Bu yayında bildirilen Araştırma Artrit ve Kas-iskelet Ulusal Enstitüsü ve Cilt Hastalıkları Ödülü Numarası R01-AR063084 altında Ulusal Sağlık Enstitüleri bir parçası tarafından desteklenmiştir. Içeriği sadece yazarların sorumluluğundadır ve mutlaka Ulusal Sağlık Enstitüleri resmi görüşlerini temsil etmemektedir.

Bu hayvan protokol tarafından onaylanan ve Ohio State Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından belirlenen kurallara ve yönetmeliklere uygun dir. Yerel IACUC tarafından geliştirilen tüm politikalar Ulusal Sağlık Enstitüleri Laboratuvarı Hayvan Refahı Ofisi tarafından geliştirilen Hayvan Deneyleri Kılavuzu ile uyumludur. 1.. Anestezi ve Endotrakeal Entübasyon <ol><li> Kullanmadan önce tüm enstrümanları ve cerrahi malzemeleri otoklavlayın. Prosedür boyunca steril, tek kullanımlık cerrahi eldiven giyin. Prosedür boyunca steril bir alan koruyun. Steril bir örtü kullanılması önerilmektedir ancak fare anatomik yerlerinden daha iyi görünüm için izin video gösterilir değildir. </li><li> Bir indüksiyon odası içinde tek tek her bir fare yerleştirin ve doğrulma-refleksi kaybının kadar 0.4 L / dak &#39;lık bir akış oranı ile,% 5 izofluran ve oksijen kullanılarak anestezi sağlamak ve daha sonra inci korumaktrakeal tüp yerine dek anestezi cihazına bağlanmış bir roket ucu konisi tüp vasıtasıyla 0.4 L / dk &#39;lık bir akışı ile% 100 oksijen içinde% 2 izofluran ile e hayvan. Kullanılan izofluran anestezi makinesi uygun havalandırmalı ve işlem sırasında izofluran dumana cerrahın maruziyetini en aza indirmek için kömür filtreler ile donatılmış olmalıdır. Roket ucu konisi kaydetti ama fareyi entübe manipülasyonların görünüm için izin video gösterilir değildir. </li><li> Cerrahi konumu kirlenmesini önlemek için ameliyat platformu farklı bir yerde bir hayvan saç kesme makinesi ile hayvanın göğüs tıraş. </li><li> Sonraki entübasyon için cerrahi bir platform üzerinde yatar pozisyonda fare yerleştirin. Basit küçük polistiren köpük platformu bir işletim platformu olarak hizmet verebilir. Steril bir yüzey sağlamak için, önceden sterilize edilmiş örtü ile platformu örtün. Surgica farelerin vücut ısısını korumak için platform ve örtünün arasında bir ısıtma yastığı yerleştirinl işlemleri. </li><li> Bant ile platforma en az 10 cm 2-0 ipek sütür uzunluğu takın ve ardından ön üst kesici dişlerin etrafında döngü dikiş. Fare burun üzerinde platformun kenarına yakın bir yerde (2-3 cm) &#39;de koni yerleştirin. Fare gergin durmasını çekin ve bir bant ile kuyruk tarafından platforma sabitleyin. </li><li> Bant şeritler ile vücut yanlarına bacakları edin. Bu solunum tehlikeye gibi ön bacaklarda aşırı gerilmiş değildir önemlidir. </li><li> Boyun, göğüs ve insizyon yapılır önce Betadine ve alkol ile traş cerrahi siteleri hazırlayın. </li><li> Fare baş operatörü yönünde işaret ile platformu yerleştirin. 0.5 cm ortalama servikal cilt kesi kesmek. Trakea kas altında görülebilir sternohyoideus kas maruz onların kıstak tiroid bezinin lobları ayırın. </li><li> Bir intub olarak kullanılabilir, böylece, bir 18 gauge trokar iç iğne kaldırmatirme tüpü. Iğne ucu bir tutucu olarak hizmet edebilir ve dış borunun 1 cm trakeal tüp olarak hizmet edebilir. </li><li> Bir yandan kavisli bir forseps ile fare dilini tutun ve hafifçe yukarı doğru hareket ettirin. Servikal cilt kesi yoluyla trakea görüntüleyebilirsiniz. Tüp trakea içinde görülür kadar yavaşça entübasyon tüpü takmak için diğer elinizi kullanın. </li><li> En kısa tüp, trakea olduğu gibi, borunun karşı diğer yandan da kavisli forseps hareket ve hızlı bir şekilde, iç iğne çıkarılır. Tüp, trakea takılı edilemezse, tüp solunum sorunları üreten önlemek için dışarı çekilmelidir. Bu, bunun yerine yemek borusu, trakea içine tüp ekleme önlemek için boğaz yakınken, boru yukarı ucu işaret etmek önemlidir. </li></ol> 2.. Havalandırma ve Fiksasyon <ol><li> Bir hayvan solunum 0,4 L / dakika &#39;lık bir akış oranı ile oksijen içinde% 2 izofluran ile havalandırma yapay havalandırma sağlar. Değiştirilmiş bir Y-sha kullanınventilatör ile entübasyon tüpü bağlamak için pe konnektörü. Entübasyon tüpünün doğru konumlandırma simetrik göğüs genişleme yargılamak tarafından teyit edilebilir. </li><li> 260 ul / inme ve havalandırma oranında tidal hacim ayarlama, belirli bir fare gerekirse vücut ağırlığına göre ayarlanabilir dakikada 130 vuruş vardır. </li><li> Kuyruk bandı çıkarın ve daha sonraki ameliyat için sağ lateral dekübit pozisyonda yerleştirmek için hafifçe fare