עבודה זו נתמכה בחלקה על ידי המכונים הלאומיים לבריאות מענקים R56-HL095498, R01-HL-095,498 (לספירה), R01-HL128406, מריט סקירה פרס I01-BX002336 מארצות הברית המחלקה לענייני יוצאי צבא ביו מעבדה למחקר תוכנית הפיתוח (לספירה), מחלקת ייל של הפרס כירורגיה Ohse (לספירה), מלגת קרן לב וכלי דם סרנוף (כדי JMS), ודרך משאבים ושימוש במתקני מערכת הבריאות לענייני ותיקי קונטיקט (West Haven, CT ). טלאי קרום לב שור סופקו בנדיבות על ידי Inc. דם למטר (Burlington, MA).

אישור ועדת האשפוז במוסד סיעודי בעלי החיים והשימוש המתאים יש לקבל, המציין כי הפרוטוקול שלך ערוך בהתאם להנחיות של ועדת האתיקה במחקר בבעלי החיים של המוסד שלך. 1. הרדמה ונהלים טרום ניתוחיים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים זכר חולדות Wistar, במשקל של כ -200 גרם, עם 3% isoflurane מתאדה 1 חמצן L / min מנוהל לתוך תא אינדוקציה אקריליק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אשר הרדמה נאותה דרך חוסר תגובת קמצוץ בוהן וזנב. מניח משחה על העיניים כדי למנוע יובש בעוד החיות נמצאות תחת הרדמה. מקם את כל עכברוש פרקדן על צלחת ניתוח פלאסטי ולמקם מסכה סיליקון לספק מתאדה 2 - 3% isoflurane משאיפת רציפה. אל תשאירו חיה ללא השגחה עד שהוא שב להכרתו מספיק כדי לשמור שכיבה sternal. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בזמן חבישת כפפות סטריליות, להסיר את שיער בטן הגחון באמצעות מסיר שיער. Buprenorphine, או תת-עורית או intraperitoneally, ניתן לעתים קרובות בשלב זה. </li></ol> 2. נוהלי Operative <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תיקון venoplasty <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני הניתוח, חתוך את תיקון קרום הלב שור באמצעות microscissor לגודל 3 מ&quot;מ x 1.5 מ&quot;מ x 0.6 מ&quot;מ. משרים את התיקון ב 10 מ&quot;ל של תמיסת מלח מעוקרות במשך 5 דקות בצלחת תרבית תאים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את אתר החתך עם חיטוי אקטואלי פי הפרוטוקול המוסדי שלך ולהחיל לעטוף כירורגית. יש להשתמש בכפפות ומכשירים סטרילי לשמור טכניקה אספטי לאורך כל הניתוח. הרדמה מקומית ניתן להזריק לתוך האתר של החתך בעור המתוכנן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות אזמל, לעשות חתך בבטן קו אמצע המשתרע ברמת xiphoid רק מעל החיק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס מפשק ו לעקור מעיים כל מעי מחלל הבטן כלפי הצד הימני. עוטף את המעיים בגזה ספוגה מלוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחשוף את iוריד נבוב nfrarenal (IVC). האתר של השתלת תיקון הוא כ 2 מ&quot;מ מתחת לרמה של מוצא ורידי הכליות; לנתח את IVC חינם באתר זה. ולקשור ולחלק את כל הוורידים המותני ו יובל ברמה זו באמצעות 6-0 תפרים ניילון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים שני קליפים המיקרו-כירורגיה ברחבי הן הפרוקסימלית ומ infarenal דיסטלי IVC. בצע venotomy עם מחט 25 G על ידי ניקוב הקיר הקדמי של IVC, ולאחר מכן להרחיב אותו סביב 3 מ&quot;מ באמצעות מספריים (איור 1 א). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את venotomy עם המדבקה באמצעות ריצה או מופרע 10-0 תפרי ניילון (איור 1B). