Yazarlar destek ve geribildirim için Olivier Manches, Ph.D., Davor Frleta, Ph.D., ve Meagan O&#39;Brien, MD kabul etmek istiyorum. Bu araştırma, Alerji ve Enfeksiyon Hastalıkları Ulusal Enstitüsü tarafından desteklenen ve NIH Sağlık-İlgili Araştırma (AI089030) ve RO1&#39;e (AI081848 Diversity Destekleme Bireysel predoctoral Bursu (F31) için Ruth L. Kirschstein Ulusal Araştırma Hizmet Ödülü hibe fon ile tamamlandı .)

Etik Açıklama: Araştırma örnekleri alındı ​​ve bağış onayı ile araştırma için saklanır. Tüm numuneler kodlu veya kullanım öncesinde anonim olmalıdır. Bu protokol bizim Kurumsal Değerlendirme Kurulu kuralları takip eder. 1.. Monosit türevli dendritik hücreler içine İnsan periferal kan monositleri Türevi. Not: İnsan ince beyaz kat insan periferik kan hücrelerinden (PBMC&#39;ler) kaynağı olarak hizmet etmek ve New York Blood Center (New York, NY) elde edilmiştir. Kan bağışçıların sağlıklı gönüllüler. 5 günlük bir süreci, doku kültürü üzerine insan periferal kan tek-çekirdekli hücreleri (PBMC) ve kaplama ile başlar 35,36 şişeleri. Yayınlanmış protokoller dikkate değer farklılıklar aşağıdaki gibidir: <ol><li> 10 cm polistiren doku kültürü plaka şişesi başına 2x10 8 PBMC&#39;lerin toplam uymak yerine bir filtre kapağı ile 225 cm 2 apirojen polistiren doku kültürü şişeleri kullanıns (58 cm 2) (aşama 1) hazırlandı. </li><li> % 5 toplanmış insan serumu (PHS, 30 mi) ile ortam hazırlanması 500 ml RPMI-1640 + L-glutamin, 5 ml 1 M HEPES tamponu ve 1.4 mi 50 mg / ml Gentamisin (% 5 PHS media) ve ardından filtrasyonu yoluyla 20 mcM Filtre. 50 mi% 5 PHS ortamı 225 cm başına 2 doku kültürü şişesi içinde, toplam ekleyin. </li><li> 25 ml taze RPMI-1640 ile yapıştırılır hücreleri üç kez yıkayın. Her bir yıkama sırasında 5 saniye boyunca kuvvetli bir şekilde çalkalanır ve yapışkan olmayan hücreler (aşama 4) aspire. </li><li> Günün PBMC&#39;ler ilk Aşama kaplama olarak 100 IU / ml, 0, 2, bir şişeye (aşama 3) GM-CSF, ve 4. Gün 0, 400 IU / ml IL-4 ve 380 ul 190 ul ekle tanımlanmaktadır 1 (Aşama 8). </li><li> 6 1x10 hücre / ml (aşama 15) &#39;lik bir konsantrasyonda Harvest gün 5 moDCs. </li><li> Onların dinlenme durumunda derhal moDCs kullanın. Adımlar 17-22 yapılmaktadır asla. Not: Numuneler en iyi sonuçlar için en kısa sürede toplandıktan sonra işlenmelidir. </li><li> Bir konsantrasyonda tümbölen moDCs2x10 5 hücre tion / oyuk, 96 gözlü yuvarlak dipli levha (western blot, ELISA, FACS) ya da bir poli-L-lisin muamele chamberslide (mikroskopisi) üzerine deney için de (1x10 6 hücre / ml 200 ul / kuyucuk) . Not: Tamamen uyarılmamış (negatif kontrol) aktivasyonu takip yalnızca, sadece aktivasyonu ve emişli astar,: En az 4 koşullar vardır. Koşullar istenirse seyreltici R848 için kontroller ve nigericin kapsayacak şekilde genişletilebilir. Alt deney ICS ise, çiftleri izotip kontrolleri için gereklidir. </li></ol> . 2. Inflammasome Astar - Sinyal 1 <ol><li> Üreticinin talimatlarına uygun olarak DMSO içinde liyofilize R848 sulandırın. RPMI-1640 ile, oda sıcaklığında çalışma stokları seyreltin. </li><li> 18 saat uygun gözlerine, 10 uM nihai konsantrasyonda R848 ekleyin. Sıra 37 ° C&#39;de bir inkübatör içinde hücre ve% 5 CO2. </li></ol> 3 NLRP3 Inflammasome etkinleştirme -. Sinyal2 <ol><li> Üreticinin talimatlarına uygun olarak etanol içinde liyofilize nigericin sulandırın. Uygun koşullara eklemeden önce RPMI-1640 ile, oda sıcaklığında çalışan stok seyreltin. </li><li> 20 uM son konsantrasyonda nigericin ilave edin ve 37 ° C&#39;de kuluçka makinesine geri dönün ve% 5 CO2 6 saat karıştırıldı. Resim yıkama basamağı, astar ile aktivasyonu sırasında ortaya çıkar. Not: IL-1β salgılanması A, monensin, dinitrofenol, ya da karbonil siyanür klorofenilhidrazon 37, 38 Brefeldin, kalsiyum ionofor varlığı ile artar. IL-1β salgılanmasını değiştirecektir Başlangıcı inflammasome hazırlanmasını veya aktivitesi analiz, bu nedenle, bu salgılama inhibitörlerinin eklenmesi tavsiye edilmez. </li></ol> 4. IL-1ß Örnek Toplama <ol><li> 3 dakika boyunca 974 x g hücreleri ve süpernatantlar ile plaka santrifüjleyin. </li><li> Hücre topaklarını bozmadan süpernatan aspire ve şu şekilde aktarmakkolay kurulum yuvarlak süpernatanlarından sitokin salgılanmasını ölçmek üzere plakayı dipli. Not: Yüzer maddeler geçici olarak -20 ° C&#39;de muhafaza edilebilir veya -80, uzun süreli depolama için ° C. </li><li> Hücresel örneklerden herhangi bir hücre-dışı IL-1β çıkarmak için 3 dakika boyunca 974 x g &#39;de 1 x PBS içinde 200 ul hücre topaklar üç kez yıkayın. Not: 96 oyuklu bir plakadan hücre pelletleri