The study was supported by research grants from the Roche Organ Transplant Research Foundation (ROTRF) and Astellas. Markus Selzner was supported by an ASTS Career Development Award. Matthias Knaak was supported by the Astellas Research Scholarship. We thank Uwe Mummenhoff and the Birmingham family for their generous support.

Tüm hayvanlar &#39;Sağlık, Ontario, Kanada Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından yayınlanan Tıbbi Araştırma ve&#39; &#39;Laboratuvar Hayvanları Bakım için Kılavuzu&#39; Ulusal Derneği tarafından formüle &#39;Laboratuar Hayvan Bakımı İlkeleri&#39; ile uyumlu insancıl bakım almış . Toronto Genel Araştırma Enstitüsü Hayvan Bakım Komitesi, tüm çalışmalarını onayladı. 1. Organ Alma <ol><li> Transplantasyon öncesi 1 hafta boyunca araştırma tesisi 30 ile 35 kg arasında Ev erkek Yorkshire domuz (perfüzyon en sonuç 10,11 değiştirebilir) ve konut koşulları hayvanların iklime alıştırmak için bir stres kaynaklı fiziksel reaksiyonu önlemek için. Önceden anestezi indüksiyonuna 6 saat en az domuz Hızlı. </li><li> Ketamin (25 mg / kg) ve atropin (0,04 mg / kg) ve midazolama (0.15 mg / kg) içindeki bir karışımı içeren bir intramüsküler (im) enjeksiyon yoluyla donör domuz anestezisi. </li&gt; <li> Entübasyon önce, domuz kendiliğinden izofluran% 5 ile dozlanmış oksijenin 2 L nefes emin olun. Sırtüstü pozisyonda, vokal kord spazmları önlemek için entübasyon öncesi% 2 lidokain 2 dakika ile ses telleri sprey. 35 kg&#39;lık domuz için 6.5 Fr trakeal tüp kullanın. Oda havası 5 ml - 3 trakeal tüp engelleyin. </li><li> Entübasyon sonrası, doğru entübasyon onaylamak için Kapnometri kullanın. Domuz kuyruk pulse oksimetre ile kalp hızı ve oksijen doygunluğu izleyin. % 2 izofluran buharlaştırıcı indirin. <ol><li> Minimal alveoler konsantrasyon (MAC) değerlere göre anestezi derinliğini ayarlayın; 2.5 MAC - 2 hedefliyoruz. 16 nefes / dk ve 10 bir tidal volüm - - 15 ml / kg vücut ağırlığı 14 ventilatör ayarlayın. </li></ol></li><li> Ringer Laktat solüsyonu (200 mi / saat) infüzyonuna olanak tanımak üzere, kulak damarlarının birinde 18 G, intravenöz (iv), kateter yerleştirin. Domuz fırçalayın ve steril örtüler ile örtün. </li><li> Steril koşullar sağlandıktan sonra, orta hat laparotomi FOLLO yapmakBir sol yanal uzantısı tarafından evlenmek. Sol tarafta onları geçmeden önce büyük ve küçük bağırsakları kapsayacak şekilde bir havlu kullanın. </li><li> Falciform bağı ve bir koter kullanılarak üçgen ligament bölün. </li><li> Elektro-koter kullanılarak sağ taraftaki diyaframdan karaciğer bırakın; kava ve diyafram arasındaki üst kısmı için makas kullanın. Sağ tarafta adrenal ven ve sol tarafta renal ven dal aşağı infrahepatic cava parçalara ayır. </li><li> Infrahepatic cava ve birbirlerinden uzak aorta Ayrı; omurga aort dalları bağlayan; yalıtmak ve yapışık dokudan serbest renal arter. 2-0 kravat ile her renal arter Surround. </li><li> Kranial sol renal vene, aort ve mezenterik arter teşrih. 2-0 kravat ile mezenterik arter Surround. </li><li> Mezenterik arter için periton kranial açtıktan sonra, dikkatlice çölyak gövde doğru aorta izleyin. A.Ş. portal kaudal çölyak gövde teşrihiçinde; hangi dal posteriora çölyak gövde kapalı dalak ve sol gastrik arterler, surround. Portal ven kapalı çölyak gövde parçalara ayır. </li><li> Pankreas ve portal ven arasındaki periton kesi ile portal ven serbest bırakın. Portal ven pankreas drenaj damarlar kapalı kravat. </li><li> Hepatoduodenal ligament safra kanalı ayırın ve distale bağlanmasından sonra bölmek. </li><li> Lenfatik kaçağını önlemek için hepatoduodenal ligament içinde lenf damarları Arter. Bağları arasındaki gastroduodenal arter ve sağ gastrik arterler bölün. Daha küçük damarlar Arter. </li><li> Kalp ve çölyak gövde arasındaki diyaframın arkasında aorta parçalara ayır. Çölyak gövde aorta kafatasın etrafında 2-0 kravat yerleştirin. </li><li> Safra kesesi ve safra kesesi çıkarın yataktan herhangi bir kanama dağlamak. </li><li> Diyaframı açın. Intrakardiyak heparin 1000 IU / kg donör ağırlığı yönetmek veya iv elde etmek için% 5 (&gt; 2.5 MAC) için izofluran ayarlayındaha derin bir anestezi düzeyi. Dolaşım ölüm (DCD) modeli sonra donör için, heparin uygulamasından sonra 40 mval KCI 3 dakika Intracardial enjeksiyonu ile kardiyak arrest neden olur. Sıcak iskemi başlangıç ​​noktası olarak ayarlayın kardiyak arrest. </li><li> Böbrek, dalak, mezenterik ve sol gastrik arterler etrafında önceden ayarlanmış bağları kapalı kravat. Renal ve iliak arterler arasında distal aort kapalı kravat ve bir organ floş hattı ile aorta cannulate. </li><li> Olarak proksimale mümkün olduğunca portal ven kapalı kravat ve başka bir organ floş hat ile cannulate. </li><li> Proksimal aort etrafında önceden belirlenen kravat kapattıktan sonra, aort (basınç torba) ve portal ven (yerçekimi güdümlü) üzerinden çift perfüzyon kullanarak Wisconsin (UW) çözümü soğuk Üniversitesi 2 L karaciğer yıkayın. </li><li> Uzun kalan bütün gemileri bırakarak, karaciğer tüketim. Suprahepatik cava çevresinde cömert diyafragma jant bırakın. Buz üzerinde steril bir organ torbaya karaciğer yerleştirin. </li><li> Arka masa hazırlama, cl sırasındaBir Satinsky kelepçe kullanarak suprahepatik cava amp ve portal ven çıkış temizlenene kadar retrograd alt inferior vena kava yoluyla karaciğer UW solüsyonu yaklaşık 0.5 L ile ikinci kez yıkayın. </li><li> Aort ve çölyak gövdenin tüm arteriyel dalları kapalı kravat. UW solüsyonu 12 geri kalan 0,5 L arteriyel geri tablo basınç perfüzyon gerçekleştirin. </li><li> UW solüsyonu kullanarak safra kanalını yıkayın. </li><li> İyi bir boyuta diyafragma yama Trim. Tüm frenik damarları kapatın - genellikle 3, 1, her sol ve sağ, ve 1 arka - 4-0 monofilaman polipropilen dikiş kullanarak. </li><li> Organ çanta kapatın ve buz üzerinde karaciğer depolar. </li></ol> 2. Alıcı Hepatektomi <ol><li> Ketamin (25 mg / kg) ve atropin (0,04 mg / kg) ve midazolama (/ kg, 0.15 mg) oluşan bir karışım bir İM enjeksiyon ile alıcı domuz anestezisi. </li><li> Bir ısıtma mat üzerine bir ameliyat masasının üzerine sırt üstü yatar pozisyonda domuz yerleştirin. Domuz wi KapakBir ısı dolaşan battaniye th. </li><li> Entübasyon önce, domuz kendiliğinden izofluran% 5 ile dozlanmış oksijenin 2 L nefes emin olun. Vokal kord spazmları önlemek için entübasyon öncesi% 2 lidokain 2 dakika ile ses telleri püskürtün. 