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השלם את הסגר venoplasty. הסר את מהדק דיסטלי הראשון לפרוק את התיקון ולאחר מכן הסר את מהדק הפרוקסימלית לשחזר את זרימת הדם אל IVC. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אשר המוסטאסיס ידי התבוננות למשך 30 שניות ללא דחיסה. החזר את המעיים למצב הטבעי שלהם. סגור את הבטן עם תפר פועל על פי פרוטוקולי חיה אושרה. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תיקון arterioplasty <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני הניתוח, חתוך את תיקון קרום הלב שור באמצעות microscissor לגודל 3 מ&quot;מ x 1.5 מ&quot;מ x 0.6 מ&quot;מ. משרים אותו מלוחים מעוקרים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את אתר החתך עם חיטוי אקטואלי ולהחיל לעטוף כירורגית. יש להשתמש בכפפות ומכשירים סטרילי לשמור טכניקה אספטי לאורך כל הניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות אזמל, לעשות חתך בבטן קו אמצע המשתרע ברמת xiphoid רק מעל החיק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס מפשק ו לעקור מעיים כל מעי מחלל הבטן כלפי הצד הימני. עוטף את המעיים בגזה ספוגה מלוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחשוף את אבי העורקים. האתר של השתלת תיקון הוא כ 2 מ&quot;מ מתחת לרמה של מוצא העורקים הכליות; לנתח את אבי העורקים חינם באתר זה. ולקשור ולחלק את כל העורקים המותני ברמה זו באמצעות 6-0 תפרים ניילון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הצמד את אבי העורקים infrarenal. שימוש במחט 25 G לבצע arteriotomy ידי puncturing הקיר הקדמי של אבי העורקים, ולאחר מכן להרחיב אותו סביב 3 מ&quot;מ באמצעות מספריים (איור 1 ג). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את arteriotomy עם המדבקה באמצעות ריצת 10-0 תפרי ניילון (1D איור). השלם את הסגר arterioplasty. הסר את מהדק דיסטלי הראשון לפרוק את התיקון ולאחר מכן הסר את מהדק הפרוקסימלית לשחזר את זרימת הדם אל אבי העורקים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אשר המוסטאסיס ידי התבוננות למשך 30 שניות ללא דחיסה. החזר את המעיים למצב הטבעי שלהם. סגור את הבטן עם תפר פועל על פי פרוטוקולי חיה אושרה. </li></ol></li></ol> נהלים 3. לאחר ניתוח <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר סגירת הבטן, להפסיק את ההרדמה. החל טיפול שלאחר הניתוח, כולל שיכוך כאבים וטיפול הפצע, בהתאם להוראות שהומלצו על ידי ועדת טיפול בבעלי חיים מוסדיים השתמש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> על שיכוך כאבים, השתמש עצירות ברמה של 0.1 מ&quot;ג / ק&quot;ג לשריר ולא פחות מאחת 12 שעות במשך 24 שעות אחריing הליכים כירורגיים. בדוק את מצב החיה כל יום בחדר החיה, הבטחת שחזור מתאים מתקופת פרי הניתוח וכן טיפול הולם של כאב לאחר ניתוח. אל תחזרו בעל חיים אשר עבר ניתוח לחברה של בעלי חיים אחרים עד שהוא התאושש לחלוטין. </li></ol><style type="text/css">p.p1 {margin: 0.0px 0.0px 0.0px 0.0px; font: 12.0px Helvetica}
</style><style type="text/css">p.p1 {margin: 0.0px 0.0px 0.0px 0.0px; font: 12.0px Helvetic
</style>

