Ivan Laermans&#39;a, Rosita Kinart&#39;a, Ann Lissens&#39;e (Cerrahi Teknolojiler Merkezi, KU Leuven, Leuven, Belçika) teşekkür ediyoruz. Jo Verbinnen ve Kristof Reyniers (Vesalius Anatomi Enstitüsü, Tıp Fakültesi, KU Leuven, Leuven, Belçika) deney sırasında teknik destek sağlamıştır. Veri ve el yazması yönetimiyle ilgili yardım için Leen Mortier&#39;e teşekkür ediyoruz. FEG Textiltechniken&#39;e, prototip kafesleri imalatı, onları sterilize etmesi ve koşulsuz olarak araştırma için bağışladığı için teşekkür ediyoruz.

Bu deney için etik onay, KU Leuven&#39;in Hayvan Deneyleri Etik Kurulu&#39;ndan (P065 / 2013) elde edilmiştir. Hayvanlar, hayvan refahı ile ilgili ulusal kurallara uygun olarak tedavi edilmiştir. 1. Malzeme ve Deney Hayvanları <ol><li> Cerrahi hazırlık <ol><li> Cerrahi tiyatro, steril bir örtü ile bir masayı örter ve bir tane steril kavisli trokar ( Şekil 1 , panel A), steril cerrahi aletler, sütürler ve steril gazlı bez hazırlar. Deney takibi içeriyorsa tüm cerrahi prosedürü steril koşullar altında uygulayın. Ameliyat sırasında kullanılmaya hazır tüm aletleri masaya yerleştirin. </li><li> Steril bir dikdörtgen implant ve / veya steril paketten demirleme kolları olan bir implant çıkarın ve steril örtüyle kaplı masanın üzerine koyun ( Şekil 1B , C ve D ). </li></ol></li></ol> Şekil 1: Trokar ve İmplantlar. ( A ) Trokarın şematik çizimi. ( B ) merkezi parçanın detaylı (panel C ) H-şekilli poliviniliden florür (PVDF) implant. Şekli transvajinal prolaps onarımı için halihazırda mevcut olan dört kol kafeslerden esinlenmiştir. Dikdörtgen bir gövde (30 x 40 mm2) yanal dört kollarını (150 x 10 mm 2) ile uzatılır. Kolların boyutları, önceki anatomik çalışmalara dayanarak, ilgili süspansiyon yapılarını delebilecek kadar uzun olacak şekilde tasarlanmıştır. 17 . ( D ) Dikdörtgen implant (30 x 40 mm 2 ). Her iki implant da poliviniliden flüorürden yapılmıştır; Tekstil özellikleri ve özellikleri Tablo 1&#39;de verilmektedir . <ol start="2"><li> Deneysel hayvan (EwE, 45-60 kg) <ol><li> Cerrahi prosedürden 30 dakika önce 1 mL 15 mg / mL atropin sülfat ve 1 mL / 50 kg ksilazin HC1&#39;nin intramusküler (im) premedikasyonunu uygulayın. </li><li> 30 dakika sonra, premedikasyonun koyunları uyuşuk ve uykulu yaptığından emin olun. </li><li> Juguler damara intravenöz bir kateter yerleştirin ve 0.075 mL / kg ketamin 100 mg / mL HC1 uygulayın. Ağrılı uyarılara karşı reaksiyon eksikliğini gözleyerek derin anestezi teyit edin. </li><li> Hayvanı cerrahi masanın üzerine getirin ve hava yollarını entübasyon yoluyla emniyet altına alınız. Anestezi,% 5 izofluran ile 5 L / dk oksijende muhafaza edilmelidir. </li><li> Damar içi çizgiyi juguler damara yerleştirin ve 150 mL / saat&#39;lik bir akış oranında 500 mL salin solüsyonu sağlayın. </li><li> Profilaktik antibiyotik im (amoksisilin klavulanat, 7 mg / kg) ve ameliyat sonrası analjezikler (buprenorfin ve klorokresol, 1 mL) veya yerel protokollere göre eşdeğerliğini uygulayın. </li><li> Hayvanı yakacak şekilde yerleştirinHotomy pozisyona getirin ve ipleri kullanarak hiper-fleksiyonda kalçalarla eklemlerini sabitleyin ( Şekil 2 , panel A). </li><li> Vajinal yolla trans-vajinal yolla basarak mesane ve rektumu elle boşaltın. </li><li> Perineumu, kalçanın orta kısmını ve kuyruk kıvrımlarını tıraş edin ve% 7.5 polividon iodin ile dezenfekte edin ( Şekil 2 , panel B ve C). </li></ol></li></ol><img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/55706/55706fig2.jpg" /> Şekil 2: Hayvan Cerrahisi. ( A ) Bir koyun, alt ekstremiteleri sabitleyerek hiper-bükülmüş kalçalar ile sırtüstü pozisyona yerleştirilir. ( B ) Trokar sokma için dış giriş noktaları ventral taraftadır (boş ok) ve lateral sırt kıvrımlarında (tam ok) dorsal olarak bulunur. ( C ) Ventral ekleme noktalarının konumu; Ortadaki kesikli çizgiHayvanın midsagital düzlemi. ( D ) Diseksiyonlu rektovajinal septum. ( E ) Ventral trokarın uyluğun orta kısmındaki kaslar, obturator foramen ve paravajinal boşluk içine sokulması. Delici trokarın yörüngesi parmak ile kontrol edilir. ( F ve G ) Trokar yerinde olduğunda tel askısı (açık ok) ilerletilir ve vajinal kafes kolu ile yüklenir. ( H ) Ventral (tam oklar) ve dorsal (boş ok) kolların son pozisyonu. ( I ) Merkezi kısım, vajinal duvar ile rektal adventival arasında gerilimsizdir. <ol start="10" style="margin-left: 40px;"><li> Steril koşullar altında bir ameliyat için personel hazırlayın. Ameliyat kapağı ve ağız maskesi takın, ameliyat için ellerinizi yıkayın ve bir cerrahi elbise ve steril eldiven giyin. </li><li> Hayvanı steril bir örtüyle örtün ve genitalin üzerinde bir açılma yapınaradan. </li></ol> 2. Cerrahi İşlem <ol><li> Rektovajinal septumun hazırlanması <ol><li> Allis forseps kullanarak hymeneal halkaya 3 cm kranial dorsal vajinal duvarı kavrayın. </li><li> 10 mL salin içeren bir şırınga alın ve 22 G&#39;lik bir iğne takın. Vajinal epitelyum (yaklaşık 3-4 mm derinliğinde) ve hymeneal halkaya 1.5 cm kraniyal rektovajinal septumun orta çizgisine yerleştirin. </li><li> Rektovajinal septuma tuzlu su enjekte ederek &quot;suda özünme&quot; gerçekleştirin 11 . </li><li> Vajinal epitelyumda Allis forsepsine kaudal başlayarak (adım 