35 kg&#39;lık domuz için 6.5 Fr trakeal tüp kullanın. Oda havası 5 ml - 3 trakeal tüp engelleyin. </li><li> Entübasyon sonrası, doğru entübasyon onaylamak için Kapnometri kullanın. Domuz kuyruk pulse oksimetre ile kalp hızı ve oksijen doygunluğu izleyin. Yerleştirin ve domuz burnu içine bir sıcaklık probu düzeltmek. % 2 (- 2,5 MAC 2 hedefleyin) izofluran buharlaştırıcı indirin. 16 nefes / dk ve 10 bir tidal volüm - - 15 ml / kg vücut ağırlığı 14 ventilatör ayarlayın. </li><li> Anestezi altında iken kuruluğunu önlemek için gözleri merhem kullanın. </li><li> Sol dış juguler ven içine bir kılıf indükleyici (8.5 Fr) eklemek için Seldinger tekniği 13 kullanın. Etkin bir portal-kaval-juguler bypass için daha sonra bu kateter kullanın. </li><li> Seldinger techniqu kullanıne sağ eksternal juguler damara bir total parenteral beslenme (TPN) kateter (9.5 Fr) ekleyin. </li><li> Steril koşullar altında, sağ karotis arter incelemek ve invaziv arter basıncı izleme için polipropilen kateter (18 G) yerleştirin. Acil ligasyonu izin vermek için 2-0 ipek kravat ile arteri Surround. </li><li> % 1 izofluran buharlaştırıcı aşağı çevirin (1,5-2 MAC) ve propofol eklemek - anestezi derinliğini korumak için (5 8 mg / kg / saat iv). Analjezi için sürekli iv fentanil sitrat infüzyonu (en çok tercih edilen, 2 ug / kg / saat) veya remifentanil (ikinci seçenek, 15 ug / kg / saat) kullanın. </li><li> Cilt kesisi önce sefuroksimin 1000 mg ve metronidazol iv 500 mg. 150 ml / saat% 5 glükoz ile Ringer Laktat kullanılarak bir enfüzyon pompası ayarlayın. </li><li> Baş ve boyun bölgesinde üzerine ısı dolaşan battaniye koyun. Domuz fırçalayın ve steril örtüler ile örtün. </li><li> Steril koşullar altında, bir orta hat laparotomi olun. Abdominal r takınetractor sağ üst kadranda yeterli erişim elde etmek. </li><li> Falciforme ligament ve koter kullanılarak üçgen ligament bölün. </li><li> Birden adımlarda, bağları arasındaki karaciğere yakın triadın bölün. Belirlemek bölmek ve hepatik arter ve safra yollarının dalları işaretleyin. </li><li> Gastroduodenal arter bölünmesi kadar retrograd hepatik arter parçalara ayır. Bir bulldog kelepçe sonra sıkma için gastroduodenal arterin ortak hepatik arter proksimalinde etrafında oturduğundan emin olun. </li><li> Yapışık dokudan portal ven boşaltın. </li><li> Elektro-koter kullanılarak sağ taraftaki retroperitoneal gelen vena kava harekete geçmek. Kava ve diyafram arasındaki üst kısmı için makas kullanın. Sağ tarafta adrenal ven ve sol tarafta renal ven dal aşağı infrahepatic cava parçalara ayır. </li><li> Dalak hilusu Açığa. Yaklaşık yarım dalak uzunluğu, dikkatle net boyuncayapıştırılır periton katmanlardan splenik arter ve ven f. 4 2-0 ipek kravatlar hem dalak arter ve ven çevreliyor. </li><li> Portal ven doğru distale işaret splenik vene kateter ucunda 2 ek delikleri olan 8.5 Fr kılıf inducer yerleştirin. 2-0 bağları biri ile sokulmasından distal kateter sabitleyin ve başka 2-0 kravat ile yerleştirilmesi için damar proksimal kapatın. Açık diğer 2 bağları bırakın. </li><li> Kateter kan çizin tuzlu 10 ml ile yıkayın ve kateterin kelepçesini kapatın. </li><li> &quot;&quot; (Ve bir kaval dalı (1/4 portal dalı 3/16) hem ve girişi bir santrifüj pompa kafası, bir boyun tüp (3/16) &quot;proksimalinde üzerine, Luer Lock konektörü oluşan bir bypass içine tuzlu su doldurun Açılış). Kaval boru yakın ucuna bir boru kelepçe koyun. </li><li> Portal hem kılıf introduser kateterler (Şekil 1) bypass boyun açılış bağlayın ve Conne mühürmetal hortum kelepçesi halka ile ction. Kendi pompa konumuna santrifüj pompa kafasını yerleştirin. </li><li> Traneksamik asitin 1.000 mg ve kros-klemp önce heparin 3 dk iv 10.000 IU ver. Anhepatik fazın kez 2 mg / kg / saat propofol oranını azaltır. Arter basıncı ve domuz reaktivitesi izofluran konsantrasyonu ayarlayın. </li><li> Kılıf introduser kateter ve çapraz klemp portal ven hem de kelepçeleri açın. O kan pasif bypass üzerinden çalışan olduğundan emin olun. </li><li> / Dak yaklaşık 1.500 mermi de santrifüj pompa başlatın. A) domuz cardiovascularly kararlıdır ve b) by-pass yaklaşık 500 ml / dakika ile çalışıyorsa, çapraz kenetleme devam edin. Domuz çapraz klemp, yedek hacmi (kristaloidler veya kolloidler) ve inotrop ajanlar (küçük boli norepinefrin) tahammül etmezse. </li><li> Cross De Bakey-Beck kelepçe kullanarak böbrek damarlarında sadece kranial infrahepatic vena kava kelepçe. Karaciğer Tiss üzerine firma basınç uygulayınue kalan kan bir kısmını dışarı sıkmak. Kaudal karaciğer geri çekilmeden ederken Satinsky kelepçe kullanarak bir diyafram jant dahil suprahepatik vena kava Çapraz kelepçe. </li><li> Karaciğer dokusu kendi sınırında doğrudan suprahepatik vena kava kesin. Sonra, hepatik hilusta yakın portal ven kesti. </li><li> Infrahepatic cava kelepçe yaklaşık 4 cm kranial, vena kava ön duvarında bir delik kesti. Bu deliğe, Luer Lock öne bakacak şekilde bypass &#39;kaval açılması konnektörünü yerleştirin. </li><li> 1-0 ipek kravatlar ile infrahepatic kava konektörü sabitleyin. Ardından, bypass kaval şube boru kelepçesini açın. </li><li> Son olarak, mevcut porto-juguler bypass ek olarak, bir kaval-juguler bypass izin vermek için infrahepatic kava kelepçeyi açmak. Yaklaşık 2.500 mermi / dak pompa hızını arttırın böyle juguler tarafta bypass çıkışı 900 arasında olduğunu - 1,100 ml / dak. </li><li> Kalan c karaciğer tüketimonnection infrahepatic bypass konnektörüne kranial, sağlanması bypass bağlantı sağlamak bağları kesilmiş olmadığını. Dolaştırmaktan önlemek için dikkatli boru bypass yerleştirin. Immünosupresyonu başlatmak için metilprednizolon 500 mg verin. </li></ol> 3. Gemi İmar <ol><li> Yakın 4-0 monofilaman polipropilen sütür, suprahepatik Cava en diyafram açıklığında alıcı