açın. Tekrar platforma kuyruk ve bacaklarını sabitlemek için bant kullanın. </li><li> Vücut ısısını izlemek için rektal prob takın ve 37 º C civarında sıcaklığı korumak için ısınma tabanını ayarlamak </li><li> Bandı kullanarak platforma sonda elde edin. Kesi yapılmadan önce bölgeyi uyuşturmak için kesi yerinde bupivakain deri altına enjekte edilir. </li></ol> 3. Torakotomi <ol><li> Uzak soldan bir site 2 mm, yaklaşık 1 cm uzunluğunda bir kesi yapmak eğiksol ön bacak gövdesini (bacak ve vücut birleştiği yerde altında yaklaşık 1-2 mm) buluştuğu yönünde sternal sınır. Yüzeysel Torasik ven bu sitede yakın ve kesi yanal uç kadar gider böylece kesi yapılmalıdır, ancak ven içine kesmiyor. </li><li> Toraks kas altına kaburga maruz olsa kesin. Bu adım sırasında kabın kaza yaralanmaları önlemek. Kanama meydana gelirse, bir sonraki adıma 7 geçmeden önce herhangi bir kanamayı durdurmak için pamuk aplikatör kullanın. </li><li> Kaburga görselleştirmek ve ince ve yarı saydam göğüs duvarından akciğer şişirme. Üçüncü interkostal boşlukta bir 6-8 mm kesi yapmak için cerrahi makas kullanılarak göğüs boşluğu açın. Bu kesi internal torasik arter bulunan sternum sınırından 2 mm minimum olmalıdır. Arterin hasar kontrolü zordur ağır kanama üretecek. </li><li> Önceden sterilize edilmiş ev yapımı göğüs Rekraktörleri int takınakciğeri önlemek için dikkatli olurken o geniş yaklaşık 8-10 mm, böylece o nazikçe kesi ve kesi açmak için geri çekin. Sarma tertibatında pim ile cerrahi platforma tespit edilmelidir. </li><li> Bu noktada, kalp, ancak, yine de, akciğer kalp bir kısmını kapsayacak, görünür olmalıdır. Kavisli bir forseps ile yavaşça perikard Pick up, o ayrı çekin ve retraktörlerinize arkasında doku kaydırın. Bu manipülasyon sırasında akciğer yukarı ve kalp uzak kalkacaktır. </li></ol> 4. Konumlandırma LAD <ol><li> Bir diseksiyon mikroskobu ile kalp yüzeyinde LAD bulun. LAD sol ventrikül aşağı kalbin apeks yakınında gelen kalp duvarının orta çalışır. LAD parlak kırmızı görünür ve güçlü darbeli olacak. Burada damar ancak bazen doğru aydınlatma iki damarları ayırt yardımcı olabilir, LAD için yanlış. Aydınlatma çok parlak ise o renk takdir etmek zor olabilirdamarları arasındaki farklar. </li><li> Bağlanması için LAD hazırlamak için yaklaşık 1-2 mm&#39;lik bir çapa sahip steril bir pamuk parçası kullanarak. Sol atrium kaldırın ve LAD ortaya çıkarmak ve konumunu açıklığa kavuşturmak yardımcı olacak, sol atrium ve sol ventrikül arasındaki pamuk yerleştirin. LAD yer edilemezse, fragmanı yüzden sol atrium LAD kaynaklanan aortu ortaya çıkarmak için daha yüksek kaldırdı de kaydırılabilir. </li></ol> 5.. LAD ligasyonu <ol><li> Bağı için ideal konumlandırma sol kulak ucuna göre yaklaşık olarak 2 mm daha düşüktür. Pulmoner gövde sol kulak kepçesi belirlemenize yardımcı olması için bir belirteç olarak kullanılabilir. Seçenek olarak ise, bağlanma pozisyonu uzak sol sirkumfleks arasında bir dallanma noktası 1-2 mm olarak görselleştirilebilir. Nazikçe hemen amaçlanan ligasyon noktasının altında bir yerinde baskı uygulamak için kavisli bir forseps kullanın. Bu daha kolay arteri görmek için yapacak ve aynı zamanda yerinde kalp tutun yardımcı olacaktırve ligatürün bağlama basitleştirmek. Bir seferde en fazla 5 saniye forseps ile baskı uygulamak ve pompalama değiştirebilir kalp sıkıştırma kaçının. </li><li> Bir mikroskop ile gözleyerek LAD altında 6-0 ipek sütür geçmek için bir konik iğne kullanın. İğne çok derine yerleştirilmiş ise sol ventrikül odasına girmek veya iğne çok sığ ise LAD zarar edecek gibi hassas arterin altında iğne takın. LAD yaralı ise kanama kontrol edilemez ise ancak hayvan euthanize tercih edilir, iğne kaldırmak ve kanamayı kontrol etmek LAD sütür. </li><li> PE-10 bir boru, 2-3 mm uzunluğunda bir parça 8 yerleştirildiği ile 2-3 mm çapında bir döngü bırakarak dikiş ile gevşek bir çift düğüm olun. </li><li> Sonra ventrikül duvarına zarar vermemeye özen, bir ek slipknot bağlayarak döngü güvenceye arter ve tüp etrafında döngü sıkın. Kalıcı ligasyonu için, doğrudan bir ile LAD kravat9 knot. Bağlanmasından sonra birkaç saniye içinde görünmelidir LV ön duvarında bir soluk renkli bir görünüm için kontrol ederek LAD oklüzyonu onaylayın. </li><li> Retraktörü çıkarın ve bir bulldog kelepçe ile birlikte cildi sıkarak geçici yarayı kapatın. Iskemi muhafaza edilmesi zamanın uzunluğu deney tasarımına bağlıdır, ancak genellikle 20, 30, 45 veya 60 dk. Fare, LAD oklüzyonu süresince vantilatör üzerinde kalır. </li></ol> 6. Reperfüzyon <ol><li> Iskemi döneminden sonra bulldog klibini kaldırmak ve ligatürün maruz göğüs Ekartörleri yerleştirin. Çözemediniz ve PE-10 tüp çıkarın. 