yıkarken örnek rahatsız etmeyecek şekilde, bir toplama kutusu içine hızlı plakaların ters çevrilmesi ile yıkama çıkarın. </li></ol> 5.. Hücresel ve Supernatant Örneklerinden IL-1SS Ölçme <ol><li> Hücre içi Sitokin Boyama (ICS): ICS protokol 39, 40 aşağıda tarif edilmektedir. Not: alt tahlil mikroskobu ise, hücrelerin süspansiyonu yoktur. Bütün yıkamalar ve özlemleri (aşağı deneye bağlı) hücre tabakası / pelet bozmadan yapılmalıdır. <ol><li> Uygun kuyulara% 5 PHS ortam 100 ul ekle. EklemekUygun miktarda (yaklaşık olarak 1 μl/2x10 5 hücreleri ya da 1 ul / kuyucuk) floresan α-CD11c ve α-etiketli CD14 (fenotip belirteçleri, klon B-LY6 ve MφP9, sırasıyla) ve izotip kontrol olarak 10 dakika boyunca, hücrelere Karanlıkta RT. </li><li> 3 dakika boyunca 974 x g &#39;de 1 x üç kez PBS ile yıkayın. </li><li> Karanlıkta oda sıcaklığında 20 dakika boyunca% 4 PFA içinde 100 ul ekleyerek hücreleri sabitleyin. </li><li> Nokta Pause: 1x PBS içinde 4 ° CO / N 3 dakika ve mağaza için 974 xg 100 ul 1x PBS ile yıkayın. </li><li> 30 dakika boyunca hücreler permeabilizasyon tampon 100 ul ekleyin. Not: permeabilizasyon tampon maddesi% 0.3 Triton X-100 ile 1x PBS oluşur ve% 1 sığır serum albümini (BSA) nüfuziyet edilir. Aşağı tahlil mikroskopi olduğunda yapışık hücrelerin rahatsız etmeyin. </li><li> Uygun α-IL-1β-FITC hacmi (yaklaşık 62 ng antibody/2x10 5 hücreleri, yaklaşık 2.5 ya da ul / kuyucuk) (klon 8516) ya da ekleme için izotip kontrolü37 ° C&#39;de bir kuluçka makinesi içinde 2 hr </li><li> Karanlıkta 3 dakika boyunca 974 x g&#39;de permeabilizasyon tampon 200 ul hücreler üç kez yıkayın. </li><li> İsteğe bağlı: DAPI ile Leke, mountant eklemek ve bir cam slayt üstüne hafifçe lamel yerleştirin. Mikroskopi görüntüleri yakalamak önce, O / N tedavi mountant bekleyin. </li><li> FACS ya da mikroskop ile veri elde. Not: FACS veya mikroskopi ile analiz uygun lekelenmeye karşı her bir durum için izotipini karşılaştırın. <ol><li> FACs: Bir seferinde bir örnek edinin. MoDC nüfus pro-IL-1β boyanma analiz öncesi hücreler - CD11c&#39;nin + CD14 üzerinde yolluk ardından canlı hücreler üzerinde FSC / SSC kapısı ayarlayın. </li><li> Mikroskopi: pozitif boyama örneği kullanarak pozlama süresini ayarlayın - R848 tedavi. Pro-IL-1β ifade moDCs + yüzdesini belirlemek - DAPI + pro-IL-1β + ve DAPI + pro-IL-1β kullanın. </li></ol></li></ol></li><li> SDS-Page: Immunoblotting pro-IL-1β tespit etmek için gerçekleştirilir. Not: Aşağıda tarif edilen teknik standart immunoblotting tekniği, eğimli,% 4-20 poliakrilamit jel ve flüoresan veya kemilüminesan algılama 41, 42 bir araya getirir. <ol><li> Doğrudan lizis tamponu (5 ul hücre parçalama tamponu ile 1:01 inceltilir, ardından β-mercaptoethanol/950 ul Laemmli örnek tamponu) denatüre 10 ul Hücreleri,. 1.5 ml Eppendorf tüplerine lizat aktarın. </li><li> 100 ° C&#39;de 10 dakika boyunca kuru bir plaka ısı lisatı </li><li> Sıvı hacmi konsantre 1 dakika boyunca minisantrifüj üzerinde, 20800 x g lizat Spin. Pause noktası: Numuneler kısa süreli depolama için -20 ° C de dondurulabilir. </li><li> Poliakrilamid jel üzerine toplam hacmi yükleyin. Boyanın önü jelin alt kapalı çalışır kadar, yaklaşık 1 saat, ya da jel için kutusundan 140 V çalıştırın. </li><li> Bir PVDF Immobilon-FL Membr üzerine poliakrilamid jelinden protein transferBlok 100 V. Tris Tamponlu Salin içinde% 5 BSA ile membran /% 0.1 Tween-20 (TBS-T) 1 saat boyunca 90 dakika için ane. Not: PVDF Immobilon-FL floresan algılama ile kullanılmak için iyi mi. Diğer tespit teknikleri de arka plan sinyal oranını artırmak için farklı bir bileşime sahip bir zar tavsiye edilir. </li><li> % 5 BSA / TBS-T, 10 ml birincil ve ikincil antikorlar seyreltin. Çalkalarken 1 saat OS&#39;da çalkalanarak ve ikinci antikor ise 4 ° CO / N primer antikor inkübasyonlar yapın. </li><li> Primer ve sekonder antikor inkubasyon ve tekrar ikinci inkubasyon ve görüntüleme arasında var Çalkalarken 5 dakika boyunca TBS-T ile, membran 3 kez yıkayın. Not: Gruplar floresan veya kemilüminesan algılama kullanılarak tespit edilebilir. Tespiti için üreticinin yönergelerini izleyin. </li></ol></li><li> ELISA: depolama için dondurulur Örnekler analiz edilmeden önce oda sıcaklığına dengelenmesi gerekmektedir. Süpernatant CONDENS pekiştirmek için bir santrifüj örnekleri aşağı Spintirme. IL-1β ölçümü için üreticinin yönergelerini izleyin. Not: Bu protokol, IL-1β, özellikle ölçülür; Bununla birlikte, TNFa, IL-6 ve bağışıklık sitokin IL-10 aynı anda ölçüm, uygun koşullar prime edildi sağlar. </li></ol>

Yazarlar ifşa etmek Çıkar çatışması var.