2.1.1) 3 cm uzunluğunda bir orta hat kesisi yapın ve bir neşter kullanarak hymeneal halkaya son verin. Bu kesikten rekto-vajinal boşluğa girin. </li><li> Kendini tutan geri çekiciyi ( Malzeme Tablosuna bakınız) perine üzerine yerleştirin ve açık kalması için dört keskin kalma kancasını vajinal keside yerleştirin. </li&gt; <li> Parmağınızla, rekto-vajinal fasyayı vajinal duvarın yanal duvarlarından pelvik yan duvarlara doğru ve kriyal olarak çıkmazın kaudal yüzüne kadar keskin şekilde inceleyin. Ağ (Şekil 2, panel D), 30 x 40 mm2 merkezi bölümü için uygun bir boşluk oluşturmak. </li><li> Gerektiğinde hemostatik forseps veya çapraz hemostatik bağ ile hemostazı uygulayın. NOT: Küçük kanamalar hemostatik forsepsle sıkıştırılabilir. Bu, gemi ezilir ve doğal koagülasyon kaskadını başlatır. Daha kanayan kanamalar için, kanama teknesini forsepsle tutun ve bir kare düğümle sabitleyen bir çapraz bağlantı oluşturun. Bu noktada, ya dikdörtgen implant yerleştirilebilir (adım 2.2) ya da demirleme kollarıyla implant yerleştirmek için diseksiyonla devam edebilir (adım 2.3). </li></ol></li><li> Düz örgü sokma <ol><li> Daha iyi bir görünüm elde etmek için vajinal retraktörü vajinal kesiye takın.Diseke alanının kranyal kısmı. </li><li> Diseksiyona uğramış rekto-vajinal boşluğun en kranial yönünün sol ve sağ taraflarına basit bir kesintili 3/0 polipropilen dikişle implantın sağ ve sol kafa köşesini dikin. Artık sütür malzemesini kesin. Dikişi vajinal lümenden uzak tutun ( örn . Vajinal duvara nüfuz etmeyin). NOT: İmplant daima rekto-vajinal septumdan oluşan bağ dokusuna dikilir. Vajina duvarı, dikiş materyali vajinada görülemiyorsa nüfuz ettirilmez. </li><li> İmplantın kraniyal boyu boyunca bir ara basit kesilmiş dikiş ekleyin. </li><li> İmplantın orta kısmındaki yanal kenarları basit bir kesintili 3/0 polipropilen ile çevreleyen bağ dokusu üzerine dikin. İmplantı olabildiğince düz durun ve gerginlikten uzak tutun. </li><li> Sol ve sağ kuyruk köşelerini basit kesilen 3/0 polipropilen sütürlerle sol ve sağa dikinRektovajinal alanın en kaudal yönünün kenarları. </li><li> İmplantın kuyruk yüzü boyunca bir ara basit kesilmiş dikiş ekleyin. </li><li> Vajinal kesikleri, çalışan 3/0 poliglaştin sütür ile kapatın. </li></ol></li><li> İmplantların kollarla yerleştirilmesi ve takılması (trokar kılavuzlu teknik). <ol><li> Kademeli olarak palpe edilebilen tıkanıklık forameninin medialine ulaşmak için adım 2.1&#39;de oluşturulan rekto-vajinal boşluğun kranio-ventral olarak disseksiyonuna devam edin. </li><li> Sakrotuberöz ligamanın ve kaudal olarak yerleşmiş koksigus kasının kaudal yönüne ulaşmak için alanı kaudo-lateral olarak ayırın. </li><li> Hayır ile. 24 bıçak, vulvar tarafta dört 1 cm genişliğindeki insizyon yapmak, cilt ve yüzeysel kas fascia kesme ( Şekil 2 , panel B ve C). </li><li> Uyluğun medialinde, kaudal sınırdan yaklaşık 4 cm kranyal üzerinde iki &quot;ventral&quot; insizyon yapınSiyatik kemer ( yani simfizin alt sınırı) ve orta hattan 3 cm yanal ( Şekil 2 , panel C). </li><li> Kolaylıkla palpe edilebilen kuyruk kıvrımlarının, yumru kökün iziadikumuna 2 cm medial olarak yerleştirilmesi seviyesinde iki &quot;dorsal&quot; kesik yapın ( Şekil 2 , panel B). </li><li> Ventral kesilerden birinde eğri bir trokar yerleştirin ( Şekil 2 , panel E). </li><li> Trokarı, adductor magnus kasından, dış obturatörden ve obturator foramen medialinden geçirin. </li><li> Vajinal kesiden geçen bir parmak ile trokarın ilerlemesini kontrol edin. Onun ucu levator ani kasının tendinöz yayına yönlendirir ( Şekil 2 , panel E). </li><li> Kılavuz telin vajinal duvar kesisine maruz bırakın ve ilgili ipsilateral kranyal örgü kolu ile yükleyin ( Şekil 2 , panel F). </li><li> M ile yüklü trokarı çekinEsh kolu yukarıdaki yapılar aracılığıyla. Kolu gerginlikten uzak tutun. </li><li> İşlemi, hayvanın diğer tarafındaki ventral kesi boyunca ikinci kafa tabanı koluyla tekrarlayın. </li><li> Dorsal kesilerden birinde, trokarı, sakrotüböz bağın hemen distalindeki koksigus kasından geçirin ( Şekil 2 , panel G). </li><li> Kılavuz telini vajinal kesiden geçirin, ağın dorsal kolunu tutun ve çekin. Kolu gerginlikten uzak tutun ve diğer taraftan tekrarlayın. </li><li> Örgüyü düzleştirerek ve kollara gerginlik kazandırarak konumunu ayarlayın, ancak örgüyü gerginlikten uzak tutun ( Şekil 2, panel I; Şekil 3 ). </li><li> Örgü gövdesini, kaudal sınırın ortasında basit bir kesintili 3/0 polipropilen dikişle sabitleyerek çevresindeki bağ dokusuna sabitleyin. </li><li> Silahları derinin seviyesinde kesin ve kesilmiş 3/0 poligeli tüm cilt kesilerini kapatın.Ecaprone sütürler ( Şekil 2 , panel H). </li><li> Vajinal insizyonu çalışan 3/0 poliglikoprotein dikiş ile kapatın. </li></ol></li></ol><img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/55706/55706fig3.jpg" /> Şekil 3: Obturator foramen ve Kuyruk Bölmelerini Geçen Kudal Silahlardan Geçen Kafes Silahlarıyla Koyun Pelvisinin Şematik Gösterimi. Geniş sakrotüber bağ mavi renktedir. Daha küçük panel, aşırı miktarda malzemenin kısaltılmasından önce kolların yaslanmış konumda bir hayvandaki konumunu gösterir. Ana panel aynı şeyi gösteriyor ancak cilt ve kaslar çıkartılmış durumda.