<ol>
	<li>Muto, A., Nishibe, T., Dardik, H., Dardik, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patches+for+carotid+artery+endarterectomy:+current+materials+and+prospects.">Patches for carotid artery endarterectomy: current materials and prospects.</a> J Vasc Surg. 50 (1), 206-213 (2009).</li><li>Li, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+usage+and+future+directions+for+the+bovine+pericardial+patch.">Current usage and future directions for the bovine pericardial patch.</a> Ann Vasc Surg. 25 (4), 561-568 (2011).</li><li>Biasi, G. M., Sternjakob, S., Mingazzini, P. M., Ferrari, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nine-year+experience+of+bovine+pericardium+patch+angioplasty+during+carotid+endarterectomy.">Nine-year experience of bovine pericardium patch angioplasty during carotid endarterectomy.</a> J Vasc Surg. 36 (2), 271-277 (2002).</li><li>Papakostas, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+the+vascu-guard+bovine+pericardium+patch+for+arteriotomy+closure+in+carotid+endarterectomy.+Early+and+long-term+results.">Use of the vascu-guard bovine pericardium patch for arteriotomy closure in carotid endarterectomy. Early and long-term results.</a> Ann Vasc Surg. 28 (5), 1213-1218 (2014).</li><li>Ohwada, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Glutaraldehyde-fixed+heterologous+pericardium+for+vena+cava+grafting+following+hepatectomy.">Glutaraldehyde-fixed heterologous pericardium for vena cava grafting following hepatectomy.</a> Hepatogastroenterology. 46 (26), 855-858 (1999).</li><li>Mori, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standard+hepatic+vein+reconstruction+with+patch+plasty+using+the+native+portal+vein+in+adult+living+donor+liver+transplantation.">Standard hepatic vein reconstruction with patch plasty using the native portal vein in adult living donor liver transplantation.</a> Liver Transpl. 18 (5), 602-607 (2012).</li><li>Bai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pericardial+patch+venoplasty+heals+via+attraction+of+venous+progenitor+cells.">Pericardial patch venoplasty heals via attraction of venous progenitor cells.</a> Physiological Reports. 4 (12), (2016).</li><li>Li, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pericardial+patch+angioplasty+heals+via+an+Ephrin-B2+and+CD34+positive+cell+mediated+mechanism.">Pericardial patch angioplasty heals via an Ephrin-B2 and CD34 positive cell mediated mechanism.</a> PLoS One. 7 (6), 38844 (2012).</li><li>Bai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pretreatment+of+pericardial+patches+with+antibiotics+does+not+alter+patch+healing+in+vivo.">Pretreatment of pericardial patches with antibiotics does not alter patch healing in vivo.</a> J Vasc Surg. 63 (4), 1063-1073 (2016).</li><li>Muto, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eph-B4+prevents+venous+adaptive+remodeling+in+the+adult+arterial+environment.">Eph-B4 prevents venous adaptive remodeling in the adult arterial environment.</a> J Exp Med. 208 (3), 561-575 (2011).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

אנו מתארים מודל אנגיופלסטיקה תיקון בחולדה שיכול לשמש גם בוורידים או בעורקים, יצירת venoplasty תיקון או תיקון arterioplasty, בהתאמה. באמצעות מודל תיקון קרום הלב הזה, הראינו היפרפלזיה neointimal אגרסיבי ויציב בחולדה IVC venoplasty לעומת arterioplasty אבי העורקים (איור 2) 7,</...

מנתחי דם כלי דם קרוב כלל עם טלאי קרום לב, או שור או חזירי, כדי להפחית את הסיכון של restenosis 1, 2. בניתוח עורק, אנגיופלסטיקה תיקון קרום לב מפחיתה את שיעור restenosis לעומת סגר עיקרי 3, 4. תיקון venoplasty גם מבוצע באופן דומה לסגור ורידים, למרות בתדירות נמוכה יותר בהשוואה להליכים עורקי 5, 6. תיקונים בדרך כלל לפתח היפרפלזיה neointimal על משטחים לומינל שלהם; עם זאת, המנגנון של היווצרות neointimal עדיין לא ברור, במיוחד בהשוואה של הבדלים במבנה neointimal בין העורקים וסביבות ורידים. הראינו בעבר כי טלאי קרום לב למשוך ובתאים הם בעורקי סביבות הוורידים וכי אנגיופלסטיקה תיקון ורידי תערוכות יותרהיווצרות neointimal ggressive לעומת מדבקות העורקים 7, 8. במחקר זה, אנו מתארים את מודל העכברים של אנגיופלסטיקה תיקון קרום לב משותפת סגירת שני ורידים ועורקים וכי ניתן להשתמש כדי ללמוד היווצרות neointimal; שיטה זו היא דגם בזעיר חיה של טכניקה פעילה הנפוצה בחולים אנושיים. מודל העכברוש בעל קוטר גדול יותר מאשר דגם העכבר, דבר המקל על היבטים טכניים של הניתוח ושיפור עקומת הלמידה עבור הדגם.

