Balık toplama konusunda yardım için S. Yokoyama&#39;ya teşekkür ediyoruz. Yetiştirme yöntemleri hakkında yararlı tavsiyeler için W. Kawamura&#39;ya da minnettarız. Bu çalışma, TS&#39;ye verilen hibelerle (No 24370006 ve 16K07507), Japonya Bilim Teşvik Derneği (KAKENHI) tarafından desteklenmiştir.

1. Canlı Balık Toplama ve Taşıma NOT: Bu protokol, ≥15 m&#39;lik bir derinliğiyle yüzeye kadar bir gaz mesanesine sahip olan balıkların nasıl toplanacağını açıklamaktadır. Yüzeye hızlı nakliye, basınç değişimiyle gaz mesanesinin genişlemesine neden olur, bu da ciddi şekilde balıklara zarar verebilir veya balıkları öldürebilir. Dikkat gereklidir, çünkü bu ilk adım sırasında balıklara verilen zararlar hayatta kalmalarını ve daha sonraki davranışlarını olumsuz bir şekilde etkilemektedir. <ol><li> SCUBA ile dalmadan önce, aşağıdaki materyalleri toplayın: hedeflenen türlerin su altı yakalamak için uygun bir el ağı; Balık için yeterince geniş polietilen torbalar; Lastik bantlar (ø 80 mm x 6 mm); Toplama poşetlerini yüzeyde şişirmek için bir oksijen silindiri; Bir antimikrobiyal olan Elbagin% 10 sodyum nifurstirenat içerir; Toplama torbalarının yerleştirileceği polistiren köpük kutu; pipetler; Ve gerekirse (adım 1.4&#39;e bakın), uzunluğaMaksimum dalış derinliğine eşdeğer, ayrıca en az 2 kg&#39;lık bir ağırlık. </li><li> Dalış yaparken hedeflenen balık türlerini bir el ağı kullanarak toplayın; Hala su altındayken yakalanan balıkları bir polietilen torba içine yerleştirin ve torbanın ağzını kauçuk bant ile bağlayın. Balıkları bir akvaryuma nakletmek için ≥1 gün sürecekse, balık tutma suyunun yenilenmesi için kullanılmak üzere suyu doğal ortamdan diğer torbalar içinde de saklayın. NOT: Güvenlik için, sualtı görevler en az iki kişi tarafından yapılmalıdır. </li><li> Toplama noktasından balık poşetleri ile en fazla 1 m / dak.&#39;lık bir hızda yüzey: 10 m veya daha fazla derinlikli iken, her 2 m&#39;de 1-5 dakika artarken durun; Ve 10 m&#39;lik bir dereden 1 m&#39;lik yüzey durdurucusuna kadar her 1-5 m için 1 m. Yakalanan balık torbadaki kaldırma gücünü koruyamazsa ( yani , yine de alta doğru yüzmeye çalışırken genişleyen bir gaz mesanesi ile yüzdükleri zaman), aynı derinlik 1 ila 5 dakika boyunca veya aynı derinlikte tutulmalıdır1 - 2 m daha derin tarayın. Balıklar yüzdürme işlemini tamamladıktan sonra yüzeye çıkmaya devam edin. NOT: SCUBA tankındaki havanın artarken sönmesi ihtimali varsa, bir ipi polietilen torbaya bağlayın ve ≥ 2 kg ağırlığa takın; Sualtı operatörü güvenli bir şekilde yukarı çıktıktan sonra, bunu yukarıda belirtilen hızlarla yüzeyden çekin. </li><li> Plajda veya teknede, yüzeye çıktıktan sonra her polietilen torbanın suyunda 10 ppm Elbagin çözünür. NOT: Bazı balıklar, yüzeye çıktıktan hemen sonra yüzdürme becerilerini koruyamazlarsa da, çoğu kişinin bir gün içinde iyileşmesi beklenebilir. </li><li> Toplama torbasındaki boğmaca yoğunluğu yüksekse, balıkları nakliye esnasında birbirlerine sürtünerek birbirlerine zarar vermesini önlemek için balıkları daha fazla poşete bölün. Eğer balık agresif bir tür ise onları çantalar arasında ayrı ayrı bölün. </li><li> Toplama torbasını oksijenle şişirin ve tekrar çantanın ağzını r kullanarak mühürleyin.ubberbands. Oksijeni torbaya yerleştirirken, çözünmüş oksijen içeriğini artırmak için memeyi torbanın suyuna indirin; Tamamen genişletilmiş torba su ile 1/4 oranında dolu olmalıdır. </li><li> Kararlı bir su sıcaklığını korumak ve karanlık koşullar altında balıkların stresini azaltmak için, toplama torbalarını balıklarla bir polistiren köpük kutusunda tutun. </li><li> Balıkları bir akvaryuma nakletmek için ≥1 gün sürecekse, günde bir kez, her bir balık tutma torbasında