Name: patch angioplasty in the rat aorta or inferior vena cava
Uploaded: 2017-02-27T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 4 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava at JoVE.com

Bu çalışma, Ulusal Sağlık Hibeler R56-HL095498, R01-HL-095498 (AD), R01-HL128406, Veterans Affairs Biyomedikal Laboratuvarı Araştırma Amerika Birleşik Devletleri Bölümü Merit İnceleme Ödülü I01-BX002336 Enstitüleri tarafından kısmen desteklenmiştir Gelişim Programı (MS), Yale (AD) Cerrahi Ohse ödülü Bölümü (JMS kadar) Sarnoff Kardiyovasküler Vakfı Bursu ve kaynaklar yoluyla ve Veterans Affairs Connecticut Sağlık Sistemi (West Haven, CT de tesislerinin kullanımı ). Sığır perikardiyal yamalar cömertçe Lemaitre Vasküler Inc. (Burlington, MA) tarafından temin edildi.

Uygun Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından onaylanması için protokol kurumunuzun hayvan araştırma etik komitesi kuralları takip ettiğini belirten alınmalıdır. 1. Anestezi ve Ameliyat öncesi Prosedürleri <ol><li> bir akrilik indüksiyon odasına tatbik buharlaştırılmış% 3 izofluran ve 1 L / dak oksijen ile yaklaşık 200 g ağırlığındaki erkek Wistar sıçanları, anestezisi. </li><li> Bir ayak ve kuyruk tutam tepki eksikliği yoluyla yeterli anestezi onaylayın. hayvanlar anestezi altında iken kuruluğunu önlemek için gözleri merhem yerleştirin. Sürekli solunum yoluyla% 3 izofluran - plastik operasyon plaka üzerinde her sıçan sırtüstü pozisyonda ve bir silikon maske pozisyon 2 buharlaşmış verebilen. sternal yatma korumak için yeterli bilinci yerine kadar gözetimsiz bir hayvan bırakmayın. </li><li> Steril eldiven giyerek, saç çıkarıcı kullanarak ventral karın saç çıkarın. Buprenorphine, subkutan veya intraperitonal olarak, sık sık bu noktada yer almaktadır. </li></ol> 2. Operatif Prosedürler <ol><li> yama venoplasti <ol><li> Ameliyattan önce, 3 mm x 1.5 mm x 0.6 mm boyutlarında bir microscissor kullanarak sığır perikard yama kırpın. bir hücre kültür kabı içinde, 5 dakika süre ile sterilize tuz 10 mL yama bekletin. </li><li> senin kurumsal protokole göre bir topikal antiseptik ile kesi sitesi hazırlayın ve bir cerrahi örtü uygulayın. ameliyat boyunca aseptik teknik korumak için steril eldiven ve aletler kullanın. Lokal anestezi planlanan cilt kesisi siteye enjekte edilebilir. </li><li> Bir neşter kullanılarak, sadece pubis üstünde kılıç şeklinde seviyesine uzanan bir orta hat karın kesi yapmak. </li><li> retractor takın ve sağ tarafa doğru karın boşluğundan tüm bağırsakları eviscerate. serum fizyolojik ile ıslatılmış gazlı bez bağırsakları sarın. </li><li> i Açığanfrarenal vena kava (IVC). Yama implantasyon yeri renal venler kökenli seviyesinin yaklaşık 2 mm &#39;dir; Bu sitede IVC ücretsiz teşrih. Bağlanır ve 6-0 naylon sütür kullanarak bu düzeydeki tüm lomber ve kolu damarlar bölün. </li><li> Proksimal ve distal infarenal IVC hem genelinde iki mikrocerrahi klipleri yerleştirin. Makas (Şekil 1A) kullanarak yaklaşık 3 mm uzatmak ardından IVC ön duvarını batırılarak 25 G iğne ile venotomi gerçekleştirin ve. </li><li> Çalışan veya kesintiye 10-0 naylon sütür (Şekil 1B) kullanılarak yama ile venotomi kapatın. </li><li> venoplasti kapatma tamamlayın. yama havalandırma ve ardından IVC kan akışını geri proksimal kelepçe kaldırmak için ilk uzak kelepçe çıkarın. </li><li> sıkıştırma olmadan 30 saniye gözlemleyerek hemostaz onaylayın. doğal pozisyona bağırsakları dönün. onaylanmış hayvan protokollerine göre çalışan bir dikiş ile karın kapatın. </li></ol></li><li> yama arterioplastiden <ol><li> Ameliyattan önce, 3 mm x 1.5 mm x 0.6 mm boyutlarında bir microscissor kullanarak sığır perikard yama kırpın. sterilize tuzlu su içinde ıslatın. </li><li> Topikal antiseptik ile kesi sitesi hazırlayın ve bir cerrahi örtü uygulayın. ameliyat boyunca aseptik teknik korumak için steril eldiven ve aletler kullanın. </li><li> Bir neşter kullanılarak, sadece pubis üstünde kılıç şeklinde seviyesine uzanan bir orta hat karın kesi yapmak. </li><li> retractor takın ve sağ tarafa doğru karın boşluğundan tüm bağırsakları eviscerate. serum fizyolojik ile ıslatılmış gazlı bez bağırsakları sarın. </li><li> aorta Açığa. Yama implantasyon yeri renal arterler kökenli seviyesinin yaklaşık 2 mm &#39;dir; bu sitede ücretsiz aort teşrih. Bağlanır ve 6-0 naylon sütür kullanarak bu düzeydeki tüm lomber arterler bölün. </li><li> infrarenal aorta kelepçe. puncturi tarafından arteriyotomi gerçekleştirmek için 25 G iğne kullanınyaklaşık 3 mm ile makas (Şekil 1C) kadar uzatmak, sonra aortun ön duvarını ng ve. </li><li> 10-0 naylon dikişler (Şekil 1D) çalıştıran kullanarak yama ile arteriyotomi kapatın. arterioplastiden kapatma tamamlayın. yama havalandırma ve ardından aorta kan akışını geri proksimal kelepçe kaldırmak için ilk uzak kelepçe çıkarın. </li><li> sıkıştırma olmadan 30 saniye gözlemleyerek hemostaz onaylayın. doğal pozisyona bağırsakları dönün. onaylanmış hayvan protokollerine göre çalışan bir dikiş ile karın kapatın. </li></ol></li></ol> 3. Post-operatif prosedürler <ol><li> Karnın kapanmasından sonra, anestezi durdurma. Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından tavsiye edilen talimatlara uygun olarak analjezi ve yara bakımı da dahil olmak üzere post-operatif bakım, uygulayın. </li><li> analjezi için 0.1 mg buprenorfin kullanımı / kg kas 24 saat süre ile, her 12 saat daha az izleyincerrahi girişimler ing. peri-operatif dönemden doğru kurtarma yanı sıra ameliyat sonrası ağrının yeterli tedavi sağlanması, hayvan odasında her gün hayvanın durumunu kontrol edin. Tamamen iyileşene kadar diğer hayvanların şirkete ameliyat geçirmiş bir hayvan iade etmeyin. </li></ol><style type="text/css">p.p1 {margin: 0.0px 0.0px 0.0px 0.0px; font: 12.0px Helvetica}
</style><style type="text/css">p.p1 {margin: 0.0px 0.0px 0.0px 0.0px; font: 12.0px Helvetic
</style>