Inflamatuvar sitokinler viral enfeksiyonla savaşmak için doğal ve adaptif immün yanıtı direksiyon ayrılmaz bir bütündür. Salgılanan IL-1β grip enfeksiyonu 3, 43, 44 boyunca artış gösterilmiştir. Bu sitokinler, insan dendritik hücrelerinde viral algılamalarına tepki olarak işlendikleri tarafından kesin mekanizmalar tam olarak anlaşılamamıştır. Miyeloid DC izolasyon kitleri pahalı ve zaman alıcıdır. İzolasyon kitleri ve FAC sıralama istemeden olabilir stres veya hücreleri aktive...

Doğuştan gelen bağışıklık sisteminin aktivasyonu, enfeksiyon, hastalık ve aşılama sırasında 7 adaptif bağışıklık tepkileri yönlendirmek için gereklidir. Dendritik hücreler doğuştan gelen bağışıklık sistemi hücreleri sunan en güçlü antijen; Bu antijenlerin alımından, lenf düğümlerine göç ve naif CD4 + ve CD8 + sitolitik T-hücrelerinin aktivasyonu, 8-10 için özel olan. Hızlı patojen algılamasını etkinleştirmek için doğuştan gelen bağışıklık sistemi korunmuş patojen kaynaklı motifleri veya hücre stres ve hasar ev sahibi türetilmiş işaretleri tanıması çok sayıda germlıne kodlanmış örüntü tanıma reseptörleri (PRR) kullanır. Reseptörler (TLR) Toll benzeri bazı dışı fagosite patojen ilişkili moleküler desenleri (PAMPs) ve tehlike ilişkili moleküler desenleri (DAMPS) tanımak membran bağlı örüntü tanıma reseptörleri vardır. Reseptörleri (NLR) gibi kontrast selam tarafından sitozolik ve PAMPs ve DAMPS çeşitli bir yelpazede cevap. Reseptörleri tekrar gibi Nodhücre yüzeyi ve endositik PRRS kaçmasına patojenlere karşı savunma ikinci bir çizgi mevcut. Elde edilen patojen ya da &quot;tehlike&quot; etkileşimi, ilişkili TLR ve NLR ligandlarla faktörler, diğer bağışıklık hücreleri ve T hücre ve doğal öldürücü hücre aktivasyonu 11 tanıtımı ile artmıştır DC etkileşim ile sonuçlanan DC olgunlaşmasının bir duruma yol açar. İnterlökin-1β enfeksiyona karşı konak savunmasının önemli bir bileşenidir. Bir mikroorganizma tanınması üzerine, son derece pro-enflamatuar sitokin IL-1β, salgılanan ve bir kemo cezbedici ve doğal ve adaptif bağışıklık hücrelerinin aktivatör olarak görev yapar. In vivo, IL-1β ateş ve enflamatuar sitokin da dahil olmak üzere, akut faz tepkisi boyunca büyük ölçüde sorumludur sentezi 12. En NLR ligand algılama, impo olan merkezi bir nükleotid bağlayıcı alan (NACHT) işlev olduğu düşünülen bir C terminali lösin açısından zengin tekrar içerir alanıNLRP3 oligomerizasyonu ve protein protein etkileşimleri ile alt hedef sinyal transdüksiyonunu aracılık eden bir N-terminal efektör alanı (NLRP3 in PYD) için rtant. NLRP3 protein en yoğun çalışılan inflammasome kompleksi tanımlamaktadır. Bu protein NLR ailesinin bir üyesidir ve NLRP3, (aynı zamanda ASC olarak da bilinir), adaptör protein PYCARD ve ICE müteşekkil bir çok moleküler protein kompleksi oluşturmak üzere yeteneğine sahiptir. Inflammasome aktivasyon üzerine PYCARD NLRP3 N-terminal etki bağlanır ve kaspaz aktivasyonu ve işe etki (KART) etki aracılığı ICE acemi. Interleukin-1 dönüştürücü enzim başlangıçta N-terminalinde bir kart motifi ihtiva eden bir zimogen olarak oluşturulur. İki ICE moleküller getirerek Inflammasome oluşumu sonuçları yeterince yakın kendi Otokatalitik aktivasyonunu uyarmak için. Inflammasome kompleksi sitokin olgunlaşması için sitoplazmik pro-IL-1β dönüştürmek için izin vererek, ICE yi aktive etmek için gereklidir. IL başarılı bir şekilde salgılanması-1β DC&#39;lerin iki farklı ve bağımsız tehlike sinyalleri algılama gerektirir. İlk olarak, PAMPs, DAMPS, veya sitokin sinyal (TNFa ya da IL-1β) içinde TLR algılama sitoplazmik pro-IL-1β protein ekspresyonunda bir artma olur. Bir ikinci, genellikle farklı sinyal ICE olgunlaşma üst inflammasome kompleks oluşumu için gereklidir. Uyarıcı sinyaller birkaç inflammasome bakteri zar gözenek (örneğin nigerisin gibi) oluşturulması toksinler (örneğin, monosodyum ürat kristaller, MSU gibi) lızozomal bozan kristalleri, hücre dışı ve ATP içerir. Bu farklı aktivatörler ile inflammasome aktivasyonu NLRP3 yol açan üst mekanizma açık değildir. Inflammasome oluşumu sinyalizasyon membasında araştıran çalışmalar böyle hipokalemi indüksiyon veya reaktif oksijen türlerinin (ROS) gibi hücre içi olayları, dolaylı inflammasome 13-28 aktive önerir. NLRP3 inflammasome farklı viral etkinleştiriciler arasında influenza b içerir, olupIL-1β salgılanması 3, 29-33 için gerekli olan birinci ve ikinci sinyal oth. Fare NLRP3 nakavt modeller kullanılarak bu DCler, IL-1β salgılama 32 NLRP3 bağlı olduğu bulunmuştur. Ayrıca, NLRP3 nakavt fareler enfeksiyon siteye az lökositlerin çekti ve daha yüksek mortalite 2, 5 yaşadı. İki yeni kağıtları İnfluenza virüsü enfeksiyonu sırasında NLRP3 inflammasome aktivasyonu için bir mekanizma öneririz; Birinci, ikinci sinyali takip sitoplazmik pro-IL-1β ekspresyonunu başlatmak için TLR7 veya TLR8 (yanıt veren hücrenin TLR ifade bağlı olarak) ya da başka TLR ile ortakçı bakteri algılama yoluyla viral RNA, NLRP3 aktivasyon tanınması yoluyla emişli trans Golgi ağı 33, 34 viral iyon kanal proteini M2 tarafından inflammasome oluşumu. İkinci aşamada, NLRP3 inflammasome tetiklenmesi hücre içi iyonik ortaya çıkması ile gerçekleştirilir &lt;em&gt; inflammasome oluşturmak için bir sinyal olarak NLPR3 tarafından hissedilen, basitçe, bir ROS üretimine yol açan ortam. Ancak, grip enfeksiyonu sırasında ICE aktivitesinin inflammasome aktivasyon membaında kesin mekanizması hala belirsizliğini koruyor. Bu çalışma, iyi ile inflammasome aktivasyonu takiben R848 ile TLR8 ligasyon yanıt olarak temel DC temel yolunun, IL-1β salgılama ve daha ileri araştırmalar için bir temel olarak kullanılabilir insan moDCs en NLRP3 inflammasome araştırılması için değerli bir yöntem açıklanır NLRP3 bilinen aktifleştirici nigericin. Bu yöntemin varyasyonları dahil olmak üzere, diğer hücre tipleri ile kullanılabilir, bunlarla sınırlı olmamakla birlikte: monositler, makrofajlar, diğer alt-DC ve epitel hücreleri.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1081px;" width="1081">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:179px;">Company</td>
			<td style="width:121px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:391px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">IL-4</td>
