Name: technique of porcine liver procurement and orthotopic transplantation using an active porto-caval shunt
Uploaded: 2015-05-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 27 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt at JoVE.com

The study was supported by research grants from the Roche Organ Transplant Research Foundation (ROTRF) and Astellas. Markus Selzner was supported by an ASTS Career Development Award. Matthias Knaak was supported by the Astellas Research Scholarship. We thank Uwe Mummenhoff and the Birmingham family for their generous support.

Tüm hayvanlar &#39;Sağlık, Ontario, Kanada Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından yayınlanan Tıbbi Araştırma ve&#39; &#39;Laboratuvar Hayvanları Bakım için Kılavuzu&#39; Ulusal Derneği tarafından formüle &#39;Laboratuar Hayvan Bakımı İlkeleri&#39; ile uyumlu insancıl bakım almış . Toronto Genel Araştırma Enstitüsü Hayvan Bakım Komitesi, tüm çalışmalarını onayladı. 1. Organ Alma <ol><li> Transplantasyon öncesi 1 hafta boyunca araştırma tesisi 30 ile 35 kg arasında Ev erkek Yorkshire domuz (perfüzyon en sonuç 10,11 değiştirebilir) ve konut koşulları hayvanların iklime alıştırmak için bir stres kaynaklı fiziksel reaksiyonu önlemek için. Önceden anestezi indüksiyonuna 6 saat en az domuz Hızlı. </li><li> Ketamin (25 mg / kg) ve atropin (0,04 mg / kg) ve midazolama (0.15 mg / kg) içindeki bir karışımı içeren bir intramüsküler (im) enjeksiyon yoluyla donör domuz anestezisi. </li&gt; <li> Entübasyon önce, domuz kendiliğinden izofluran% 5 ile dozlanmış oksijenin 2 L nefes emin olun. Sırtüstü pozisyonda, vokal kord spazmları önlemek için entübasyon öncesi% 2 lidokain 2 dakika ile ses telleri sprey. 35 kg&#39;lık domuz için 6.5 Fr trakeal tüp kullanın. Oda havası 5 ml - 3 trakeal tüp engelleyin. </li><li> Entübasyon sonrası, doğru entübasyon onaylamak için Kapnometri kullanın. Domuz kuyruk pulse oksimetre ile kalp hızı ve oksijen doygunluğu izleyin. % 2 izofluran buharlaştırıcı indirin. <ol><li> Minimal alveoler konsantrasyon (MAC) değerlere göre anestezi derinliğini ayarlayın; 2.5 MAC - 2 hedefliyoruz. 16 nefes / dk ve 10 bir tidal volüm - - 15 ml / kg vücut ağırlığı 14 ventilatör ayarlayın. </li></ol></li><li> Ringer Laktat solüsyonu (200 mi / saat) infüzyonuna olanak tanımak üzere, kulak damarlarının birinde 18 G, intravenöz (iv), kateter yerleştirin. Domuz fırçalayın ve steril örtüler ile örtün. </li><li> Steril koşullar sağlandıktan sonra, orta hat laparotomi FOLLO yapmakBir sol yanal uzantısı tarafından evlenmek. Sol tarafta onları geçmeden önce büyük ve küçük bağırsakları kapsayacak şekilde bir havlu kullanın. </li><li> Falciform bağı ve bir koter kullanılarak üçgen ligament bölün. </li><li> Elektro-koter kullanılarak sağ taraftaki diyaframdan karaciğer bırakın; kava ve diyafram arasındaki üst kısmı için makas kullanın. Sağ tarafta adrenal ven ve sol tarafta renal ven dal aşağı infrahepatic cava parçalara ayır. </li><li> Infrahepatic cava ve birbirlerinden uzak aorta Ayrı; omurga aort dalları bağlayan; yalıtmak ve yapışık dokudan serbest renal arter. 2-0 kravat ile her renal arter Surround. </li><li> Kranial sol renal vene, aort ve mezenterik arter teşrih. 2-0 kravat ile mezenterik arter Surround. </li><li> Mezenterik arter için periton kranial açtıktan sonra, dikkatlice çölyak gövde doğru aorta izleyin. A.Ş. portal kaudal çölyak gövde teşrihiçinde; hangi dal posteriora çölyak gövde kapalı dalak ve sol gastrik arterler, surround. Portal ven kapalı çölyak gövde parçalara ayır. </li><li> Pankreas ve portal ven arasındaki periton kesi ile portal ven serbest bırakın. Portal ven pankreas drenaj damarlar kapalı kravat. </li><li> Hepatoduodenal ligament safra kanalı ayırın ve distale bağlanmasından sonra bölmek. </li><li> Lenfatik kaçağını önlemek için hepatoduodenal ligament içinde lenf damarları Arter. Bağları arasındaki gastroduodenal arter ve sağ gastrik arterler bölün. Daha küçük damarlar Arter. </li><li> Kalp ve çölyak gövde arasındaki diyaframın arkasında aorta parçalara ayır. Çölyak gövde aorta kafatasın etrafında 2-0 kravat yerleştirin. </li><li> Safra kesesi ve safra kesesi çıkarın yataktan herhangi bir kanama dağlamak. </li><li> Diyaframı açın. Intrakardiyak heparin 1000 IU / kg donör ağırlığı yönetmek veya iv elde etmek için% 5 (&gt; 2.5 MAC) için izofluran ayarlayındaha derin bir anestezi düzeyi. Dolaşım ölüm (DCD) modeli sonra donör için, heparin uygulamasından sonra 40 mval KCI 3 dakika Intracardial enjeksiyonu ile kardiyak arrest neden olur. Sıcak iskemi başlangıç ​​noktası olarak ayarlayın kardiyak arrest. </li><li> Böbrek, dalak, mezenterik ve sol gastrik arterler etrafında önceden ayarlanmış bağları kapalı kravat. Renal ve iliak arterler arasında distal aort kapalı kravat ve bir organ floş hattı ile aorta cannulate. </li><li> Olarak proksimale mümkün olduğunca portal ven kapalı kravat ve başka bir organ floş hat ile cannulate. </li><li> Proksimal aort etrafında önceden belirlenen kravat kapattıktan sonra, aort (basınç torba) ve portal ven (yerçekimi güdümlü) üzerinden çift perfüzyon kullanarak Wisconsin (UW) çözümü soğuk Üniversitesi 2 L karaciğer yıkayın. </li><li> Uzun kalan bütün gemileri bırakarak, karaciğer tüketim. Suprahepatik cava çevresinde cömert diyafragma jant bırakın. Buz üzerinde steril bir organ torbaya karaciğer yerleştirin. </li><li> Arka masa hazırlama, cl sırasındaBir Satinsky kelepçe kullanarak suprahepatik cava amp ve portal ven çıkış temizlenene kadar retrograd alt inferior vena kava yoluyla karaciğer UW solüsyonu yaklaşık 0.5 L ile ikinci kez yıkayın. </li><li> Aort ve çölyak gövdenin tüm arteriyel dalları kapalı kravat. UW solüsyonu 12 geri kalan 0,5 L arteriyel geri tablo basınç perfüzyon gerçekleştirin. </li><li> UW solüsyonu kullanarak safra kanalını yıkayın. </li><li> İyi bir boyuta diyafragma yama Trim. Tüm frenik damarları kapatın - genellikle 3, 1, her sol ve sağ, ve 1 arka - 4-0 monofilaman polipropilen dikiş kullanarak. </li><li> Organ çanta kapatın ve buz üzerinde karaciğer depolar. </li></ol> 2. Alıcı Hepatektomi <ol><li> Ketamin (25 mg / kg) ve atropin (0,04 mg / kg) ve midazolama (/ kg, 0.15 mg) oluşan bir karışım bir İM enjeksiyon ile alıcı domuz anestezisi. </li><li> Bir ısıtma mat üzerine bir ameliyat masasının üzerine sırt üstü yatar pozisyonda domuz yerleştirin. Domuz wi KapakBir ısı dolaşan battaniye th. </li><li> Entübasyon önce, domuz kendiliğinden izofluran% 5 ile dozlanmış oksijenin 2 L nefes emin olun. Vokal kord spazmları önlemek için entübasyon öncesi% 2 lidokain 2 dakika ile ses telleri püskürtün. 35 kg&#39;lık domuz için 6.5 Fr trakeal tüp kullanın. Oda havası 5 ml - 3 trakeal tüp engelleyin. </li><li> Entübasyon sonrası, doğru entübasyon onaylamak için Kapnometri kullanın. Domuz kuyruk pulse oksimetre ile kalp hızı ve oksijen doygunluğu izleyin. Yerleştirin ve domuz burnu içine bir sıcaklık probu düzeltmek. % 2 (- 2,5 MAC 2 hedefleyin) izofluran buharlaştırıcı indirin. 16 nefes / dk ve 10 bir tidal volüm - - 15 ml / kg vücut ağırlığı 14 ventilatör ayarlayın. </li><li> Anestezi altında iken kuruluğunu önlemek için gözleri merhem kullanın. </li><li> Sol dış juguler ven içine bir kılıf indükleyici (8.5 Fr) eklemek için Seldinger tekniği 13 kullanın. Etkin bir portal-kaval-juguler bypass için daha sonra bu kateter kullanın. </li><li> Seldinger techniqu kullanıne sağ eksternal juguler damara bir total parenteral beslenme (TPN) kateter (9.5 Fr) ekleyin. </li><li> Steril koşullar altında, sağ karotis arter incelemek ve invaziv arter basıncı izleme için polipropilen kateter (18 G) yerleştirin. Acil ligasyonu izin vermek için 2-0 ipek kravat ile arteri Surround. </li><li> % 1 izofluran buharlaştırıcı aşağı çevirin (1,5-2 MAC) ve propofol eklemek - anestezi derinliğini korumak için (5 8 mg / kg / saat iv). Analjezi için sürekli iv fentanil sitrat infüzyonu (en çok tercih edilen, 2 ug / kg / saat) veya remifentanil (ikinci seçenek, 15 ug / kg / saat) kullanın. </li><li> Cilt kesisi önce sefuroksimin 1000 mg ve metronidazol iv 500 mg. 150 ml / saat% 5 glükoz ile Ringer Laktat kullanılarak bir enfüzyon pompası ayarlayın. </li><li> Baş ve boyun bölgesinde üzerine ısı dolaşan battaniye koyun. Domuz fırçalayın ve steril örtüler ile örtün. </li><li> Steril koşullar altında, bir orta hat laparotomi olun. Abdominal r takınetractor sağ üst kadranda yeterli erişim elde etmek. </li><li> Falciforme ligament ve koter kullanılarak üçgen ligament bölün. </li><li> Birden adımlarda, bağları arasındaki karaciğere yakın triadın bölün. Belirlemek bölmek ve hepatik arter ve safra yollarının dalları işaretleyin. </li><li> Gastroduodenal arter bölünmesi kadar retrograd hepatik arter parçalara ayır. Bir bulldog kelepçe sonra sıkma için gastroduodenal arterin ortak hepatik arter proksimalinde etrafında oturduğundan emin olun. </li><li> Yapışık dokudan portal ven boşaltın. </li><li> Elektro-koter kullanılarak sağ taraftaki retroperitoneal gelen vena kava harekete geçmek. Kava ve diyafram arasındaki üst kısmı için makas kullanın. Sağ tarafta adrenal ven ve sol tarafta renal ven dal aşağı infrahepatic cava parçalara ayır. </li><li> Dalak hilusu Açığa. Yaklaşık yarım dalak uzunluğu, dikkatle net boyuncayapıştırılır periton katmanlardan splenik arter ve ven f. 4 2-0 ipek kravatlar hem dalak arter ve ven çevreliyor. </li><li> Portal ven doğru distale işaret splenik vene kateter ucunda 2 ek delikleri olan 8.5 Fr kılıf inducer yerleştirin. 