<table><tbody><tr><td>Bovine pericardial patch</td><td>LeMaitre Vascular</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vascular clamp</td><td>Roboz Surgical Instrument Co.</td><td>RS-5424</td><td></td></tr><tr><td>Clamp applying forceps</td><td>Roboz Surgical Instrument Co</td><td>RS-5410</td><td></td></tr><tr><td>10-0 Prolene suture</td><td>Arosurgical Co.</td><td>T05A10N10-13</td><td></td></tr></tbody></table>

patch angioplasty in the rat aorta or inferior vena cava

טלאי קרום לב משמשים בכירורגיה של כלי דם כדי לסגור כלי. כדי להקל על מחקרים של היפרפלזיה neointimal הנוצרת על התיקון, פיתחנו מודל עכברוש של אנגיופלסטיקה תיקון שיכול לשמש גם וריד או עורק, וייצור טלאי venoplasty או תיקון arterioplasty, בהתאמה. היבטים טכניים של מודל זה הם דנו. IVC אינפרא כליות או אבי העורקים הם גזור ואז הידק proximally ו distally. Venotomy או arteriotomy 3 מ&quot;מ מתבצע הווריד או אב העורקים הנבובים הנחים infrarenal של 6 עד 8 חולדות Wistar שבועות בן. כתם קרום לב שור (3 מ&quot;מ x 1.5 מ&quot;מ x 0.6 מ&quot;מ) לאחר מכן נעשה שימוש כדי לסגור את האתר באמצעות תפר ניילון 10-0. לעומת תיקוני עורקים, תיקוני ורידי להראות גדל עובי neointimal על יום לאחר הניתוח 7. זה מודל הרומן של אנגיופלסטיקה תיקון קרום הלב יכול לשמש כדי לבחון היפרפלזיה neointimal על biomaterials וסקולרית, כמו גם להשוות את ההבדלים בין עורקים ורידיסביבות.

לאחר אנגיופלסטיקה תיקון, אין פקקת או ורידי (N = 42) או עורקים (n = 24) קבוצות התיקון. הישרדות ביום 7 היה 100% בשני הקבוצות גם עם ורידים או תיקון עורק. המדבקות נבצרו ביום 7 ומוכתמים hematoxylin ו eosin, ואת עובי neoint...

Watch this Scientific Journal Video about Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava at JoVE.com

Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava

We have established a model of pericardial patch angioplasty that can be used in either small-diameter veins or arteries. This model can be used to compare venous and arterial neointimal hyperplasia formation.

תיקון אנגיופלסטיקה בחולדת אב העורקים או נחות Vena Cava

Pericardial patches are commonly used in vascular surgery to close vessels. To facilitate studies of the neointimal hyperplasia that forms on the patch, ...

patch-angioplasty-in-the-rat-aorta-or-inferior-vena-cava

Research

JoVE Journal

Medicine

10.5K Views.  Yale University. We have established a model of pericardial patch angioplasty that can be used in either small-diameter veins or arteries. This model can be used to compare venous and arterial neointimal hyperplasia formation.

Video: Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava

Orthotopic Aortic Transplantation: A Rat Model to Study the Development of Chronic Vasculopathy

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant vasculopathy (TVP).
The commonly used animal model for cardiovascular chronic rejection studies is the heterotopic heart transplant model performed in laboratory rodents. This model is used widely in experiments since Ono and Lindsey (3) published their technique. To analyze the findings in the blood vessels, the heart has to be sectioned and all vessels have to be measured.
Another method to investigate chronic rejection in cardiovascular questionings is the aortic transplant model (1, 2). In the orthotopic aortic transplant model, the aorta can easily be histologically evaluated (2). The PVG-to-ACI model is especially useful for CAV studies, since acute vascular rejection is not a major confounding factor and Cyclosporin A (CsA) treatment does not prevent the development of CAV, similar to what we find in the clinical setting (4). A7-day period of CsA is required in this model to prevent acute rejection and to achieve long-term survival with the development of TVP.
This model can also be used to investigate acute cellular rejection and media necrosis in xenogeneic models (5).