<ol>
	<li>Muto, A., Nishibe, T., Dardik, H., Dardik, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patches+for+carotid+artery+endarterectomy:+current+materials+and+prospects.">Patches for carotid artery endarterectomy: current materials and prospects.</a> J Vasc Surg. 50 (1), 206-213 (2009).</li><li>Li, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+usage+and+future+directions+for+the+bovine+pericardial+patch.">Current usage and future directions for the bovine pericardial patch.</a> Ann Vasc Surg. 25 (4), 561-568 (2011).</li><li>Biasi, G. M., Sternjakob, S., Mingazzini, P. M., Ferrari, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nine-year+experience+of+bovine+pericardium+patch+angioplasty+during+carotid+endarterectomy.">Nine-year experience of bovine pericardium patch angioplasty during carotid endarterectomy.</a> J Vasc Surg. 36 (2), 271-277 (2002).</li><li>Papakostas, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+the+vascu-guard+bovine+pericardium+patch+for+arteriotomy+closure+in+carotid+endarterectomy.+Early+and+long-term+results.">Use of the vascu-guard bovine pericardium patch for arteriotomy closure in carotid endarterectomy. Early and long-term results.</a> Ann Vasc Surg. 28 (5), 1213-1218 (2014).</li><li>Ohwada, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Glutaraldehyde-fixed+heterologous+pericardium+for+vena+cava+grafting+following+hepatectomy.">Glutaraldehyde-fixed heterologous pericardium for vena cava grafting following hepatectomy.</a> Hepatogastroenterology. 46 (26), 855-858 (1999).</li><li>Mori, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standard+hepatic+vein+reconstruction+with+patch+plasty+using+the+native+portal+vein+in+adult+living+donor+liver+transplantation.">Standard hepatic vein reconstruction with patch plasty using the native portal vein in adult living donor liver transplantation.</a> Liver Transpl. 18 (5), 602-607 (2012).</li><li>Bai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pericardial+patch+venoplasty+heals+via+attraction+of+venous+progenitor+cells.">Pericardial patch venoplasty heals via attraction of venous progenitor cells.</a> Physiological Reports. 4 (12), (2016).</li><li>Li, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pericardial+patch+angioplasty+heals+via+an+Ephrin-B2+and+CD34+positive+cell+mediated+mechanism.">Pericardial patch angioplasty heals via an Ephrin-B2 and CD34 positive cell mediated mechanism.</a> PLoS One. 7 (6), 38844 (2012).</li><li>Bai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pretreatment+of+pericardial+patches+with+antibiotics+does+not+alter+patch+healing+in+vivo.">Pretreatment of pericardial patches with antibiotics does not alter patch healing in vivo.</a> J Vasc Surg. 63 (4), 1063-1073 (2016).</li><li>Muto, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eph-B4+prevents+venous+adaptive+remodeling+in+the+adult+arterial+environment.">Eph-B4 prevents venous adaptive remodeling in the adult arterial environment.</a> J Exp Med. 208 (3), 561-575 (2011).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Bu, sırasıyla, bir yama venoplasti veya yama arterioplastiden oluşturma damar veya arterlerde da kullanılabilir sıçanda bir yama anjiyoplasti modeli açıklanmaktadır. Bu perikard yama modeli kullanarak, aort arterioplastiden (Şekil 2) 7, 8 ile karşılaştırıldığında sıçan IVC venoplasti agresif ve kararlı neointimal hiperplazi gösterdi. Çeşitli teknik açıdan dikkat çekicidir. Aort arterioplastiden olarak, dikiş arter ortamının daha yüksek bir basınç kanının sızmasını önlemek için sıkı bir sayı ve / veya aralık yeterli olması önemlidir. VKİ venoplasti, IVC duvar son derece ince ve kırılgan olduğu için, özellikle bakım ve yumuşaklığı ile operatif tüm manevralar gerçekleştirmek için önemlidir. Buna ek olarak, implantasyon site çevresinde lomber ve küçük kolu damarlar dikkatle disseke ve kanamayı önlemek lige gerekir. Her iki arte içinderiyali ve venöz prosedürler, uzak kelepçe herhangi lümen havayı tahliye etmek ve bir akciğer hava embolisi önlemek için ilk kaldırılır. proksimal kelepçe sonra distal kan akımını geri kaldırılır. aorta veya IVC duvar delme sırasında Son olarak, posterior duvarı delmeyin yoktur; arka duvar delinmiş ise, bir 10-0 dikiş deliği kapatmak için kullanılmalıdır. Aort yama anjiyoplasti bir dezavantajı ilerleyen zamanlarda (örneğin, post-operatif gün 30) de psödoanevrizmaların geliştirilmesidir. Bununla birlikte, venöz veya arteryel ortamında 7, 9 ya da neointimal oluşumu çalışma prosedürü sonraki ilk 2 hafta boyunca bu modelin yarar gösteren, ender ameliyat sonrası gün 7 ya da 14 gözlenen herhangi bir yalancı vardı. Küçük hayvan yama anjiyoplasti interpozisyon grefti modellere göre birçok avantajı vardır. İlk olarak, ev sahibi damar doeSadece bir ön duvarı kesi yapılır olarak, kesilen gerekmez s; Bu cerrahi süresini azaltır ve kanama riskini en aza indirir. İkincisi, interpozisyon grefti iki anastomoz komplikasyon ameliyat süresi ve riskini artıran yanı sıra öğrenme eğrisi uzanan gerektirir. Patch anjiyoplasti ameliyat süresi ve komplikasyon riskini azaltır, tek bir anastomoz gerektirir. Üçüncü olarak, yama anjiyoplasti özünde potansiyel postoperatif gözlem 10 için artmış süre vererek, anastomoz yerinde darlık riskini azaltır. Sonuç olarak, küçük çaplı damarları kapatmak için perikard yamaları kullanan yama anjiyoplasti gerçekleştirmek için bir yöntem tarif; Prosedür damarları ve arterler de aynı şekilde uygulanabilir. Perikard yama venoplasti erken postoperatif zamanlarda arterioplastiden modeline kıyasla daha agresif neointimal oluşumu göstermektedir. Bu sonuç bu model i programı önerirn venöz ve implante biyomateryallerle arter çevresi arasındaki karmaşık etkileşimlerin farklılıkları belirleyen. Buna ek olarak, yama bileşimleri farklı tipte, bu farklı malzemelere karşılığının test edilmesi için kontrol edilebilir.