2-0 bağları biri ile sokulmasından distal kateter sabitleyin ve başka 2-0 kravat ile yerleştirilmesi için damar proksimal kapatın. Açık diğer 2 bağları bırakın. </li><li> Kateter kan çizin tuzlu 10 ml ile yıkayın ve kateterin kelepçesini kapatın. </li><li> &quot;&quot; (Ve bir kaval dalı (1/4 portal dalı 3/16) hem ve girişi bir santrifüj pompa kafası, bir boyun tüp (3/16) &quot;proksimalinde üzerine, Luer Lock konektörü oluşan bir bypass içine tuzlu su doldurun Açılış). Kaval boru yakın ucuna bir boru kelepçe koyun. </li><li> Portal hem kılıf introduser kateterler (Şekil 1) bypass boyun açılış bağlayın ve Conne mühürmetal hortum kelepçesi halka ile ction. Kendi pompa konumuna santrifüj pompa kafasını yerleştirin. </li><li> Traneksamik asitin 1.000 mg ve kros-klemp önce heparin 3 dk iv 10.000 IU ver. Anhepatik fazın kez 2 mg / kg / saat propofol oranını azaltır. Arter basıncı ve domuz reaktivitesi izofluran konsantrasyonu ayarlayın. </li><li> Kılıf introduser kateter ve çapraz klemp portal ven hem de kelepçeleri açın. O kan pasif bypass üzerinden çalışan olduğundan emin olun. </li><li> / Dak yaklaşık 1.500 mermi de santrifüj pompa başlatın. A) domuz cardiovascularly kararlıdır ve b) by-pass yaklaşık 500 ml / dakika ile çalışıyorsa, çapraz kenetleme devam edin. Domuz çapraz klemp, yedek hacmi (kristaloidler veya kolloidler) ve inotrop ajanlar (küçük boli norepinefrin) tahammül etmezse. </li><li> Cross De Bakey-Beck kelepçe kullanarak böbrek damarlarında sadece kranial infrahepatic vena kava kelepçe. Karaciğer Tiss üzerine firma basınç uygulayınue kalan kan bir kısmını dışarı sıkmak. Kaudal karaciğer geri çekilmeden ederken Satinsky kelepçe kullanarak bir diyafram jant dahil suprahepatik vena kava Çapraz kelepçe. </li><li> Karaciğer dokusu kendi sınırında doğrudan suprahepatik vena kava kesin. Sonra, hepatik hilusta yakın portal ven kesti. </li><li> Infrahepatic cava kelepçe yaklaşık 4 cm kranial, vena kava ön duvarında bir delik kesti. Bu deliğe, Luer Lock öne bakacak şekilde bypass &#39;kaval açılması konnektörünü yerleştirin. </li><li> 1-0 ipek kravatlar ile infrahepatic kava konektörü sabitleyin. Ardından, bypass kaval şube boru kelepçesini açın. </li><li> Son olarak, mevcut porto-juguler bypass ek olarak, bir kaval-juguler bypass izin vermek için infrahepatic kava kelepçeyi açmak. Yaklaşık 2.500 mermi / dak pompa hızını arttırın böyle juguler tarafta bypass çıkışı 900 arasında olduğunu - 1,100 ml / dak. </li><li> Kalan c karaciğer tüketimonnection infrahepatic bypass konnektörüne kranial, sağlanması bypass bağlantı sağlamak bağları kesilmiş olmadığını. Dolaştırmaktan önlemek için dikkatli boru bypass yerleştirin. Immünosupresyonu başlatmak için metilprednizolon 500 mg verin. </li></ol> 3. Gemi İmar <ol><li> Yakın 4-0 monofilaman polipropilen sütür, suprahepatik Cava en diyafram açıklığında alıcı tarafındaki 3 frenik ven ostia kullanma. Alıcı tarafında suprahepatik cava her iki köşelerinde iç-dış çift silahlı 4-0 monofilaman polipropilen sütür Dikiş. </li><li> Buz kutusundan donör organ çantayı çıkarın. Organ çanta açın, donör karaciğer çıkarın ve karın boşluğuna yerleştirin. </li><li> Suprahepatik cava uçtan-uca anastomoz için, alıcı tarafı sığdırmak için donör suprahepatik vena kava kırpın. Alıcı taraf köşe dikiş iç iğneler kullanılarak, suprah yanlarındaki her birinde bir iç-dış köşe dikişi yapmakepatic donör cava. </li><li> Birlikte doğru dikiş iki ucu Shot. Daha sonra sol dikiş her iki uçlarını kravat, alıcı ve verici cava hem ostia yaklaşmaktadır. </li><li> Kısa sonu Shot ve sonraki kravat arka duvarı alıcı cava bir dış-iç dikişi yapmak. Ideal cava duvarları tersine çevrilmesi, arka duvarın üzerinden çalıştırın. </li><li> Sağ tarafı ulaşıldıktan sonra aynı dikiş ile 2-3 ön duvar dikiş ekleyin, sonra bu dikiş sonunu vurdu. Sol köşesinde kalan sütür kullanarak ön duvarın üzerinden çalıştırın. Birlikte ön ve arka duvarlar için kullanılan her iki sütür kravat. Sağ köşede, diğer iki dikiş sonları kravat. </li><li> Uygun uzunlukta verici portal ven kırparak sonra, 6-0 monofilaman polipropilen sütür kullanılarak, aynı şekilde bir uçtan-uca portal ven anastomoz yaparlar. Kısa bir süre ön duvarın ile bitirmeden önce başka bir floş hattı ile infrahepatic cava lümeni entübe ve tuzlu 1 L UW solüsyonu dışarı floşoda sıcaklığında infrahepatic cavaportal damarından. </li><li> Anastomoz tamamlayın ve büyüme faktörü yaklaşık 0,5 cm bırakarak, sütürler kravat. Başka De Bakey- Beck donör infrahepatic cava üzerine kelepçe koyun. </li><li> Suprahepatik kava kelepçesini açın ve kanama kontrol edin. Ardından, portal kelepçe açarak karaciğer reperfüzyonunu. </li><li> Hemostatik dikişler için 6-0 monofilaman polipropilen sütür kullanın. Yaklaşık 1.500 mermi / dak bypass pompanın hızını düşürün ve portal kılıf introduser kateterin kelepçesini kapatın. </li><li> Infrahepatic vena kava alıcı tarafını Reclamp ve bypass kaval parçası üzerinde tüp kelepçe koydu. Santrifüj pompa durdurun. </li><li> Kaval bağlacının bağlarını kesin ve çıkarın. Juguler kateter yoluyla domuz bypass kalan kanı dönün. </li><li> Boyun kateter kelepçe kapatın ve bypass ayırın. Heparin antagonize protamin sülfat, 100 mg. Pi özel dikkatBu adımlar sırasında g&#39;nin hemodinamik; Metabolik asidoz için basınç desteği ve yedek sodyum bikarbonat için katekolamin kullanın. </li><li> 5-0 monofilaman polipropilen dikiş kullanılarak, yukarıda tarif edilen şekilde tekrar infrahepatic cava bir uç-uca anastomoz gerçekleştirin. Her iki kelepçeler bırakarak infrahepatic alt cava reperfüzyonunu. </li><li> Vericinin çölyak gövde etrafında bir aort yama kesin. Ortak hepatik artere yakın alıcı gastroduodenal arter kapalı kravat. Gastroduodenal arter kavşağına proksimalde ortak hepatik arter üzerine bulldog kelepçe koyun. Kavşağında etrafında damar dokusu kullanılarak, bir Potts makas ile küçük bir arter yama kesin. </li><li> Heparinize salin 10 ml donör hepatik arter yıkayın ve başka bulldog daha distale kelepçe kanama geri önlemek için koydu. 6-0 monofilaman polipropilen sütür kullanılarak, bir çalışan paraşüt tekniği arteriyel ostia uçtan uca anastomoz. İlk ope tarafından reperfüzyonununing distal ve proksimal bulldog kelepçeler. </li><li> Yukarıda açıklanan çalışan tekniği kullanarak 2 6-0 monofilaman polipropilen sütür ile safra kanalı uçtan uca anastomoz. Domuz safra kanalı çok kırılgan olduğu ve kolayca gözyaşları çünkü peribiliary dokusunun büyük bölümlerini dahil edildiğinden emin olun. </li><li> Hemostaz için kontrol ettikten sonra, dalak ven kılıf introduser kateteri çıkarın. Kalan 2 bağları olan proksimal ve distal uçlarını kapatın. </li><li> Bir boyutu 1 monofilament emilebilir sütür ile karın duvarı kapatın. Bir cilt zımba veya herhangi bir çalışan 2-0 dikiş ile cilt ya kapatın. </li></ol> 4. Post-operatif Faz <ol><li> Domuz sıcak tutmak için ısıtma yastığı ve ısı dolaşan battaniye kullanın. </li><li> Saatlik örnek kan gazları. Infüzyon hızını artırarak dehidratasyon ayarlayın. </li><li> Anestezi vazgeçirmek. 2 saat daha domuz havalandırın. </li><li> A.Ş. sol juguler gelen kılıf introduser kateteri kaldıriçinde. basın birkaç dakika kanamayı önlemek için sıkıca için. </li><li> Tünel domuz boynunun yanına TPN kateter subkutan. 2-0 sütür ile sabitleyin. </li><li> Domuz katekolamin desteği olmadan hemodinamik olarak stabil ise 2 saat sonra arteriyel hattını sökün. Delinme tarafı kanama olmadığından emin olun. Aksi takdirde, arter kapatmadan arter delik etrafında 6-0 purse-string dikişi yapmak. Kesi siteyi kapatın. </li><li> Domuz bağımsız nefes yapabiliyor kez havalandırmayı durdurun. Trakeal tüpten havalandırma hortumunu ayırın. Domuz yeterince nefes olup olmadığını tekrar tekrar kontrol edin. </li><li> Bir ısıtma lambası ile donatılmış tek bir hayvan kalem içine yüzükoyun pozisyonda domuz yerleştirin. Tüpü domuz kez bağımsız başını tutmak mümkün değildir. Bu sternal yatma korumak için yeterli bilinci yerine kadar gözetimsiz bir hayvan bırakmayın. Ev tüm post-operatif dönem için ayrı ayrı domuz. </li><li> Sağlamakameliyat sonrası yeterli iv ağrı kesici (örneğin, buprenorfin 0,01-0,05 mg / kg her 6 saat). </li><li> Domuz bağımsız içki yoksa, yeterli hacim iv yerine </li><li> Immunsupresyon olarak metilprednizolon (250 mg ameliyat sonrası gün (POD) 1 sabah ve ardından 125 mg her sabah) devam edin. Ilgili POD2 arasında günde iki kez 2 mg / kg po sefalosporin başlatın. </li><li> Metronidazol, 500 mg ve günde iki defa sefazolin 1000 mg, ve günde bir kez POD3 kadar pantoprazol 20 mg uygulayın. </li><li> Yakından domuz izleyin. Bu acı belirtileri gösterir eğer feda etmeye tereddüt etmeyin (örneğin, uyuşukluk, reddedenlerde, kalıcı asidoz veya hipoglisemi veya kanama ya da peritonit belirtileri içmek için). Ötenazi için suprahepatik cava keserek derin izofluran anestezisi (% 5,&gt; 2.5 MAC) kapsamında domuz asıl bulbus olfaktoryusları alındı. </li></ol>