15-20 sn sonra LV ön duvarının pembe-kırmızı renkli bir dönüş gözlemleyerek reperfüzyon onaylayın. </li><li> % 2 trifenil tetrazolyum klorid (TTC) ve mavi boyama reperfüzyon sonrası gerçekleştirilir olması durumunda dikiş yerinde bırakın. Boyama gerekli değilse, ameliyat dikiş ipliği be uzaklaştırıldı. </li><li> Reperfüzyon süresi genellikle 24 saat için 1 saat kadar uzanan, deney tasarımı bağlıdır. </li></ol> 7. Göğüs kapatılması ve Ameliyat Sonrası Bakım <ol><li> Dikiş ile göğüs boşluğunu kapatmak 4-0 ipek sütür ile 3. interkostal insizyon kapattı. Bu akciğer sütürün açık ve 3 rd gibi tuzak ve 4. kaburgalar birbirine dikilir olmazlar önemlidir. Dikiş knot ipe iken göğüs boşluğunda kalmış olabilecek oda havasını en aza indirmek için iğne tutucu ile göğüs hafif baskı uygulamak için yararlı olduğunu. </li><li> 4-0 ipek kullanılarak sürekli dikişlerle kas tüm katmanları kapatın. Sürekli bir dikiş ile cilt kapatmak için naylon sütürler kullanın. Seçenek olarak ise, deri kesintiye dikiş ile kapatılabilir. </li><li> Oksijen akmaya devam ederken dikiş tam ateşkes izofluran akışı olduğunda. Fare, kedi taklidi veya kuyruk da, omuz hamle sonrasoluması girişimlerde başlamak istiyorum. Entübasyon tüpü ile ventilatörden fareyi çıkarın hala trakea tuttu. </li><li> Fare normal solunum paterni devam eder ve ardından fareyi Ekstübe kadar dikkatlice hayvan gözlemlemek. Tüp ağız boşluğu salgıları aspirasyon önlemek için yavaş yavaş çıkarılmalıdır. </li><li> Fare kafesine dönmeden önce başka bir 3-5 dakika için gözlemleyerek herhangi bir solunum sıkıntısı değil onaylayın. Dehidratasyon bulguları ameliyat sonrası gözetilirse, intraperitoneal enjeksiyon ile, steril tuzlu su, 0.5 ml kadar sağlar. </li><li> Ameliyat sonrası analjezi için, hayvan ayaktan önce, bir opioid analjezik (buprenorfin, 0.1 mg / kg) deri altından (SC) uygulanması ve daha sonra ek bir dozu, bir sonraki 24 saat boyunca her 4-6 saat sağlar. Ameliyattan sonra 12 saatte sıkıntı hayvan işaretleri kontrol edin. Sağkalım cerrahi kullanarak enfarktüsteki Simülasyon SÜ toparlanmanın ardından ağrı ve sıkıntı değerlendirilmesini gerektirirrgery. Geçerli kabul edilen iyi uygulama nedeniyle kilo kaybı ya da ağrı belirtileri garanti olarak verilen ek doz ile invazif bir prosedür izlenerek ilk 24 saat boyunca analjezi sağlamaktır. Kalıcı ligasyonu için, vücut ağırlığı hayvanın kurtarma ölçmek için yardımcı günlük takip edilmelidir. </li><li> Ibuprofen (Motrin), anti-enflamatuar, analjezik ve ateş düşürücü aktivitesi, ya da diğer NSAID&#39;lerin bir steroid olmayan anti-enflamatuar ilaç (NSAID), ameliyattan önce iki gün boyunca 0.2 mg / ml solüsyon olarak hayvanın içme suyu olarak temin edilebilir ve herhangi bir ek ağrı / sıkıntı yönetmek için buprenorfin ile birlikte ameliyat sonrası 7 güne kadar. </li></ol> Miyokard Enfarktüs Boyutu 8. Ölçümü <ol><li> Anestezi edilmiş ve istenen reperfüzyon süresi sonunda, fare entübe. Xiphoid için orta hatta göğüs keseceksiniz. Göğüs kafesinin altında ve midklavikuler hattının her iki tarafından karın ve diyaframı açın. </li> &lt;li&gt; kalp Açığa ve daha sonra aynı yerde LAD yeniden lige. Bu yüzden,% 10 ptalo Blue yavaşça iskemik olmayan bölge 10 arasındaki iskemik bölgenin tarif için kalp leke aort içine direkt olarak enjekte edilebilir aort Cannulate. </li><li> Hızla kalp tüketim ve kalp atışını durdurmak ve daha tutarlı bir kesit sağlamak için 30 mM KCI (potasyum klorid çözeltisi) yıkayın. -20 ° C&#39;de en az 4 saat boyunca dondurmak ve kalp cihazı 11 kesit, bir kalp matris kullanılarak 1 mm&#39;lik dilimler halinde kalp kesti. </li><li> 40 dakika boyunca 37 ° C&#39;de% 2 TTC kalp dilimleri inkübe edin. Canlı doku kırmızı lekeler ise enfarktüs alanları beyaz bir alan olarak sınırlanmıştır. </li><li> Infarkt alanı ve normal doku arasındaki kontrastı artırmak için yardımcı olacak, gece boyunca% 10 formaldehit ile boyandı dilim düzeltmek. Dilimleri fotoğraf ve risk alan (AAR), iskemik olmayan bölge ve ImageJ yazılımı kullanarak enfarktüs alanı hesaplamak. </li></ol> &lt;p class = &quot;jove_title&quot;&gt; 9. Kardiyak Enzim Düzeylerinin Ölçümü Portal damanndan kan alınarak ve daha sonra santrifüj ile serum izole edilmesi farelerin serumunda I (cTnI) seviyeleri kalp troponin ölçün. Serum cTnI sonra bir nicel hızlı cTnl deneyi 12 ile belirlenir.