<ol><li>Glazener, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Childbirth+and+prolapse%3A+Long-term+associations+with+the+symptoms+and+objective+measurement+of+pelvic+organ+prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22BJOG+An+Int.+J.+Obstet.+Gynaecol%22%5BJournal%5D)">Childbirth and prolapse: Long-term associations with the symptoms and objective measurement of pelvic organ prolapse.</a> BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 120 (2), 161-168 (2013).</li>
<li>Jia, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacy+and+safety+of+using+mesh+or+grafts+in+surgery+for+anterior+and%2For+posterior+vaginal+wall+prolapse%3A+systematic+review+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22BJOG%22%5BJournal%5D)">Efficacy and safety of using mesh or grafts in surgery for anterior and/or posterior vaginal wall prolapse: systematic review and meta-analysis.</a> BJOG. 115 (11), 1350-1361 (2008).</li>
<li>Maher, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transvaginal+mesh+or+grafts+compared+with+native+tissue+repair+for+vaginal+prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22Review%22%5BJournal%5D)">Transvaginal mesh or grafts compared with native tissue repair for vaginal prolapse.</a> Review. 2 (2), 10-13 (2016).</li>
<li>Nieminen, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Outcomes+after+anterior+vaginal+wall+repair+with+mesh%3A+a+randomized%2C+controlled+trial+with+a+3+year+follow-up%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Outcomes after anterior vaginal wall repair with mesh: a randomized, controlled trial with a 3 year follow-up.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 203 (3), e1-e8 (2010).</li>
<li>Abramowitch, S. D., Feola, A., Jallah, Z., Moalli, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+mechanics%2C+animal+models%2C+and+pelvic+organ+prolapse%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Obstet.+Gynecol.+Reprod.+Biol%22%5BJournal%5D)">Tissue mechanics, animal models, and pelvic organ prolapse: a review.</a> Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 144, S146-S158 (2009).</li>
<li>Couri, B., Lenis, A., Borazjani, A., Paraiso, M. F. R., Damaser, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+female+pelvic+organ+prolapse%3A+lessons+learned%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev.+Obs.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Animal models of female pelvic organ prolapse: lessons learned.</a> Expert Rev. Obs. Gynecol. 7 (3), 249-260 (2012).</li>
<li>Deprest, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biology+behind+fascial+defects+and+the+use+of+implants+in+pelvic+organ+prolapse+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Urogynecol.+J.+Pelvic+Floor+Dysfunct%22%5BJournal%5D)">The biology behind fascial defects and the use of implants in pelvic organ prolapse repair.</a> Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 17, S16-S25 (2006).</li>
<li>Ozog, Y., Mazza, E., De Ridder, D., Deprest, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanical+effects+of+polyglecaprone+fibers+in+a+polypropylene+mesh+after+abdominal+and+rectovaginal+implantation+in+a+rabbit%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Urogynecol.+J%22%5BJournal%5D)">Biomechanical effects of polyglecaprone fibers in a polypropylene mesh after abdominal and rectovaginal implantation in a rabbit.</a> Int. Urogynecol. J. 23 (10), 1397-1402 (2012).</li>
<li>Manodoro, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Graft-related+complications+and+biaxial+tensiometry+following+experimental+vaginal+implantation+of+flat+mesh+of+variable+dimensions%5BTitle%5D)+AND+%22BJOG%22%5BJournal%5D)">Graft-related complications and biaxial tensiometry following experimental vaginal implantation of flat mesh of variable dimensions.</a> BJOG. 120 (2), 244-250 (2013).</li>
<li>Endo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-linked+xenogenic+collagen+implantation+in+the+sheep+model+for+vaginal+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Gynecol.+Surg%22%5BJournal%5D)">Cross-linked xenogenic collagen implantation in the sheep model for vaginal surgery.</a> Gynecol. Surg. , 113-122 (2015).</li>
<li>Feola, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+reaction+to+vaginally+inserted+collagen+containing+polypropylene+implants+in+sheep%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Host reaction to vaginally inserted collagen containing polypropylene implants in sheep.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 212 (4), e1-e474 (2015).</li>
<li>Barnhart, K. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Baseline+dimensions+of+the+human+vagina%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Baseline dimensions of the human vagina.</a> Hum. Reprod. 21 (6), 1618-1622 (2006).</li>
<li>Tayrac, R., Alves, A., Thérin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagen-coated+vs+noncoated+low-weight+polypropylene+meshes+in+a+sheep+model+for+vaginal+surgery.+A+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Urogynecol.+J.+Pelvic+Floor+Dysfunct%22%5BJournal%5D)">Collagen-coated vs noncoated low-weight polypropylene meshes in a sheep model for vaginal surgery. A pilot study.</a> Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (5), 513-520 (2007).</li>
<li>Sobiraj, A., Busse, G., I, H. B. O. S. E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ivastigation+into+the+blood+plasma+profiles+progesterone+in+sheep+sufferingform+vaignal+inversion+and+prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+Vet.+J%22%5BJournal%5D)">Ivastigation into the blood plasma profiles progesterone in sheep sufferingform vaignal inversion and prolapse.</a> Br. Vet. J. 142 (142), 218-223 (1986).</li>
<li>Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomical+conditions+for+pelvic+floor+reconstruction+with+polypropylene+implant+and+its+application+for+the+treatment+of+vaginal+prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Obstet.+Gynecol.+Reprod.+Biol%22%5BJournal%5D)">Anatomical conditions for pelvic floor reconstruction with polypropylene implant and its application for the treatment of vaginal prolapse.</a> Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 131, 214-225 (2007).</li>
<li>Carey, M., Slack, M., Higgs, P., Wynn-Williams, M., Cornish, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vaginal+surgery+for+pelvic+organ+prolapse+using+mesh+and+a+vaginal+support+device%5BTitle%5D)+AND+%22BJOG+An+Int.+J.+Obstet.+Gynaecol%22%5BJournal%5D)">Vaginal surgery for pelvic organ prolapse using mesh and a vaginal support device.</a> BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 115 (3), 391-397 (2008).</li>
<li>Urbankova, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+anatomy+of+the+ovine+and+female+pelvis%5BTitle%5D)+AND+%22Gynecol.+Obstet.+Invest%22%5BJournal%5D)">Comparative anatomy of the ovine and female pelvis.</a> Gynecol. Obstet. Invest. , in press (2016).</li>
<li>Maurer, M. M., Röhrnbauer, B., Feola, a, Deprest, J., Mazza, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+biocompatibility+of+prosthetic+meshes%3A+A+comprehensive+protocol+for+mechanical+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mech.+Behav.+Biomed.+Mater%22%5BJournal%5D)">Mechanical biocompatibility of prosthetic meshes: A comprehensive protocol for mechanical characterization.</a> J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 40, 42-58 (2014).</li>
<li>Leval, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+Surgical+Technique+for+the+Treatment+of+Female+Stress+Urinary+Incontinence%5BTitle%5D)+AND+%22Transobturator+Vaginal+Tape+Inside-Out.+Eur.+Urol%22%5BJournal%5D)">Novel Surgical Technique for the Treatment of Female Stress Urinary Incontinence.</a> Transobturator Vaginal Tape Inside-Out. Eur. Urol. 44 (6), 724-730 (2003).</li>
<li>Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. Transobturator vaginal tape inside-out. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 127 (1), 123-129 (2006).</li>
<li>Bafghi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bowel+perforation+as+late+complication+of+tension-free+vaginal+tape%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gynecol+Obs.+Biol+Reprod%22%5BJournal%5D)">Bowel perforation as late complication of tension-free vaginal tape.</a> J Gynecol Obs. Biol Reprod. 34 (6), 606-607 (2005).</li>
<li>Hinoul, P., Vanormelingen, L., Roovers, J. P., de Jonge, E., Smajda, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomical+variability+in+the+trajectory+of+the+inside-out+transobturator+vaginal+tape+technique+%28TVT-O%29%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Urogynecol.+J.+Pelvic+Floor+Dysfunct%22%5BJournal%5D)">Anatomical variability in the trajectory of the inside-out transobturator vaginal tape technique (TVT-O).</a> Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (10), 1201-1206 (2007).</li>
<li>Schaller, O., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSchaller%2C+O+%22Illustrated+Veterinary+Anatomical+Nomenclature%22">Illustrated Veterinary Anatomical Nomenclature</a>. , Verlag Enke. Stuttgart, Germany. (2007).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serious+Complications+Associated+with+Transvaginal+Placement+of+Surgical+Mesh+for+Pelvic+Organ+Prolapse%5BTitle%5D)+AND+%22FDA+Safety+Communication%22%5BJournal%5D)">Serious Complications Associated with Transvaginal Placement of Surgical Mesh for Pelvic Organ Prolapse.</a> FDA Safety Communication. , Available from: 
 <a target="_blank" href="http://www.fda.gov/MedicalDevices/Safety/AlertsandNotices/PublicHealthNotifications/ucm061976.htm">http://www.fda.gov/MedicalDevices/Safety/AlertsandNotices/PublicHealthNotifications/ucm061976.htm</a> (2016).</li>
<li>Reinier, M., Groep, G. Final Opinion on the use of meshes in urogynecological surgery. SCENIHR- European Commission. , (2016).</li>
</ol>