tarafındaki 3 frenik ven ostia kullanma. Alıcı tarafında suprahepatik cava her iki köşelerinde iç-dış çift silahlı 4-0 monofilaman polipropilen sütür Dikiş. </li><li> Buz kutusundan donör organ çantayı çıkarın. Organ çanta açın, donör karaciğer çıkarın ve karın boşluğuna yerleştirin. </li><li> Suprahepatik cava uçtan-uca anastomoz için, alıcı tarafı sığdırmak için donör suprahepatik vena kava kırpın. Alıcı taraf köşe dikiş iç iğneler kullanılarak, suprah yanlarındaki her birinde bir iç-dış köşe dikişi yapmakepatic donör cava. </li><li> Birlikte doğru dikiş iki ucu Shot. Daha sonra sol dikiş her iki uçlarını kravat, alıcı ve verici cava hem ostia yaklaşmaktadır. </li><li> Kısa sonu Shot ve sonraki kravat arka duvarı alıcı cava bir dış-iç dikişi yapmak. Ideal cava duvarları tersine çevrilmesi, arka duvarın üzerinden çalıştırın. </li><li> Sağ tarafı ulaşıldıktan sonra aynı dikiş ile 2-3 ön duvar dikiş ekleyin, sonra bu dikiş sonunu vurdu. Sol köşesinde kalan sütür kullanarak ön duvarın üzerinden çalıştırın. Birlikte ön ve arka duvarlar için kullanılan her iki sütür kravat. Sağ köşede, diğer iki dikiş sonları kravat. </li><li> Uygun uzunlukta verici portal ven kırparak sonra, 6-0 monofilaman polipropilen sütür kullanılarak, aynı şekilde bir uçtan-uca portal ven anastomoz yaparlar. Kısa bir süre ön duvarın ile bitirmeden önce başka bir floş hattı ile infrahepatic cava lümeni entübe ve tuzlu 1 L UW solüsyonu dışarı floşoda sıcaklığında infrahepatic cavaportal damarından. </li><li> Anastomoz tamamlayın ve büyüme faktörü yaklaşık 0,5 cm bırakarak, sütürler kravat. Başka De Bakey- Beck donör infrahepatic cava üzerine kelepçe koyun. </li><li> Suprahepatik kava kelepçesini açın ve kanama kontrol edin. Ardından, portal kelepçe açarak karaciğer reperfüzyonunu. </li><li> Hemostatik dikişler için 6-0 monofilaman polipropilen sütür kullanın. Yaklaşık 1.500 mermi / dak bypass pompanın hızını düşürün ve portal kılıf introduser kateterin kelepçesini kapatın. </li><li> Infrahepatic vena kava alıcı tarafını Reclamp ve bypass kaval parçası üzerinde tüp kelepçe koydu. Santrifüj pompa durdurun. </li><li> Kaval bağlacının bağlarını kesin ve çıkarın. Juguler kateter yoluyla domuz bypass kalan kanı dönün. </li><li> Boyun kateter kelepçe kapatın ve bypass ayırın. Heparin antagonize protamin sülfat, 100 mg. Pi özel dikkatBu adımlar sırasında g&#39;nin hemodinamik; Metabolik asidoz için basınç desteği ve yedek sodyum bikarbonat için katekolamin kullanın. </li><li> 5-0 monofilaman polipropilen dikiş kullanılarak, yukarıda tarif edilen şekilde tekrar infrahepatic cava bir uç-uca anastomoz gerçekleştirin. Her iki kelepçeler bırakarak infrahepatic alt cava reperfüzyonunu. </li><li> Vericinin çölyak gövde etrafında bir aort yama kesin. Ortak hepatik artere yakın alıcı gastroduodenal arter kapalı kravat. Gastroduodenal arter kavşağına proksimalde ortak hepatik arter üzerine bulldog kelepçe koyun. Kavşağında etrafında damar dokusu kullanılarak, bir Potts makas ile küçük bir arter yama kesin. </li><li> Heparinize salin 10 ml donör hepatik arter yıkayın ve başka bulldog daha distale kelepçe kanama geri önlemek için koydu. 6-0 monofilaman polipropilen sütür kullanılarak, bir çalışan paraşüt tekniği arteriyel ostia uçtan uca anastomoz. İlk ope tarafından reperfüzyonununing distal ve proksimal bulldog kelepçeler. </li><li> Yukarıda açıklanan çalışan tekniği kullanarak 2 6-0 monofilaman polipropilen sütür ile safra kanalı uçtan uca anastomoz. Domuz safra kanalı çok kırılgan olduğu ve kolayca gözyaşları çünkü peribiliary dokusunun büyük bölümlerini dahil edildiğinden emin olun. </li><li> Hemostaz için kontrol ettikten sonra, dalak ven kılıf introduser kateteri çıkarın. Kalan 2 bağları olan proksimal ve distal uçlarını kapatın. </li><li> Bir boyutu 1 monofilament emilebilir sütür ile karın duvarı kapatın. Bir cilt zımba veya herhangi bir çalışan 2-0 dikiş ile cilt ya kapatın. </li></ol> 4. Post-operatif Faz <ol><li> Domuz sıcak tutmak için ısıtma yastığı ve ısı dolaşan battaniye kullanın. </li><li> Saatlik örnek kan gazları. Infüzyon hızını artırarak dehidratasyon ayarlayın. </li><li> Anestezi vazgeçirmek. 2 saat daha domuz havalandırın. </li><li> A.Ş. sol juguler gelen kılıf introduser kateteri kaldıriçinde. basın birkaç dakika kanamayı önlemek için sıkıca için. </li><li> Tünel domuz boynunun yanına TPN kateter subkutan. 2-0 sütür ile sabitleyin. </li><li> Domuz katekolamin desteği olmadan hemodinamik olarak stabil ise 2 saat sonra arteriyel hattını sökün. Delinme tarafı kanama olmadığından emin olun. Aksi takdirde, arter kapatmadan arter delik etrafında 6-0 purse-string dikişi yapmak. Kesi siteyi kapatın. </li><li> Domuz bağımsız nefes yapabiliyor kez havalandırmayı durdurun. Trakeal tüpten havalandırma hortumunu ayırın. Domuz yeterince nefes olup olmadığını tekrar tekrar kontrol edin. </li><li> Bir ısıtma lambası ile donatılmış tek bir hayvan kalem içine yüzükoyun pozisyonda domuz yerleştirin. Tüpü domuz kez bağımsız başını tutmak mümkün değildir. Bu sternal yatma korumak için yeterli bilinci yerine kadar gözetimsiz bir hayvan bırakmayın. Ev tüm post-operatif dönem için ayrı ayrı domuz. </li><li> Sağlamakameliyat sonrası yeterli iv ağrı kesici (örneğin, buprenorfin 0,01-0,05 mg / kg her 6 saat). </li><li> Domuz bağımsız içki yoksa, yeterli hacim iv yerine </li><li> Immunsupresyon olarak metilprednizolon (250 mg ameliyat sonrası gün (POD) 1 sabah ve ardından 125 mg her sabah) devam edin. Ilgili POD2 arasında günde iki kez 2 mg / kg po sefalosporin başlatın. </li><li> Metronidazol, 500 mg ve günde iki defa sefazolin 1000 mg, ve günde bir kez POD3 kadar pantoprazol 20 mg uygulayın. </li><li> Yakından domuz izleyin. Bu acı belirtileri gösterir eğer feda etmeye tereddüt etmeyin (örneğin, uyuşukluk, reddedenlerde, kalıcı asidoz veya hipoglisemi veya kanama ya da peritonit belirtileri içmek için). Ötenazi için suprahepatik cava keserek derin izofluran anestezisi (% 5,&gt; 2.5 MAC) kapsamında domuz asıl bulbus olfaktoryusları alındı. </li></ol>