<ol>
	<li>Abarbanell, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+myocardial+and+vascular+injury.">Animal models of myocardial and vascular injury.</a> J Surg Res. 162, 239-249 (2010).</li><li>Gao, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+and+efficient+model+of+coronary+artery+ligation+and+myocardial+infarction+in+the+mouse.">A novel and efficient model of coronary artery ligation and myocardial infarction in the mouse.</a> Circ Res. 107, 1445-1453 (2010).</li><li>Virag, J. A., Lust, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coronary+artery+ligation+and+intramyocardial+injection+in+a+murine+model+of+infarction.">Coronary artery ligation and intramyocardial injection in a murine model of infarction.</a> J Vis Exp. , (2011).</li><li>Salto-Tellez, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myocardial+infarction+in+the+C57BL/6J+mouse:+a+quantifiable+and+highly+reproducible+experimental+model.">Myocardial infarction in the C57BL/6J mouse: a quantifiable and highly reproducible experimental model.</a> Cardiovasc Pathol. 13, 91-97 (2004).</li><li>Kumar, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+mouse+coronary+anatomy+and+myocardial+infarction+consequent+to+ligation.">Distinct mouse coronary anatomy and myocardial infarction consequent to ligation.</a> Coron Artery Dis. 16, 41-44 (2005).</li><li>Degabriele, N. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Critical+appraisal+of+the+mouse+model+of+myocardial+infarction.">Critical appraisal of the mouse model of myocardial infarction.</a> Exp Physiol. 89, 497-505 (2004).</li><li>Shao, Y., Redfors, B., Omerovic, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modified+technique+for+coronary+artery+ligation+in+mice.">Modified technique for coronary artery ligation in mice.</a> J Vis Exp. , (2013).</li><li>Klocke, R., Tian, W., Kuhlmann, M. T., Nikol, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+animal+models+of+heart+failure+related+to+coronary+heart+disease.">Surgical animal models of heart failure related to coronary heart disease.</a> Cardiovasc Res. 74, 29-38 (2007).</li><li>Nossuli, T. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+chronic+mouse+model+of+myocardial+ischemia-reperfusion:+essential+in+cytokine+studies.">A chronic mouse model of myocardial ischemia-reperfusion: essential in cytokine studies.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 278, 1049-1055 (2000).</li><li>Cozzi, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrafine+particulate+matter+exposure+augments+ischemia-reperfusion+injury+in+mice.">Ultrafine particulate matter exposure augments ischemia-reperfusion injury in mice.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 291, 894-903 (2006).</li><li>Kim, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+murine+closed-chest+model+of+myocardial+ischemia+and+reperfusion.">A murine closed-chest model of myocardial ischemia and reperfusion.</a> J Vis Exp. , 3896 (2012).</li><li>Nagarajan, V., Hernandez, A. V., Tang, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prognostic+value+of+cardiac+troponin+in+chronic+stable+heart+failure:+a+systematic+review.">Prognostic value of cardiac troponin in chronic stable heart failure: a systematic review.</a> Heart. 98, 1778-1786 (2012).</li><li>Borst, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+employed+for+induction+and+analysis+of+experimental+myocardial+infarction+in+mice.">Methods employed for induction and analysis of experimental myocardial infarction in mice.</a> Cell Physiol Biochem. 28, 1-12 (2011).</li><li>Diepenhorst, G. M., van Gulik, T. M., Hack, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complement-mediated+ischemia-reperfusion+injury:+lessons+learned+from+animal+and+clinical+studies.">Complement-mediated ischemia-reperfusion injury: lessons learned from animal and clinical studies.</a> Ann Surg. 249, 889-899 (2009).</li><li>Benavides-Vallve, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+strategies+for+echocardiographic+evaluation+of+left+ventricular+function+in+a+mouse+model+of+long-term+myocardial+infarction.">New strategies for echocardiographic evaluation of left ventricular function in a mouse model of long-term myocardial infarction.</a> PLoS One. 7, 41691 (2012).</li><li>Bamberg, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Accuracy+of+dynamic+computed+tomography+adenosine+stress+myocardial+perfusion+imaging+in+estimating+myocardial+blood+flow+at+various+degrees+of+coronary+artery+stenosis+using+a+porcine+animal+model.">Accuracy of dynamic computed tomography adenosine stress myocardial perfusion imaging in estimating myocardial blood flow at various degrees of coronary artery stenosis using a porcine animal model.</a> Invest Radiol. 47, 71-77 (2012).</li></ol>