Koyuncu modeliyle ilgili bu araştırma programı Medri ve Blasingame, Burch, Garrard ve Ashley&#39;den (Atlanta GA, ABD) koşulsuz bir hibe ile desteklenmiştir. Anlaşmalar Leuven Araştırma ve Geliştirme transfer bürosu aracılığıyla yapılır. Sponsorlar, bu deneyin planlanması, uygulanması veya raporlanmasına müdahale etmediler, sonuçların kendilerine ait olmadığını da belirttiler. NS ve LH, FP7 çerçevesinde (Bip-Upy projesi, NMP3-LA-2012-310389) AK&#39;den hibe alan kişilerdir. AF, sanayi akademik ortaklığı programında AK&#39;den alınan bir hibe ile desteklendi (251356).

Burada, bir demirleme kolu olan veya olmayan bir implantın vajinal diseksiyonu ve transvajinal mesh sokma taklitini taklit etmeyi amaçlayan, koyunda görülen deneysel bir prosedürü açıklıyoruz. Bundan sonraki aşamalar, ve cihazlar POP ve stres idrar tutamama 15, 16, 19, 20 için yapılan cerrahi prosedürlerle ilham edildi. İlk anatomik disseksiyonlardan sonra, deneysel mesh girişi ...

Pelvik organ prolapsusu, en az bir vajinal doğum yapmış kadınların yarısında klinik olarak teşhis edilirken, subjektif olarak kadınların yarısını 1 toplam olarak rahatsız eder. Terapinin temel dayanağı, ya yerli doku ya da implant materyalleri kullanılarak cerrahi rekonstrüksiyondur, ancak bu yöntemlerin her biri, nüks ya da lokal komplikasyonlar da dahil olmak üzere sınırlamaları vardır 2 , 3 , 4 . İdeal implant henüz tanımlanmamıştır; Bu nedenle, ürün yeniliği için ve piyasaya yeni ürün ve teknikler getirilmeden önce klinik öncesi deneyler için uygun bir boru hattının geliştirilmesi için sürekli bir talep var. Bu pistteki adımlardan biri, uygun hayvan modelleri 5 , 6 üzerinde deneysel değerlendirme. İdeal olarak, anatomik, biyomekanik ve biyolojik ortamları taklit etmelidirler. Inci gelinceYeni implantların deneysel değerlendirmesi, tipik olarak ilk önce biyouyumluluk veya abdominal duvar defekti rekonstrüksiyonu için daha küçük modellerde test edilir. Implantlar ilgi alanına (yani vajina) 7 takılan edilmez çünkü deneyler bu tip eleştiriliyor. Vajinal cerrahi modelleri, kesinlikle deneyin amacı eksplantların biyomekanik özelliklerini belgelemek olduğunda daha azdır. Bu nedenle tavşanlardan koyunlara bir hareket vardı 8 . Yetişkin kuzuların makul büyüklükte ve erişilebilir bir vajinaya sahip büyük hayvan modelleri vardır. Yeni implantların orta vadeli değerlendirilmesi için kullanılabilirler ve vajinal maruz kalmaları belirli malzemelerle 9 , 10 , 11 , 12 , 13 üreterek yapmak mümkündür. Sadece boyutlar ve anatomi değilKuzunun vajina ve pelvis tabanının insanları ile karşılaştırılabilir olması, aynı zamanda koyunların% 15&#39;inde ortaya çıkan prolapsusun spontan oluşumu. Prolapsus risk faktörleri örtüşmektedir ( örn., Çoklu çocukluk, geçmiş POP öyküsü, daha yüksek bir vücut ağırlığı veya tepelerde otlattıklarında intra-abdominal basınç artışı ve fito östrojenlerinin karşılaştırılabilir etkileri) 6 , 14 . İnsan olmayan primatlarla ilgili araştırmalar neredeyse tamamen yasaklandığından, Avrupa&#39;da koyunlar makul bir alternatiftir. Burada model, trokarları ve rekto-vajinal septuma meshlerin gerginsiz yerleştirilmesi için kılavuzlar kullanan implantların transvajinal yerleştirilmesini taklit ederek bir adım daha ileri götürüldü. Bu klinik uygulama 15, 16 eşdeğer kabul edilebilir kasların bağlar aracılığıyla kollarla ankraj kullanarak implantı sabitleme izledi. Şu ana kadar bu teknikBirçoğu, uzun şeritlerin ve / veya anatomik yapıların delinmesinin kullanılması nedeniyle spesifik komplikasyonların oluşabileceğini düşünse de, incelenmemiştir. Daha önce detaylandırılmış bir anatomik çalışmada, omurga pelvis tabanı kadın pelvis 17 ile karşılaştırılmıştır . İmplantın demirlenmesi söz konusu olduğunda, koyun sakrospinöz ligamente sahip değildir, ancak çok gelişmiş ve geniş bir sakrotuberöz ligamana sahiptirler. Pudendal sinir ventrikale doğru ilerleyerek, bu yer işaretini bir süspansiyon noktası olarak kullanmak için güvensiz hale getirir. Tersine, kasık kası ve fasiyesinin yanı sıra obturator membrana rektovajinal boşluk yoluyla erişilebilir. Burada, ankraj kollarının sabitlenmesi için anatomik yapıların erişimi ve konumu önerilmektedir. Örgüyü konumlandırmak için kullanılabilen araçlar tartışılacaktır. Son olarak, kollar veya trokarların bitişik anatomik yapılarla olan damar ve sinirler arasındaki ilişkisi,Aynı zamanda potansiyel intraoperatif komplikasyonlar olarak tanımlanmaktadır.