This video demonstrates the orthotopic aortic transplant model as a simple model to study the development of transplant vasculopathy (TVP) in rats.

Orthotopic אבי העורקים להשתלות: מודל עכברוש לחקר התפתחות vasculopathy כרונית

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant ...

Acute Myocardial Infarction in Rats

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular diseases. Animal models that mimic human cardiac disease, such as myocardial infarction (MI) and ischemia-reperfusion (IR) that induces heart failure as well as pressure-overload (transverse aortic constriction) that induces cardiac hypertrophy and heart failure (Goldman and Tarnavski), are useful models to study cardiovascular disease. In particular, myocardial ischemia (MI) is a leading cause for cardiovascular morbidity and mortality despite controlling certain risk factors such as arteriosclerosis and treatments via surgical intervention (Thygesen). Furthermore, an acute loss of the myocardium following myocardial ischemia (MI) results in increased loading conditions that induces ventricular remodeling of the infarcted border zone and the remote non-infarcted myocardium. Myocyte apoptosis, necrosis and the resultant increased hemodynamic load activate multiple biochemical intracellular signaling that initiates LV dilatation, hypertrophy, ventricular shape distortion, and collagen scar formation. This pathological remodeling and failure to normalize the increased wall stresses results in progressive dilatation, recruitment of the border zone myocardium into the scar, and eventually deterioration in myocardial contractile function (i.e. heart failure). The progression of LV dysfunction and heart failure in rats is similar to that observed in patients who sustain a large myocardial infarction, survive and subsequently develops heart failure (Goldman). The acute myocardial infarction (AMI) model in rats has been used to mimic human cardiovascular disease; specifically used to study cardiac signaling mechanisms associated with heart failure as well as to assess the contribution of therapeutic strategies for the treatment of heart failure. The method described in this report is the rat model of acute myocardial infarction (AMI). This model is also referred to as an acute ischemic cardiomyopathy or ischemia followed by reperfusion (IR); which is induced by an acute 30-minute period of ischemia by ligation of the left anterior descending artery (LAD) followed by reperfusion of the tissue by releasing the LAD ligation (Vasilyev and McConnell). This protocol will focus on assessment of the infarct size and the area-at-risk (AAR) by Evan's blue dye and triphenyl tetrazolium chloride (TTC) following 4-hours of reperfusion; additional comments toward the evaluation of cardiac function and remodeling by modifying the duration of reperfusion, is also presented. Overall, this AMI rat animal model is useful for studying the consequence of a myocardial infarction on cardiac pathophysiological and physiological function.

The rat model of acute myocardial infarction (AMI) is useful to study the consequence of a MI on cardiac pathophysiological and physiological function.

באוטם שריר הלב אצל חולדות

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular ...

Angiogenesis in the Ischemic Rat Lung

The adult lung is perfused by both the systemic bronchial artery and the entire venous return flowing through the pulmonary arteries. In most lung pathologies, it is the smaller systemic vasculature that responds to a need for enhanced lung perfusion and shows robust neovascularization. Pulmonary vascular ischemia induced by pulmonary artery obstruction has been shown to result in rapid systemic arterial angiogenesis in man as well as in several animal models. Although the histologic assessment of the time course of bronchial artery proliferation in rats was carefully described by Weibel 1, mechanisms responsible for this organized growth of new vessels are not clear. We provide surgical details of inducing left pulmonary artery ischemia in the rat that leads to bronchial neovascularization. Quantification of the extent of angiogenesis presents an additional challenge due to the presence of the two vascular beds within the lung. Methods to determine functional angiogenesis based on labeled microsphere injections are provided.

The lung is perfused by both the systemic bronchial artery and pulmonary arteries. In most lung pathologies, it is the smaller systemic vasculature that shows robust neovascularization. Cessation of pulmonary blood flow promotes brisk bronchial angiogenesis. We provide surgical details of inducing left pulmonary artery ischemia that promotes bronchial neovascularization.