<ol>
	<li>Mehrabi, A., Fonouni, H., Muller, S. A., Schmidt, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+concepts+in+transplant+surgery:+liver+transplantation+today.">Current concepts in transplant surgery: liver transplantation today.</a> Langenbecks Arch. Surg. 393 (3), 245-260 (2008).</li><li>Qiu, J., Ozawa, M., Terasaki, P. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liver+transplantation+in+the+United+States.">Liver transplantation in the United States.</a> Clin. Transpl. , 17-28 (2005).</li><li>Chalstrey, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Technique+of+orthotopic+liver+transplantation+in+the+pig.">Technique of orthotopic liver transplantation in the pig.</a> Br. J. Surg. 58 (3), 585-588 (1971).</li><li>Esmaeilzadeh, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Technical+guidelines+for+porcine+liver+allo-transplantation:+a+review+of+literature.">Technical guidelines for porcine liver allo-transplantation: a review of literature.</a> Ann. Transplant. 17 (2), 101-110 (2012).</li><li>Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Observations+of+orthotopic+liver+transplantation+in+the+pig.">Observations of orthotopic liver transplantation in the pig.</a> Br. Med. J. 2 (5550), 478-480 (1967).</li><li>Memsic, L., Quinones-Baldrich, W., Kaufman, R., Rasool, I., Busuttil, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+porcine+orthotopic+liver+transplantation+using+a+venous-venous+bypass+with+and+without+a+nonpulsatile+perfusion+pump.">A comparison of porcine orthotopic liver transplantation using a venous-venous bypass with and without a nonpulsatile perfusion pump.</a> J. Surg. Res. 41, 33-40 (1986).</li><li>Torres, O. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hemodynamic+alterations+during+orthotopic+liver+experimental+transplantation+in+pigs.">Hemodynamic alterations during orthotopic liver experimental transplantation in pigs.</a> Acta. Cir. Bras. 23 (2), 135-139 (2008).</li><li>Battersby, C., Hickman, R., Saunders, S. J., Terblanche, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liver+function+in+the+pig.+1.+The+effects+of+30+minutes'+normothermic+ischaemia.">Liver function in the pig. 1. The effects of 30 minutes' normothermic ischaemia.</a> Br. J. Surg. 61 (1), 27-32 (1974).</li><li>Smith, A. C., Swindle, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+swine+for+the+laboratory.">Preparation of swine for the laboratory.</a> Ilar. J. 47 (4), 358-363 (2006).</li><li>Swindle, M. M., Smith, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Best+practices+for+performing+experimental+surgery+in+swine.">Best practices for performing experimental surgery in swine.</a> J. Invest. Surg. 26 (2), 63-71 (2013).</li><li>Moench, C., Moench, K., Lohse, A. W., Thies, J., Otto, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+ischemic-type+biliary+lesions+by+arterial+back-table+pressure+perfusion.">Prevention of ischemic-type biliary lesions by arterial back-table pressure perfusion.</a> Liver Transpl. 9 (3), 285-289 (2003).</li><li>Koski, E. M., Suhonen, M., Mattila, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasound-facilitated+central+venous+cannulation.">Ultrasound-facilitated central venous cannulation.</a> Crit. Care Med. 20 (3), 424-426 (1992).</li><li>Lange, J. J., Hoitsma, H. F., Meijer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anaesthetic+management+in+experimental+orthotopic+liver+transplantation+in+the+pig.">Anaesthetic management in experimental orthotopic liver transplantation in the pig.</a> Eur. Surg. Res. 16 (6), 360-365 (1984).</li><li>Kaiser, G. M., Heuer, M. M., Fruhauf, N. R., Kuhne, C. A., Broelsch, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=General+handling+and+anesthesia+for+experimental+surgery+in+pigs.">General handling and anesthesia for experimental surgery in pigs.</a> J. Surg. Res. 130 (1), 73-79 (2006).</li><li>Heuer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liver+transplantation+in+swine+without+venovenous+bypass.">Liver transplantation in swine without venovenous bypass.</a> Eur. Surg. Res. 45 (1), 20-25 (2010).</li><li>Gruttadauria, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Porcine+orthotopic+liver+autotransplantation:+facilitated+technique.">Porcine orthotopic liver autotransplantation: facilitated technique.</a> J. Invest. Surg. 14 (2), 79-82 (2001).</li><li>Falcini, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Veno-venous+bypass+in+experimental+liver+transplantation:+portal-jugular+versus+caval-portal-jugular.">Veno-venous bypass in experimental liver transplantation: portal-jugular versus caval-portal-jugular.</a> G. Chir. 11 (4), 206-210 (1990).</li><li>Filipponi, F., Benassai, C., Falcini, F., Martini, E., Cataliotti, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biliary+tract+complications+in+orthotopic+liver+transplantation:+an+experimental+study+in+the+pig.">Biliary tract complications in orthotopic liver transplantation: an experimental study in the pig.</a> Ital. J. Surg. Sci. 19 (2), 131-136 (1989).</li><li>Terblanche, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+homotransplantation:+an+experimental+study+in+the+unmodified+pig.">Orthotopic liver homotransplantation: an experimental study in the unmodified pig.</a> S. Afr. Med. J. 42 (20), 486-497 (1968).</li><li>Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prolonged+survival+of+liver+transplants+in+the+pig.">Prolonged survival of liver transplants in the pig.</a> Br. Med. J. 4 (5580), 645-648 (1967).</li><li>Battersby, C., Egerton, W. S., Balderson, G., Kerr, J. F., Burnett, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Another+look+at+rejection+in+pig+liver+homografts.">Another look at rejection in pig liver homografts.</a> Surgery. 76 (4), 617-623 (1974).</li><li>Net, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+normothermic+recirculation+is+mediated+by+ischemic+preconditioning+in+NHBD+liver+transplantation.">The effect of normothermic recirculation is mediated by ischemic preconditioning in NHBD liver transplantation.</a> Am. J. Transplant. 5 (10), 2385-2392 (2005).</li><li>Guarrera, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothermic+machine+perfusion+of+liver+grafts+for+transplantation:+technical+development+in+human+discard+and+miniature+swine+models.">Hypothermic machine perfusion of liver grafts for transplantation: technical development in human discard and miniature swine models.</a> Transplant Proc. 37 (1), 323-325 (2005).</li><li>Minor, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothermic+reconditioning+by+gaseous+oxygen+improves+survival+after+liver+transplantation+in+the+pig.">Hypothermic reconditioning by gaseous oxygen improves survival after liver transplantation in the pig.</a> Am. J. Transplant. 11 (12), 2627-2634 (2011).</li><li>Kelly, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Porcine+partial+liver+transplantation:+a+novel+model+of+the+'small-for-size'+liver+graft.">Porcine partial liver transplantation: a novel model of the 'small-for-size' liver graft.</a> Liver Transpl. 10 (2), 253-263 (2004).</li><li>Meijer, S., Hoitsma, H. F., Visser, J. J., de Lange, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long+term+survival+following+orthotopic+liver+transplantation+in+pigs;+with+special+reference+to+gastric+ulcer+complications.">Long term survival following orthotopic liver transplantation in pigs; with special reference to gastric ulcer complications.</a> Neth. J. Surg. 36 (6), 168-171 (1984).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Deneysel domuz OLTx bir klinik senaryo yoğun bakım kaynaklarının olmadan bir araştırma ayarı için zorlu bir işlemdir. Olası komplikasyonlar hemodinamik instabilite, kanama, organ iskemi, hipotermi ve metabolik yanı sıra solunum, dekompansasyona içerir. Herhangi bir araştırma grubu için, cerrahi teknik 5. yanı sıra domuz anestezi 14,15 yeterli usul eğitim temsilcisi ve tekrarlanabilir sonuçlar elde etmek için zorunludur. Pek çok teknik inceliklerini özellikle de vasküler yeniden faz 5 ile ilgili olarak, literatürde tarif edilmiştir. Yukarıda tarif edilen OLTx protokolü insan OLTx andıran bir kava-yerine model için gerekli bilgileri sağlar. sağlanan sonuçlar hem HBD ve DCD modellerinde güvenilir hayvan hayatta kalma ve greft kurtarma göstermektedir. protokol greft reperfüzyon deneyimlerini kullanılan kısa vadeli sağkalım senaryolarda uygulanabilirdeney * yapılan örneğin, örneğin, yanı sıra tolerans çalışmaları gibi uzun süreli sağkalım modelleri. Domuz OLTx Bir büyük engel cava ve portal ven çapraz klemp nispeten zayıf tolerans olduğunu. Anhepatik aşamasında splanknik tıkanıklık bile, organ reperfüzyon 7 sonra geri dönüşü olmayan bir şok noktasına en önemli intestinal iskemi ve hemodinamik istikrarsızlığa yol açabilir venöz hipertansiyon ve kapiller hasara neden olur. Vena kava tamamen karaciğer parankimi gömülü olduğundan, bir kava-koruyarak domuz geri prosedürü mümkün değildir. cava yeniden aşamasında vena kava toplam tıkanması domuz hemodinamik stabiliteyi bozar. Bir kaç rapor domuz OLTx az 25 dk 16,17 toplam cava ve portal ven tıkanıklığı esnasında yapılabilir olduğunu gösterse de, vasküler rekonstrüksiyon kez bir porto-kava-juguler bypass tekniği daha güvenli ve daha pratik bir seçenek 7- 9,18. The yazarların deneyim, pasif porto-juguler baypas anhepatik aşamasında stabil domuz hemodinamik tutmak optimal değildir. infrahepatic kava ve portal ven hem aktif dekompresyon da dahil olmak üzere bypass modeli, öngörülemeyen komplikasyonlara hatta uzun sıkıştırma süresi ile suprahepatik kaval ve portal anastomoz sakin yeniden aşamasını verir. Portal baypas kateter kaldırıldığında önceki raporlara 7 aksine, bir splenektomi zorunlu değildir. Hem splenik arter ve ven dalak uzunluğu yeterince perfüze proksimal yarısı bırakarak boyunca yarım yaklaşık kapalıdır. Nedeniyle bypass kesilmesi için kanama veya hava embolisi gibi komplikasyonlar bypass özenle yerleştirilmiş ve düzgün şekilde sabitlendiğinden emin sağlayarak önlenebilir. Uzun süreli sağkalım OLTx deneylerde, safra kanalı anastomoz nedeniyle yüksek komplikasyon oranı 19 zayıf bir nokta olarak kabul edilir. safra doku çok kırılgan ve ne olduğunueds özel bakım sırasında işlenen. Birçok farklı anastomoz teknikleri 5,19 tarif edilmiştir. Bir uç uca anastomoz teknik olarak kolay ve minimal komplikasyon 19 ile ilişkilidir. Peribiliary bağ dokusu büyük bölümleri dahil olmayan bir kesici bir iğne ile bir dikiş kesintiye uğramış bir ameliyat dikiş ipliği daha üstün olduğu görülmektedir. kesintiye ameliyat dikiş ipliğinin tek dikiş düğümlü zaman safra kanalı, gereksiz gerilim altına yerleştirilir. Bu doku gözyaşı ve ardışık safra kaçakları neden olabilir. dikiş malzemesi - emilebilen veya emilemeyen - domuz sona kadar sınırlı bir ömrü göz önüne alındığında, genellikle önemli değildir. Birkaç ay içinde uzun dönem sağkalım modeller için emilebilir dikişlerle - İnsan OLTx gibi - tercih edilir. Özel bakım post-operatif izlem alınmalıdır. Yeterli beslenme ve sıvı kaynağı, güvenilir bir ağrı kesici protokolü ve uygun bir immünsupresyonrejim zorunludur. Uzun vadeli deneyler için, immünsüpresyon özellikle önemlidir görünür. Diğer memeliler ile karşılaştırıldığında, domuzlar OLTx 20,21 sonra şaşırtıcı derecede düşük immünolojik ret oranını göstermektedir. Yuvarlak hücre infiltrasyonları nakilden sonra ikinci haftasında maksimal ve hatta immünsüpresyonun olmadan kendiliğinden azalır. Reddetme nadiren Domuz OLTx 22 sonrası ölüm nedenidir. Bununla birlikte, daha da bağışıklık bastırma protokolü burada bahsedilen tatbik steroid IV kalsineurin inhibitörleri po kapsayan ile aşı reddi OLTx sonra yaklaşık 4 gün sonra başlamak transaminaz hafif bir artış ile gösterilir ve görünür portal alan yuvarlak bir hücre infiltrasyonu ile teyit edilmiştir. Kalsinörin inhibitörleri verilir ya po 23,24 veya iv 25,26 edilebilir; Her iki yöntem de dezavantajları vardır. Hatta Oral uygulama cihazlarıyla, mide-bağırsak ulaşan gerçek miktarı belirsiz kalır. Diğer tarafta, sürekli IV infüzyonuEtkin bir hayvan ile domuz kalem zordur. Bu nedenle, iv uygulama potansiyel toksik etkiler ile birlikte, yüksek bir ilaç konsantrasyonu zirveleri ile sonuçlanan bir bolus olarak gerçekleştirilmelidir. Bununla birlikte, uygulama her iki yöntem uzun süreli sağkalım izin görünür. Bir klinik ortamda benzer şekilde, post-operatif stres ülser profilaksisi önerilir. Peptik ülser Post-operatif kanama sık görülen bir sorundur ve bozulmuş karaciğer fonksiyon 27 ile ilişkili olabilir. Her iki grupta da OLTx gastrointestinal kanama birkaç durumda sonra, yazarlar pantoprazol düzenli profilaksi başladı ve o zamandan beri herhangi bir gastrointestinal kanama deneyimim olmadı. Klinik ameliyathanede koşullarına karşılaştırılabilir intraoperatif steril koşullarda, ve bunun sonucunda antibiyotik profilaksisi sıkı bakım, enfeksiyon komplikasyon riskini azaltır. Sonuç olarak, bu makale provides bir araştırma ortamda domuz OLTx programının kurulması için pratik bilgiler. Yeterli özveri, uygulama ve takım çalışması için, öğrenme süresini azaltmak için güvenilir sonuçlar elde etmek ve maliyetleri ve araştırma hayvanların sayısını azaltmak için önemlidir.