			<td style="width:179px;">R&#38;D</td>
			<td style="width:121px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:391px;">GM-CSF</td>
			<td style="width:179px;">Genzyme</td>
			<td style="width:121px;">NDC 58468-0180-2</td>
			<td>We acquire this item through our local pharmacy with a prescription</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">RPMI 1640 with L-glutamine</td>
			<td style="width:179px;">Cellgro</td>
			<td style="width:121px;">10-040-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Peripheral blood mononuclear cells</td>
			<td style="width:179px;">New York Blood Center</td>
			<td style="width:121px;"></td>
			<td>PBMCs were isolated from the blood of healthy donors</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">12-well tissue culture plates</td>
			<td style="width:179px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:121px;">3516</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">96-well round bottom tissue culture plates</td>
			<td style="width:179px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:121px;">3799</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">&#945;-IL-1&#946;-FITC</td>
			<td style="width:179px;">R&#38;D</td>
			<td style="width:121px;">IC201F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">FITC isotype control</td>
			<td style="width:179px;">Miltenyi Biotec</td>
			<td style="width:121px;">130-092-213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">&#945;-&#946;-Tubulin</td>
			<td style="width:179px;">Santa Cruz</td>
			<td style="width:121px;">SC-9014</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">&#945;-IL-1&#946;</td>
			<td style="width:179px;">R&#38;D</td>
			<td style="width:121px;">mab201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">PVDF Immobilon-FL membrane</td>
			<td style="width:179px;">Millipore</td>
			<td style="width:121px;">IPFL00010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">gradient 4-12 % polycrylamide gel</td>
			<td style="width:179px;">Bio Rad</td>
			<td style="width:121px;">161-1159</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">laemmli sample buffer</td>
			<td style="width:179px;">Bio Rad</td>
			<td style="width:121px;">161-0737</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">BSA</td>
			<td style="width:179px;">Equitech Bio Inc</td>
			<td style="width:121px;"></td>
			<td>30% solution sterile/filtered</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:391px;">PFA</td>
			<td style="width:179px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:121px;">15710</td>
			<td>16% solution</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">human inflammatory cytokine bead array kit</td>
			<td style="width:179px;">BD</td>
			<td style="width:121px;">551811</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">nigericin</td>
			<td style="width:179px;">Invivogen</td>
			<td>tlrl-nig</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">R848</td>
			<td>3M Corp.</td>
			<td style="width:121px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">&#945;-CD14</td>
			<td style="width:179px;">BD</td>
			<td style="width:121px;">340436</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">&#945;-CD11c</td>
			<td style="width:179px;">BD</td>
			<td style="width:121px;">555392</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">&#946;-mercaptoethanol</td>
			<td style="width:179px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td>M6250-10ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">TBS</td>
			<td style="width:179px;"></td>
			<td style="width:121px;"></td>
			<td>On site stock room</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Tween-20</td>
			<td style="width:179px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:121px;">P2287-100mL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;"><a>Nunc EasYFlask 225cm2, Filter Cap, 70mL working volume, 30/Cs</a></td>
			<td style="width:179px;">Thermo Scientific</td>
			<td style="width:121px;">159933</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">20 &#956;M Sterile Disposable Filter Units</td>
			<td style="width:179px;">Thermo Scientific</td>
			<td style="width:121px;">569-0020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Gentamicin</td>
			<td style="width:179px;">Invitrogen</td>
			<td>15750060</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Hepes</td>
			<td style="width:179px;">Invitrogen</td>
			<td>15630080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">goat &#945;-mouse IRDye 800CW</td>
			<td style="width:179px;">Licor</td>
			<td style="width:121px;">926-32210</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">donkey &#945;-rabbit IRDye 680RD</td>
			<td style="width:179px;">Licor</td>
			<td style="width:121px;">926-68073</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Spectra multicolor broad range protein ladder</td>
			<td style="width:179px;">Thermo Scientific</td>
			<td style="width:121px;">26634</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Tris Glycine SDS 10x</td>
			<td style="width:179px;">Bio Rad</td>
			<td style="width:121px;">1610732</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Tris Glycine 10x</td>
			<td style="width:179px;">Bio Rad</td>
			<td style="width:121px;">161-0734</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Methanol - 4L</td>
			<td style="width:179px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:121px;">A433P-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Prolong Gold antifade Reagent with DAPI</td>
			<td style="width:179px;">Life Technologies</td>
			<td>P-36931</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">8 chamber polystyrene vessel tissue culture treated glass slide</td>
			<td style="width:179px;">BD Falcon</td>
			<td style="width:121px;">354108</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:391px;">Poly-L-Lysine</td>
			<td style="width:179px;">Sigma</td>
			<td style="width:121px;">P4707</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