באנגיוגנזה ריאות עכברוש איסכמי

The  adult lung is perfused by both the systemic bronchial artery and the entire  venous return flowing through the pulmonary arteries. In most lung ...

A New Murine Model of Endovascular Aortic Aneurysm Repair

Endovascular aneurysm exclusion is a validated technique to prevent aneurysm rupture. Long-term results highlight technique limitations and new aspects of Abdominal aortic aneurysm (AAA) pathophysiology. There is no abdominal aortic aneurysm endograft exclusion model cheap and reproducible, which would allow deep investigations of AAA before and after treatment. We hereby describe how to induce, and then to exclude with a covered coronary stentgraft an abdominal aortic aneurysm in a rat. The well known elastase induced AAA model was first reported in 19901 in a rat, then described in mice2. Elastin degradation leads to dilation of the aorta with inflammatory infiltration of the abdominal wall and intra luminal thrombus, matching with human AAA. Endovascular exclusion with small covered stentgraft is then performed, excluding any interactions between circulating blood and the aneurysm thrombus. Appropriate exclusion and stentgraft patency is confirmed before euthanasia by an angiography thought the left carotid artery. Partial control of elastase diffusion makes aneurysm shape different for each animal. It is difficult to create an aneurysm, which will allow an appropriate length of aorta below the aneurysm for an easy stentgraft introduction, and with adequate proximal and distal neck to prevent endoleaks. Lots of failure can result to stentgraft introduction which sometimes lead to aorta tear with pain and troubles to stitch it, and endothelial damage with post op aorta thrombosis. Giving aspirin to rats before stentgraft implantation decreases failure rate without major hemorrhage. Clamping time activates neutrophils, endothelium and platelets, and may interfere with biological analysis.

Histological and biochemical modifications after aneurysm endograft exclusion are still unclear. We describe a new model of endograft implantation on a murine aneurysm. Through thrombus analysis with and without persistant circulating blood stream interface, and new endovascular biomaterials evaluation, this model will help to better understand endovascular aneurysm exclusion pathobiology.

דגם Murine חדש של מפרצת אבי העורקים תיקון Endovascular

Endovascular aneurysm exclusion is a validated technique to prevent aneurysm rupture. Long-term results highlight technique limitations and new aspects of ...

Imaging In-Stent Restenosis: An Inexpensive, Reliable, and Rapid Preclinical Model

Preclinical models of restenosis are essential to unravel the pathophysiological processes that lead to in-stent restenosis and to optimize existing and future drug-eluting stents.
A variety of antibodies and transgenic and knockout strains are available in rats. Consequently, a model for in-stent restenosis in the rat would be convenient for pathobiological and pathophysiological studies. 
In this video, we present the full procedure and pit-falls of a rat stent model suitable for high throughput stent research. We will show the surgical procedure of stent deployment, and the assessment of in-stent restenosis using the most elegant technique of OCT (Optical Coherence Tomography). This technique provides high accuracy in assessing plaque CSAs (cross section areas) and correlates well with histological sections, which require special and time consuming embedding and sectioning techniques. OCT imaging further allows longitudinal monitoring of the development of in-stent restenosis within the same animal compared to one-time snapshots using histology.

This video demonstrates how to use a preclinical inexpensive and reliable model to study pathobiological and pathophysiological processes of in-stent restenosis development. Longitudinal in vivo monitoring using OCT (Optical Coherence Tomography) and analysis of OCT images are also demonstrated.

In-סטנט restenosis הדמיה: דגם זולה, Preclinical אמין, מהיר

Preclinical models of restenosis are essential to unravel the pathophysiological processes that lead to in-stent restenosis and to optimize existing and ...