<ol>
	<li>Mehrabi, A., Fonouni, H., Muller, S. A., Schmidt, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+concepts+in+transplant+surgery:+liver+transplantation+today.">Current concepts in transplant surgery: liver transplantation today.</a> Langenbecks Arch. Surg. 393 (3), 245-260 (2008).</li><li>Qiu, J., Ozawa, M., Terasaki, P. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liver+transplantation+in+the+United+States.">Liver transplantation in the United States.</a> Clin. Transpl. , 17-28 (2005).</li><li>Chalstrey, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Technique+of+orthotopic+liver+transplantation+in+the+pig.">Technique of orthotopic liver transplantation in the pig.</a> Br. J. Surg. 58 (3), 585-588 (1971).</li><li>Esmaeilzadeh, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Technical+guidelines+for+porcine+liver+allo-transplantation:+a+review+of+literature.">Technical guidelines for porcine liver allo-transplantation: a review of literature.</a> Ann. Transplant. 17 (2), 101-110 (2012).</li><li>Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Observations+of+orthotopic+liver+transplantation+in+the+pig.">Observations of orthotopic liver transplantation in the pig.</a> Br. Med. J. 2 (5550), 478-480 (1967).</li><li>Memsic, L., Quinones-Baldrich, W., Kaufman, R., Rasool, I., Busuttil, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+porcine+orthotopic+liver+transplantation+using+a+venous-venous+bypass+with+and+without+a+nonpulsatile+perfusion+pump.">A comparison of porcine orthotopic liver transplantation using a venous-venous bypass with and without a nonpulsatile perfusion pump.</a> J. Surg. Res. 41, 33-40 (1986).</li><li>Torres, O. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hemodynamic+alterations+during+orthotopic+liver+experimental+transplantation+in+pigs.">Hemodynamic alterations during orthotopic liver experimental transplantation in pigs.</a> Acta. Cir. Bras. 23 (2), 135-139 (2008).</li><li>Battersby, C., Hickman, R., Saunders, S. J., Terblanche, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liver+function+in+the+pig.+1.+The+effects+of+30+minutes'+normothermic+ischaemia.">Liver function in the pig. 1. The effects of 30 minutes' normothermic ischaemia.</a> Br. J. Surg. 61 (1), 27-32 (1974).</li><li>Smith, A. C., Swindle, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+swine+for+the+laboratory.">Preparation of swine for the laboratory.</a> Ilar. J. 47 (4), 358-363 (2006).</li><li>Swindle, M. M., Smith, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Best+practices+for+performing+experimental+surgery+in+swine.">Best practices for performing experimental surgery in swine.</a> J. Invest. Surg. 26 (2), 63-71 (2013).</li><li>Moench, C., Moench, K., Lohse, A. W., Thies, J., Otto, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+ischemic-type+biliary+lesions+by+arterial+back-table+pressure+perfusion.">Prevention of ischemic-type biliary lesions by arterial back-table pressure perfusion.</a> Liver Transpl. 9 (3), 285-289 (2003).</li><li>Koski, E. M., Suhonen, M., Mattila, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasound-facilitated+central+venous+cannulation.">Ultrasound-facilitated central venous cannulation.</a> Crit. Care Med. 20 (3), 424-426 (1992).</li><li>Lange, J. J., Hoitsma, H. F., Meijer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anaesthetic+management+in+experimental+orthotopic+liver+transplantation+in+the+pig.">Anaesthetic management in experimental orthotopic liver transplantation in the pig.</a> Eur. Surg. Res. 16 (6), 360-365 (1984).</li><li>Kaiser, G. M., Heuer, M. M., Fruhauf, N. R., Kuhne, C. A., Broelsch, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=General+handling+and+anesthesia+for+experimental+surgery+in+pigs.">General handling and anesthesia for experimental surgery in pigs.</a> J. Surg. Res. 130 (1), 73-79 (2006).</li><li>Heuer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liver+transplantation+in+swine+without+venovenous+bypass.">Liver transplantation in swine without venovenous bypass.</a> Eur. Surg. Res. 45 (1), 20-25 (2010).</li><li>Gruttadauria, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Porcine+orthotopic+liver+autotransplantation:+facilitated+technique.">Porcine orthotopic liver autotransplantation: facilitated technique.</a> J. Invest. Surg. 14 (2), 79-82 (2001).</li><li>Falcini, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Veno-venous+bypass+in+experimental+liver+transplantation:+portal-jugular+versus+caval-portal-jugular.">Veno-venous bypass in experimental liver transplantation: portal-jugular versus caval-portal-jugular.</a> G. Chir. 11 (4), 206-210 (1990).</li><li>Filipponi, F., Benassai, C., Falcini, F., Martini, E., Cataliotti, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biliary+tract+complications+in+orthotopic+liver+transplantation:+an+experimental+study+in+the+pig.">Biliary tract complications in orthotopic liver transplantation: an experimental study in the pig.</a> Ital. J. Surg. Sci. 19 (2), 131-136 (1989).</li><li>Terblanche, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+homotransplantation:+an+experimental+study+in+the+unmodified+pig.">Orthotopic liver homotransplantation: an experimental study in the unmodified pig.</a> S. Afr. Med. J. 42 (20), 486-497 (1968).</li><li>Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prolonged+survival+of+liver+transplants+in+the+pig.">Prolonged survival of liver transplants in the pig.</a> Br. Med. J. 4 (5580), 645-648 (1967).</li><li>Battersby, C., Egerton, W. S., Balderson, G., Kerr, J. F., Burnett, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Another+look+at+rejection+in+pig+liver+homografts.">Another look at rejection in pig liver homografts.</a> Surgery. 76 (4), 617-623 (1974).</li><li>Net, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+normothermic+recirculation+is+mediated+by+ischemic+preconditioning+in+NHBD+liver+transplantation.">The effect of normothermic recirculation is mediated by ischemic preconditioning in NHBD liver transplantation.</a> Am. J. Transplant. 5 (10), 2385-2392 (2005).</li><li>Guarrera, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothermic+machine+perfusion+of+liver+grafts+for+transplantation:+technical+development+in+human+discard+and+miniature+swine+models.">Hypothermic machine perfusion of liver grafts for transplantation: technical development in human discard and miniature swine models.</a> Transplant Proc. 37 (1), 323-325 (2005).