activation and measurement of nlrp3 inflammasome activity using il-1&#946; in human monocyte-derived dendritic cells

İnterlökin salgılanması (IL) elde edilen enflamatuar süreçler -1 bağışıklık hücreleri tarafından sitokin aile lokal ya da sistemik iltihaplanma, doku yeniden modelleme ve onarım ve virolojik kontrolü, 1, 2 yol açar. Interleukin-1β doğuştan gelen bağışıklık tepkisinin temel bir unsurudur ve inatçı enfeksiyon 1-5 kurulmasını önlerken istilacı patojenlere ortadan katkıda bulunur. Inflammasomes 1 dönüştürücü enzim (ICE veya Caspase-1), interlökin aktivasyonu için önemli bir sinyal bir platform bulunmaktadır. NLRP3 inflammasome IL-1β salgılanması 6 neden olmak için DH&#39;ler en az iki sahip sinyaller gerektirir. Pro-IL-1β protein sentezleme hücreleri dinlenme sınırlıdır; bu nedenle astar sinyal IL-1β transkripsiyonu ve protein ekspresyonu için gereklidir. Çoklu-protein NLRP3 inflammasome oluşumuna NLRP3 sonuçları tarafından algılanan ikinci bir sinyal. Sorumluluk gibi dendritik hücrelerin yeteneğiIL-1β salgılanması için gerekli sinyallerin d bakteriyel toksin olan NLRP3 inflammasome aktivasyonu takiben asal hücreleri dendritik hücreleri (moDCs) türetilmiş insan monosit TLR8 tarafından algılanan bir sentetik purin, R848, kullanılarak test edilebilir ve potasyum iyonofor, nigericin. Monosit türevi DH&#39;ler kolayca kültürde üretilmiş ve saflaştırılmış insan myeloid DCler önemli ölçüde daha fazla hücre sağlamaktadır. Bunun yerine elde edilen fare, DCler dolayısıyla insan hastalık ve enfeksiyon inflammasome çalışma sağlayan, in vitro insan kullandığı Burada sunulan yöntem, diğer inflammasome deneyleri farklıdır.

Bu teknikler R848 ile prime TLR8 ölçün. CD11c + moDCs - pro-IL-1β için hücre içi sitokin boyama CD14 mikroskopi ve FACs okumalar sağlar. Her iki teknik, bir astarlanmış olmayan ya da dinlenme, hücre kontrol hem de bir izotip kontrol (Şekiller 1 ve 2) göre belirlenebilir. Pro-IL-1β + lekeleme hücrelerinin yüzdesi ortalama floresan yoğunluğu (MFI) temin etmek üzere, bu nüfus geometrik medyan ile çarpılır. MFI pozitif boyanma hücrelerde mevcut pro-IL...

Watch this Scientific Journal Video about Activation and Measurement of NLRP3 Inflammasome Activity Using IL-1Î² in Human Monocyte-derived Dendritic Cells at JoVE.com

Activation and Measurement of NLRP3 Inflammasome Activity Using IL-1&amp;#946; in Human Monocyte-derived Dendritic Cells

Dendritik hücreler (DC&#39;ler) ile nigerisin ile birlikte NLRP3 inflammasome aktivasyonu takiben, sentetik purin, R848 ve TLR8 tanınması, tepki olarak IL-1β salgılar, bu nedenle, IL-1β NLRP3 inflammasome aktivitesini ölçmek için kullanılabilir. Hücre içi sitokin boyama, immunoblotting ve ELISA doğru IL-1β ekspresyonu üzerinden NLRP3 emişli inflammasome ve aktivasyonunu ölçmek için kullanılır.

Aktivasyon ve İnsan monosit türevli dendritik hücreler, IL-1β kullanarak NLRP3 Inflammasome Aktivitenin Ölçümü

Inflammatory processes resulting from the secretion of Interleukin (IL)-1 family cytokines by immune cells lead to local or systemic inflammation, tissue ...

activation-measurement-nlrp3-inflammasome-activity-using-il-1-human

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Activation and Measurement of NLRP3 Inflammasome Activity Using IL-1&#946; in Human Monocyte-derived Dendritic Cells

20.7K Görüntüleme.  New York University School of Medicine.  Dendritik hücreler (DC'ler) ile nigerisin ile birlikte NLRP3 inflammasome aktivasyonu takiben, sentetik purin, R848 ve TLR8 tanınması, tepki olarak IL-1β salgılar, bu nedenle, IL-1β NLRP3 inflammasome aktivitesini ölçmek için kullanılabilir. Hücre içi sitokin boyama, immunoblotting ve ELISA doğru IL-1β ekspresyonu üzerinden NLRP3 emişli inflammasome ve aktivasyonunu ölçmek için kullanılır. 

Video: Activation and Measurement of NLRP3 Inflammasome Activity Using IL-1&#946; in Human Monocyte-derived Dendritic Cells

Measurement of Factor V Activity in Human Plasma Using a Microplate Coagulation Assay

In response to injury, blood coagulation is activated and results in generation of the clotting protease, thrombin. Thrombin cleaves fibrinogen to fibrin which forms an insoluble clot that stops hemorrhage. Factor V (FV) in its activated form, FVa, is a critical cofactor for the protease FXa and accelerator of thrombin generation during fibrin clot formation as part of prothrombinase 1, 2. Manual FV assays have been described 3, 4, but they are time consuming and subjective. Automated FV assays have been reported 5-7, but the analyzer and reagents are expensive and generally provide only the clot time, not the rate and extent of fibrin formation. The microplate platform is preferred for measuring enzyme-catalyzed events because of convenience, time, cost, small volume, continuous monitoring, and high-throughput 8, 9. Microplate assays have been reported for clot lysis 10, platelet aggregation 11, and coagulation Factors 12, but not for FV activity in human plasma. The goal of the method was to develop a microplate assay that measures FV activity during fibrin formation in human plasma.
This novel microplate method outlines a simple, inexpensive, and rapid assay of FV activity in human plasma. The assay utilizes a kinetic microplate reader to monitor the absorbance change at 405nm during fibrin formation in human plasma (Figure 1) 13. The assay accurately measures the time, initial rate, and extent of fibrin clot formation. It requires only &mu;l quantities of plasma, is complete in 6 min, has high-throughput, is sensitive to 24-80pM FV, and measures the amount of unintentionally activated (1-stage activity) and thrombin-activated FV (2-stage activity) to obtain a complete assessment of its total functional activity (2-stage activity - 1-stage activity).
Disseminated intravascular coagulation (DIC) is an acquired coagulopathy that most often develops from pre-existing infections 14. DIC is associated with a poor prognosis and increases mortality above the pre-existing pathology 15. The assay was used to show that in 9 patients with DIC, the FV 1-stage, 2-stage, and total activities were decreased, on average, by 54%, 44%, and 42%, respectively, compared with normal pooled human reference plasma (NHP).
The FV microplate assay is easily adaptable to measure the activity of any coagulation factor. This assay will increase our understanding of FV biochemistry through a more accurate and complete measurement of its activity in research and clinical settings. This information will positively impact healthcare environments through earlier diagnosis and development of more effective treatments for coagulation disorders, such as DIC.

