been developed to mimic the human condition of stroke. It has been suggested that up to 80% of all strokes result from ischemic damage in the middle cerebral artery (MCA) area3. In the early 1990s, endothelin-1 (ET-1) 4 was used to induce ischemia by applying it directly adjacent to the surface of the MCA after craniotomy. Later, this model was modified 5 by using a stereotaxic injection of ET-1 adjacent to the MCA to produce focal cerebral ischemia. The main advantages of this model include the ability to perform the procedure quickly, the ability to control artery constriction by altering the dose of ET-1 delivered, no need to manipulate the extracranial vessels supplying blood to the brain as well as gradual reperfusion rates that more closely mimics the reperfusion in humans5-7. On the other hand, the ET-1 model has disadvantages that include the need for a craniotomy, as well as higher variability in stroke volume8. This variability can be reduced with the use of laser Doppler flowmetry (LDF) to verify cerebral ischemia during ET-1 infusion. Factors that affect stroke variability include precision of infusion and the batch of the ET-1 used6. Another important consideration is that although reperfusion is a common occurrence in human stroke, the duration of occlusion for ET-1 induced MCAO may not closely mimic that of human stroke where many patients have partial reperfusion over a period of hours to days following occlusion9, 10. This protocol will describe in detail the ET-1 induced MCAO model for ischemic stroke in rats. It will also draw attention to special considerations and potential drawbacks throughout the procedure.

Several animal models of cerebral ischemia have been developed to simulate the human condition of stroke. This protocol describes the endothelin-1 (ET-1) induced middle cerebral artery occlusion (MCAO) model for ischemic stroke in rats. In addition, important considerations, advantages, and shortcomings of this model are discussed.

Rat Lazer Doppler Flowmetri Rehberlik ile İskemik İnme için Endotelin-1 Bağlı Orta Serebral Arter Tıkanıklığı Modeli

Stroke is the number one cause of disability and third leading cause of death in the world, costing an estimated $70 billion in the United States in ...

Angiogenesis in the Ischemic Rat Lung

The adult lung is perfused by both the systemic bronchial artery and the entire venous return flowing through the pulmonary arteries. In most lung pathologies, it is the smaller systemic vasculature that responds to a need for enhanced lung perfusion and shows robust neovascularization. Pulmonary vascular ischemia induced by pulmonary artery obstruction has been shown to result in rapid systemic arterial angiogenesis in man as well as in several animal models. Although the histologic assessment of the time course of bronchial artery proliferation in rats was carefully described by Weibel 1, mechanisms responsible for this organized growth of new vessels are not clear. We provide surgical details of inducing left pulmonary artery ischemia in the rat that leads to bronchial neovascularization. Quantification of the extent of angiogenesis presents an additional challenge due to the presence of the two vascular beds within the lung. Methods to determine functional angiogenesis based on labeled microsphere injections are provided.

The lung is perfused by both the systemic bronchial artery and pulmonary arteries. In most lung pathologies, it is the smaller systemic vasculature that shows robust neovascularization. Cessation of pulmonary blood flow promotes brisk bronchial angiogenesis. We provide surgical details of inducing left pulmonary artery ischemia that promotes bronchial neovascularization.

İskemik Sıçan Akciğer Angiogenezis

The  adult lung is perfused by both the systemic bronchial artery and the entire  venous return flowing through the pulmonary arteries. In most lung ...

Murine Model of Wound Healing

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. Impaired wound healing, which occurs in diabetic patients for example, can lead to severe unfavorable outcomes such as amputation. There is, therefore, an increasing impetus to develop novel agents that promote wound repair. The testing of these has been limited to large animal models such as swine, which are often impractical. Mice represent the ideal preclinical model, as they are economical and amenable to genetic manipulation, which allows for mechanistic investigation. However, wound healing in a mouse is fundamentally different to that of humans as it primarily occurs via contraction. Our murine model overcomes this by incorporating a splint around the wound. By splinting the wound, the repair process is then dependent on epithelialization, cellular proliferation and angiogenesis, which closely mirror the biological processes of human wound healing. Whilst requiring consistency and care, this murine model does not involve complicated surgical techniques and allows for the robust testing of promising agents that may, for example, promote angiogenesis or inhibit inflammation. Furthermore, each mouse acts as its own control as two wounds are prepared, enabling the application of both the test compound and the vehicle control on the same animal. In conclusion, we demonstrate a practical, easy-to-learn, and robust model of wound healing, which is comparable to that of humans.