</li><li>Minor, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothermic+reconditioning+by+gaseous+oxygen+improves+survival+after+liver+transplantation+in+the+pig.">Hypothermic reconditioning by gaseous oxygen improves survival after liver transplantation in the pig.</a> Am. J. Transplant. 11 (12), 2627-2634 (2011).</li><li>Kelly, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Porcine+partial+liver+transplantation:+a+novel+model+of+the+'small-for-size'+liver+graft.">Porcine partial liver transplantation: a novel model of the 'small-for-size' liver graft.</a> Liver Transpl. 10 (2), 253-263 (2004).</li><li>Meijer, S., Hoitsma, H. F., Visser, J. J., de Lange, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long+term+survival+following+orthotopic+liver+transplantation+in+pigs;+with+special+reference+to+gastric+ulcer+complications.">Long term survival following orthotopic liver transplantation in pigs; with special reference to gastric ulcer complications.</a> Neth. J. Surg. 36 (6), 168-171 (1984).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Deneysel domuz OLTx bir klinik senaryo yoğun bakım kaynaklarının olmadan bir araştırma ayarı için zorlu bir işlemdir. Olası komplikasyonlar hemodinamik instabilite, kanama, organ iskemi, hipotermi ve metabolik yanı sıra solunum, dekompansasyona içerir. Herhangi bir araştırma grubu için, cerrahi teknik 5. yanı sıra domuz anestezi 14,15 yeterli usul eğitim temsilcisi ve tekrarlanabilir sonuçlar elde etmek için zorunludur. Pek çok teknik inceliklerini özellikle de vasküler yeniden faz 5 ile ilgili olarak, literatürde tarif edilmiştir. Yukarıda tarif edilen OLTx protokolü insan OLTx andıran bir kava-yerine model için gerekli bilgileri sağlar. sağlanan sonuçlar hem HBD ve DCD modellerinde güvenilir hayvan hayatta kalma ve greft kurtarma göstermektedir. protokol greft reperfüzyon deneyimlerini kullanılan kısa vadeli sağkalım senaryolarda uygulanabilirdeney * yapılan örneğin, örneğin, yanı sıra tolerans çalışmaları gibi uzun süreli sağkalım modelleri. Domuz OLTx Bir büyük engel cava ve portal ven çapraz klemp nispeten zayıf tolerans olduğunu. Anhepatik aşamasında splanknik tıkanıklık bile, organ reperfüzyon 7 sonra geri dönüşü olmayan bir şok noktasına en önemli intestinal iskemi ve hemodinamik istikrarsızlığa yol açabilir venöz hipertansiyon ve kapiller hasara neden olur. Vena kava tamamen karaciğer parankimi gömülü olduğundan, bir kava-koruyarak domuz geri prosedürü mümkün değildir. cava yeniden aşamasında vena kava toplam tıkanması domuz hemodinamik stabiliteyi bozar. Bir kaç rapor domuz OLTx az 25 dk 16,17 toplam cava ve portal ven tıkanıklığı esnasında yapılabilir olduğunu gösterse de, vasküler rekonstrüksiyon kez bir porto-kava-juguler bypass tekniği daha güvenli ve daha pratik bir seçenek 7- 9,18. The yazarların deneyim, pasif porto-juguler baypas anhepatik aşamasında stabil domuz hemodinamik tutmak optimal değildir. infrahepatic kava ve portal ven hem aktif dekompresyon da dahil olmak üzere bypass modeli, öngörülemeyen komplikasyonlara hatta uzun sıkıştırma süresi ile suprahepatik kaval ve portal anastomoz sakin yeniden aşamasını verir. Portal baypas kateter kaldırıldığında önceki raporlara 7 aksine, bir splenektomi zorunlu değildir. Hem splenik arter ve ven dalak uzunluğu yeterince perfüze proksimal yarısı bırakarak boyunca yarım yaklaşık kapalıdır. Nedeniyle bypass kesilmesi için kanama veya hava embolisi gibi komplikasyonlar bypass özenle yerleştirilmiş ve düzgün şekilde sabitlendiğinden emin sağlayarak önlenebilir. Uzun süreli sağkalım OLTx deneylerde, safra kanalı anastomoz nedeniyle yüksek komplikasyon oranı 19 zayıf bir nokta olarak kabul edilir. safra doku çok kırılgan ve ne olduğunueds özel bakım sırasında işlenen. Birçok farklı anastomoz teknikleri 5,19 tarif edilmiştir. Bir uç uca anastomoz teknik olarak kolay ve minimal komplikasyon 19 ile ilişkilidir. Peribiliary bağ dokusu büyük bölümleri dahil olmayan bir kesici bir iğne ile bir dikiş kesintiye uğramış bir ameliyat dikiş ipliği daha üstün olduğu görülmektedir. kesintiye ameliyat dikiş ipliğinin tek dikiş düğümlü zaman safra kanalı, gereksiz gerilim altına yerleştirilir. Bu doku gözyaşı ve ardışık safra kaçakları neden olabilir. dikiş malzemesi - emilebilen veya emilemeyen - domuz sona kadar sınırlı bir ömrü göz önüne alındığında, genellikle önemli değildir. Birkaç ay içinde uzun dönem sağkalım modeller için emilebilir dikişlerle - İnsan OLTx gibi - tercih edilir. Özel bakım post-operatif izlem alınmalıdır. Yeterli beslenme ve sıvı kaynağı, güvenilir bir ağrı kesici protokolü ve uygun bir immünsupresyonrejim zorunludur. Uzun vadeli deneyler için, immünsüpresyon özellikle önemlidir görünür. Diğer memeliler ile karşılaştırıldığında, domuzlar OLTx 20,21 sonra şaşırtıcı derecede düşük immünolojik ret oranını göstermektedir. Yuvarlak hücre infiltrasyonları nakilden sonra ikinci haftasında maksimal ve hatta immünsüpresyonun olmadan kendiliğinden azalır. Reddetme nadiren Domuz OLTx 22 sonrası ölüm nedenidir. Bununla birlikte, daha da bağışıklık bastırma protokolü burada bahsedilen tatbik steroid IV kalsineurin inhibitörleri po kapsayan ile aşı reddi OLTx sonra yaklaşık 4 gün sonra başlamak transaminaz hafif bir artış ile gösterilir ve görünür portal alan yuvarlak bir hücre infiltrasyonu ile teyit edilmiştir. Kalsinörin inhibitörleri verilir ya po 23,24 veya iv 25,26 edilebilir; Her iki yöntem de dezavantajları vardır. Hatta Oral uygulama cihazlarıyla, mide-bağırsak ulaşan gerçek miktarı belirsiz kalır. Diğer tarafta, sürekli IV infüzyonuEtkin bir hayvan ile domuz kalem zordur. Bu nedenle, iv uygulama potansiyel toksik etkiler ile birlikte, yüksek bir ilaç konsantrasyonu zirveleri ile sonuçlanan bir bolus olarak gerçekleştirilmelidir. Bununla birlikte, uygulama her iki yöntem uzun süreli sağkalım izin görünür. Bir klinik ortamda benzer şekilde, post-operatif stres ülser profilaksisi önerilir. Peptik ülser Post-operatif kanama sık görülen bir sorundur ve bozulmuş karaciğer fonksiyon 27 ile ilişkili olabilir. Her iki grupta da OLTx gastrointestinal kanama birkaç durumda sonra, yazarlar pantoprazol düzenli profilaksi başladı ve o zamandan beri herhangi bir gastrointestinal kanama deneyimim olmadı. Klinik ameliyathanede koşullarına karşılaştırılabilir intraoperatif steril koşullarda, ve bunun sonucunda antibiyotik profilaksisi sıkı bakım, enfeksiyon komplikasyon riskini azaltır. Sonuç olarak, bu makale provides bir araştırma ortamda domuz OLTx programının kurulması için pratik bilgiler. Yeterli özveri, uygulama ve takım çalışması için, öğrenme süresini azaltmak için güvenilir sonuçlar elde etmek ve maliyetleri ve araştırma hayvanların sayısını azaltmak için önemlidir.