Dr Nuh Weisleder TRIM-edicine, Inc bir Kurucusu ve Baş Bilimsel Görevlisi

Fare miyokard iskemi-reperfüzyon modelleri klinik akut veya kronik kalp hastalığı 13,14 simüle etmek kardiyovasküler araştırma için etkili bir yöntemdir. Önemli bir çaba iskemik olayları ve birkaç farklı hayvan türlerinin kalplerinde reperfüzyon hasarı üretmek cerrahi yaklaşımlar geliştirmek ve rafine uygulanmıştır. Farklı hayvan sistemlerinin kullanımı için özel bir avantajı olmakla birlikte, fare, fare kalbinde miyokard I / R üretiminde geniş bir ilgiyi yöneltmiştir özell...

, Miyokardiyal enfarktüs (MI) hayvan modelleri, iskemik kalp hastalığı 1 kompleks patofizyolojisinin araştırma önemlidir. İskemi-reperfüzyon (I / R) hasarı MI sırasında oluşan miyokard hasarı önemli bir katkıda bulunuyor. Koroner dolaşım oklüzyonu ile üretilen ilk iskemi hasarı zamanında perfüzyon geri anjiyoplasti kullanılmasıyla MI hastalarda en aza indirilebilir. Bu müdahale sayesinde büyük ölçüde akut MI kardiyomiyositlerinin ölüme götüren I / R hasarında iskemik alan sonuçlara içine kan akımının restorasyon ölümlerin sayısını azalttı ise. Miyokard kütle kaybı, kardiak çıktı ve kalp yetmezliği doğru ilerlemesini azalmasına katkıda bulunur. Böylece, I / R hasarı kardiyomyosit ölümle sonuçlanabilir mekanizmaların çalışması, kardiyovasküler araştırma soruşturma önemli bir hattır. Cerrahi koroner ligasyon çeşitli hayvan türlerinde MI modellerini ikna etmek için yararlı bir tekniktir, includi olduğunuSıçan, köpek ve domuz ng. Farklı laboratuvarlarda Yayınlar I / R hasarı 2,3 fareler kalp modelin kurulmasına ilişkin çeşitli yöntemler girmiştik. Bu mekanizmaları anlamak için biz MI patolojinin çeşitli yönleri üretebileceği güvenilir hayvan modelleri erişimi olmalıdır. Bu tür modellerin geliştirilmesi de MI tedavisi ve ilgili I / R hasarı için tedavi yaklaşımları test için gereklidir. Deney hayvanlarında MI taklit etmek için mevcut cerrahi tekniklerin çoğu, daha sonra iskemi olayını üretmek üzere zaman içinde belirli bir süre için bir ligatür tarafından tıkanmaktadır arter (LAD) sol ön inen ortaya çıkarmak için göğüs boşluğuna cerrahi diseksiyon içerir. O zaman bu bağ I / R yaralanma, iskemik alan ve kuşak reperfüzyon izin vermek için çıkarılabilir. LAD üzerinde literatür konumu her zaman doğru yeniden olmadığını, bu yaklaşımların önemli bir sınırlamaBu yaklaşım ile indüklenen MI şiddetinde varyasyona neden olabilir. En uygun teknikler sadece genellikle kalbin ön duvarında LAD yaklaşık konumunu tarif. LAD dallanma ve yönü yeri her zaman sabit değildir ve ameliyat 6 sırasında olası komplikasyonlara yol, 4,5 kolayca karışabilir bireysel hayvanların değişebilir gibi. Bağı yanlış yerleşimin sonuçları tamamen modelinin özgüllüğünü ödün sol ventrikül indüklenen enfarktüs boyutu değişkenlik çalışabilir. Burada miyokard I / R ve LAD üzerine dikilen yerleştirilmesi geliştirilmiş doğruluğu sağlar: farelerde sürekli ligasyon için değiştirilmiş bir yöntem sunuyoruz. Başlangıç ​​kesi ve iç diseksiyon, hem de bu aort ortaya LAD ve site daha iyi takdir izin vermek için atrial kaldırmak için manipülasyon kullanımı için özel yaklaşımlar uygulayarak. KurulmasıLAD ve kökeni pozisyon tekrarlanabilir bir şekilde LAD bağlanması için fırsat sağlar. Miyokard I / R ve sürekli ligasyon Bu model, ameliyat sonrası enfarkt boyutunda varyasyonu azaltır değil, aynı zamanda, operasyon sırasında aşırı kanama insidansını azaltabilir.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="845">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:347px;">PhysioSuite with RightTemp Homeothermic Warming</td>
			<td style="width:192px;">Kent Scientific Corp</td>
			<td style="width:139px;">PS-RT</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Light source</td>
			<td style="width:192px;">Zeiss</td>
			<td style="width:139px;">KL 1500 LCD</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;"></td>
			<td style="width:192px;"></td>
			<td style="width:139px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Mouse Heart Slicer Matrix</td>
			<td style="width:192px;">Zivic Miller</td>
			<td style="width:139px;">HSMS001-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Micro Tray - Base, Lid, &#38; Mat (6.0 x 10 x 0.75)</td>
			<td style="width:192px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:139px;">6100A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride</td>
			<td style="width:192px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:139px;">T8877</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Buprenorphine (Buprenex Injectable)</td>
			<td>Reckitt Benkiser Healthcare</td>
			<td>NDC 12496-0757-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">bupivacaine</td>
			<td style="width:192px;">Hospira</td>
			<td>NDC 0409-1163-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Isoflurane</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>NDC 5260-04-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Betadine Soultion&#160;</td>
			<td>Purdue Pharma</td>
			<td>25655-41-8</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Mouse Cardiac Troponin T(cTnT) ELISA</td>
			<td>Kamiya Biomedical Company</td>
			<td>KT-58997</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;"></td>
			<td style="width:192px;"></td>
			<td style="width:139px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Fine Scissors</td>
			<td style="width:192px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:139px;">14040-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Dumont #5 Forceps</td>
			<td style="width:192px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:139px;">11251-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Dumont #3 Forceps</td>
			<td style="width:192px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:139px;">11231-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Castroviejo Micro Needle Holders</td>
			<td style="width:192px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:139px;">12060-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Slim Elongated Needle Holder</td>
			<td style="width:192px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:139px;">12005-15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Round Handled Needle Holders</td>
			<td style="width:192px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:139px;">12075-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;"></td>
			<td style="width:192px;"></td>
			<td style="width:139px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Omano Trinocular Stereoscope</td>
			<td style="width:192px;">Microscope.com</td>
			<td style="width:139px;">OM99-V6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">SB2 Boom Stand with Universal Arm</td>
			<td style="width:192px;">Microscope.com</td>
			<td style="width:139px;">V6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Tracheal Tube, 0.5mm, 1/16in Y</td>
			<td style="width:192px;">Kent Scientific Corp</td>
			<td style="width:139px;">RSP05T16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Anesthesia Systems for Rodents and Small Animals</td>
			<td style="width:192px;">VetEquip, Inc</td>
			<td style="width:139px;">901807</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;"></td>
			<td style="width:192px;"></td>
			<td style="width:139px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">4-0 silk taper suture</td>
			<td style="width:192px;">Sharpoint&#8482; Products</td>
			<td style="width:139px;">DC-2515N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">6-0 silk taper suture</td>
			<td style="width:192px;">Sharpoint&#8482; Products</td>
			<td style="width:139px;">DC-2150N</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury through ligation of the left anterior descending artery

Akut veya kronik miyokard infarktüsü (MI), yüksek morbidite ve mortalite nedeni kardiyovasküler olaylardır. MI sırasında iş yerinde patolojik mekanizmaların oluşturulması ve etkin tedavi yaklaşımların geliştirilmesinde tekrarlanabilir klinik insidansı taklit ve MI ile ilişkili patofizyolojik değişiklikleri yansıtmak için bir metodoloji gerektirir. Burada, kısa süreli iskemi-reperfüzyon (I / R) yaralanma hem de sürekli ligasyon için kullanılabileceğini fare modellerinde MI uyarılması için cerrahi bir yöntem açıklanmaktadır. Bu yöntemin en önemli avantajı, fare kalbin sol ventrikül iskeminin neden bu arter doğru ligasyonu izin vermek için, sol ön inen arter (LAD) konumunu kolaylaştırmaktır. LAD üzerinde, bağlantının doğru konumlandırma enfarktüs büyüklüğünün tekrar üretilebilirliğini artırır ve böylece daha güvenilir sonuçlar verir. Ligature yerleştirme daha fazla hassas t, farelerde MI simüle etmek için standart cerrahi yaklaşımlar artıracakhus istatistiksel olarak ilgili çalışmalar için gerekli deney hayvan sayısını azaltmak ve M aşağıdaki kardiyak fonksiyon bozukluğu üreten mekanizmaları anlamamıza artırır. MI Bu fare modeli, aynı zamanda, aşağıdaki MI miyokart hasarı hedefleyen tedaviler klinik öncesi test etmek için kullanışlıdır.