Ortotopik karaciğer nakli (OLTx) son dönem karaciğer hastalığı ya da ileri hepatosellüler karsinom hastalarının tek tedavi seçeneğidir. Son 25 yıldır, bekleme listesinde aday sayısı giderek artmış ve artık çok mevcut greft sayısını aşıyor olmuştur. En nakli bölgelerde, karaciğer nakli için bekleme listesinde olan hastalarda 20% 30 organ nakli almadan ölmek ya da bağlı hastalığın ilerlemesine delisted edilir. Stratejiler, böylece, mevcut greft sayısı, umutsuzca ihtiyaç vardır, donör havuzu artırmak ve. Genişletilmiş kriterler Organ tahsisi, uzun süreli greft korunması ve immünolojik tolerans indüksiyon hala önemli klinik zorlukları 1-3 temsil etmektedir. Bu nedenle, deneysel OLTx araştırmaları klinik OLTx uygulamayı optimize etmek için çok önemlidir. Domuz OLTx l dahil olmak üzere pek çok yönden, insan OLTx benzer bir köklü deneysel bir modeliver boyutu, anatomi, fizyoloji ve 4-6. Bu nedenle, bu tür cerrahi teknikler, fizyoloji, immünoloji, korunması ve iskemi-reperfüzyon hasarı olarak araştırma alanlarında bir standart deneysel bir yöntem haline gelmiştir. Greft tedarik alıcı hepatektomi, ve özellikle de vasküler yeniden, çok sayıda teknikler literatürde 5&#39;te tarif edilmiştir. Uygun tekniğinin seçimi araştırmacının tercihi ve teknik kapasitesine göre değişir. İnsan senaryoda aksine, anhepatik aşamasında splanknik tıkanıklığı domuz OLTx önemli bir problem teşkil etmektedir. Müteakip intestinal iskemi ve konjestif damar hasarı, böylece, deney 7-9 başarısını domuz hayatta kalma tehlikeye, ciddi hemodinamik kararsızlığa neden olabilir ve. Bu nedenle, yeterli bağırsak dekompresyon özellikle daha az teknik rafine deneysel ortamlarda, zorunludur. Bizianhepatik faz süresince aktif porto-kaval-juguler şantı ing bağırsak tıkanıklığı önlemek için güvenilir bir seçenektir. Sistem erken reperfüzyon deneyleri yanı sıra uzun süreli sağkalım senaryoları için de kullanılabilir. Aşağıdaki protokol hepatektomi ve uçtan uca damar rekonstrüksiyon teknikleri ve post-operatif bakım dahil olmak üzere donör karaciğer tedarik, alıcı işlemler dahil domuzlarda istikrarlı ve tekrarlanabilir karaciğer transplantasyonu modeli için tüm bilgileri içerir.