Perikard yamalar, sığır ya da domuz ya ile yaygın yakın kan damarları damar cerrahları restenoz 1, 2 riskini azaltmak için. Arteriyel cerrahide, perikard yama anjiyoplasti birincil kapatma 3, 4 ile karşılaştırıldığında restenoz oranını düşürür. Yama venoplasti da benzer arter prosedürler 5, 6 daha az karşılaştırıldığında, ancak, damarlar kapatılması gerçekleştirilir. Yamalar genellikle kendi lümen yüzeylerde neointimal hiperplazi geliştirmek; Bununla birlikte, neointimal formasyonu mekanizması, özellikle arteriyel ve venöz ortamlar arasında neointimal oluşumunda farklar karşılaştırıldığında açık değildir. Biz daha önce perikard yamaları arteriyel ve venöz ortamlar ve venöz yama anjiyoplasti hem progenitör hücreler daha fazla a gösteriyor çekmek olduğunu gösterdiarteriyel yamalar 7, 8 ile karşılaştırıldığında ggressive neointimal oluşumu. Bu çalışmada, biz damarları ve arterler ve her ikisi de kapanış ortak olan perikard yama anjiyoplasti fare modeli açıklayan neointimal oluşumu incelemek için kullanılabilir; Bu yöntem, genel olarak, insan hastalarda kullanılan bir çalışma tekniğinin küçük-hayvan modelidir. sıçan modelinde cerrahi teknik yönlerini kolaylaştırmak ve model için öğrenme eğrisi iyileştirilmesi, fare modelinde daha geniş bir çapa sahiptir.