Ortotopik karaciğer nakli (OLTx) son dönem karaciğer hastalığı ya da ileri hepatosellüler karsinom hastalarının tek tedavi seçeneğidir. Son 25 yıldır, bekleme listesinde aday sayısı giderek artmış ve artık çok mevcut greft sayısını aşıyor olmuştur. En nakli bölgelerde, karaciğer nakli için bekleme listesinde olan hastalarda 20% 30 organ nakli almadan ölmek ya da bağlı hastalığın ilerlemesine delisted edilir. Stratejiler, böylece, mevcut greft sayısı, umutsuzca ihtiyaç vardır, donör havuzu artırmak ve. Genişletilmiş kriterler Organ tahsisi, uzun süreli greft korunması ve immünolojik tolerans indüksiyon hala önemli klinik zorlukları 1-3 temsil etmektedir. Bu nedenle, deneysel OLTx araştırmaları klinik OLTx uygulamayı optimize etmek için çok önemlidir. Domuz OLTx l dahil olmak üzere pek çok yönden, insan OLTx benzer bir köklü deneysel bir modeliver boyutu, anatomi, fizyoloji ve 4-6. Bu nedenle, bu tür cerrahi teknikler, fizyoloji, immünoloji, korunması ve iskemi-reperfüzyon hasarı olarak araştırma alanlarında bir standart deneysel bir yöntem haline gelmiştir. Greft tedarik alıcı hepatektomi, ve özellikle de vasküler yeniden, çok sayıda teknikler literatürde 5&#39;te tarif edilmiştir. Uygun tekniğinin seçimi araştırmacının tercihi ve teknik kapasitesine göre değişir. İnsan senaryoda aksine, anhepatik aşamasında splanknik tıkanıklığı domuz OLTx önemli bir problem teşkil etmektedir. Müteakip intestinal iskemi ve konjestif damar hasarı, böylece, deney 7-9 başarısını domuz hayatta kalma tehlikeye, ciddi hemodinamik kararsızlığa neden olabilir ve. Bu nedenle, yeterli bağırsak dekompresyon özellikle daha az teknik rafine deneysel ortamlarda, zorunludur. Bizianhepatik faz süresince aktif porto-kaval-juguler şantı ing bağırsak tıkanıklığı önlemek için güvenilir bir seçenektir. Sistem erken reperfüzyon deneyleri yanı sıra uzun süreli sağkalım senaryoları için de kullanılabilir. Aşağıdaki protokol hepatektomi ve uçtan uca damar rekonstrüksiyon teknikleri ve post-operatif bakım dahil olmak üzere donör karaciğer tedarik, alıcı işlemler dahil domuzlarda istikrarlı ve tekrarlanabilir karaciğer transplantasyonu modeli için tüm bilgileri içerir.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Atropine Sulphate 15mg/30mL</td>
			<td style="width:257px;">Rafter 8 Products</td>
			<td align="right" style="width:201px;">238481</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Buprenorphine 0.3mg/mL</td>
			<td style="width:257px;">RB Pharmaceuticals LDT</td>
			<td style="width:201px;">N/A</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Cefazolin 1g</td>
			<td style="width:257px;">Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2237138</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Cyclosporin Oral Solution 5000mg/50mL</td>
			<td style="width:257px;">Novartis Pharmaceuticals Canada Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2150697</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Fentanyl Citrate 0.25mg/5mL</td>
			<td style="width:257px;">Sandoz Canada Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2240434</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Heparin 10,000iU/10mL</td>
			<td style="width:257px;">Leo Pharma A/S</td>
			<td align="right" style="width:201px;">453811</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Isoflurane 99.9%, 250mL</td>
			<td style="width:257px;">Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2231929</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Ketamine Hydrochloride&#160; 5000mg/50mL</td>
			<td style="width:257px;">Bimeda-MTC Animal Health Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">612316</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Lactated Ringer&#8217;s + 5% Dextrose, 0.5L</td>
			<td style="width:257px;">Baxter Corporation</td>
			<td align="right" style="width:201px;">61131</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Lacteted Ringer&#8217;s, 1L</td>
			<td style="width:257px;">Baxter Corporation</td>
			<td align="right" style="width:201px;">61085</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Metronidazole 500mg/100mL</td>
			<td style="width:257px;">Baxter Corporation</td>
			<td align="right" style="width:201px;">870420</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Midazolame 50mg/10mL</td>
			<td style="width:257px;">Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2242905</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Pantoprazole 40mg</td>
			<td style="width:257px;">Sandoz Canada Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2306727</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Potassium Chloride 40mEq/20mL</td>
			<td style="width:257px;">Hospira Healthcare Corporation</td>
			<td align="right" style="width:201px;">37869</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Propofol 1000mg/100mL</td>
			<td style="width:257px;">Pharmascience Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2244379</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Protamine Sulfate 50mg/5mL</td>
			<td style="width:257px;">Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2139537</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Saline 0.9%, 1L</td>
			<td style="width:257px;">Baxter Corporation</td>
			<td align="right" style="width:201px;">60208</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Sodium Bicarbonate 50 mEq/50mL</td>
			<td style="width:257px;">Hospira Healthcare Corporation</td>
			<td align="right" style="width:201px;">261998</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Solu-Medrol 500mg</td>
			<td style="width:257px;">Pfizer Canada Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2367963</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Tranexamic Acid 1000mg/10mL</td>
			<td style="width:257px;">Pfizer Canada Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2064413</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">University of Wisconsin Solution, SPS-1</td>
			<td style="width:257px;">Organ Recovery Systms</td>
			<td style="width:201px;">SPS-1</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Xylocaine Endotracheal 10mg/50mL</td>
			<td style="width:257px;">AstraZeneca</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2003767</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Appose ULC 35W skin stapler</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td align="right" style="width:201px;">803712</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Maxon, 1</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td align="right" style="width:201px;">606173</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Sofsilk, 0</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td style="width:201px;">S606</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Sofsilk, 2-0</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td style="width:201px;">S405</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Sofsilk, 3-0</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td style="width:201px;">S404</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Surgipro II, 4-0</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td style="width:201px;">VP581X</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Surgipro II, 5-0</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td style="width:201px;">VP725X</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Surgipro II, 6-0</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td style="width:201px;">VP733X</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;"></td>
			<td style="width:257px;"></td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Catheter i.v, 18 G</td>
			<td style="width:257px;">BD Canada</td>
			<td align="right" style="width:201px;">381147</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Cook TPN catheter, 9.5Fr</td>
			<td style="width:257px;">Cook Medical Company</td>
			<td style="width:201px;">C-TPNS-9.5-90</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">PSI Kit for sheath catheter, 8.5Fr</td>
			<td style="width:257px;">Arrow International</td>
			<td style="width:201px;">ASK-09803-UHN</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Infusion Pump Line</td>
			<td style="width:257px;">Smith Medical ASD Inc.</td>
			<td style="width:201px;">21-0442-25</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Liver Admin Set (flush line)</td>
			<td style="width:257px;">CardioMed Supplies Inc</td>
			<td align="right" style="width:201px;">17175</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Mallinckrodt, Tracheal Tube, 6.5mm</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td align="right" style="width:201px;">86449</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Med-Rx Suction Connecting Tube</td>
			<td style="width:257px;">Benlan Inc.</td>
			<td style="width:201px;">70-8120</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Organ Bag</td>
			<td style="width:257px;">CardioMed Supplies Inc</td>
			<td align="right" style="width:201px;">2990</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Suction Tip</td>
			<td style="width:257px;">Tyco Healthcare Group LP</td>
			<td align="right" style="width:201px;">8888501023</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Valleylab, Cautery Pencil</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td style="width:201px;">E2515H</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Valleylab, Patient Return Electrode</td>
			<td style="width:257px;">Covidien Canada</td>
			<td style="width:201px;">E7507</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;"></td>
			<td style="width:257px;"></td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Bypass Connector 3/8&#8221; x 1/4&#8220;</td>
			<td style="width:257px;">Raumedic AG</td>
			<td style="width:201px;">955083-001</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Bypass Connector 3/8&#8221; x 3/8&#8221; Luer Lock</td>
			<td style="width:257px;">Raumedic AG</td>
			<td style="width:201px;">955163-001</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Bypass Connector Y 3/8&#8221; x 3/8&#8221; x 1/4&#8221;</td>
			<td style="width:257px;">Raumedic AG</td>
			<td style="width:201px;">961360-002</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Bypass Tubing 1/4&#8221; x 1/16&#8221;</td>
			<td style="width:257px;">Raumedic AG</td>
			<td style="width:201px;">039505-010</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Bypass Tubing 3/8&#8221; x 3/32&#8221;</td>
			<td style="width:257px;">Raumedic AG</td>
			<td style="width:201px;">039535-005</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Rotaflow Cenrtifugal Pump</td>
			<td style="width:257px;">Maquet-Dynamed</td>
			<td style="width:201px;">HC 2821</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Stainless Steel Hose Clamp Ring, 5mm</td>
			<td style="width:257px;">Oetiker</td>
			<td align="right" style="width:201px;">16700007</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Abdominal Retractor</td>
			<td style="width:257px;">Medite GmbH</td>
			<td style="width:201px;">N/A</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">De Bakey &#8211; Beck, Infrahepatic Cava Clamp</td>
			<td style="width:257px;">Aesculap Inc.</td>
			<td style="width:201px;">FB519R</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Diethrich, Atraumaitc Clamp (Portal Vein)</td>
			<td style="width:257px;">Aesculap Inc.</td>
			<td style="width:201px;">FB525R</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Gregory Bull Dog Clamp, curved</td>
			<td style="width:257px;">Aesculap Inc.</td>
			<td style="width:201px;">FB382R</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Gregory Bull Dog Clamp, straight</td>
			<td style="width:257px;">Aesculap Inc.</td>
			<td style="width:201px;">FB381R</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Potts &#8211; De Martel, Scissors</td>
			<td style="width:257px;">Aesculap Inc.</td>
			<td style="width:201px;">BC648R</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Satinsky, Suprahepatic Cava Clamp</td>
			<td style="width:257px;">Aesculap Inc.</td>
			<td style="width:201px;">FB605R</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:276px;">Symetrical Tubing Clamp</td>
			<td style="width:257px;">Codman Instruments</td>
			<td align="right" style="width:201px;">198010</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Anesthesia Machine, Optimax</td>
			<td style="width:257px;">Moduflex Anesthesia Equipment</td>
			<td style="width:201px;">SN5180</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Bypass Flow meter, HT 110</td>
			<td style="width:257px;">Transonic Systems Inc.</td>
			<td style="width:201px;">HT110B11106</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Flow meter probe, H6XL</td>
			<td style="width:257px;">Transonic Systems Inc.</td>
			<td style="width:201px;">H6Xl689</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Heat Therapy Pump, T/Pump</td>
			<td style="width:257px;">Gaymar Industries Inc</td>
			<td style="width:201px;">TP500-G89D19</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Infusion Pump 3000</td>
			<td style="width:257px;">SIMS Graseby LTD.</td>
			<td style="width:201px;">SN300050447</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Isoflurane Vapor 19.1</td>
			<td style="width:257px;">Draeger Medical Canada Inc.</td>
			<td style="width:201px;">N/A</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Monitor, Datex AS 3</td>
			<td style="width:257px;">Instrumentarium Corp./ Hitachi</td>
			<td style="width:201px;">D-VHC14-23-02</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Rotaflow Centrifugal Drive Unit</td>
			<td style="width:257px;">Marquet-Dynamed</td>
			<td align="right" style="width:201px;">952301</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Rotaflow Console</td>
			<td style="width:257px;">Marquet-Dynamed</td>
			<td align="right" style="width:201px;">706035</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Temperature Therapy Pad</td>
			<td style="width:257px;">Gaymar Industries Inc</td>
			<td style="width:201px;">TP26E</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Valleylab Force Tx</td>
			<td style="width:257px;">Valleylab Inc.</td>
			<td align="right" style="width:201px;">216151480</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Ventilator, AV 800</td>
			<td style="width:257px;">DRE Medical Equipment</td>
			<td style="width:201px;">40800AVV</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:276px;">Warm Touch, Patient Warming System</td>
			<td style="width:257px;">Nellcor/ Covidien Canada</td>
			<td style="width:201px;">5015300A</td>
			<td style="width:240px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