This study describes a novel microplate assay that measures FV coagulation activity during fibrin clot formation in human plasma which has not been reported previously. The method uses a kinetic microplate reader to continuously measure the change in absorbance at 405nm during fibrin clot formation in human plasma.

Bir Mikroplaka Pıhtılaşma Analiz Kullanarak İnsan Plazma Faktör V Aktivitenin Ölçümü

 In response to injury, blood coagulation is activated and results in generation of the clotting protease, thrombin. Thrombin cleaves fibrinogen to fibrin ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Characterization of Human Monocyte-derived Dendritic Cells by Imaging Flow Cytometry: A Comparison between Two Monocyte Isolation Protocols

Dendritic cells (DCs) are antigen presenting cells of the immune system that play a crucial role in lymphocyte responses, host defense mechanisms, and pathogenesis of inflammation. Isolation and study of DCs have been important in biological research because of their distinctive features. Although they are essential key mediators of the immune system, DCs are very rare in blood, accounting for approximately 0.1 - 1% of total blood mononuclear cells. Therefore, alternatives for isolation methods rely on the differentiation of DCs from monocytes isolated from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs). The utilization of proper isolation techniques that combine simplicity, affordability, high purity, and high yield of cells is imperative to consider. In the current study, two distinct methods for the generation of DCs will be compared. Monocytes were selected by adherence or negatively enriched using magnetic separation procedure followed by differentiation into DCs with IL-4 and GM-CSF. Monocyte and MDDC viability, proliferation, and phenotype were assessed using viability dyes, MTT assay, and CD11c/ CD14 surface marker analysis by imaging flow cytometry. Although the magnetic separation method yielded a significant higher percentage of monocytes with higher proliferative capacity when compared to the adhesion method, the findings have demonstrated the ability of both techniques to simultaneously generate monocytes that are capable of proliferating and differentiating into viable CD11c+ MDDCs after seven days in culture. Both methods yielded &gt; 70% CD11c+ MDDCs. Therefore, our results provide insights that contribute to the development of reliable methods for isolation and characterization of human DCs.

This study compares two different methods of human monocyte isolation for obtaining in vitro dendritic cells (DCs). Monocytes are selected by adherence or negatively enriched by magnetic separation. Monocyte yield and viability along with MDDC viability, proliferation and CD11c/CD14 surface marker expression will be compared between both methods.

Görüntüleme Sitometrisi ile İnsan Monosit türetilmiş dendritik hücrelerle Karakterizasyonu: İki Monosit İzolasyon Protokoller Arasında Bir Karşılaştırma

Dendritic cells (DCs) are antigen presenting cells of the immune system that play a crucial role in lymphocyte responses, host defense mechanisms, and ...

Generation of Human Monocyte-derived Dendritic Cells from Whole Blood

Dendritic cells (DCs) recognize foreign structures of different pathogens, such as viruses, bacteria, and fungi, via a variety of pattern recognition receptors (PRRs) expressed on their cell surface and thereby activate and regulate immunity. 
The major function of DCs is the induction of adaptive immunity in the lymph nodes by presenting antigens via MHC I and MHC II molecules to na&#239;ve T lymphocytes. Therefore, DCs have to migrate from the periphery to the lymph nodes after the recognition of pathogens at the sites of infection. For in vitro experiments or DC vaccination strategies, monocyte-derived DCs are routinely used. These cells show similarities in physiology, morphology, and function to conventional myeloid dendritic cells. They are generated by interleukin 4 (IL-4) and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) stimulation of monocytes isolated from healthy donors. Here, we demonstrate how monocytes are isolated and stimulated from anti-coagulated human blood after peripheral blood mononuclear cell (PBMC) enrichment by density gradient centrifugation. Human monocytes are differentiated into immature DCs and are ready for experimental procedures in a non-clinical setting after 5 days of incubation.

Here, we demonstrate how monocytes are isolated by magnetic bead separation from peripheral blood mononuclear cells after density gradient centrifugation of human anti-coagulated blood. Following incubation for 5 days, human monocytes are differentiated into immature dendritic cells and are ready for experimental procedures in a non-clinical setting.

Tüm kan İnsan monosit türevli dendritik hücrelerin oluşumu

Dendritic cells (DCs) recognize foreign structures of different pathogens, such as viruses, bacteria, and fungi, via a variety of pattern recognition ...

Development and Validation of an Ultrasensitive Single Molecule Array Digital Enzyme-linked Immunosorbent Assay for Human Interferon-&#945;

The main aim of this protocol is to describe the development and validation of an interferon (IFN)-&#945; single molecule array digital Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay (ELISA) assay. This system enables the quantification of human IFN-&#945; protein with unprecedented sensitivity, and with no cross-reactivity for other species of IFN.
The first key step of the protocol is the choice of the antibody pair, followed by the conjugation of the capture antibody to paramagnetic beads, and biotinylation of the detection antibody. Following this step, different parameters such as assay configuration, detector antibody concentration, and buffer composition can be modified until optimum sensitivity is achieved. Finally, specificity and reproducibility of the method are assessed to ensure confidence in the results. Here, we developed an IFN-&#945; single molecule array assay with a limit of detection of 0.69 fg/mL using high-affinity autoantibodies isolated from patients with biallelic mutations in the autoimmune regulator (AIRE) protein causing autoimmune polyendocrinopathy syndrome type 1/autoimmune polyendocrinopathy-candidiasis-ectodermal dystrophy (APS1/APECED). Importantly, these antibodies enabled detection of all 13 IFN-&#945; subtypes.
This new methodology allows the detection and quantification of IFN-&#945; protein in human biological samples at attomolar concentrations for the first time. Such a tool will be highly useful in monitoring the levels of this cytokine in human health and disease states, most particularly infection, autoimmunity, and autoinflammation.

Development and Validation of an Ultrasensitive Single Molecule Array Digital Enzyme-linked Immunosorbent Assay for Human Interferon-&amp;#945;

Here we present a protocol to describe the development and validation of a single molecule array digital ELISA assay, which enables the ultra-sensitive detection of all IFN-&#945; subtypes in human samples.

Geliştirme ve doğrulama vericiyi bir tek molekül dijital enzim bağlı Immunosorbent Assay insan Interferon-α için dizi

The main aim of this protocol is to describe the development and validation of an interferon (IFN)-&#945; single molecule array digital Enzyme-Linked ...