<table><tbody><tr><td>Bovine pericardial patch</td><td>LeMaitre Vascular</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vascular clamp</td><td>Roboz Surgical Instrument Co.</td><td>RS-5424</td><td></td></tr><tr><td>Clamp applying forceps</td><td>Roboz Surgical Instrument Co</td><td>RS-5410</td><td></td></tr><tr><td>10-0 Prolene suture</td><td>Arosurgical Co.</td><td>T05A10N10-13</td><td></td></tr></tbody></table>

patch angioplasty in the rat aorta or inferior vena cava

Perikard yamaları yaygın damarları kapatmak için damar cerrahisi kullanılır. yama üzerinde oluşturduğu neointimal hiperplazi çalışmalarını kolaylaştırmak için, sırasıyla, bir yama venoplasti veya yama arterioplastiden oluştururken, bir ven veya bir arter ya kullanılabilen yama anjiyoplasti bir fare modeli geliştirdi. Bu modelin teknik özellikleri tartışılmıştır. infra-böbrek İVC veya aort disseke ve sonra proksimal ve distal kenetlenir. 3 mm venotomi ya arteriyotomi 8 haftalık Wistar farelere, 6 infrarenal inferior vena kava veya aort gerçekleştirilir. Bir sığır perikard yama (x 1.5 mm x 0.6 mm 3 mm) daha sonra 10-0 naylon sütür kullanarak siteyi kapatmak için kullanılır. arteriyel yamalar ile karşılaştırıldığında, venöz yamalar günde 7. neointimal kalınlığı artmış göstermektedir perikard yama anjiyoplasti Bu yeni model, vasküler biyomateryallerinin üzerindeki neointimal hiperplazi incelemek yanı sıra arteriyel ve venöz arasındaki farklılıkları karşılaştırmak için kullanılabilirortamlar.