<table><tbody><tr><td>Animals:&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>parous female sheep (45 - 65 kg)</td><td>Zo&amp;ouml;technical Institute of the KU Leuven</td><td>NA</td><td>experimetnal animal</td></tr><tr><td>Sterile clothing:&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>sterile drape 45 x 75 cm</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>33002</td><td>other material</td></tr><tr><td>sterile OR drape 150 x 180 cm</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>33009</td><td>other material</td></tr><tr><td>sterile glowes 2x</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>16652</td><td>other material</td></tr><tr><td>sterile surgical gown 2x</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>19342</td><td>other material</td></tr><tr><td>surgical head cap 2x</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>17427</td><td>other material</td></tr><tr><td>surgical face mask 2x</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>11983</td><td>other material</td></tr><tr><td>Other surgical material</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>implant</td><td>FEG Textiltechnik GmbH, Aachen, Germany</td><td>NA</td><td>purposely designed implant</td></tr><tr><td>3/0 polypropylene suture</td><td>Prolene, Ethicon, Diegem, Belgium</td><td>8762H</td><td>suture material</td></tr><tr><td>3/0 polygecaprone suture</td><td>Vicryl, Ethicon</td><td>J311H</td><td>suture material</td></tr><tr><td>gauze swabs 10 x 10 cm 10x, 12-ply</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>11574</td><td>other material</td></tr><tr><td>syringe 10 mL</td><td>Becton Dickinsosn S.A., Madrid, Spain</td><td>300613</td><td>aqua-dissection</td></tr><tr><td>needle 16 gauge</td><td>Terumo, Leuven, Belgium</td><td>NN-2238R</td><td>aqua-dissection</td></tr><tr><td>Surgical equipment:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>blade no.22</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>10022-00</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Allis tissue forceps 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>11091-15</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Standart pattern forceps 1 x 2 theeth 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>11023-14</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Standart pattern forceps straight serrated 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>11000-14</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Scalpel handle 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>10004-13</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Halstead-Mosquito forceps 2x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>13008-12</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Standart pattern scissors 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>14001-14</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Metzenbaum scissors 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>14016-18</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Crile Wood needle holder 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>12003-15</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Kell forceps 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>13018-14</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Long Starr Self-Retaining Retractor with eight 5 mm sharp stay hooks</td><td>Cooper Surgical, Tumbull, USA</td><td>3704</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Heaney Simon Vaginal Retractor</td><td>Medical supplies &amp;amp; equipments co., Katy, Texas, USA</td><td>403-129FSI</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Trocar (Insnare)</td><td>Bard, West Sussex, United Kingdom</td><td>NA</td><td>any trocar on market for transvaginal mesh implantation</td></tr><tr><td>Medication:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>amoxilicilline clavulanate 1000 mg / 300 mL (Ampiciline)</td><td>GSK, Wavre, Belgium</td><td>NA</td><td>antibiotics</td></tr><tr><td>buprenorfin 0.3 mg/mL + chlorocresol 1.35 mg/mL (Vetregesic)</td><td>Ecuphar, Oostkamp, Belgium</td><td>NA</td><td>analgesia</td></tr><tr><td>ketamin HCL 100 mg/mL (Ketamine 1000)</td><td>Ceva Sante Animale, Brussels, Belgium</td><td>NA</td><td>anesthesia</td></tr><tr><td>isoflurane (IsoFlo)</td><td>Abbott Laboratories Ltd, Maidenhead, Berkshire, UK</td><td>NA</td><td>anesthesia</td></tr><tr><td>polyvidone iodium 7.5% (Braunol)</td><td>B. Braun Medical, Machelen, Belgium</td><td>NA</td><td>local desinfection</td></tr><tr><td>saline solution 500 mL</td><td>B. Braun Medical, Machelen, Belgium</td><td>NA</td><td>aqua-dissection</td></tr><tr><td>Xxylazine HCl , 1 mL/50 kg&amp;nbsp;</td><td>Vexylan, Ceva Sante Animale, Belgium</td><td>NA</td><td>premedication</td></tr><tr><td>atropine Sulfate 15 mg/mL (),</td><td>Viatris, Belgium</td><td>NA</td><td>premedication</td></tr></tbody></table>