Detection of Inflammasome Activation and Pyroptotic Cell Death in Murine Bone Marrow-derived Macrophages

Inflammasomes are innate immune signaling platforms that are required for the successful control of many pathogenic organisms, but also promote inflammatory and autoinflammatory diseases. Inflammasomes are activated by cytosolic pattern recognition receptors, including members of the NOD-like receptor (NLR) family. These receptors oligomerize upon the detection of microbial or damage-associated stimuli. Subsequent recruitment of the adaptor protein ASC forms a microscopically visible inflammasome complex, which activates caspase-1 through proximity-induced auto-activation. Following the activation, caspase-1 cleaves pro-IL-1&#946; and pro-IL-18, leading to the activation and secretion of these pro-inflammatory cytokines. Caspase-1 also mediates the inflammatory form of cell death termed pyroptosis, which features the loss of membrane integrity and cell lysis. Caspase-1 cleaves gasdermin D, releasing the N-terminal fragment which forms plasma membrane pores, leading to osmotic lysis.
In vitro, the activation of caspase-1 can be determined by labeling bone marrow-derived macrophages with the caspase-1 activity probe FAM-YVAD-FMK and by labeling the cells with antibodies against the adaptor protein ASC. This technique allows the identification of inflammasome formation and caspase-1 activation in individual cells using fluorescence microscopy. Pyroptotic cell death can be detected by measuring the release of cytosolic lactate dehydrogenase into the medium. This procedure is simple, cost effective and performed in a 96-well plate format, allowing adaptation for screening. In this manuscript, we show that activation of the NLRP3 inflammasome by nigericin leads to the co-localization of the adaptor protein ASC and active caspase-1, leading to pyroptosis.

We describe the detection of NLRP3 inflammasome activation on cellular basis using fluorescence microscopy and staining for active caspase-1 and the adaptor, ASC. A lactate dehydrogenase release assay is presented to detect pyroptotic lysis on a population basis. These techniques can be adapted to study many aspects of inflammasome biology.

Inflammasome harekete geçirmek ve Pyroptotic hücre ölümü fare kemik iliği türevi makrofajlar içinde tespiti

Inflammasomes are innate immune signaling platforms that are required for the successful control of many pathogenic organisms, but also promote ...

Quantification of Monocyte Chemotactic Activity In Vivo and Characterization of Blood Monocyte Derived Macrophages

Tissue homeostasis and repair are critically dependent on the recruitment of monocyte-derived macrophages. Both under- and over-recruitment of monocyte-derived macrophages can impair wound healing. We showed that high fat and high sugar diets promote monocyte priming and dysfunction, converting healthy blood monocytes into a hyper chemotactic phenotype poised to differentiate into macrophages with dysregulated activation profiles and impaired phenotypic plasticity. The over-recruitment of monocyte-derived macrophages and recruitment of macrophages with dysregulated activation profiles is believed to be a major contributor to the development of chronic inflammatory diseases associated with metabolic disorders, including atherosclerosis and obesity. The goal of this protocol is to quantify the chemotactic activity of blood monocytes as a biomarker for monocyte priming and dysfunction and to characterize the macrophage phenotype blood monocytes are poised to differentiate into in these mouse models. Using single cell Western blot analysis, we show that after 24 h 33%of cells recruited into MCP-1-loaded basement membrane-derived gel plugs injected into mice are monocytes and macrophages; 58% after day 3. However, on day 5, monocyte and macrophage numbers were significantly decreased. Finally, we show that this assays also allows for the isolation of live macrophages from the surgically retrieved basement membrane-derived gel plugs, which can then be subjected to subsequent characterization by single cell Western blot analysis.

Here we present a protocol to quantify the chemotactic activity of blood monocytes in mouse models, to assess the effects of nutritional, pharmacological and genetic interventions on blood monocyte and to characterize the blood monocytes derived macrophages in mouse models using monocyte-chemoattractant protein-1 (MCP-1)-loaded basement membrane-derived gel plugs.

İn Vivo Monosit Kemotaktik Aktivitenin Ölçülmesi ve Kan Monosit Türevi Makrofajların Karakterizasyonu

Tissue homeostasis and repair are critically dependent on the recruitment of monocyte-derived macrophages. Both under- and over-recruitment of ...

siRNA Electroporation to Modulate Autophagy in Herpes Simplex Virus Type 1-Infected Monocyte-Derived Dendritic Cells

Herpes simplex virus type-1 (HSV-1) induces autophagy in both, immature dendritic cells (iDCs) as well as mature dendritic cells (mDCs), whereas autophagic flux is only observed in iDCs. To gain mechanistic insights, we developed efficient strategies to interfere with HSV-1-induced autophagic turnover. An inhibitor-based strategy, to modulate HSV-1-induced autophagy, constitutes the first choice, since it is an easy and fast method. To circumvent potential unspecific off-target effects of such compounds, we developed an alternative siRNA-based strategy, to modulate autophagic turnover in iDCs upon HSV-1 infection. Indeed, electroporation of iDCs with FIP200-specific siRNA prior to HSV-1 infection is a very specific and successful method to ablate FIP200 protein expression and thereby to inhibit autophagic flux. Both presented methods result in the efficient inhibition of HSV-1-induced autophagic turnover in iDCs, whereby the siRNA-based technique is more target specific. An additional siRNA-based approach was developed to selectively silence the protein expression of KIF1B and KIF2A, facilitating autophagic turnover upon HSV-1 infection in mDCs. In conclusion, the technique of siRNA electroporation represents a promising strategy, to selectively ablate the expression of distinct proteins and to analyze their influence upon an HSV-1 infection.

In this study, we present inhibitor- and siRNA-based strategies to interfere with autophagic flux in Herpes simplex virus type-1 (HSV-1)-infected monocyte-derived dendritic cells.

Herpes Simpleks Virüs Tip 1-Enfekte Monosit Türetilmiş Dendritik Hücrelerde Otofaji Modüle siRNA Elektroporasyon

Herpes simplex virus type-1 (HSV-1) induces autophagy in both, immature dendritic cells (iDCs) as well as mature dendritic cells (mDCs), whereas ...