Biology

Vascular Balloon Injury and Intraluminal Administration in Rat Carotid Artery

The carotid artery balloon injury model in rats has been well established for over two decades. It remains an important method to study the molecular and cellular mechanisms involved in vascular smooth muscle dedifferentiation, neointima formation and vascular remodeling. Male Sprague-Dawley rats are the most frequently employed animals for this model. Female rats are not preferred as female hormones are protective against vascular diseases and thus introduce a variation into this procedure. The left carotid is typically injured with the right carotid serving as a negative control. Left carotid injury is caused by the inflated balloon that denudes the endothelium and distends the vessel wall. Following injury, potential therapeutic strategies such as the use of pharmacological compounds and either gene or shRNA transfer can be evaluated. Typically for gene or shRNA transfer, the injured section of the vessel lumen is locally transduced for 30 min with viral particles encoding either a protein or shRNA for delivery and expression in the injured vessel wall. Neointimal thickening representing proliferative vascular smooth muscle cells usually peaks at 2 weeks after injury. Vessels are mostly harvested at this time point for cellular and molecular analysis of cell signaling pathways as well as gene and protein expression. Vessels can also be harvested at earlier time points to determine the onset of expression and/or activation of a specific protein or pathway, depending on the experimental aims intended. Vessels can be characterized and evaluated using histological staining, immunohistochemistry, protein/mRNA assays, and activity assays. The intact right carotid artery from the same animal is an ideal internal control. Injury-induced changes in molecular and cellular parameters can be evaluated by comparing the injured artery to the internal right control artery. Likewise, therapeutic modalities can be evaluated by comparing the injured and treated artery to the control injured only artery.

This protocol uses a balloon catheter to cause an intraluminal injury on the rat carotid artery and henceforth elicit neointimal hyperplasia. This is a well-established model for studying the mechanisms of vascular remodeling in response to injury. It is also widely used to determine the validity of potential therapeutic approaches.

כלי דם בלון פגיעה וIntraluminal מנהל בעורקי תרדמת העכברוש

The carotid artery balloon injury model in rats has been well established for over two decades. It remains an important method to study the molecular and ...

A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is also a valuable model system to test, and to evaluate therapeutics and drugs that negate maladaptive remodeling in the vessel. The injury, or barotrauma, in the vessel lumen caused by an inflated balloon via an inserted catheter induces subsequent neointimal growth, often leading to hyperplasia or thickening of the vessel wall that narrows, or obstructs the lumen. The method described here is sufficiently sensitive, and the results can be obtained in relatively short time (2 weeks after the surgery). The efficacy of the drug or therapeutic against the induced-remodeling can be evaluated either by the post-mortem pathological and histomorphological analysis, or by ultrasound sonography in live animals. In addition, this model system has also been used to determine the therapeutic window or the time course of the administered drug. These studies can leadto the development of a better administrative strategy and a better therapeutic outcome. The procedure described here provides a tool for translational studies that bring drug and therapeutic candidates from bench research to clinical applications.

The rat carotid balloon injury model described below allows researchers to evaluate drugs or therapeutics that negate injury-induced arterial hyperplasia. Detailed pre-surgical preparation, surgical procedure, and post-surgical cares of the animal are described.

פציעת בלון עכברוש ראש דגם כדי לבדוק Therapeutics שיפוץ אנטי-וסקולרית

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is ...

Biodegradable Magnesium Stent Treatment of Saccular Aneurysms in a Rat Model - Introduction of the Surgical Technique

The steady progess in the armamentarium of techniques available for endovascular treatment of intracranial aneurysms requires affordable and reproducable experimental animal models to test novel embolization materials such as stents and flow diverters. The aim of the present project was to design a safe, fast, and standardized surgical technique for stent assisted embolization of saccular aneurysms in a rat animal model.
Saccular aneurysms were created from an arterial graft from the descending aorta.The aneurysms were microsurgically transplanted through end-to-side anastomosis to the infrarenal abdominal aorta of a syngenic male Wistar rat weighing &#62;500 g. Following aneurysm anastomosis, aneurysm embolization was performed using balloon expandable magnesium stents (2.5 mm x 6 mm). The stent system was retrograde introduced from the lower abdominal aorta using a modified Seldinger technique.
Following a pilot series of 6 animals, a total of 67 rats were operated according to established standard operating procedures. Mean surgery time, mean anastomosis time, and mean suturing time of the artery puncture site were 167 &#177; 22 min, 26 &#177; 6 min and 11 &#177; 5 min, respectively. The mortality rate was 6% (n=4). The morbidity rate was 7.5% (n=5), and in-stent thrombosis was found in 4 cases (n=2 early, n=2 late in stent thrombosis).
The results demonstrate the feasibility of standardized stent occlusion of saccular sidewall aneurysms in rats - with low rates of morbidity and mortality. This stent embolization procedure combines the opportunity to study novel concepts of stent or flow diverter based devices as well as the molecular aspects of healing.