<table><tbody><tr><td>Atropine Sulphate 15 mg/30ml</td><td>Rafter 8 Products</td><td>238481</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphine 0.3 mg/ml</td><td>RB Pharmaceuticals LDT</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Cefazolin 1 g</td><td>Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td><td>2237138</td><td></td></tr><tr><td>Cyclosporin Oral Solution 5,000 mg/50 ml</td><td>Novartis Pharmaceuticals Canada Inc.</td><td>2150697</td><td></td></tr><tr><td>Fentanyl Citrate 0.25 mg/5 ml</td><td>Sandoz Canada Inc.</td><td>2240434</td><td></td></tr><tr><td>Heparin 10,000 iU/10 ml</td><td>Leo Pharma A/S</td><td>453811</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane 99.9%, 250 ml</td><td>Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td><td>2231929</td><td></td></tr><tr><td>Ketamine Hydrochloride&amp;nbsp; 5000 mg/50 ml</td><td>Bimeda-MTC Animal Health Inc.</td><td>612316</td><td></td></tr><tr><td>Lactated Ringer&amp;rsquo;s + 5% Dextrose, 0.5 L</td><td>Baxter Corporation</td><td>61131</td><td></td></tr><tr><td>Lacteted Ringer&amp;rsquo;s, 1 L</td><td>Baxter Corporation</td><td>61085</td><td></td></tr><tr><td>Metronidazole 500 mg/100 ml</td><td>Baxter Corporation</td><td>870420</td><td></td></tr><tr><td>Midazolam 50 mg/10 ml</td><td>Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td><td>2242905</td><td></td></tr><tr><td>Pantoprazole 40 mg</td><td>Sandoz Canada Inc.</td><td>2306727</td><td></td></tr><tr><td>Potassium Chloride 40 mEq/20 ml</td><td>Hospira Healthcare Corporation</td><td>37869</td><td></td></tr><tr><td>Propofol 1,000 mg/100 ml</td><td>Pharmascience Inc.</td><td>2244379</td><td></td></tr><tr><td>Protamine Sulfate 50 mg/5 ml</td><td>Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td><td>2139537</td><td></td></tr><tr><td>Saline 0.9%, 1 L</td><td>Baxter Corporation</td><td>60208</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Bicarbonate 50 mEq/50 ml</td><td>Hospira Healthcare Corporation</td><td>261998</td><td></td></tr><tr><td>Solu-Medrol 500 mg</td><td>Pfizer Canada Inc.</td><td>2367963</td><td></td></tr><tr><td>Tranexamic Acid 1,000 mg/10 ml</td><td>Pfizer Canada Inc.</td><td>2064413</td><td></td></tr><tr><td>University of Wisconsin Solution, SPS-1</td><td>Organ Recovery Systems</td><td>SPS-1</td><td></td></tr><tr><td>Xylocaine Endotracheal 10 mg/50 ml</td><td>AstraZeneca</td><td>2003767</td><td></td></tr><tr><td>Appose ULC 35 W skin stapler</td><td>Covidien Canada</td><td>803712</td><td></td></tr><tr><td>Maxon, 1</td><td>Covidien Canada</td><td>606173</td><td></td></tr><tr><td>Sofsilk, 0</td><td>Covidien Canada</td><td>S606</td><td></td></tr><tr><td>Sofsilk, 2-0</td><td>Covidien Canada</td><td>S405</td><td></td></tr><tr><td>Sofsilk, 3-0</td><td>Covidien Canada</td><td>S404</td><td></td></tr><tr><td>Surgipro II, 4-0</td><td>Covidien Canada</td><td>VP581X</td><td></td></tr><tr><td>Surgipro II, 5-0</td><td>Covidien Canada</td><td>VP725X</td><td></td></tr><tr><td>Surgipro II, 6-0</td><td>Covidien Canada</td><td>VP733X</td><td></td></tr><tr><td>Catheter i.v, 18 G</td><td>BD Canada</td><td>381147</td><td></td></tr><tr><td>Cook TPN catheter, 9.5 Fr</td><td>Cook Medical Company</td><td>C-TPNS-9.5-90</td><td></td></tr><tr><td>PSI Kit for sheath catheter, 8.5 Fr</td><td>Arrow International</td><td>ASK-09803-UHN</td><td></td></tr><tr><td>Infusion Pump Line</td><td>Smith Medical ASD Inc.</td><td>21-0442-25</td><td></td></tr><tr><td>Liver Admin Set (flush line)</td><td>CardioMed Supplies Inc</td><td>17175</td><td></td></tr><tr><td>Mallinckrodt, Tracheal Tube, 6.5 mm</td><td>Covidien Canada</td><td>86449</td><td></td></tr><tr><td>Med-Rx Suction Connecting Tube</td><td>Benlan Inc.</td><td>70-8120</td><td></td></tr><tr><td>Organ Bag</td><td>CardioMed Supplies Inc</td><td>2990</td><td></td></tr><tr><td>Suction Tip</td><td>Tyco Healthcare Group LP</td><td>8888501023</td><td></td></tr><tr><td>Valleylab, Cautery Pencil</td><td>Covidien Canada</td><td>E2515H</td><td></td></tr><tr><td>Valleylab, Patient Return Electrode</td><td>Covidien Canada</td><td>E7507</td><td></td></tr><tr><td>Bypass Connector 3/8&amp;rdquo; x 1/4&amp;ldquo;</td><td>Raumedic AG</td><td>955083-001</td><td></td></tr><tr><td>Bypass Connector 3/8&amp;rdquo; x 3/8&amp;rdquo; Luer Lock</td><td>Raumedic AG</td><td>955163-001</td><td></td></tr><tr><td>Bypass Connector Y 3/8&amp;rdquo; x 3/8&amp;rdquo; x 1/4&amp;rdquo;</td><td>Raumedic AG</td><td>961360-002</td><td></td></tr><tr><td>Bypass Tubing 1/4&amp;rdquo; x 1/16&amp;rdquo;</td><td>Raumedic AG</td><td>039505-010</td><td></td></tr><tr><td>Bypass Tubing 3/8&amp;rdquo; x 3/32&amp;rdquo;</td><td>Raumedic AG</td><td>039535-005</td><td></td></tr><tr><td>Rotaflow Centrifugal Pump</td><td>Maquet-Dynamed</td><td>HC 2821</td><td></td></tr><tr><td>Stainless Steel Hose Clamp Ring, 5mm</td><td>Oetiker</td><td>16700007</td><td></td></tr><tr><td>Abdominal Retractor</td><td>Medite GmbH</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>De Bakey &amp;ndash; Beck, Infrahepatic Cava Clamp</td><td>Aesculap Inc.</td><td>FB519R</td><td></td></tr><tr><td>Deithrich, Atraumatic Clamp (Portal Vein)</td><td>Aesculap Inc.</td><td>FB525R</td><td></td></tr><tr><td>Gregory Bulldog Clamp, curved</td><td>Aesculap Inc.</td><td>FB382R</td><td></td></tr><tr><td>Gregory Bulldog Clamp, straight</td><td>Aesculap Inc.</td><td>FB381R</td><td></td></tr><tr><td>Potts &amp;ndash; De Martel, Scissors</td><td>Aesculap Inc.</td><td>BC648R</td><td></td></tr><tr><td>Satinsky, Suprahepatic Cava Clamp</td><td>Aesculap Inc.</td><td>FB605R</td><td></td></tr><tr><td>Symetrical Tubing Clamp</td><td>Codman Instruments</td><td>198010</td><td></td></tr><tr><td>Anesthesia Machine, Optimax</td><td>Moduflex Anesthesia Equipment</td><td>SN5180</td><td></td></tr><tr><td>Bypass Flow meter, HT 110</td><td>Transonic Systems Inc.</td><td>HT110B11106</td><td></td></tr><tr><td>Flow meter probe, H6XL</td><td>Transonic Systems Inc.</td><td>H6Xl689</td><td></td></tr><tr><td>Heat Therapy Pump, T/Pump</td><td>Gaymar Industries Inc</td><td>TP500-G89D19</td><td></td></tr><tr><td>Infusion Pump 3,000</td><td>SIMS Graseby LTD.</td><td>SN300050447</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane Vapor 19.1</td><td>Draeger Medical Canada Inc.</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Monitor, Datex AS 3</td><td>Instrumentarium Corp./ Hitachi</td><td>D-VHC14-23-02</td><td></td></tr><tr><td>Rotaflow Centrifugal Drive Unit</td><td>Maquet-Dynamed</td><td>952301</td><td></td></tr><tr><td>Rotaflow Console</td><td>Maquet-Dynamed</td><td>706035</td><td></td></tr><tr><td>Temperature Therapy Pad</td><td>Gaymar Industries Inc</td><td>TP26E</td><td></td></tr><tr><td>Valleylab Force Tx</td><td>Valleylab Inc.</td><td>216151480</td><td></td></tr><tr><td>Ventilator, AV 800</td><td>DRE Medical Equipment</td><td>40800AVV</td><td></td></tr><tr><td>Warm Touch, Patient Warming System</td><td>Nellcor/ Covidien Canada</td><td>5015300A</td><td></td></tr></tbody></table>