suyun 1 / 4&#39;ü ile 1 / 3&#39;ü arasında değişen hacimde eklenen suyla 10 ppm Elbagin , Ve her birine oksijen koyun. Her gün el altında ağ veya pipetle alttaki ölü balıkları ve dışkıları alın. NOT: Uçakla ulaşım söz konusuysa, balıkları taşımadan önce hava basıncına uyumlandırmak için en az 1 gün bekleyin, çünkü kısa vadede iki basamaklı basınç değişimi (sualtından yüzeye ve üstteki havadan yüzeye) olumsuz etkilenebilir Balıkların hayatta kalması. </l<html> i&gt; </ol> 2. Balıkları bir Akvaryuma Acclimate <ol><li> Su sıcaklığını eşitlemek için 30 dakika boyunca bir akvaryumda bulunan balık çantasını yüzdür. </li><li> 10 dakikalık bir süre zarfında, su kimyasında ani bir farklılık ( örn ., PH, tuzluluk) nedeniyle oluşan şoklardan kaçınmak için çanta suyunu akvaryum suyu ile aşamalı olarak değiştirin. NOT: Su kimyasında çok büyük bir farkla şoklanan bir balık, vücut renginde ve / veya davranışta anormal bir değişiklik gösterebilir. Aklimasyon sırasında bunu dikkatle izleyin. </li><li> Akvaryum suyunda 10 ppm Elbagin çözünür. </li><li> Bundan sonra, günde bir kez 3 gün, yedek suya 10 ppm Elbagin ekleyerek akvaryum suyunun 1 / 3&#39;ünü yenileyin. </li><li> Sonunda, renk kayboluncaya kadar günde bir kez akvaryum suyunun yarısını değiştirerek Elbagin&#39;i atmaya başlayın. </li></ol> 3. Bireysel Balıkları Tanımlamak için Görünür İmplant Elastomer (VIE) Etiketi Enjekte Etme T &quot;&gt; NOT: Bu çalışmada, bireysel balıklar VIE etiketleri kullanılarak tanımlanır, örnek olarak Frederick 10 , Olsen ve Vøllestad 11 ve Leblanc ve Noakes 12&#39;ye bakınız . Ayrıca, çalışma türü elinde tutabilecek kadar büyükse , Adım 3.2&#39;de kullanılan cerrahi tablo gerekli olmayacaktır. <ol><li> Her birey için enjeksiyon pozisyonunu ve etiket rengini belirleyin. En güvenli seçenek vücudun kalın kas dorsal veya kaudal kısmında bir enjeksiyon noktası seçmek ve iç organları deldi olabilir karın içine enjekte etmekten kaçınmaktır. NOT: Şekil 1&#39;de bir numaralandırma sistemi tanımlanmıştır: Çalışma türü 8 olası konuma enjeksiyon için yeterince büyükse, bu sistem tek bir renk kullanarak 154 kişinin tanımlanmasına izin verecektir. On renk VIE etiketi ticari olarak mevcuttur. Balıkların vücut rengine göre ayırt edilebilen renkleri seçin. </li><li> &lt;Strong&gt; Elde tutulandan daha küçük olan balıklar için aşağıdaki gibi bir cerrahi tablo hazırlayın (bkz. Kinkel ve ark ., 13 ) ( Şekil 2 ). <ol><li> 5 cm L x 5 cm W ölçülerinde ve bir Petri kabının yüksekliğinden en az 5-10 mm daha düşük yumuşak bir sünger kesin. </li><li> Süngeri yaklaşık 5 - 10 mm derinliğinde bir oluk kesin ve genişliğini balıkların yaklaşık vücut genişliğine ayarlayın. Polivinil klorür (PVC) levhasını (0,3 mm kalınlıkta) 5 cm L x 5 cm W&#39;ye kadar kesin ve bir vadi katına (veya M-şeklinde) bükün. </li><li> Yivli PVC karton yivli süngerin üzerine yerleştirin ve ardından süngeri Petri kabına (ø 160 mm, 30 mm derinlik) ayarlayın. PVC tablası yeterince dalınana kadar Petri kabını doldurmak için kurtarma tankındaki suyu kullanın. </li></ol></li><li> VIE etiketlerini VIE etiketleme kılavuzuna göre hazırlayın. Elastomer malzemeleri karıştırın ve karışım 3 mL syriye ilave edilir.Kitte bulunan 29 gauge iğne ile nge. </li><li> Etiket enjeksiyonlarını yaparken kullanılacak iki su tankı hazırlayın: biri anestezi için, biri kurtarma için; Yetiştirme akvaryumundaki suya uyacak şekilde sıcaklık ve tuzluluk konsantrasyonlarını ayarlayın. Geri kazanım tankındaki suyu hafifçe sirküle etmek için hava taşı olan bir hava pompası kullanın. </li><li> 2-metilkuinolin ile eşit hacimde% 99.5 etanol karıştırılarak anestezi sıvısı hazırlayın; 18 ppm&#39;lik bir konsantrasyonu sağlamak için bunu