technique of porcine liver procurement and orthotopic transplantation using an active porto-caval shunt

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation waiting list die without receiving an organ transplant or are delisted due to disease progression. Even after a successful transplantation, rejection and side effects of immunosuppression remain major concerns for graft survival and patient morbidity. 
Experimental animal research has been essential to the success of liver transplantation and still plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. In particular, the porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) is optimal for clinically oriented research for its close resemblance to human size, anatomy, and physiology. 
Decompression of intestinal congestion during the anhepatic phase of porcine OLTx is important to guarantee reliable animal survival. The use of an active porto-caval-jugular shunt achieves excellent intestinal decompression. The system can be used for short-term as well as long-term survival experiments. The following protocol contains all technical information for a stable and reproducible liver transplantation model in pigs including post-operative animal care.

Bir birinci nakil çalışma, kalp-yenerek Donör modelinde (HBD, n = 5) in situ sıcak iskemi 45 dakika maruz DCD modelinde (n = 10) ile karşılaştırılmıştır. Her iki grupta da greft alımı sonrasında 10 saat boyunca buz üzerinde muhafaza edildi. HBD grubunda, alıcı domuzların% 100 transplantasyon sonrası 5. günde izlem sonuna kadar yaşadı. DCD grubu, alıcı domuz sadece% 50 azalma ameliyat sonrası karaciğer fonksiyonu bir sonucu olarak, pıhtılaşma sorunları veya metabolik dekompansasyon nedeniyle 5 gün boyunca hayatta kaldı. Bütün kan numuneleri, merkezi venöz kateter toplanmıştır. Santrifüj işleminden sonra, serum numuneleri alındı ​​ve hepatosellüler hasarı (aspartat aminotransferaz, AST), safra fonksiyonu (total bilirubin ve alkalin fosfataz) ve karaciğer fonksiyon (INR) için analiz edilmiştir. 5 - her bir markörün zaman akışı, Şekil 2 &#39;de gösterilmiştir. <p class="jove_content"&gt; AST düzeyleri 24 saat (DCD grubunda HBD grubunda 1414 ± 538 U / L ve 2296 ± 1313 U / L, p = 0.13) sonra zirveye ulaştı ve 5 gün sonra neredeyse normal değerlere döndü. Benzer şekilde, alkalin fosfataz değerleri belirgin DCD grubunda 36 saat HBD grubu (162 ± 54 U / L; p = 0.27) ile karşılaştırıldığında (224 ± 111 U / L), sonra artmıştır. Total bilirubin HBD grubunda stabil iken (10 umol boyunca / L ≤), yavaş yavaş 5 gün (23 ± 31 umol / L; p = 0.43) kadar DCD grubunda artış göstermiştir. DCD grubunda bilirubin değerleri geniş standart sapma bu grupta tuhaf bir heterojenite safra yaralanma göstermektedir. Karaciğer fonksiyonu bir belirteci olarak INR AST değerlere benzer bir trend göstermiştir. Değerler, 24 saat zirve yaptı ve 5 gün sonra neredeyse normal değerlere restore edildi. HBD grup DCD grubuna göre 1.47 ± 0.34 bir zirve ile düşük değerler vardı (tepe 1.70 ± 0.36, p = 0.32). Şekil porto-kaval-boyun şant 1. Şema. Bypass Ringer solüsyonu ile dolu. Sonra kaval parçası bir boru kelepçesi ile kenetlendiği, boyun ve dalak parçaları önceden ayarlanmış kateter bağlı bypass açılır ve santrifüj pompa portal venöz sıkma sonra başlatılır. Karaciğer rezeksiyonu sonra, bypass kaval parçası yerleştirilir ve böbrek damarlarına kadar infrahepatic vena kava güdük kranial garantiledi. boru kelepçesi portal dekompresyon ilave olarak, kaval dekompresyon izin vermek için serbest bırakılır. <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/52055/52055fig2.jpg" /> 2. Aspartat aminotransferaz (AST) Şekil (HBD n = 5, DCD n = 10). AST hepatosellüler hasarın duyarlı bir göstergesidir. tepe kıçer 24 saat daha hepatik reperfüzyon yaralanması öne DCD grubuna göre HBD düşüktür; Daha küçük standart sapma HBD grubunda daha homojen sonuçlarını gösterir. <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/52055/52055fig3.jpg" /> Şekil 3. Toplam bilirubin (HBD n = 5, DCD n = 10). Toplam bilirubin, safra açıklık ve safra yolları bütünlüğünün bir göstergesi olarak, HBD grubunda 10 mol / L&#39;nin altına değerleri ile istikrarlı ve homojen eğilimi göstermektedir. DCD grubunda bilirubin eğrisi deney grubunda sadece bir bölümünün safra hasarı göstermektedir, zaman içinde yavaş yavaş artar ve yüksek bir standart sapma göstermektedir. <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/52055/52055fig4.jpg" /> Şekil 4. Alkalin fosfataz (HBD, n = 5, DCD n = 10). Alkalin fosfataz iSafra yaralanma bir göstergesi bu. HBD grubu için değerlerin daha düşük safra yaralanma ima DCD grubu, daha düşüktür. <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/52055/52055fig5.jpg" /> Şekil 5. INR (HBD, n = 5, DCD n = 10). Yüksek bir INR değeri koagülasyon faktörlerinin serbest düşüş nedeniyle azalan karaciğer fonksiyonu gösterir. Hem HBD ve DCD gruplarda, INR değerleri karaciğer fonksiyon kurtarma düşündüren, 5 gün nakli sonrası normal değerlere döner. HBD grubunun değerleri düşük görünür.

Watch this Scientific Journal Video about Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt at JoVE.com

Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt

Experimental animal research plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. The porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) closely resembles human conditions and is frequently used in clinically oriented research. The following protocol contains all information for a reliable porcine OLTx model using an active porto-caval-jugular shunt.

Active Porto-Caval Shunt kullanarak Domuz Karaciğer Tedarik ve Ortotopik Nakli Tekniği

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation ...

technique-porcine-liver-procurement-orthotopic-transplantation-using

Research

JoVE Journal

Medicine

16.3K Görüntüleme.  Toronto General Hospital. Experimental animal research plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. The porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) closely resembles human conditions and is frequently used in clinically oriented research. The following protocol contains all information for a reliable porcine OLTx model using an active porto-caval-jugular shunt.

Video: Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt

Orthotopic Small Bowel Transplantation in Rats

Small bowel transplantation has become an accepted clinical option for patients with short gut syndrome and failure of parenteral nutrition (irreversible intestinal failure). In specialized centers improved operative and managing strategies have led to excellent short- and intermediate term patient and graft survival while providing high quality of life 1,3. Unlike in the more common transplantation of other solid organs (i.e. heart, liver) many underlying mechanisms of graft function and immunologic alterations induced by intestinal transplantation are not entirely known6,7. Episodes of acute rejection, sepsis and chronic graft failure are the main obstacles still contributing to less favorable long term outcome and hindering a more widespread employment of the procedure despite a growing number of patients on home parenteral nutrition who would potentially benefit from such a transplant. The small intestine contains a large number of passenger leucocytes commonly referred to as part of the gut associated lymphoid system (GALT) this being part of the reason for the high immunogenity of the intestinal graft. The presence and close proximity of many commensals and pathogens in the gut explains the severity of sepsis episodes once graft mucosal integrity is compromised (for example by rejection). To advance the field of intestinal- and multiorgan transplantation more data generated from reliable and feasible animal models is needed. The model provided herein combines both reliability and feasibility once established in a standardized manner and can provide valuable insight in the underlying complex molecular, cellular and functional mechanisms that are triggered by intestinal transplantation. We have successfully used and refined the described procedure over more than 5 years in our laboratory 8-11. The JoVE video-based format is especially useful to demonstrate the complex procedure and avoid initial pitfalls for groups planning to establish an orthotopic rodent model investigating intestinal transplantation.

Small bowel transplantation has become an accepted treatment option for patients with irreversible intestinal failure. Our experimental model of orthotopic small bowel transplantation in rats serves as a reliable tool to address underlying immunologic and inflammatory processes that complicate intestinal transplantation.

Sıçanlarda Ortotopik Küçük Bağırsak Nakli

Small  bowel transplantation has become an accepted clinical option for patients with  short gut syndrome and failure of parenteral nutrition ...

Tıp

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

Sıçanlarda Ortotopik Karaciğer Nakli

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as studies on graft preservation and ischemia-reperfusion injury 1,2, immunological responses 3,4, hemodynamics 5,6, and small-for-size syndrome 7. The rat OLT is among the most difficult animal models in experimental surgery and demands advanced microsurgical skills that take a long time to learn. Consequently, the use of this model has been limited. Since the reliability and reproducibility of results are key components of the experiments in which such complex animal models are used, it is essential for surgeons who are involved in rat OLT to be trained in well-standardized and sophisticated procedures for this model.
While various techniques and modifications of OLT in rats have been reported 8 since the first model was described by Lee et al. 9 in 1973, the elimination of the hepatic arterial reconstruction 10 and the introduction of the cuff anastomosis technique by Kamada et al. 11 were a major advancement in this model, because they simplified the reconstruction procedures to a great degree. In the model by Kamada et al., the hepatic rearterialization was also eliminated. Since rats could survive without hepatic arterial flow after liver transplantation, there was considerable controversy over the value of hepatic arterialization. However, the physiological superiority of the arterialized model has been increasingly acknowledged, especially in terms of preserving the bile duct system 8,12 and the liver integrity 8,13,14.
In this article, we present detailed surgical procedures for a rat model of OLT with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft after ex vivo liver resection. The reconstruction procedures for each vessel and the bile duct are performed by the following methods: a 7-0 polypropylene continuous suture for the supra- and infrahepatic vena cava; a cuff technique for the portal vein; and a stent technique for the hepatic artery and the bile duct.

Orthotopic liver transplantation in rats is an indispensable experimental model for biomedical research. Here we present our surgical procedures for orthotopic rat liver transplantation with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft.

Hepatik Arter İmar Kısmi Ortotopik Karaciğer Nakli Bir Rat Modeli Cerrahi İşlemleri

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

Using Quantitative Real-time PCR to Determine Donor Cell Engraftment in a Competitive Murine Bone Marrow Transplantation Model

Murine bone marrow transplantation models provide an important tool in measuring hematopoietic stem cell (HSC) functions and determining genes/molecules that regulate HSCs. In these transplant model systems, the function of HSCs is determined by the ability of these cells to engraft and reconstitute lethally irradiated recipient mice. Commonly, the donor cell contribution/engraftment is measured by antibodies to donor- specific cell surface proteins using flow cytometry. However, this method heavily depends on the specificity and the ability of the cell surface marker to differentiate donor-derived cells from recipient-originated cells, which may not be available for all mouse strains. Considering the various backgrounds of genetically modified mouse strains in the market, this cell surface/ flow cytometry-based method has significant limitations especially in mouse strains that lack well-defined surface markers to separate donor cells from congenic recipient cells. Here, we reported a PCR-based technique to determine donor cell engraftment/contribution in transplant recipient mice. We transplanted male donor bone marrow HSCs to lethally irradiated congenic female mice. Peripheral blood samples were collected at different time points post transplantation. Bone marrow samples were obtained at the end of the experiments. Genomic DNA was isolated and the Y chromosome specific gene, Zfy1, was amplified using quantitative Real time PCR. The engraftment of male donor-derived cells in the female recipient mice was calculated against standard curve with known percentage of male vs. female DNAs. Bcl2 was used as a reference gene to normalize the total DNA amount. Our data suggested that this approach reliably determines donor cell engraftment and provides a useful, yet simple method in measuring hematopoietic cell reconstitution in murine bone marrow transplantation models. Our method can be routinely performed in most laboratories because no costly equipment such as flow cytometry is required.