technique of porcine liver procurement and orthotopic transplantation using an active porto-caval shunt

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation waiting list die without receiving an organ transplant or are delisted due to disease progression. Even after a successful transplantation, rejection and side effects of immunosuppression remain major concerns for graft survival and patient morbidity. 
Experimental animal research has been essential to the success of liver transplantation and still plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. In particular, the porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) is optimal for clinically oriented research for its close resemblance to human size, anatomy, and physiology. 
Decompression of intestinal congestion during the anhepatic phase of porcine OLTx is important to guarantee reliable animal survival. The use of an active porto-caval-jugular shunt achieves excellent intestinal decompression. The system can be used for short-term as well as long-term survival experiments. The following protocol contains all technical information for a stable and reproducible liver transplantation model in pigs including post-operative animal care.

Bir birinci nakil çalışma, kalp-yenerek Donör modelinde (HBD, n = 5) in situ sıcak iskemi 45 dakika maruz DCD modelinde (n = 10) ile karşılaştırılmıştır. Her iki grupta da greft alımı sonrasında 10 saat boyunca buz üzerinde muhafaza edildi. HBD grubunda, alıcı domuzların% 100 transplantasyon sonrası 5. günde izlem sonuna kadar yaşadı. DCD grubu, alıcı domuz sadece% 50 azalma ameliyat sonrası karaciğer fonksiyonu bir sonucu olarak, pıhtılaşma sorunları veya metabolik dekompansasyon nedeniyle 5 gün boyunca hayatta kaldı. Bütün kan numuneleri, merkezi venöz kateter toplanmıştır. Santrifüj işleminden sonra, serum numuneleri alındı ​​ve hepatosellüler hasarı (aspartat aminotransferaz, AST), safra fonksiyonu (total bilirubin ve alkalin fosfataz) ve karaciğer fonksiyon (INR) için analiz edilmiştir. 5 - her bir markörün zaman akışı, Şekil 2 &#39;de gösterilmiştir. <p class="jove_content"&gt; AST düzeyleri 24 saat (DCD grubunda HBD grubunda 1414 ± 538 U / L ve 2296 ± 1313 U / L, p = 0.13) sonra zirveye ulaştı ve 5 gün sonra neredeyse normal değerlere döndü. Benzer şekilde, alkalin fosfataz değerleri belirgin DCD grubunda 36 saat HBD grubu (162 ± 54 U / L; p = 0.27) ile karşılaştırıldığında (224 ± 111 U / L), sonra artmıştır. Total bilirubin HBD grubunda stabil iken (10 umol boyunca / L ≤), yavaş yavaş 5 gün (23 ± 31 umol / L; p = 0.43) kadar DCD grubunda artış göstermiştir. DCD grubunda bilirubin değerleri geniş standart sapma bu grupta tuhaf bir heterojenite safra yaralanma göstermektedir. Karaciğer fonksiyonu bir belirteci olarak INR AST değerlere benzer bir trend göstermiştir. Değerler, 24 saat zirve yaptı ve 5 gün sonra neredeyse normal değerlere restore edildi. HBD grup DCD grubuna göre 1.47 ± 0.34 bir zirve ile düşük değerler vardı (tepe 1.70 ± 0.36, p = 0.32). Şekil porto-kaval-boyun şant 1. Şema. Bypass Ringer solüsyonu ile dolu. Sonra kaval parçası bir boru kelepçesi ile kenetlendiği, boyun ve dalak parçaları önceden ayarlanmış kateter bağlı bypass açılır ve santrifüj pompa portal venöz sıkma sonra başlatılır. Karaciğer rezeksiyonu sonra, bypass kaval parçası yerleştirilir ve böbrek damarlarına kadar infrahepatic vena kava güdük kranial garantiledi. boru kelepçesi portal dekompresyon ilave olarak, kaval dekompresyon izin vermek için serbest bırakılır. <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/52055/52055fig2.jpg" /> 2. Aspartat aminotransferaz (AST) Şekil (HBD n = 5, DCD n = 10). AST hepatosellüler hasarın duyarlı bir göstergesidir. tepe kıçer 24 saat daha hepatik reperfüzyon yaralanması öne DCD grubuna göre HBD düşüktür; Daha küçük standart sapma HBD grubunda daha homojen sonuçlarını gösterir. <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/52055/52055fig3.jpg" /> Şekil 3. Toplam bilirubin (HBD n = 5, DCD n = 10). Toplam bilirubin, safra açıklık ve safra yolları bütünlüğünün bir göstergesi olarak, HBD grubunda 10 mol / L&#39;nin altına değerleri ile istikrarlı ve homojen eğilimi göstermektedir. DCD grubunda bilirubin eğrisi deney grubunda sadece bir bölümünün safra hasarı göstermektedir, zaman içinde yavaş yavaş artar ve yüksek bir standart sapma göstermektedir. <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/52055/52055fig4.jpg" /> Şekil 4. Alkalin fosfataz (HBD, n = 5, DCD n = 10). Alkalin fosfataz iSafra yaralanma bir göstergesi bu. HBD grubu için değerlerin daha düşük safra yaralanma ima DCD grubu, daha düşüktür. <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/52055/52055fig5.jpg" /> Şekil 5. INR (HBD, n = 5, DCD n = 10). Yüksek bir INR değeri koagülasyon faktörlerinin serbest düşüş nedeniyle azalan karaciğer fonksiyonu gösterir. Hem HBD ve DCD gruplarda, INR değerleri karaciğer fonksiyon kurtarma düşündüren, 5 gün nakli sonrası normal değerlere döner. HBD grubunun değerleri düşük görünür.