A murine model of cutaneous wound healing that can be used to assess therapeutic compounds in physiological and pathophysiological settings.

Yara Şifa murin Modeli

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. ...

Ischemic Tissue Injury in the Dorsal Skinfold Chamber of the Mouse: A Skin Flap Model to Investigate Acute Persistent Ischemia

Despite profound expertise and advanced surgical techniques, ischemia-induced complications ranging from wound breakdown to extensive tissue necrosis are still occurring, particularly in reconstructive flap surgery. Multiple experimental flap models have been developed to analyze underlying causes and mechanisms and to investigate treatment strategies to prevent ischemic complications. The limiting factor of most models is the lacking possibility to directly and repetitively visualize microvascular architecture and hemodynamics. The goal of the protocol was to present a well-established mouse model affiliating these before mentioned lacking elements. Harder et al. have developed a model of a musculocutaneous flap with a random perfusion pattern that undergoes acute persistent ischemia and results in ~50% necrosis after 10 days if kept untreated. With the aid of intravital epi-fluorescence microscopy, this chamber model allows repetitive visualization of morphology and hemodynamics in different regions of interest over time. Associated processes such as apoptosis, inflammation, microvascular leakage and angiogenesis can be investigated and correlated to immunohistochemical and molecular protein assays. To date, the model has proven feasibility and reproducibility in several published experimental studies investigating the effect of pre-, peri- and postconditioning of ischemically challenged tissue.

The window of the murine dorsal skinfold chamber presented visualizes a zone of acute persistent ischemia of a musculocutaneous flap. Intravital epi-fluorescence microscopy permits for direct and repetitive assessment of the microvasculature and quantification of hemodynamics. Morphologic and hemodynamic results can further be correlated with histological and molecular analyses.

Mouse Dorsal Skinfold Odası&#39;nda İskemik Doku Yaralanması: Bir Cilt Flap Model Akut Kalıcı iskemisi Araştırma

Despite profound expertise and advanced surgical techniques, ischemia-induced complications ranging from wound breakdown to extensive tissue necrosis are ...

A Mouse Fetal Skin Model of Scarless Wound Repair

Early in utero, but not in postnatal life, cutaneous wounds undergo regeneration and heal without formation of a scar. Scarless fetal wound healing occurs across species but is age dependent. The transition from a scarless to scarring phenotype occurs in the third trimester of pregnancy in humans and around embryonic day 18 (E18) in mice. However, this varies with the size of the wound with larger defects generating a scar at an earlier gestational age. The emergence of lineage tracing and other genetic tools in the mouse has opened promising new avenues for investigation of fetal scarless wound healing. However, given the inherently high rates of morbidity and premature uterine contraction associated with fetal surgery, investigations of fetal scarless wound healing in vivo require a precise and reproducible surgical model. Here we detail a reliable model of fetal scarless wound healing in the dorsum of E16.5 (scarless) and E18.5 (scarring) mouse embryos.

During mammalian development, early gestational skin wounds heal without a scar. Here we detail a reliable and reproducible model of fetal scarless wound healing in the cutaneous dorsum of E16.5 (scarless) and E18.5 (scarring) mouse embryos.

Scarless Yara Repair Fare Fetal Cilt Modeli

Early in utero, but not in postnatal life, cutaneous wounds undergo regeneration and heal without formation of a scar. Scarless fetal wound healing occurs ...

Rat Model of Photochemically-Induced Posterior Ischemic Optic Neuropathy

Posterior Ischemic optic neuropathy (PION) is a sight-devastating disease in clinical practice. However, its pathogenesis and natural history have&#160;remained poorly understood. Recently, we developed a reliable, reproducible animal model of PION and tested the treatment effect of some neurotrophic factors in this model1. The purpose of this video is to demonstrate our photochemically induced model of posterior ischemic optic neuropathy, and to evaluate its effects with retrograde labeling of retinal ganglion cells. Following surgical exposure of the posterior optic nerve, a photosensitizing dye, erythrosin B, is intravenously injected and a laser beam is focused onto the optic nerve surface. Photochemical interaction of erythrosin B and the laser during irradiation damages the vascular endothelium, prompting microvascular occlusion mediated by platelet thrombosis and edematous compression. The resulting ischemic injury yields a gradual but pronounced retinal ganglion cell dieback, owing to a loss of axonal input - a remote, injury-induced and clinically relevant outcome. Thus, this model provides a novel platform to study the pathophysiologic course of PION,&#160;and can be further optimized for testing therapeutic approaches for optic neuropathies as well as other CNS ischemic diseases.