Reproducable experimental animal models are needed for the testing of novel embolization materials, which have been designed to treat endovascular occlusion of intracranial aneurysms (IA). The present study aims to develop a safe and standardized surgical technique for stent assisted embolization of saccular aneurysms in a rat animal model.

מגנזיום מתכלה סטנט לטיפול מפרצות Saccular במודל חולדה - מבוא לשיטת כירורגי

The steady progess in the armamentarium of techniques available for endovascular treatment of intracranial aneurysms requires affordable and reproducable ...

Neuroscience

Creation of a Rodent Model of Abdominal Aortic Aneurysm by Blocking Adventitial Vasa Vasorum Perfusion

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic aneurysms (AAAs). This article introduces and describes a standard protocol used to induce AAAs through adventitial VV hypoperfusion created with a combination of polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the infrarenal abdominal aorta.
The protocol involves the use of male rats weighing 300-400 g, which are provided food and water ad libitum. After laparotomy with a ventral midline abdominal incision, exfoliation of the aorta is performed, which blocks blood flow from the perivascular tissue. Aortotomy involving a small incision adjacent to the renal artery branches is performed, and a polyurethane catheter is inserted using an 18-gauge indwelling needle. After repairing the incision, tight ligation of the aorta over the catheter blocks VV blood flow from the proximal direction through the aortic wall without disturbing the aortic blood flow. This technique can induce an AAA with progressive aortic dilatation.
The greatest benefit of this model is that VV hypoperfusion causes tissue hypoxia and the development of an infrarenal AAA, which has morphological and pathological characteristics similar to those of a human AAA.

Polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the aorta induce chronic hypoxia due to hypoperfusion of the adventitial vasa vasorum. This article describes a novel animal model of abdominal aortic aneurysm (AAA) with characteristics similar to those of AAA in humans.

יצירת מודל מכרסם של מפרצת אבי העורקים בבטן על ידי חסימת ואסה Adventitial וזורום זלוף

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the luminal surface area in arteries thereby reducing adequate blood flow to organs and distal tissues. Clinically, revascularization procedures such as balloon angioplasty with or without stent placement aim to restore blood flow. Although these procedures reestablish blood flow by reducing plaque burden, they damage the vessel wall, which initiates the arterial healing response. The prolonged healing response causes arterial restenosis, or re-narrowing, ultimately limiting the long-term success of these revascularization procedures. Therefore, preclinical animal models are integral for analyzing the pathophysiological mechanisms driving restenosis, and provide the opportunity to test novel therapeutic strategies. Murine models are cheaper and easier to operate on than large animal models. Balloon or wire injury are the two commonly accepted injury modalities used in murine models. Balloon injury models in particular mimic the clinical angioplasty procedure and cause adequate damage to the artery for the development of restenosis. Herein we describe the surgical details for performing and histologically analyzing the modified, pressure-controlled rat carotid artery balloon injury model. Additionally, this protocol highlights how local periadventitial application of therapeutics can be used to inhibit neointimal hyperplasia. Lastly, we present light sheet fluorescence microscopy as a novel approach for imaging and visualizing the arterial injury in three-dimensions.

The rat carotid artery balloon injury mimics the clinical angioplasty procedure performed to restore blood flow in atherosclerotic vessels. This model induces the arterial injury response by distending the arterial wall, and denuding the intimal layer of endothelial cells, ultimately causing remodeling and an intimal hyperplastic response.

עכברוש עורק הראש מבוקר לחץ על פגיעה בבלון מגזרי עם יישום טיפולי Periadventitial

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...