Watch this Scientific Journal Video about Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt at JoVE.com

Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt

Experimental animal research plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. The porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) closely resembles human conditions and is frequently used in clinically oriented research. The following protocol contains all information for a reliable porcine OLTx model using an active porto-caval-jugular shunt.

Active Porto-Caval Shunt kullanarak Domuz Karaciğer Tedarik ve Ortotopik Nakli Tekniği

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation ...

technique-porcine-liver-procurement-orthotopic-transplantation-using

Research

JoVE Journal

Medicine

16.3K Görüntüleme.  Toronto General Hospital. Experimental animal research plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. The porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) closely resembles human conditions and is frequently used in clinically oriented research. The following protocol contains all information for a reliable porcine OLTx model using an active porto-caval-jugular shunt.

Video: Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

Sıçanlarda Ortotopik Karaciğer Nakli

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Tıp

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as studies on graft preservation and ischemia-reperfusion injury 1,2, immunological responses 3,4, hemodynamics 5,6, and small-for-size syndrome 7. The rat OLT is among the most difficult animal models in experimental surgery and demands advanced microsurgical skills that take a long time to learn. Consequently, the use of this model has been limited. Since the reliability and reproducibility of results are key components of the experiments in which such complex animal models are used, it is essential for surgeons who are involved in rat OLT to be trained in well-standardized and sophisticated procedures for this model.
While various techniques and modifications of OLT in rats have been reported 8 since the first model was described by Lee et al. 9 in 1973, the elimination of the hepatic arterial reconstruction 10 and the introduction of the cuff anastomosis technique by Kamada et al. 11 were a major advancement in this model, because they simplified the reconstruction procedures to a great degree. In the model by Kamada et al., the hepatic rearterialization was also eliminated. Since rats could survive without hepatic arterial flow after liver transplantation, there was considerable controversy over the value of hepatic arterialization. However, the physiological superiority of the arterialized model has been increasingly acknowledged, especially in terms of preserving the bile duct system 8,12 and the liver integrity 8,13,14.
In this article, we present detailed surgical procedures for a rat model of OLT with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft after ex vivo liver resection. The reconstruction procedures for each vessel and the bile duct are performed by the following methods: a 7-0 polypropylene continuous suture for the supra- and infrahepatic vena cava; a cuff technique for the portal vein; and a stent technique for the hepatic artery and the bile duct.

Orthotopic liver transplantation in rats is an indispensable experimental model for biomedical research. Here we present our surgical procedures for orthotopic rat liver transplantation with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft.

Hepatik Arter İmar Kısmi Ortotopik Karaciğer Nakli Bir Rat Modeli Cerrahi İşlemleri

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

Heterotopic Auxiliary Rat Liver Transplantation With Flow-regulated Portal Vein Arterialization in Acute Hepatic Failure

In acute hepatic failure auxiliary liver transplantation is an interesting alternative approach. The aim is to provide a temporary support until the failing native liver has regenerated.1-3 The APOLT-method, the orthotopic implantation of auxiliary segments- averts most of the technical problems. However this method necessitates extensive resections of both the native liver and the graft.4 In 1998, Erhard developed the heterotopic auxiliary liver transplantation (HALT) utilizing portal vein arterialization (PVA) (Figure 1). This technique showed promising initial clinical results.5-6 We developed a HALT-technique with flow-regulated PVA in the rat to examine the influence of flow-regulated PVA on graft morphology and function (Figure 2).
A liver graft reduced to 30 % of its original size, was heterotopically implanted in the right renal region of the recipient after explantation of the right kidney.&#160; The infra-hepatic caval vein of the graft was anastomosed with the infrahepatic caval vein of the recipient. The arterialization of the donor&#8217;s portal vein was carried out via the recipient&#8217;s right renal artery with the stent technique. The blood-flow regulation of the arterialized portal vein was achieved with the use of a stent with an internal diameter of 0.3 mm. The celiac trunk of the graft was end-to-side anastomosed with the recipient&#8217;s aorta and the bile duct was implanted into the duodenum. A subtotal resection of the native liver was performed to induce acute hepatic failure. 7
In this manner 112 transplantations were performed. The perioperative survival rate was 90% and the 6-week survival rate was 80%. Six weeks after operation, the native liver regenerated, showing an increase in weight from 2.3&#177;0.8 g to 9.8&#177;1 g. At this time, the graft&#8217;s weight decreased from 3.3&#177;0.8 g to 2.3&#177;0.8 g.
We were able to obtain promising long-term results in terms of graft morphology and function. HALT with flow-regulated PVA reliably bridges acute hepatic failure until the native liver regenerates.

Auxiliary liver transplantation provides a temporary support in acute hepatic failure, until regeneration of the failing liver. The heterotopic auxiliary liver transplantation (HALT) with portal vein arterialization (PVA) renders sufficient liver function. We developed an analogous technique in the rat, to examine the influence of the portal vein arterialization on the morphology and function of the graft.

Heterotopik Yardımcı Sıçan Karaciğer Nakli ile Akut Karaciğer Yetmezliği Portal Ven arteriali Akış ayarlı

In acute hepatic failure auxiliary liver transplantation is an interesting alternative approach. The aim is to provide a temporary support until the ...

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep learning curve. The introduction of the cuff technique for anastomosis of the portal vein (PV) and infrahepatic vena cava (IHVC) has significantly simplified the transplant procedure in rats. However, due to the short anterior wall of the recipients' suprahepatic vena cava (SHVC), the cuff technique is very difficult to use for the reconstruction of the SHVC. Most researchers in this field still use the hand-suture technique for SHVC reconstruction, which makes it the bottleneck step in rat orthotopic liver transplantation. The magnetic anastomosis technique (i.e., magnamosis) is a method of connecting two vessels using the attractive force between two magnets. Our recent study has shown that the magnetic anastomosis technique is superior to the hand-suture technique for SHVC reconstruction in rats. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using the novel magnetic anastomosis technique. In this model, the reconstruction of the PV and IHVC was performed by the standard cuff technique, while the reconstruction of the bile duct (BD) was performed by a stent technique. The hepatic re-arterialization was not performed. The magnetic anastomosis technique made SHVC reconstruction much easier and significantly shortened the anphepatic phase. After a reasonable learning curve, even researchers without advanced microsurgical skills can produce reliable and reproducible results using this rat model of OLT.

The reconstruction of the suprahepatic vena cava (SHVC) remains a difficult step in rat orthotopic liver transplantation. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using a novel magnetic anastomosis technique.