transvaginal mesh insertion in the ovine model

Bu protokol, tek bir vajinal insizyon tekniği kullanılarak koyunlarda rektovajinal septuma mesh girişi ve trokar kılavuzlamalı sabitleme kollarının sokulması olmadan sunulmasını açıklamaktadır. Parazitli koyunların rektovajinal septumun diseksiyonu ve bunu takiben dört ankraj kolu olsun veya olmasın, her ikisi de omurga anatomisine uyacak şekilde tasarlanmış bir implant yerleştirildi. Bağlama kolları, bir trokar ve bir &quot;dış-içi&quot; tekniği kullanılarak yerine yerleştirildi. Kafa kolları obturator, gracilis ve adductor magnus kaslarından geçirildi. Kaudal kollar, koksigüloz bağın yakınında, koksigöz kaslar vasıtasıyla tespit edildi. Bu teknik, pelvik organ prolapsusu geçiren kadınlarda uygulanan cerrahi işlemlerin taklit edilmesine izin verir. Anatomik alanlar ve elemanlar kolayca tanımlanır. Prosedürün en kritik bölümü, periton boşluğuna veya çevredeki pelvik organlara kolaylıkla nüfuz edebilen kafa trokarının yerleştirilmesidir. ThiDaha geniş bir retroperitoneal diseksiyon ve trokarın daha lateral bir şekilde yönlendirilmesi ile önlenebilir. Bu yaklaşım, trokar kılavuzlu ekleme, şu anda klinik olarak kullanılmadığından, büyük hayvan modellerinde yeni implantların deneysel testi için tasarlanmıştır.

Daha Uzun Gözlem Kurulumunda Yönetim Cerrahi prosedürü izleyen vajinal paketleme (ameliyattan hemen sonra vajina içine salin solüsyonu batırılmış bir gazlı bez paketi yerleştirilir) implant pozisyonunu sabitlemek için 24 saat süreyle yerleştirilebilir. Koyun bir kurtarma kafesine konmalı ve tam iyileşme sağlanıncaya kadar solunum fonksiyonu takip edilmelidir. Daha sonra, koyunları istikrarl...

Watch this Scientific Journal Video about Transvaginal Mesh Insertion in the Ovine Model at JoVE.com

Transvaginal Mesh Insertion in the Ovine Model

Bu protokol, tek bir vajinal insizyon tekniği kullanılarak, hortum rektovajinal septumdaki mesh implantasyonunu, trokar kılavuzluğunda demirleme kollarının sokulması ile ve olmadan uygulanmasını tanımlamaktadır.

Koyun Modeli&#39;nde Transvajinal Mesh Eklenmesi

This protocol describes mesh insertion into the rectovaginal septum in sheep using a single vaginal incision technique, with and without the trocar-guided ...

transvaginal-mesh-insertion-in-the-ovine-model

Research

JoVE Journal

Medicine

16.0K Görüntüleme.  Clinical Specialties Research Groups, Faculty of Medicine, KU Leuven.  Bu protokol, tek bir vajinal insizyon tekniği kullanılarak, hortum rektovajinal septumdaki mesh implantasyonunu, trokar kılavuzluğunda demirleme kollarının sokulması ile ve olmadan uygulanmasını tanımlamaktadır. 

Video: Transvaginal Mesh Insertion in the Ovine Model

An Orthotopic Endometrial Cancer Model with Retroperitoneal Lymphadenopathy Made From In Vivo Propagated and Cultured VX2 Cells

Endometrial cancer is the most common gynecologic malignancy in North America and the incidence is rising worldwide. Treatment consists of surgery with or without adjuvant therapy depending on lymph node involvement as determined by lymphadenectomy. Lymphadenectomy is a morbid procedure, which has not been shown to have a therapeutic benefit in many patients, and thus a new method to diagnose lymph node metastases is required. To test novel imaging agents, a reliable model of endometrial cancer with retroperitoneal lymph node metastases is needed. The VX2 endometrial cancer model has been described frequently in the literature; however, significant variation exists with respect to the method of model establishment. Furthermore, no studies have reported on the use of cultured VX2 cells to create this model as only cells propagated in vivo have been previously used. Herein, we present a standardized surgical method and post-operative monitoring method for the establishment of the VX2 endometrial cancer model and report on the first use of cultured VX2 cells to create this model.

This protocol presents a standardized method to grow VX2 cells in culture and to create an orthotopic VX2 model of endometrial cancer with retroperitoneal lymph node metastases in rabbits. Orthotopic endometrial cancer models are important for the pre-clinical study of novel imaging modalities for the diagnosis of lymph node metastases.

Retroperitoneal Lenfadenopati li Ortotopik Endometriyal Kanser Modeli In Vivo Propagated ve Kültürlü VX2 Hücrelerinden Yapılmıştır

Endometrial cancer is the most common gynecologic malignancy in North America and the incidence is rising worldwide. Treatment consists of surgery with or ...

Kanser Araştırmaları

Anterior Cervical Discectomy and Fusion in the Ovine Model

Anterior cervical discectomy and fusion (ACDF) is the most common surgical operation for cervical radiculopathy and/or myelopathy in patients who have failed conservative treatment1,5. Since the operation was first described by Cloward2 and Smith and Robinson6 in 1958, a variety refinements in technique, graft material and implants have been made3. In particular, there is a need for safe osteoinductive agents that could benefit selected patients. The ovine model has been shown to have anatomical, biomechanical, bone density and radiological properties that are similar to the human counterpart, the most similar level being C3/44. It is therefore an ideal model in which preclinical studies can be performed. In particular this methodology may be useful to researchers interested in evaluating different devices and biologics, including stem cells, for potential application in human spinal surgery.

This video demonstrates the technique of anterior cervical discectomy and fusion in the ovine model.

Küçükbaş Model anterior servikal diskektomi ve füzyon

Anterior cervical discectomy and fusion (ACDF) is the most common surgical operation for cervical radiculopathy and/or myelopathy in patients who have ...

Biyoloji

Methods for Studying Uterine Contributions to Pregnancy Establishment in an Ovariectomized Mouse Model

For pregnancy to be established, a viable blastocyst must successfully interact with a receptive uterine lining (endometrium) to facilitate implantation and placenta formation and enable ongoing pregnancy. The limitations to pregnancy success caused by embryonic defects are well known and have been largely overcome in recent decades with the rise of in vitro fertilization (IVF) and assisted reproductive technologies. As yet, however, the field has not overcome the limitations caused by an inadequately receptive endometrium, thus resulting in stagnating IVF success rates. Ovarian and endometrial functions are closely intertwined, as hormones produced by the ovary are responsible for the endometrium's menstrual cyclicity. As such, when using rodent models of pregnancy, it can be difficult to ascertain whether an observed result is due to an ovarian or uterine deficit. To overcome this, an ovariectomized mouse model was developed with embryo transfer or artificial decidualization to allow the study of uterine-specific contributions to pregnancy. This article will provide instructions on how to perform ovariectomy and offer insights into various techniques for supplying exogenous hormones to support successful artificial decidualization or pregnancy following embryo transfer from healthy donors. These techniques include subcutaneous injection, slow-release pellets, and osmotic mini pumps. The key advantages and disadvantages of each method will be discussed, enabling researchers to choose the best study design for their specific research question.