Determining donor cell engraftment presents a challenge in mouse bone marrow transplant models that lack well-defined phenotypical markers. We described a methodology to quantify male donor cell engraftment in female transplant recipient mice. This method can be used in all mouse strains for the study of HSC functions.

Rekabetçi bir mürin Kemik İliği Transplantasyon Modelinde Donör Hücre Aşı belirleme Kantitatif Gerçek-zamanlı PCR kullanarak

Murine bone marrow transplantation models provide an important tool in measuring hematopoietic stem cell (HSC) functions and determining genes/molecules ...

Orthotopic Hind Limb Transplantation in the Mouse

In vivo animal model systems, and in particular mouse models, have evolved into powerful and versatile scientific tools indispensable to basic and translational research in the field of transplantation medicine. A vast array of reagents is available exclusively in this setting, including mono- and polyclonal antibodies for both diagnostic and interventional applications. In addition, a vast number of genotyped, inbred, transgenic, and knock out strains allow detailed investigation of the individual contributions of humoral and cellular components to the complex interplay of an immune response and make the mouse the gold standard for immunological research. 
Vascularized Composite Allotransplantation (VCA) delineates a novel field of transplantation using allografts to replace "like with like" in patients suffering traumatic or congenital tissue loss. This surgical methodological protocol shows the use of a non-suture cuff technique for super-microvascular anastomosis in an orthotopic mouse hind limb transplantation model. The model specifically allows for comparison between established paradigms in solid organ transplantation with a novel form of transplants consisting of various different tissue components. Uniquely, this model allows for the transplantation of a viable vascularized bone marrow compartment and niche that have the potential to exert a beneficial effect on the balance of immune acceptance and rejection. This technique provides a tool to investigate alloantigen recognition and allograft rejection and acceptance, as well as enables the pursuit of functional nerve regeneration studies to further advance this novel field of transplantation.

This novel model for orthotopic hind limb transplantation in the mouse, applying a non-suture cuff technique for super-microvascular anastomosis, provides a powerful tool for in&#160;vivo mechanistic immunological research related to vascularized composite allotransplantation (VCA).

Fare Ortotopik Hind Ekstremite nakli

In vivo animal model systems, and in particular mouse models, have evolved into powerful and versatile scientific tools indispensable to basic and ...

Using the Sleeve Technique in a Mouse Model of Aortic Transplantation - An Instructional Video

Orthotopic aortic transplantation using the sleeve technique reduces injury to the aorta with failure rate of only 10-20%. The time to anastomose the aorta in mice using the sleeve method was short and easy averaging 20 min, permitting studies of iso/allo grafts. The following article describes the aortic transplantation procedure used in our laboratory. The mice were anesthetized with a mixture of 1.5% volume isoflurane and 100% oxygen through a face mask. At this point, the segment of the aorta between the renal arteries and its bifurcation was separated from the vena cava, freely prepared and clampedat the proximal and distal segments with a single silk suture. Prior to the removal of the aorta, a saline solution containing heparin was injected into the inferior vena cava. Then the aorta was cut between the clamps and a saline heparin solution was used to flush the lumen. The sleeve technique with monofilament sutures was used in order to transplant the abdominal aorta in the orthotopic position.

We present an orthotopic aortic transplantation model using the sleeve technique in mice. It is a very rapid anastomosis method, which can be employed in studies of vascular disease.

Kol tekniği aort transplantasyonu - eğitici bir Video bir fare Model kullanma

Orthotopic aortic transplantation using the sleeve technique reduces injury to the aorta with failure rate of only 10-20%. The time to anastomose the ...

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep learning curve. The introduction of the cuff technique for anastomosis of the portal vein (PV) and infrahepatic vena cava (IHVC) has significantly simplified the transplant procedure in rats. However, due to the short anterior wall of the recipients' suprahepatic vena cava (SHVC), the cuff technique is very difficult to use for the reconstruction of the SHVC. Most researchers in this field still use the hand-suture technique for SHVC reconstruction, which makes it the bottleneck step in rat orthotopic liver transplantation. The magnetic anastomosis technique (i.e., magnamosis) is a method of connecting two vessels using the attractive force between two magnets. Our recent study has shown that the magnetic anastomosis technique is superior to the hand-suture technique for SHVC reconstruction in rats. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using the novel magnetic anastomosis technique. In this model, the reconstruction of the PV and IHVC was performed by the standard cuff technique, while the reconstruction of the bile duct (BD) was performed by a stent technique. The hepatic re-arterialization was not performed. The magnetic anastomosis technique made SHVC reconstruction much easier and significantly shortened the anphepatic phase. After a reasonable learning curve, even researchers without advanced microsurgical skills can produce reliable and reproducible results using this rat model of OLT.

The reconstruction of the suprahepatic vena cava (SHVC) remains a difficult step in rat orthotopic liver transplantation. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using a novel magnetic anastomosis technique.

Orthotopic fare modeli bir roman manyetik anastomoz teknik Suprahepatic Vena kava imar için kullanılarak karaciğer nakli

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

A Pre-Clinical Porcine Model of Orthotopic Heart Transplantation

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart failure. Multiple small-animal models of heart transplantation have been used to study the acute and long-term effects of novel therapies. However, few are tested and demonstrated success in clinical trials. It is of critical importance to evaluate new therapies in a clinically relevant large-animal model for efficient and reliable translation of basic studies&#39;&#160;findings. Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and previously used to investigate novel cardioprotective strategies. This procedure focuses on acute ischemia-reperfusion injury and is a reliable method to investigate novel interventions which have been tested and validated in smaller experimental models, such as the murine model. We demonstrate its usefulness in assessing cardiac performance during the early post-transplantation period and other potential possibilities enabled by the model.

Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and utilized to investigate novel cardioprotective strategies.

Ortootopik kalp transplantasyonunun klinik öncesi porcine modeli

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart ...

Reduced Complications after Arterial Reconnection in a Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation of human liver transplantation due to the absence of arterial reconnection. Described here is a modified transplantation procedure that includes the incorporation of hepatic artery (HA) reconnection, leading to a marked improvement in transplant outcomes. With a mean anhepatic time of 12 min and 14 s, HA reconnection results in improved perfusion of the transplanted liver and an increase in long-term recipient survival from 37.5% to 88.2%. This protocol includes the use of 3D-printed cuffs and holders to connect the portal vein and infrahepatic inferior vena cava. It can be implemented for studying multiple aspects of liver transplantation, from immune response and infection to technical aspects of the procedure. By incorporating a simple and practical method for arterial reconnection using a microvascular technique, this modified rat OLT protocol closely mimics aspects of human liver transplantation and will serve as a valuable and clinically relevant research model.

The goal of this study is to modify the rat orthotopic liver transplant model to better represent human liver transplantation and improve recipient survival. The presented method reestablishes hepatic arterial inflow by connecting the donor liver&#39;s common hepatic artery to the recipient liver&#39;s proper hepatic artery.

Ortotopik Karaciğer Transplantasyonunun Sıçan Modelinde Arteriyel Reconnection Sonrası Azaltılmış Komplikasyonlar

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation ...

Orthotopic Kidney Auto-Transplantation in a Porcine Model Using 24 Hours Organ Preservation And Continuous Telemetry

In the present era of organ transplantation with critical organ shortage, various strategies are employed to expand the pool of available allografts for kidney transplantation (KT). Even though, the use of allografts from extended criteria donors (ECD) could partially ease the shortage of organ donors, ECD organs carry a potentially higher risk for inferior outcomes and postoperative complications. Dynamic organ preservation techniques, modulation of ischemia-reperfusion and preservation injury, and allograft therapies are in the spotlight of scientific interest in an effort to improve allograft utilization and patient outcomes in KT.
Preclinical animal experiments are playing an essential role in translational research, especially in the medical device and drug development. The major advantage of the porcine orthotopic auto-transplantation model over ex vivo or small animal studies lies within the surgical-anatomical and physiological similarities to the clinical setting. This allows the investigation of new therapeutic methods and techniques and ensures a facilitated clinical translation of the findings. This protocol provides a comprehensive and problem-oriented description of the porcine orthotopic kidney auto-transplantation model, using a preservation time of 24 hours and telemetry monitoring. The combination of sophisticated surgical techniques with highly standardized and state-of-the-art methods of anesthesia, animal housing, perioperative follow up, and monitoring ensure the reproducibility and success of this model.

Large animal models play an essential role in preclinical transplantation research. Due to its similarities to the clinical setup, the porcine model of orthotopic kidney auto-transplantation described in this article provides an excellent in vivo setting for the testing of organ preservation techniques and therapeutic interventions.

24 Saat Organ Koruma Ve Sürekli Telemetri Kullanılarak Bir Domuz Modelinde Ortotopik Böbrek OtoTransplantasyonu

In the present era of organ transplantation with critical organ shortage, various strategies are employed to expand the pool of available allografts for ...