Yama anjiyoplastiden sonra, venöz (n = 42) ya da arteriyel (n = 24) bir düzeltme grupları ya da herhangi bir tromboz vardı. 7. günde Survival bir venöz ya da arteriyel yama ile ya her iki grupta% 100 oldu. Yamalar 7. günde toplandı ve hematoksilin ve eosin ile boyanmış ve önceden tarif edildiği gibi 7 neointimal kalınlığı karşılaştırılmıştır edildi. Çünkü yama ve Neointimanın arasındaki belirgin morfolojik farkın, neointima ayrımcılık çok kolaydır. Venöz yama, Neointimanın (Şekil 2A, 2C) biriken fazla hücreleri ile yama, luminal tarafında kalın Neointimanın ayrı bir tabaka vardı; arter yaması, yama (Şekil 2B, 2D) luminal tarafına bağlı birkaç hücre ile daha ince neointimal tabakası vardı. neointima wa<html> arter yama (Şekil 2E) göre venöz yama anlamlı kalın s. Benzer sonuçlar 14. günde elde edilmiştir (veriler gösterilmemiştir). Bu sonuçlar, yama venoplasti modeli kısa bir süre içinde koyu bir neointima elde etmek için diğer modeller üzerinde daha iyi olduğunu göstermektedir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/55253/55253fig1.jpg" /> Şekil 1: Sıçan Perikardiyal Yama Anjiyoplasti. (A) İVC venotomi gösteren Temsilcisi fotoğraf. (B) yama yerleştirildikten sonra IVC gösteren Temsilcisi fotoğraf. (C) aort arteriyotomi gösteren Temsilcisi fotoğraf. (D) yama yerleştirildikten sonra aorta gösteren Temsilcisi fotoğraf. A, aort; VKİ, inferior vena kava; P, perikard yama; * IVC veya aort arka intima; cetvel işaretleri 1 mm&#39;dir.3fig1large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız. <img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/55253/55253fig2.jpg" /> Şekil 2: Agresif neointimal Hiperplazi Patch venoplasti içinde Günü 7 Patch arterioplastiden karşılaştırıldığında. (A) H &amp; E ile boyandı 7. günde, yama venoplasti gösteren Örnek düşük güç fotoğrafı. (B) H &amp; E ile boyandı 7. günde yama anjioplasti gösteren Temsilcisi düşük güç fotoğrafı. (C) yama venoplasti üzerinde neointimal oluşumu gösteren temsili yüksek güç fotoğraf. (D) yama arterioplastiden üzerinde neointimal oluşumu gösteren temsili yüksek güç fotoğraf. Ölçek çubuğu = 0,5 mm; Yüksek güç = 100 um. P, yama; L, VKİ veya aort lümen; N, neointima. (E) çubuk grafiği showing arterioplastiden göre venoplasti neointimal kalınlığı artmıştır. hata çubuğu SEM gösterir; * P = 0.0015, t-testi; n = 4 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55253/55253fig2large.jpg" target="_blank">, bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava at JoVE.com

Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava

We have established a model of pericardial patch angioplasty that can be used in either small-diameter veins or arteries. This model can be used to compare venous and arterial neointimal hyperplasia formation.

Sıçan Aort veya İnferior Vena Cava de Anjiyoplasti Patch

Pericardial patches are commonly used in vascular surgery to close vessels. To facilitate studies of the neointimal hyperplasia that forms on the patch, ...

patch-angioplasty-in-the-rat-aorta-or-inferior-vena-cava

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

10.5K Görüntüleme.  Yale University. We have established a model of pericardial patch angioplasty that can be used in either small-diameter veins or arteries. This model can be used to compare venous and arterial neointimal hyperplasia formation.

Video: Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava

Orthotopic Aortic Transplantation: A Rat Model to Study the Development of Chronic Vasculopathy

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant vasculopathy (TVP).
The commonly used animal model for cardiovascular chronic rejection studies is the heterotopic heart transplant model performed in laboratory rodents. This model is used widely in experiments since Ono and Lindsey (3) published their technique. To analyze the findings in the blood vessels, the heart has to be sectioned and all vessels have to be measured.
Another method to investigate chronic rejection in cardiovascular questionings is the aortic transplant model (1, 2). In the orthotopic aortic transplant model, the aorta can easily be histologically evaluated (2). The PVG-to-ACI model is especially useful for CAV studies, since acute vascular rejection is not a major confounding factor and Cyclosporin A (CsA) treatment does not prevent the development of CAV, similar to what we find in the clinical setting (4). A7-day period of CsA is required in this model to prevent acute rejection and to achieve long-term survival with the development of TVP.
This model can also be used to investigate acute cellular rejection and media necrosis in xenogeneic models (5).

This video demonstrates the orthotopic aortic transplant model as a simple model to study the development of transplant vasculopathy (TVP) in rats.

Ortotopik Aort Nakli: Rat Modeli Kronik Vaskülopati Geliştirme Çalışması

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant ...

Tıp

Angiogenesis in the Ischemic Rat Lung

The adult lung is perfused by both the systemic bronchial artery and the entire venous return flowing through the pulmonary arteries. In most lung pathologies, it is the smaller systemic vasculature that responds to a need for enhanced lung perfusion and shows robust neovascularization. Pulmonary vascular ischemia induced by pulmonary artery obstruction has been shown to result in rapid systemic arterial angiogenesis in man as well as in several animal models. Although the histologic assessment of the time course of bronchial artery proliferation in rats was carefully described by Weibel 1, mechanisms responsible for this organized growth of new vessels are not clear. We provide surgical details of inducing left pulmonary artery ischemia in the rat that leads to bronchial neovascularization. Quantification of the extent of angiogenesis presents an additional challenge due to the presence of the two vascular beds within the lung. Methods to determine functional angiogenesis based on labeled microsphere injections are provided.