The goal of this protocol is to photochemically induce ischemic injury to the posterior optic nerve in rat. This model is critical to studies of the pathophysiology of posterior ischemic optic neuropathy, and therapeutic approaches for this and other optic neuropathies, as well as of other CNS ischemic diseases.

Fotokimyasal Bağlı Posterior İskemik Optik Nöropati Rat Modeli

Posterior Ischemic optic neuropathy (PION) is a sight-devastating disease in clinical practice. However, its pathogenesis and natural history ...

A Piglet Model of Neonatal Hypoxic-Ischemic Encephalopathy

Birth asphyxia, which causes hypoxic-ischemic encephalopathy (HIE), accounts for 0.66 million deaths worldwide each year, about a quarter of the world&#8217;s 2.9 million neonatal deaths. Animal models of HIE have contributed to the understanding of the pathophysiology in HIE, and have highlighted the dynamic process that occur in brain injury due to perinatal asphyxia. Thus, animal studies have suggested a time-window for post-insult treatment strategies. Hypothermia has been tested as a treatment for HIE in pdiglet models and subsequently proven effective in clinical trials. Variations of the model have been applied in the study of adjunctive neuroprotective methods and piglet studies of xenon and melatonin have led to clinical phase I and II trials1,2. The piglet HIE model is further used for neonatal resuscitation- and hemodynamic studies as well as in investigations of cerebral hypoxia on a cellular level. However, it is a technically challenging model and variations in the protocol may result in either too mild or too severe brain injury. In this article, we demonstrate the technical procedures necessary for establishing a stable piglet model of neonatal HIE. First, the newborn piglet (&#60; 24 hr old, median weight 1500 g) is anesthetized, intubated, and monitored in a setup comparable to that found in a neonatal intensive care unit. Global hypoxia-ischemia is induced by lowering the inspiratory oxygen fraction to achieve global hypoxia, ischemia through hypotension and a flat trace amplitude integrated EEG (aEEG) indicative of cerebral hypoxia. Survival is promoted by adjusting oxygenation according to the aEEG response and blood pressure. Brain injury is quantified by histopathology and magnetic resonance imaging after 72 hr.

Hypoxic-ischemic encephalopathy following perinatal asphyxia can be studied using animal models. We demonstrate the procedures necessary for establishing a piglet model of neonatal hypoxic-ischemic encephalopathy.

Yenidoğan Hipoksik-İskemik Ensefalopati A Piglet Modeli

Birth asphyxia, which causes hypoxic-ischemic encephalopathy (HIE), accounts for 0.66 million deaths worldwide each year, about a quarter of the ...

The Rodent Model of Nonarteritic Anterior Ischemic Optic Neuropathy (rNAION)

Nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy (NAION) is a focal ischemic lesion of the optic nerve that affects 1/700 individuals throughout their lifetime. NAION results in optic nerve edema, selective loss of the retinal ganglion cell neurons (RGCs) and atrophy of the optic nerve. A rodent model of NAION that expresses most NAION features and sequelae has been developed, which is applicable to both rats and mice. This model utilizes a focal laser application of 532 nm wavelength to illuminate a photoactive dye, Rose Bengal (RB), to cause capillary damage and leakage at the targeted anterior optic nerve (the laminar region). After rNAION induction, there is an early optic nerve ischemia, optic nerve edema, and intraneural inflammation, followed by selective RGC and axonal loss. Since the optic nerve is a CNS white matter tract, the rNAION model is applicable to mechanistic studies of selective white matter ischemia, as well as neuroprotective analyses and short and long-term mechanisms of glial and neuronal response to ischemia.

The Rodent Model of Nonarteritic Anterior Ischemic Optic Neuropathy rNAION

The following report describes how to replicate the rodent model of nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy (rNAION), using the appropriate dye, contact lens and laser parameters. We also reveal the appropriate steps for evaluating the rNAION lesion in vivo.

Nonarteritik Anterior İskemik Optik Nöropati Kemirgen Modeli (rNAION)

Nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy (NAION) is a focal ischemic lesion of the optic nerve that affects 1/700 individuals throughout their ...