Pregnancy establishment is a dynamic process involving complex embryo and uterine crosstalk. The precise contributions of the maternal uterine environment to these processes remain an active area of investigation. Here, detailed protocols are provided to aid in designing in vivo animal models to address these research questions.

Yumurtalık Ameliyatlı Fare Modelinde Gebelik Oluşumuna Uterus Katkılarını İnceleme Yöntemleri

For pregnancy to be established, a viable blastocyst must successfully interact with a receptive uterine lining (endometrium) to facilitate implantation ...

Gelişim Biyolojisi

In Vivo Real-Time Study of Drug Effects on Carotid Blood Flow in the Ovine Fetus

The ability of an organism to maintain a constant blood flow to the brain in response to sudden surges in systemic blood pressure (BP) is known as cerebral autoregulation (CAR), which occurs in the carotid artery. In contrast to full-term neonates, preterm neonates are unable to reduce the cerebral blood flow (CBF) in response to increased systemic BP. In preterm neonates, this exposes the fragile cerebral vessels to high perfusion pressures, leading to their rupture and brain damage. Ex vivo studies using wire myography have demonstrated that carotid arteries from near-term fetuses constrict in response to the activation of adrenergic alpha1 receptors. This response is blunted in the preterm fetus. Thus, to examine the role of alpha1-AR in vivo, presented here is an innovative approach to determine the effects of drugs on a carotid arterial segment in vivo in an ovine fetus during the developmental progression of gestation. The presented data demonstrate the simultaneous measurement of fetal blood flow and blood pressure. The perivascular delivery system can be used to conduct a long-term study over several days. Additional applications for this method could include viral delivery systems to alter the expression of genes in a segment of the carotid artery. These methods could be applied to other blood vessels in the growing organism in utero as well as in adult organisms.

In Vivo Real-Time Study of Drug Effects on Carotid Blood Flow in the Ovine Fetus

The present protocol describes a method to deliver drugs and gene expression-modifying agents perivascularly in an in utero developing fetus. Importantly, the effect of drugs/agents on blood flow can be measured with the progression of pregnancy.

In vivo Küçükbaş Fetüste Karotis Kan Akışı Üzerindeki İlaç Etkilerinin Gerçek Zamanlı Çalışması

The ability of an organism to maintain a constant blood flow to the brain in response to sudden surges in systemic blood pressure (BP) is known as ...

Ovine Lumbar Intervertebral Disc Degeneration Model Utilizing a Lateral Retroperitoneal Drill Bit Injury

Intervertebral disc degeneration is a significant contributor to the development of back pain and the leading cause of disability worldwide. Numerous animal models of intervertebral disc degeneration have been developed. The ideal animal model should closely mimic the human intervertebral disc with regard to morphology, biomechanical properties and the absence of notochordal cells. The sheep lumbar intervertebral disc model fulfils these criteria. We present an ovine model of intervertebral disc degeneration utilizing a drill bit injury through a lateral retroperitoneal approach. The lateral approach significantly reduces the incision and potential morbidity associated with the traditional anterior approach to the ovine spine. Utilization of a drill-bit method of injury affords the ability to produce a consistent and reproducible injury, of precise dimensions, that initiates a consistent degree of intervertebral disc degeneration. The focal nature of the annular and nucleus pulposus defect more closely mimics the clinical condition of focal intervertebral disc herniation. Sheep recover rapidly following this procedure and are typically mobile and eating within the hour. Intervertebral disc degeneration ensues and sheep undergo necropsy and subsequent analysis at periods from eight weeks. We believe that the drill bit injury model of intervertebral disc degeneration offers advantages over more conventional annular injury models.

Intervertebral disc degeneration is a significant contributor to back pain and a leading cause of disability worldwide. Numerous animal models of intervertebral disc degeneration exist. We demonstrate an ovine model of intervertebral disc degeneration, utilizing a drill bit, which achieves a consistent disc injury and reproducible level of disc degeneration.

Yanal Retroperitoneal Matkap Ucu Yaralanmasını Kullanan Koyun Lomber İntervertebral Disk Dejenerasyon Modeli

Intervertebral disc degeneration is a significant contributor to the development of back pain and the leading cause of disability worldwide. Numerous ...

Tıp

Intravitreal Injections in the Ovine Eye

There are several methods for the delivery of therapeutic agents to the retina, including intravitreal (IVT), subretinal, suprachoroidal, periocular, or topical administration. IVT drug delivery involves an injection into the vitreous humor of the eye, a gelatinous substance that fills the posterior chamber of the eye and maintains the shape of the eye globe. Although the IVT route is less specifically targeted than subretinal delivery, it is much less invasive and is widely used in clinical settings for a range of ocular diseases. 
We previously demonstrated the efficacy of intravitreal delivery of an adeno-associated virus (AAV)-mediated gene therapy product (AAV9.CLN5) in sheep with a naturally occurring CLN5 form of neuronal ceroid lipofuscinosis (NCL). Affected sheep received IVT gene therapy in one eye, with the other untreated eye serving as an internal control. Retinal structure and function were maintained in the treated eye up to 15 months after treatment, while the untreated eye displayed progressively declining function and severe atrophy during postmortem examination. Based on the sheep studies, the CLN5 gene therapy product was cleared as a candidate investigational new drug (IND) by the United States Food and Drug Administration in September 2021. This paper details the surgical protocol for IVT delivery of a therapeutic viral vector to the ovine eye.

Intravitreal injections were performed in the sheep eye with the aim of delivering viral-mediated gene therapy to the retina.

Küçükbaş Gözde İntravitreal Enjeksiyonlar

There are several methods for the delivery of therapeutic agents to the retina, including intravitreal (IVT), subretinal, suprachoroidal, periocular, or ...