Orthotopic fare modeli bir roman manyetik anastomoz teknik Suprahepatic Vena kava imar için kullanılarak karaciğer nakli

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

Lentiviral Vector-mediated Gene Therapy of Hepatocytes Ex Vivo for Autologous Transplantation in Swine

Gene therapy is an ideal choice to cure many inborn errors of metabolism of the liver. Ex-vivo, lentiviral vectors have been used successfully in the treatment of many hematopoietic diseases in humans, as their use offers stable transgene expression due to the vector&#39;s ability to integrate into the host genome. This method demonstrates the application of ex vivo gene therapy of hepatocytes to a large animal model of hereditary tyrosinemia type I. This process consists of 1) isolation of primary hepatocytes from the autologous donor/recipient animal, 2) ex vivo gene delivery via hepatocyte transduction with a lentiviral vector, and 3) autologous transplant of corrected hepatocytes via portal vein injection. Success of the method generally relies upon efficient and sterile removal of the liver resection, careful handling of the excised specimen for isolation of viable hepatocytes sufficient for re-engrafting, high-percentage transduction of the isolated cells, and aseptic surgical procedures throughout to prevent infection. Technical failure at any of these steps will result in low yield of viable transduced hepatocytes for autologous transplant or infection of the donor/recipient animal. The pig model of human type 1 hereditary tyrosinemia (HT-1) chosen for this approach is uniquely amenable to such a method, as even a small percentage of engraftment of corrected cells will lead to repopulation of the liver with healthy cells based on a powerful selective advantage over native-diseased hepatocytes. Although this growth selection will not be true for all indications, this approach is a foundation for expansion into other indications and allows for manipulation of this environment to address additional diseases, both within the liver and beyond, while controlling for exposure to viral vector and opportunity for off-target toxicity and tumorigenicity.

Lentiviral Vector-mediated Gene Therapy of Hepatocytes Ex Vivo for Autologous Transplantation in Swine

This protocol is intended to describe porcine hepatocyte isolation and ex vivo gene delivery to cure models of metabolic diseases via autologous cell transplantation. Although this particular model enjoys unique advantages that favor successful therapy, the application is a relevant foundation to address additional diseases and indications.

Lentiviral vektör-aracılı gen terapisi tetkikine Ex Vivo domuz otolog nakli için

Gene therapy is an ideal choice to cure many inborn errors of metabolism of the liver. Ex-vivo, lentiviral vectors have been used successfully in the ...

<meta charset="utf8"></head><body>Makine perfüzyonu kullanılarak ortotopik domuz karaciğer nakli koruması

Preservation of Porcine Donation after Circulatory Death (DCD) Liver by Perfusion and Orthotopic Liver Transplantation

Conventional static cold storage (SCS) exacerbates ischemic injury in the DCD liver, leading to severe complications for transplant recipients. To address this issue, clinical application of MP technology for donor liver preservation is underway. Simultaneously, efforts are focused on the development of various MP instruments, validated through relevant animal model experiments. Effective large animal trials play a pivotal role in clinical applications. However, challenges persist in the ex vivo preservation of DCD livers and the transplantation procedure in pigs. These hurdles encompass addressing the prolonged preservation of donor livers, conducting viability tests, alleviating ischemic injuries, and shortening the anhepatic phase. The use of a variable temperature-controlled MP device facilitates the prolonged preservation of DCD livers through sequential Dual Hypothermic Oxygenated Machine Perfusion (DHOPE) and Normothermic Machine Perfusion (NMP) modes. This protocol enhances the porcine OLTx model by improving the quality of DCD livers, optimizing the anastomosis technique, and reducing the duration of the anhepatic phase.

<meta charset="utf8"></head><body>Yazar Spotlight: Karaciğer Nakli için Makine Perfüzyonundaki Gelişmeler ve Zorluklar

This protocol outlines the methodology of establishing a porcine model utilizing variable temperature-controlled Machine Perfusion (MP) for the preservation of the donor liver, followed by orthotopic liver transplantation (OLTx). It aims to promote the success rate of OLTx using donor donation after circulatory death (DCD) liver and establish a stable model.

Dolaşım Ölümü (DCD) Karaciğeri Sonrası Domuz Donunun Perfüzyon ve Ortotopik Karaciğer Nakli ile Korunması

Conventional static cold storage (SCS) exacerbates ischemic injury in the DCD liver, leading to severe complications for transplant recipients. To address ...

Biyomühendislik

Reduced Complications after Arterial Reconnection in a Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation of human liver transplantation due to the absence of arterial reconnection. Described here is a modified transplantation procedure that includes the incorporation of hepatic artery (HA) reconnection, leading to a marked improvement in transplant outcomes. With a mean anhepatic time of 12 min and 14 s, HA reconnection results in improved perfusion of the transplanted liver and an increase in long-term recipient survival from 37.5% to 88.2%. This protocol includes the use of 3D-printed cuffs and holders to connect the portal vein and infrahepatic inferior vena cava. It can be implemented for studying multiple aspects of liver transplantation, from immune response and infection to technical aspects of the procedure. By incorporating a simple and practical method for arterial reconnection using a microvascular technique, this modified rat OLT protocol closely mimics aspects of human liver transplantation and will serve as a valuable and clinically relevant research model.

The goal of this study is to modify the rat orthotopic liver transplant model to better represent human liver transplantation and improve recipient survival. The presented method reestablishes hepatic arterial inflow by connecting the donor liver&#39;s common hepatic artery to the recipient liver&#39;s proper hepatic artery.

Ortotopik Karaciğer Transplantasyonunun Sıçan Modelinde Arteriyel Reconnection Sonrası Azaltılmış Komplikasyonlar

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation ...

Porcine Liver Transplantation Without Veno-Venous Bypass As an Extended Criteria Donor Model

Liver transplantation is regarded as the gold standard for the treatment of a variety of fatal hepatic diseases. However, unsolved issues of chronic graft failure, ongoing organ donor shortages, and the increased use of marginal grafts call for the improvement of current concepts, such as the implementation of organ machine perfusion. In order to evaluate new methods of graft reconditioning and modulation, translational models are required. With respect to anatomical and physiological similarities to humans and recent progress in the field of xenotransplantation, pigs have become the main large animal species used in transplantation models. After the initial introduction of a porcine orthotopic liver transplant model by Garnier et al. in 1965, several modifications have been published over the past 60 years.
Due to specifies-specific anatomical traits, a veno-venous bypass during the anhepatic phase is regarded as a necessity to reduce intestinal congestion and ischemia resulting in hemodynamic instability and perioperative mortality. However, the implementation of a bypass increases the technical and logistical complexity of the procedure. Furthermore, associated complications such as air embolism, hemorrhage, and the need for a simultaneous splenectomy have been reported previously.
In this protocol, we describe a model of porcine orthotopic liver transplantation without the use of a veno-venous bypass. The engraftment of donor livers after static cold storage of 20 h - simulating extended criteria donor conditions - demonstrates that this simplified approach can be performed without significant hemodynamic alterations or intraoperative mortality and with regular uptake of liver function (as defined by bile production and liver-specific CYP1A2 metabolism). The success of this approach is ensured by an optimized surgical technique and a sophisticated anesthesiologic volume and vasopressor management.
This model should be of special interest for workgroups focusing on the immediate postoperative course, ischemia-reperfusion injury, associated immunological mechanisms, and the reconditioning of extended criteria donor organs.

In this protocol, a model of porcine orthotopic liver transplantation after static cold storage of donor organs for 20 h without the use of a veno-venous bypass during engraftment is described. The approach uses a simplified surgical technique with minimization of the anhepatic phase and sophisticated volume and vasopressor management.

Veno-Venöz Bypass Olmadan Domuz Karaciğeri Transplantasyonu Genişletilmiş Kriterli Donör Modeli Olarak

Liver transplantation is regarded as the gold standard for the treatment of a variety of fatal hepatic diseases. However, unsolved issues of chronic graft ...

Active Porto-Caval Shunt kullanarak Domuz Karaciğer Tedarik ve Ortotopik Nakli Tekniği

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Sıçanlarda Ortotopik Karaciğer Nakli

Hepatik Arter İmar Kısmi Ortotopik Karaciğer Nakli Bir Rat Modeli Cerrahi İşlemleri

Heterotopik Yardımcı Sıçan Karaciğer Nakli ile Akut Karaciğer Yetmezliği Portal Ven arteriali Akış ayarlı

Orthotopic fare modeli bir roman manyetik anastomoz teknik Suprahepatic Vena kava imar için kullanılarak karaciğer nakli

Lentiviral vektör-aracılı gen terapisi tetkikine Ex Vivo domuz otolog nakli için

Dolaşım Ölümü (DCD) Karaciğeri Sonrası Domuz Donunun Perfüzyon ve Ortotopik Karaciğer Nakli ile Korunması

Dolaşım Ölümü (DCD) Karaciğeri Sonrası Domuz Donunun Perfüzyon ve Ortotopik Karaciğer Nakli ile Korunması

Dolaşım Ölümü (DCD) Karaciğeri Sonrası Domuz Donunun Perfüzyon ve Ortotopik Karaciğer Nakli ile Korunması

Ortotopik Karaciğer Transplantasyonunun Sıçan Modelinde Arteriyel Reconnection Sonrası Azaltılmış Komplikasyonlar

Veno-Venöz Bypass Olmadan Domuz Karaciğeri Transplantasyonu Genişletilmiş Kriterli Donör Modeli Olarak