The lung is perfused by both the systemic bronchial artery and pulmonary arteries. In most lung pathologies, it is the smaller systemic vasculature that shows robust neovascularization. Cessation of pulmonary blood flow promotes brisk bronchial angiogenesis. We provide surgical details of inducing left pulmonary artery ischemia that promotes bronchial neovascularization.

İskemik Sıçan Akciğer Angiogenezis

The  adult lung is perfused by both the systemic bronchial artery and the entire  venous return flowing through the pulmonary arteries. In most lung ...

A New Murine Model of Endovascular Aortic Aneurysm Repair

Endovascular aneurysm exclusion is a validated technique to prevent aneurysm rupture. Long-term results highlight technique limitations and new aspects of Abdominal aortic aneurysm (AAA) pathophysiology. There is no abdominal aortic aneurysm endograft exclusion model cheap and reproducible, which would allow deep investigations of AAA before and after treatment. We hereby describe how to induce, and then to exclude with a covered coronary stentgraft an abdominal aortic aneurysm in a rat. The well known elastase induced AAA model was first reported in 19901 in a rat, then described in mice2. Elastin degradation leads to dilation of the aorta with inflammatory infiltration of the abdominal wall and intra luminal thrombus, matching with human AAA. Endovascular exclusion with small covered stentgraft is then performed, excluding any interactions between circulating blood and the aneurysm thrombus. Appropriate exclusion and stentgraft patency is confirmed before euthanasia by an angiography thought the left carotid artery. Partial control of elastase diffusion makes aneurysm shape different for each animal. It is difficult to create an aneurysm, which will allow an appropriate length of aorta below the aneurysm for an easy stentgraft introduction, and with adequate proximal and distal neck to prevent endoleaks. Lots of failure can result to stentgraft introduction which sometimes lead to aorta tear with pain and troubles to stitch it, and endothelial damage with post op aorta thrombosis. Giving aspirin to rats before stentgraft implantation decreases failure rate without major hemorrhage. Clamping time activates neutrophils, endothelium and platelets, and may interfere with biological analysis.

Histological and biochemical modifications after aneurysm endograft exclusion are still unclear. We describe a new model of endograft implantation on a murine aneurysm. Through thrombus analysis with and without persistant circulating blood stream interface, and new endovascular biomaterials evaluation, this model will help to better understand endovascular aneurysm exclusion pathobiology.

Endovasküler Aort Anevrizma Onarımı Yeni Bir murin Modeli

Endovascular aneurysm exclusion is a validated technique to prevent aneurysm rupture. Long-term results highlight technique limitations and new aspects of ...

Imaging In-Stent Restenosis: An Inexpensive, Reliable, and Rapid Preclinical Model

Preclinical models of restenosis are essential to unravel the pathophysiological processes that lead to in-stent restenosis and to optimize existing and future drug-eluting stents.
A variety of antibodies and transgenic and knockout strains are available in rats. Consequently, a model for in-stent restenosis in the rat would be convenient for pathobiological and pathophysiological studies. 
In this video, we present the full procedure and pit-falls of a rat stent model suitable for high throughput stent research. We will show the surgical procedure of stent deployment, and the assessment of in-stent restenosis using the most elegant technique of OCT (Optical Coherence Tomography). This technique provides high accuracy in assessing plaque CSAs (cross section areas) and correlates well with histological sections, which require special and time consuming embedding and sectioning techniques. OCT imaging further allows longitudinal monitoring of the development of in-stent restenosis within the same animal compared to one-time snapshots using histology.

This video demonstrates how to use a preclinical inexpensive and reliable model to study pathobiological and pathophysiological processes of in-stent restenosis development. Longitudinal in vivo monitoring using OCT (Optical Coherence Tomography) and analysis of OCT images are also demonstrated.

Görüntüleme-stent restenoz: Ucuz, güvenilir ve hızlı bir Preklinik Modeli

Preclinical models of restenosis are essential to unravel the pathophysiological processes that lead to in-stent restenosis and to optimize existing and ...