Development of a Uterosacral Ligament Suspension Rat Model

Pelvic organ prolapse (POP) is a common pelvic floor disorder (PFD) with the potential to significantly impact a woman's quality of life. Approximately 10%-20% of women undergo pelvic floor repair surgery to treat prolapse in the United States. PFD cases result in an overall $26.3 billion annual cost in the United States alone. This multifactorial condition has a negative impact on the quality of life and yet the treatment options have only dwindled in the recent past. One common surgical option is uterosacral ligament suspension (USLS), which is typically performed by affixing the vaginal vault to the uterosacral ligament in the pelvis. This repair has a lower incidence of complications compared to those with mesh augmentation, but is notable for a relatively high failure rate of up to 40%. Considering the lack of standard animal models to study pelvic floor dysfunction, there is an urgent clinical need for innovation in this field with a focus on developing cost-effective and accessible animal models. In this manuscript, we describe a rat model of USLS involving a complete hysterectomy followed by fixation of the remaining vaginal vault to the uterosacral ligament. The goal of this model is to mimic the procedure performed on women to be able to use the model to then investigate reparative strategies that improve the mechanical integrity of the ligament attachment. Importantly, we also describe the development of an in situ tensile testing procedure to characterize interface integrity at chosen time points following surgical intervention. Overall, this model will be a useful tool for future studies that investigate treatment options for POP repair via USLS.

Pelvic organ prolapse affects millions of women worldwide and yet some common surgical interventions have failure rates as high as 40%. The lack of standard animal models to investigate this condition impedes progress. We propose the following protocol as a model for uterosacral ligament suspension and in vivo tensile testing.

Uterosakral Ligament Süspansiyon Sıçan Modelinin Geliştirilmesi

Pelvic organ prolapse (POP) is a common pelvic floor disorder (PFD) with the potential to significantly impact a woman's quality of life. Approximately ...

Chronic Ovine Model of Right Ventricular Failure and Functional Tricuspid Regurgitation

The pathophysiology of severe functional tricuspid regurgitation (FTR) associated with right ventricular dysfunction is poorly understood, leading to suboptimal clinical results. We set out to establish a chronic ovine model of FTR and right heart failure to investigate the mechanisms of FTR. Twenty adult male sheep (6-12 months old, 62 &#177; 7 kg) underwent a left thoracotomy and baseline echocardiography. A pulmonary artery band (PAB) was placed and cinched around the main pulmonary artery (PA) to at least double the systolic pulmonary artery pressure (SPAP), inducing right ventricular (RV) pressure overload and signs of RV dilatation. PAB acutely increased the SPAP from 21 &#177; 2 mmHg to 62 &#177; 2 mmHg. The animals were followed for 8 weeks, symptoms of heart failure were treated with diuretics, and surveillance echocardiography was used to assess for pleural and abdominal fluid collection. Three animals died during the follow-up period due to stroke, hemorrhage, and acute heart failure. After 2 months, a median sternotomy and epicardial echocardiography were performed. Of the surviving 17 animals, 3 developed mild tricuspid regurgitation, 3 developed moderate tricuspid regurgitation, and 11 developed severe tricuspid regurgitation. Eight weeks of pulmonary artery banding resulted in a stable chronic ovine model of right ventricular dysfunction and significant FTR. This large animal platform can be used to further investigate the structural and molecular basis of RV failure and functional tricuspid regurgitation.

Right ventricular failure and functional tricuspid regurgitation are associated with left-sided heart disease and pulmonary hypertension, which contribute significantly to morbidity and mortality in patients. Establishing a chronic ovine model to study right ventricular failure and functional tricuspid regurgitation will help in understanding their mechanisms, progression, and possible treatments.

Sağ Ventrikül Yetmezliği ve Fonksiyonel Triküspid Yetersizliğinin Kronik Ovine Modeli

The pathophysiology of severe functional tricuspid regurgitation (FTR) associated with right ventricular dysfunction is poorly understood, leading to ...

<meta charset="utf8"></head><body>Klonlanmış Domuzlarda Oviductal Embriyo Transferinin Optimize Edilmesi

Embryo Transfer Surgery via Laparotomy in Gilts

This protocol aims to demonstrate the surgical technique for transferring cloned pig embryos to the oviduct, a method widely used in the production of genetically modified pigs for biomedical research. Nine gilts underwent hormonal synchronization and laparotomy for the transfer of cloned embryos produced by somatic cell nuclear transfer (SCNT) at stages of up to 4 cells on day 2 to the oviduct. Gestational diagnosis was conducted via ultrasound examination 30 days post-transfer surgery. Six out of the nine operated gilts exhibited signs of pregnancy on ultrasound examination. However, as there was no progression in fetal development as assessed by echography, the gilts underwent necropsy at 60 days for the collection of biological material and assessment of the reproductive system. Adhesions were observed in the uterine horns, ovaries, and oviducts. From the uterine lumen of two of the euthanized gilts, one and four embryonic structures with gestational ages ranging between 12 to 20 days were obtained. Despite the absence of live piglets, likely attributed to the low-efficiency rate of transferring cloned pig embryos, which is influenced by various factors, including the number and quality of transferred embryos, the presented surgical technique proved to be rapid and safe.

<meta charset="utf8"></head><body>Yazar Spotlight: Ovviductal Klonlanmış Domuz Embriyo Transferlerinde Cerrahi Yöntemler ve Sonuçlar

This protocol describes the application of the surgical technique used to transfer cloned pig embryos via laparotomy in gilts.

Gilts'te Laparotomi ile Embriyo Transferi Ameliyatı

This protocol aims to demonstrate the surgical technique for transferring cloned pig embryos to the oviduct, a method widely used in the production of ...

Koyun Modeli'nde Transvajinal Mesh Eklenmesi

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Retroperitoneal Lenfadenopati li Ortotopik Endometriyal Kanser Modeli In Vivo Propagated ve Kültürlü VX2 Hücrelerinden Yapılmıştır

Küçükbaş Model anterior servikal diskektomi ve füzyon

Yumurtalık Ameliyatlı Fare Modelinde Gebelik Oluşumuna Uterus Katkılarını İnceleme Yöntemleri

In vivo Küçükbaş Fetüste Karotis Kan Akışı Üzerindeki İlaç Etkilerinin Gerçek Zamanlı Çalışması

Yanal Retroperitoneal Matkap Ucu Yaralanmasını Kullanan Koyun Lomber İntervertebral Disk Dejenerasyon Modeli

Küçükbaş Gözde İntravitreal Enjeksiyonlar

Uterosakral Ligament Süspansiyon Sıçan Modelinin Geliştirilmesi

Sağ Ventrikül Yetmezliği ve Fonksiyonel Triküspid Yetersizliğinin Kronik Ovine Modeli

Gilts'te Laparotomi ile Embriyo Transferi Ameliyatı

Gilts'te Laparotomi ile Embriyo Transferi Ameliyatı