In Vitro Stimulation and Visualization of Extracellular Trap Release in Differentiated Human Monocyte-derived Macrophages

The release of extracellular traps (ETs) by neutrophils has been identified as a contributing factor to the development of diseases related to chronic inflammation. Neutrophil ETs (NETs) consist of a mesh of DNA, histone proteins, and various granule proteins (i.e., myeloperoxidase, elastase, and cathepsin G). Other immune cells, including macrophages, can also produce ETs; however, to what extent this occurs in vivo and whether macrophage extracellular traps (METs) play a role in pathological mechanisms has not been examined in detail. To better understand the role of METs in inflammatory pathologies, a protocol was developed for visualizing MET release from primary human macrophages in vitro, which can also be exploited in immunofluorescence experiments. This allows further characterization of these structures and their comparison to ETs released from neutrophils. Human monocyte-derived macrophages (HMDM) produce METs upon exposure to different inflammatory stimuli following differentiation to the M1 pro-inflammatory phenotype. The release of METs can be visualized by microscopy using a green fluorescent nucleic acid stain that is impermeant to live cells (e.g., SYTOX green). Use of freshly isolated primary macrophages, such as HMDM, is advantageous in modeling in vivo inflammatory events that are relevant to potential clinical applications. This protocol can also be used to study MET release from human monocyte cell lines (e.g., THP-1) following differentiation into macrophages with phorbol myristate acetate or other macrophage cell lines (e.g., the murine macrophage-like J774A.1 cells).

Presented here is a protocol to detect macrophage extracellular trap (MET) production in live cell culture using microscopy and fluorescence staining. This protocol can be further extended to examine specific MET protein markers by immunofluorescence staining.

Diferansiye İnsan Monosit türevi Makrofajlarda Hücre Dışı Tuzak Salınımının İn Vitro Stimülasyon ve Görselleştirilmesi

The release of extracellular traps (ETs) by neutrophils has been identified as a contributing factor to the development of diseases related to chronic ...

Visualization of Inflammatory Caspases Induced Proximity in Human Monocyte-Derived Macrophages

Inflammatory caspases include caspase-1, -4, -5, -11, and -12 and belong to the subgroup of initiator caspases. Caspase-1 is required to ensure correct regulation of inflammatory signaling and is activated by proximity-induced dimerization following recruitment to inflammasomes. Caspase-1 is abundant in the monocytic cell lineage and induces maturation of the pro-inflammatory cytokines interleukin (IL)-1&#946; and IL-18 to active secreted molecules. The other inflammatory caspases, caspase-4 and -5 (and their murine homolog caspase-11) promote IL-1&#946; release by inducing pyroptosis. Caspase Bimolecular Fluorescence Complementation (BiFC) is a tool used to measure inflammatory caspase induced proximity as a readout of caspase activation. The caspase-1, -4, or -5 prodomain, which contains the region that binds to the inflammasome, is fused to non-fluorescent fragments of the yellow fluorescent protein Venus (Venus-N [VN] or Venus-C [VC]) that associate to reform the fluorescent Venus complex when the caspases undergo induced proximity. This protocol describes how to introduce these reporters into primary human monocyte-derived macrophages (MDM) using nucleofection, treat the cells to induce inflammatory caspase activation, and measure caspase activation using fluorescence and confocal microscopy. The advantage of this approach is that it can be used to identify the components, requirements, and localization of the inflammatory caspase activation complex in living cells. However, careful controls need to be considered to avoid compromising cell viability and behavior. This technique is a powerful tool for the analysis of dynamic caspase interactions at the inflammasome level as well as for the interrogation of the inflammatory signaling cascades in living MDM and monocytes derived from human blood samples.

This protocol describes the workflow to obtain monocytes-derived macrophages (MDM) from human blood samples, a simple method to efficiently introduce inflammatory caspase Bimolecular Fluorescence Complementation (BiFC) reporters into human MDM without compromising cell viability and behavior, and an imaging-based approach to measure inflammatory caspase activation in living cells.

İnsan Monosit Kaynaklı Makrofajlarda İnflamatuar Kaspazların İndüklenen Yakınlığının Görselleştirilmesi

Inflammatory caspases include caspase-1, -4, -5, -11, and -12 and belong to the subgroup of initiator caspases. Caspase-1 is required to ensure correct ...

Determination of Vaccine Immunogenicity Using Bovine Monocyte-Derived Dendritic Cells

Dendritic cells (DCs) are the most potent antigen-presenting cells (APCs) within the immune system. They patrol the organism looking for pathogens and play a unique role within the immune system by linking the innate and adaptive immune responses. These cells can phagocytize and then present captured antigens to effector immune cells, triggering a diverse range of immune responses. This paper demonstrates a standardized method for the in vitro generation of bovine monocyte-derived dendritic cells (MoDCs) isolated from cattle peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) and their application in evaluating vaccine immunogenicity.
Magnetic-based cell sorting was used to isolate CD14+ monocytes from PBMCs, and the supplementation of complete culture medium with interleukin (IL)-4 and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) was used to induce the differentiation of CD14+ monocytes into naive MoDCs. The generation of immature MoDCs was confirmed by detecting the expression of major histocompatibility complex II (MHC II), CD86, and CD40 cell surface markers. A commercially available rabies vaccine was used to pulse the immature MoDCs, which were subsequently co-cultured with naive lymphocytes.
The flow cytometry analysis of the antigen-pulsed MoDCs and lymphocyte co-culture revealed the stimulation of T lymphocyte proliferation through the expression of Ki-67, CD25, CD4, and CD8 markers. The analysis of the mRNA expression of IFN-&#947; and Ki-67, using quantitative PCR, showed that the MoDCs could induce the antigen-specific priming of lymphocytes in this in vitro co-culture system. Furthermore, IFN-&#947; secretion assessed using ELISA showed a significantly higher titer (**p &#60; 0.01) in the rabies vaccine-pulsed MoDC-lymphocyte co-culture than in the non-antigen-pulsed MoDC-lymphocyte co-culture. These results show the validity of this in vitro MoDC assay to measure vaccine immunogenicity, meaning this assay can be used to identify potential vaccine candidates for cattle before proceeding with in vivo trials, as well as in vaccine immunogenicity assessments of commercial vaccines.

The methodology describes the generation of bovine monocyte-derived dendritic cells (MoDCs) and their application for the in vitro evaluation of antigenic candidates during the development of potential veterinary vaccines in cattle.

Sığır Monosit Kaynaklı Dendritik Hücreler Kullanılarak Aşı İmmünojenitesinin Belirlenmesi

Dendritic cells (DCs) are the most potent antigen-presenting cells (APCs) within the immune system. They patrol the organism looking for pathogens and ...