Biyoloji

Vascular Balloon Injury and Intraluminal Administration in Rat Carotid Artery

The carotid artery balloon injury model in rats has been well established for over two decades. It remains an important method to study the molecular and cellular mechanisms involved in vascular smooth muscle dedifferentiation, neointima formation and vascular remodeling. Male Sprague-Dawley rats are the most frequently employed animals for this model. Female rats are not preferred as female hormones are protective against vascular diseases and thus introduce a variation into this procedure. The left carotid is typically injured with the right carotid serving as a negative control. Left carotid injury is caused by the inflated balloon that denudes the endothelium and distends the vessel wall. Following injury, potential therapeutic strategies such as the use of pharmacological compounds and either gene or shRNA transfer can be evaluated. Typically for gene or shRNA transfer, the injured section of the vessel lumen is locally transduced for 30 min with viral particles encoding either a protein or shRNA for delivery and expression in the injured vessel wall. Neointimal thickening representing proliferative vascular smooth muscle cells usually peaks at 2 weeks after injury. Vessels are mostly harvested at this time point for cellular and molecular analysis of cell signaling pathways as well as gene and protein expression. Vessels can also be harvested at earlier time points to determine the onset of expression and/or activation of a specific protein or pathway, depending on the experimental aims intended. Vessels can be characterized and evaluated using histological staining, immunohistochemistry, protein/mRNA assays, and activity assays. The intact right carotid artery from the same animal is an ideal internal control. Injury-induced changes in molecular and cellular parameters can be evaluated by comparing the injured artery to the internal right control artery. Likewise, therapeutic modalities can be evaluated by comparing the injured and treated artery to the control injured only artery.

This protocol uses a balloon catheter to cause an intraluminal injury on the rat carotid artery and henceforth elicit neointimal hyperplasia. This is a well-established model for studying the mechanisms of vascular remodeling in response to injury. It is also widely used to determine the validity of potential therapeutic approaches.

Sıçan Karotis Arter Vasküler Balon Yaralanma ve intraluminal İdaresi

The carotid artery balloon injury model in rats has been well established for over two decades. It remains an important method to study the molecular and ...

A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is also a valuable model system to test, and to evaluate therapeutics and drugs that negate maladaptive remodeling in the vessel. The injury, or barotrauma, in the vessel lumen caused by an inflated balloon via an inserted catheter induces subsequent neointimal growth, often leading to hyperplasia or thickening of the vessel wall that narrows, or obstructs the lumen. The method described here is sufficiently sensitive, and the results can be obtained in relatively short time (2 weeks after the surgery). The efficacy of the drug or therapeutic against the induced-remodeling can be evaluated either by the post-mortem pathological and histomorphological analysis, or by ultrasound sonography in live animals. In addition, this model system has also been used to determine the therapeutic window or the time course of the administered drug. These studies can leadto the development of a better administrative strategy and a better therapeutic outcome. The procedure described here provides a tool for translational studies that bring drug and therapeutic candidates from bench research to clinical applications.

The rat carotid balloon injury model described below allows researchers to evaluate drugs or therapeutics that negate injury-induced arterial hyperplasia. Detailed pre-surgical preparation, surgical procedure, and post-surgical cares of the animal are described.

Rat Karotis Balon Yaralanma Modeli Anti-vasküler Tadilat Therapeutics Test

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is ...

Shunt Surgery, Right Heart Catheterization, and Vascular Morphometry in a Rat Model for Flow-induced Pulmonary Arterial Hypertension

In this protocol, PAH is induced by combining a 60 mg/kg monocrotalin (MCT) injection with increased pulmonary blood flow through an aorto-caval shunt (MCT+Flow). The shunt is created by inserting an 18-G needle from the abdominal aorta into the adjacent caval vein. Increased pulmonary flow has been demonstrated as an essential trigger for a severe form of PAH with distinct phases of disease progression, characterized by early medial hypertrophy followed by neointimal lesions and the progressive occlusion of the small pulmonary vessels. To measure the right heart and pulmonary hemodynamics in this model, right heart catheterization is performed by inserting a rigid cannula containing a flexible ball-tip catheter via the right jugular vein into the right ventricle. The catheter is then advanced into the main and the more distal pulmonary arteries. The histopathology of the pulmonary vasculature is assessed qualitatively, by scoring the pre- and intra-acinar vessels on the degree of muscularization and the presence of a neointima, and quantitatively, by measuring the wall thickness, the wall-lumen ratios, and the occlusion score.

This protocol describes a surgical procedure to create a model for flow-induced pulmonary arterial hypertension (PAH) in rats and the procedures to analyze the principle hemodynamic and histological end-points in this model.

Akış kaynaklı pulmoner hipertansiyon için bir Sıçan Modelinde Şant Cerrahisi, Sağ Kalp kateterizasyonu ve Damar Morfometri

In this protocol, PAH is induced by combining a 60 mg/kg monocrotalin (MCT) injection with increased pulmonary blood flow through an aorto-caval shunt ...