Reperfüzyon, enfarkt boyutu ve alan riske (AAR), ptalo mavi boya ve trifenil tetrazolyum klorid (TTC) ile, LAD ligasyonu dikişine miyokardiyal doku distalinde haşlama gözlemleyerek teyit edilebilir analizi 24 saat sonra hem de ön duvar işlev bozukluğu. Reperfüzyon miyokard dokusu ve ön duvar hareket bazı kurtarma gösteri kırmızı renk dönüşü ile kontrol edilebilir. Enfarktüs alanlar (beyaz) riski (kırmızı) bulunan alanlarda ayırt edilebilir ve alan değil riski (mavi) d...

Watch this Scientific Journal Video about A Murine Model of Myocardial Ischemia-reperfusion Injury through Ligation of the Left Anterior Descending Artery at JoVE.com

A Murine Model of Myocardial Ischemia-reperfusion Injury through Ligation of the Left Anterior Descending Artery

Biz tekrar elde edilebilirliğini arttırmak için, sol ön inen arter (LAD) üzerine ligasyon konumlandırma daha fazla netlik sağlar fare modellerinde miyokard infarktüsü (MI) simüle etmek için deneysel iskemi / reperfüzyon (I / R) hasarı ikna etmek için bir cerrahi yöntemi tanıtmak Farelerde MI deneyler.

Sol ön inen arter ligasyonu ile Miyokard İskemi-reperfüzyon Hasarı bir fare modeli

Acute or chronic myocardial infarction (MI) are cardiovascular events resulting in high morbidity and mortality. Establishing the pathological mechanisms ...

a-murine-model-myocardial-ischemia-reperfusion-injury-through

Research

JoVE Journal

Medicine

38.9K Görüntüleme.  The Ohio State University.  Biz tekrar elde edilebilirliğini arttırmak için, sol ön inen arter (LAD) üzerine ligasyon konumlandırma daha fazla netlik sağlar fare modellerinde miyokard infarktüsü (MI) simüle etmek için deneysel iskemi / reperfüzyon (I / R) hasarı ikna etmek için bir cerrahi yöntemi tanıtmak Farelerde MI deneyler. 

Video: A Murine Model of Myocardial Ischemia-reperfusion Injury through Ligation of the Left Anterior Descending Artery

Permanent Ligation of the Left Anterior Descending Coronary Artery in Mice: A Model of Post-myocardial Infarction Remodelling and Heart Failure

Heart failure is a syndrome in which the heart fails to pump blood at a rate commensurate with cellular oxygen requirements at rest or during stress. It is characterized by fluid retention, shortness of breath, and fatigue, in particular on exertion. Heart failure is a growing public health problem, the leading cause of hospitalization, and a major cause of mortality. Ischemic heart disease is the main cause of heart failure.
Ventricular remodelling refers to changes in structure, size, and shape of the left ventricle. This architectural remodelling of the left ventricle is induced by injury (e.g., myocardial infarction), by pressure overload (e.g., systemic arterial hypertension or aortic stenosis), or by volume overload. Since ventricular remodelling affects wall stress, it has a profound impact on cardiac function and on the development of heart failure. A model of permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice is used to investigate ventricular remodelling and cardiac function post-myocardial infarction. This model is fundamentally different in terms of objectives and pathophysiological relevance compared to the model of transient ligation of the left anterior descending coronary artery. In this latter model of ischemia/reperfusion injury, the initial extent of the infarct may be modulated by factors that affect myocardial salvage following reperfusion. In contrast, the infarct area at 24 hr after permanent ligation of the left anterior descending coronary artery is fixed. Cardiac function in this model will be affected by 1) the process of infarct expansion, infarct healing, and scar formation; and 2) the concomitant development of left ventricular dilatation, cardiac hypertrophy, and ventricular remodelling.
Besides the model of permanent ligation of the left anterior descending coronary artery, the technique of invasive hemodynamic measurements in mice is presented in detail.

Heart failure is the leading cause of hospitalization and a major cause of mortality. A model of permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice is applied to investigate ventricular remodelling and cardiac dysfunction post-myocardial infarction. The technique of invasive hemodynamic measurements in mice is presented.

Farelerde Sol Ön İnen Koroner Arter Daimi ligasyonu: Post-miyokard Enfarktüs Remodelling ve Kalp Yetmezliği Bir Model

Heart failure is a syndrome in which the heart fails to pump blood at a rate commensurate with cellular oxygen requirements at rest or during stress. It ...

Tıp

Murine Model of Intestinal Ischemia-reperfusion Injury

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, hypotension, necrotizing enterocolitis, bowel transplantation, trauma and chronic inflammation. Intestinal ischemia-reperfusion (IR) injury is a consequence of acute mesenteric ischemia, caused by inadequate blood flow through the mesenteric vessels, resulting in intestinal damage. Reperfusion following ischemia can further exacerbate damage of the intestine. The mechanisms of IR injury are complex and poorly understood. Therefore, experimental small animal models are critical for understanding the pathophysiology of IR injury and the development of novel therapies.
Here we describe a mouse model of acute intestinal IR injury that provides reproducible injury of the small intestine without mortality. This is achieved by inducing ischemia in the region of the distal ileum by temporally occluding the peripheral and terminal collateral branches of the superior mesenteric artery for 60 min using microvascular clips. Reperfusion for 1 hr, or 2 hr after injury results in reproducible injury of the intestine examined by histological analysis. Proper position of the microvascular clips is critical for the procedure. Therefore the video clip provides a detailed visual step-by-step description of this technique. This model of intestinal IR injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Here we describe the detailed procedure of intestinal ischemia-reperfusion in mice which results in reproducible injury without mortality to encourage the standardization of this technique across the field. This model of intestinal ischemia-reperfusion injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Bağırsak İskemi-reperfüzyon Hasarı Murin Modeli

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, ...

A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, diabetic retinopathy, and retinal vascular occlusions. Rodent models of I/R injury are providing significant insights into mechanisms and treatment strategies for human I/R injury, especially with regard to neurodegenerative damage in the retinal neurovascular unit. Presented here is a protocol for inducing retinal I/R injury in mice through elevation of intraocular pressure (IOP). In this protocol, the ocular anterior chamber is cannulated with a needle, through which flows the drip of an elevated saline reservoir. Using this drip to raise IOP above systolic arterial blood pressure, a practitioner temporarily halts inner retinal blood flow (ischemia). When circulation is reinstated (reperfusion) by removal of the cannula, severe cellular damage ensues, resulting ultimately in retinal neurodegeneration. Recent studies demonstrate inflammation, vascular permeability, and capillary degeneration as additional elements of this model. Compared to alternative retinal I/R methodologies, such as retinal arterial ligation, retinal I/R injury by elevated IOP offers advantages in its&#160;anatomical specificity, experimental tractability, and technical accessibility, presenting itself as a valuable tool for examining neuronal pathogenesis and therapy in the retinal neurovascular unit.

This article describes a procedure for inducing retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure in mice. Retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure serves to model human pathologies characterized by compromised oxygen and nutrient delivery in the retina, enabling researchers to examine potential cellular mechanisms and treatments for human diseases of the retinal neurovascular unit.

Göz İçi Basıncı Yükselmesi ile Retina İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, ...

Murine Left Anterior Descending (LAD) Coronary Artery Ligation: An Improved and Simplified Model for Myocardial Infarction

Ischemic heart disease (IHD), or acute coronary syndrome (ACS), is one of the leading causes of death in the United States. IHD is characterized by reduced blood supply to the heart, resulting in the loss of oxygen to and the ensuing necrosis of the heart muscle. The MI model has gained popularity for its use as a short-term ischemia-reperfusion model and a long-term permanent ligation model. Below, we describe a reliable method for the permanent ligation of the LAD. With mouse genetic engineering technology becoming more advanced, and with an increasing availability of quality murine surgical instruments, the mouse has become a popular model for MI surgeries. Our surgical model incorporates the use of an easily reversible anesthetic for the rapid recovery of the mouse; a minimally invasive endotracheal intubation without involving a tracheotomy; and a thoracentesis through the original thoracotomy site without creating an additional incision in the chest, as is done in some other methods, to effectively remove excess blood and air from the chest cavity. This method is comparatively less invasive than other methods, which dramatically reduces surgical and post-surgical complications and mortality and improves reproducibility.

Murine Left Anterior Descending LAD Coronary Artery Ligation: An Improved and Simplified Model for Myocardial Infarction

We provide a reliable method for left anterior descending artery (LAD) ligation in a mouse model. This method is comparatively less invasive than other methods, involving endotracheal intubation, a left-sided thoracotomy approach, and thoracentesis. This method can be used as a model for both acute and chronic myocardial infarction (MI).

Kemirgen Sol Ön İnen (LAD) koroner arter ligasyonu: Miyokard İnfarktüsü Yönelik Gelişmiş ve Basitleştirilmiş Modeli

Ischemic heart disease (IHD), or acute coronary syndrome (ACS), is one of the leading causes of death in the United States. IHD is characterized by ...

Evaluation of Coronary Flow Reserve After Myocardial Ischemia Reperfusion in Rats

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via recanalization of the coronary artery is the most effective strategy for reducing the size of ischemic myocardium. The coronary microvasculature cannot be visualized and imaged&#160;in vivo, but there are several invasive and noninvasive techniques that can be used to assess parameters which depend directly on coronary microvascular function. The endothelial function after ischemia reperfusion can be assessed also at the level of the coronary circulation via the coronary flow reserve (CFR).&#160;In this study, peak velocity of left anterior descending (LAD) coronary arteries was measured in rats in vivo via Transthoracic Doppler Echocardiography during resting and stress challenge (induced by Dobutamine). A normal heart can increase its coronary blood flow up to four times above the resting values during stress induction. Following ischemia reperfusion, we found a significantly diminished CFR, which can be used as a marker of coronary microvascular dysfunction. CFR has opened a window on the importance of microvascular dysfunction and has been shown to predict cardiovascular risk independent of whether the severe obstructive disease is present.

Coronary flow reserve (CFR), is defined as the ratio of maximal coronary blood flow to the resting coronary blood flow. We present a protocol for evaluating CFR in rats via ultrasound, which offers the opportunity to predict cardiovascular risk factors in the absence of obstructive coronary disease.

Farelerde miyokardiyal Iskemi reperfüzyon sonrası koroner akış rezervi değerlendirilmesi

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via ...

Murine Myocardial Infarction Model using Permanent Ligation of Left Anterior Descending Coronary Artery

Myocardial infarction (MI) and acute coronary diseases are among the most prominent causes of death in population with western lifestyle. The murine models of MI with permanent ligation of left-anterior descending (LAD) coronary artery closely mimics MI in humans. Murine models benefit from the extensive genetic engineering available nowadays. Here we propose a reproducible murine surgical model of myocardial infarction by permanent LAD coronary ligation. Our technique comprises anesthesia with ketamine/xylazine that can be rapidly reversed by administration of an antagonist, intubation without tracheotomy for mechanical-assisted ventilation, ventilation with application of extrinsic positive end-expiratory pressure (PEEP) to avoid alveolar collapse, a thoracotomy method limiting to the minimum surgical lesions made to skeletal muscles, and lung inflation without thoracentesis. This method is sparsely invasive, reproducible and reduces post-surgery mortality and complications.

Herein we describe a surgical procedure showing how to achieve permanent ligation of the left-anterior descending coronary artery in mice. This model is of high relevance to investigate the pathophysiology of myocardial infarction and the concomitant biological processes.

Sol Anterior İnen Koroner Arterin Kalıcı Ligasyonu ile Murine Miyokard Enfarktüsü Modeli

Myocardial infarction (MI) and acute coronary diseases are among the most prominent causes of death in population with western lifestyle. The murine ...

Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, cardiac stem cell therapy is studied by delivering SCs concurrently with the induction of myocardial injury. However, this approach presents two significant limitations: the early hostile pro-inflammatory ischemic environment may affect the survival of transplanted SCs, and it does not represent the subacute infarction scenario where SCs will likely be used. Here we describe a two-part series of surgical procedures for the induction of ischemia-reperfusion injury and delivery of mesenchymal stem cells (MSCs). This method of stem cell administration may allow for the longer viability and retention around damaged tissue by circumventing the initial immune response. A model of ischemia reperfusion injury was induced in mice accompanied by the delivery of mesenchymal stem cells (3.0 x 105), stably expressing the reporter gene firefly luciferase under the constitutively expressed CMV promoter, intramyocardially 7 days later. The animals were imaged via ultrasound and bioluminescent imaging for confirmation of injury and injection of cells, respectively. Importantly, there was no added complication rate when performing this two-procedure approach for SC delivery. This method of stem cell administration, collectively with the utilization of state-of-the-art reporter genes, may allow for the in vivo study of viability and retention of transplanted SCs in a situation of chronic ischemia commonly seen clinically, while also circumventing the initial pro-inflammatory response. In summary, we established a protocol for the delayed delivery of stem cells into the myocardium, which can be used as a potential new approach in promoting regeneration of the damaged tissue.

Stems cells are continuously investigated as potential treatments for individuals with myocardial damage, however, their decreased viability and retention within injured tissue can impact their long-term efficacy. In this manuscript we describe an alternative method for stem cell delivery in a murine model of ischemia reperfusion injury.

Bir Murine Modelinde İskemi Reperfüzyon Yaralanması Sonrası Kök Hücrelerin Gecikmiş İntramiyokardiyal Teslimi

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, ...

A Rat Lung Transplantation Model of Warm Ischemia/Reperfusion Injury: Optimizations to Improve Outcomes

From our experience with rat lung transplantation, we have found several areas for improvement. Information in the existing literature regarding methods for choosing appropriate cuff sizes for the pulmonary vein (PV), pulmonary artery (PA), or bronchus (Br) are varied, thus making the determination of proper cuff size during rat lung transplantation an exercise of trial and error. By standardizing the cuffing technique to use the smallest effective cuff appropriate for the size of the vessel or bronchus, one can make the transplantation procedure safer, faster, and more successful. Since diameters of the PV, PA, and Br are related to the body weight of the rat, we present a strategy to choosing an appropriate size using a weight-based guide. Since lung volume is also related to body weight, we recommend that this relationship should also be considered when choosing the proper volume of air for donor lung inflation during warm ischemia as well as for the proper volume of PBS to be instilled during bronchoalveolar lavage (BAL) fluid collection. We also describe methods for 4th intercostal space dissection, wound closure, and sample collection from both the native and transplanted lobes.

Here, we present optimizations to a rat lung transplantation model that serve to improve outcomes. We provide a size guide for cuffs based on body weight, a measurement strategy to ascertain the 4th intercostal space, and methods of wound closure and BAL (bronchoalveolar lavage) fluid and tissue collection.

Sıcak iskemi / reperfüzyon hasarının bir sıçan akciğer transplantasyon modeli: sonuçları iyileştirmek için optimizasyonlar

From our experience with rat lung transplantation, we have found several areas for improvement. Information in the existing literature regarding methods ...

Induction of Myocardial Infarction and Myocardial Ischemia-Reperfusion Injury in Mice

Acute myocardial infarction is a common cardiovascular disease with high mortality. Myocardial reperfusion injury can counteract the beneficial effects of heart reflow and induce secondary myocardial injury. A simple and reproducible model of myocardial infarction and myocardial ischemia-reperfusion injury is a good tool for researchers. Here, a customizable method to create a myocardial infarction (MI) model and MIRI by precision ligation of the left anterior descending coronary artery (LAD) through micromanipulation is described. Accurate and reproducible ligature positioning of the LAD helps obtain consistent results for heart injury. ST-segment changes can help to identify model accuracy. The serum level of cardiac troponin T (cTnT) is used to assess the myocardial injury, cardiac ultrasound is employed to evaluate the myocardial systolic function, and Evans-Blue/triphenyl tetrazolium chloride staining is used to measure infarct size. In general, this protocol reduces procedure duration, ensures controllable infarct size, and improves mouse survival.

Here we describe a simple and reproducible method that can induce myocardial infarction or myocardial ischemia-reperfusion injury in mice by precision ligation of the left anterior descending coronary artery through micromanipulation.

Farelerde Miyokard Enfarktüsü ve Miyokard İskemi-Reperfüzyon Hasarının İndüksiyonu

Acute myocardial infarction is a common cardiovascular disease with high mortality. Myocardial reperfusion injury can counteract the beneficial effects of ...

Left Coronary Artery Ligation: A Surgical Murine Model of Myocardial Infarction

Ischemic heart disease and subsequent myocardial infarction (MI) is one of the leading causes of mortality in the United States and around the world. In order to explore the pathophysiological changes after myocardial infarction and design future treatments, research models of MI are required. Permanent ligation of the left coronary artery (LCA) in mice is a popular model to investigate cardiac function and ventricular remodeling post MI. Here we describe a less invasive, reliable, and reproducible surgical murine MI model by permanent ligation of the LCA. Our surgical model comprises of an easily reversible general anesthesia, endotracheal intubation that does not require a tracheotomy, and a thoracotomy. Electrocardiography and troponin measurement should be performed to ensure MI. Echocardiography at day 28 after MI will discern heart function and heart failure parameters. The degree of cardiac fibrosis can be evaluated by Masson's trichrome staining and cardiac MRI. This MI model is useful for studying the pathophysiological and immunological alterations after MI.

Presented here is a surgical procedure for permanent ligation of the left coronary artery in mice. This model can be used to investigate the pathophysiology and associated inflammatory response after myocardial infarction.

Sol Koroner Arter Ligasyonu: Miyokard Enfarktüsünün Cerrahi Murin Modeli

Ischemic heart disease and subsequent myocardial infarction (MI) is one of the leading causes of mortality in the United States and around the world. In ...