Biodegradable Magnesium Stent Treatment of Saccular Aneurysms in a Rat Model - Introduction of the Surgical Technique

The steady progess in the armamentarium of techniques available for endovascular treatment of intracranial aneurysms requires affordable and reproducable experimental animal models to test novel embolization materials such as stents and flow diverters. The aim of the present project was to design a safe, fast, and standardized surgical technique for stent assisted embolization of saccular aneurysms in a rat animal model.
Saccular aneurysms were created from an arterial graft from the descending aorta.The aneurysms were microsurgically transplanted through end-to-side anastomosis to the infrarenal abdominal aorta of a syngenic male Wistar rat weighing &#62;500 g. Following aneurysm anastomosis, aneurysm embolization was performed using balloon expandable magnesium stents (2.5 mm x 6 mm). The stent system was retrograde introduced from the lower abdominal aorta using a modified Seldinger technique.
Following a pilot series of 6 animals, a total of 67 rats were operated according to established standard operating procedures. Mean surgery time, mean anastomosis time, and mean suturing time of the artery puncture site were 167 &#177; 22 min, 26 &#177; 6 min and 11 &#177; 5 min, respectively. The mortality rate was 6% (n=4). The morbidity rate was 7.5% (n=5), and in-stent thrombosis was found in 4 cases (n=2 early, n=2 late in stent thrombosis).
The results demonstrate the feasibility of standardized stent occlusion of saccular sidewall aneurysms in rats - with low rates of morbidity and mortality. This stent embolization procedure combines the opportunity to study novel concepts of stent or flow diverter based devices as well as the molecular aspects of healing.

Reproducable experimental animal models are needed for the testing of novel embolization materials, which have been designed to treat endovascular occlusion of intracranial aneurysms (IA). The present study aims to develop a safe and standardized surgical technique for stent assisted embolization of saccular aneurysms in a rat animal model.

Bir sıçan modelinde - cerrahi tekniğin getirilmesi Saccular Anevrizmalarının biyobozunur magnezyum Stent tedavisi

The steady progess in the armamentarium of techniques available for endovascular treatment of intracranial aneurysms requires affordable and reproducable ...

Nörobilim

Creation of a Rodent Model of Abdominal Aortic Aneurysm by Blocking Adventitial Vasa Vasorum Perfusion

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic aneurysms (AAAs). This article introduces and describes a standard protocol used to induce AAAs through adventitial VV hypoperfusion created with a combination of polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the infrarenal abdominal aorta.
The protocol involves the use of male rats weighing 300-400 g, which are provided food and water ad libitum. After laparotomy with a ventral midline abdominal incision, exfoliation of the aorta is performed, which blocks blood flow from the perivascular tissue. Aortotomy involving a small incision adjacent to the renal artery branches is performed, and a polyurethane catheter is inserted using an 18-gauge indwelling needle. After repairing the incision, tight ligation of the aorta over the catheter blocks VV blood flow from the proximal direction through the aortic wall without disturbing the aortic blood flow. This technique can induce an AAA with progressive aortic dilatation.
The greatest benefit of this model is that VV hypoperfusion causes tissue hypoxia and the development of an infrarenal AAA, which has morphological and pathological characteristics similar to those of a human AAA.

Polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the aorta induce chronic hypoxia due to hypoperfusion of the adventitial vasa vasorum. This article describes a novel animal model of abdominal aortic aneurysm (AAA) with characteristics similar to those of AAA in humans.

Abdominal aort anevrizması Adventitial Vasa Vasorum perfüzyon engelleyerek kemirgen bir Model oluşturulması

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the luminal surface area in arteries thereby reducing adequate blood flow to organs and distal tissues. Clinically, revascularization procedures such as balloon angioplasty with or without stent placement aim to restore blood flow. Although these procedures reestablish blood flow by reducing plaque burden, they damage the vessel wall, which initiates the arterial healing response. The prolonged healing response causes arterial restenosis, or re-narrowing, ultimately limiting the long-term success of these revascularization procedures. Therefore, preclinical animal models are integral for analyzing the pathophysiological mechanisms driving restenosis, and provide the opportunity to test novel therapeutic strategies. Murine models are cheaper and easier to operate on than large animal models. Balloon or wire injury are the two commonly accepted injury modalities used in murine models. Balloon injury models in particular mimic the clinical angioplasty procedure and cause adequate damage to the artery for the development of restenosis. Herein we describe the surgical details for performing and histologically analyzing the modified, pressure-controlled rat carotid artery balloon injury model. Additionally, this protocol highlights how local periadventitial application of therapeutics can be used to inhibit neointimal hyperplasia. Lastly, we present light sheet fluorescence microscopy as a novel approach for imaging and visualizing the arterial injury in three-dimensions.

The rat carotid artery balloon injury mimics the clinical angioplasty procedure performed to restore blood flow in atherosclerotic vessels. This model induces the arterial injury response by distending the arterial wall, and denuding the intimal layer of endothelial cells, ultimately causing remodeling and an intimal hyperplastic response.

Periadventitial Terapötik Uygulama ile Sıçan Karotis Arter Basınç Kontrollü Segmental Balon Yaralanması

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...