anestezi deposuna ekleyin. NOT: Anestezi sıvısının optimum konsantrasyonu, kişilerin türüne ve vücut boyutuna bağlı olacaktır. Bu nedenle, çalışma türleri için optimum konsantrasyonu önceden peşin olarak inceleyin. </li><li> Bireysel balıkları anestezi deposuna aktarın ve anestezi altına almalarına izin verin. Diğer bir deyişle, balıkların dokunulduğuna tepki vermeyinceye kadar bekleyin veya tankın dışına dokunulduğunda titreşimleri bekleyin. Anestettiğinde vücut rengi değiştikçeBirçok balığın zed&#39;i, ayrıca vücut rengini dikkatli bir şekilde izler ve balıkların değişikliklerinden anestezi edilip edilmediğini değerlendirir. Balıkların anestezi deposundan atlamaları ihtimali olduğundan, en azından yavaşça balık hareketleri görene kadar şeffaf bir akrilik tahta kullanarak örtün. NOT: Anestezi ve / veya anestezi sıvısının konsantrasyonunu ayarlamak için gereken zamanı, çalışma türüne ve vücut boyutuna göre ince ayarlayın. Operculum hareketi anestezi ile durdurulursa, balık ölüm riski altındadır. </li><li> Bedenleri ısıtılır balıklar zayıflarken, balıkları anestezi ederken parmaklarınızı nispeten soğuk suda tutun. </li><li> Anestezi deposundan bir balığı kaldırın ve hızlı bir şekilde ölçün veya gerekli verileri kaydedin (toplam uzunluk, cinsiyet vb .). Ölçüm sırasında bir balık iyileşirse, hemen anestezi deposuna geri gönderin. </li><li> Balıkları bir cerrahi masaya aktarın. Balıkların ventral yanını tO PVC oluk. Vücut boyutu çok küçükse, enjeksiyon yapılırken binoküler bir mikroskop kullanın. Çalışma türü elinde tutulacak kadar büyükse, tutulurken VIE etiketini enjekte edin. </li><li> İğnenin eğimli yüzünü dışa doğru konumlandırın ve balık kafasına doğru baktı. İğneyi subkutan olarak, vücuda az çok paralel olarak ve cildin mümkün olduğunca yakınına sokun. Balık gövdesinin boyutuna ve etiketin nihai olarak görülme kolaylığına bağlı olarak ekleme derinliğini ayarlayın. </li><li> İğneyi çekerken VIE etiketini enjekte edin ve iğne eğimi iğne giriş noktasına ulaşmadan önce enjeksiyonu durdurun (etiketi nispeten geniş bir alana enjekte ederseniz ayırt etmek kolaydır). </li><li> Etiket enjeksiyonunu tamamladıktan sonra derhal balıkları geri kazanım tankına nakletin. Kurtarma çok yavaş görünüyorsa, su hafifçe elle dolaştırın. </li><li> Toparlanma sonrasında, balıkları yetiştirme akvaryumuna geri döndürün ve 10 ppm El3 gün boyunca suya batırın. NOT: VIE etiketleri için düşük görünürlük koşullarında, UVA filtrelenmiş ışık etiketleri tanımayı kolaylaştıracaktır. </li></ol> 4. Demersal Yapışkanlı Yumurtaların Sayımı <ol><li> Balıkların yapışkan yumurta bırakabilecekleri yapay bir yumurtlama yuvası oluşturmak için opak bir PVC boruyu (ø 5 cm, 6 cm uzunluğunda) yarıçapı çapa dik olarak kesin. NOT: Yukarıdaki boru büyüklüğü, nispeten küçük gürültüsü olan T. marina&#39;ları yumurtlamak için uygundur. Bu nedenle, PVC boru boyutunu ve formunu, çalışma türleri için uygun olacak şekilde ayarlayın. </li><li> Su geçirmez bir tabaka üzerine 5 mm x 5 mm&#39;lik bir ızgara yazdırın ve PVC borunun içerisine uyacak şekilde kesin. </li><li> Bir lastik bant kullanarak su geçirmez tabakayı PVC borusunun içine sabitleyin. NOT: Dişiler su geçirmez tabakaya yumurta takmak ve yumurtalar tabakadan düşmek zor ise, yaprağı zımpara kağıdıyla dokuya dönüştürün. </li><li> Akvaryum tabanını bir tabaka kumla örtün, 1- 2 cm kalınlığında. PVC borunun yaklaşık üçte birini tabaka sabit tarafı aşağı bakacak şekilde kuma eğikçe yerleştirin. </li><li> Balık tarafından başarılı bir şekilde yumurtalandıktan sonra yumurta kütlesi bulunan tabakayı PVC borudan çıkarın ve bir akvaryum suyu ile bir Petri kabına koyun. PVC borunun içine yeni bir sayfa yapıştırın ve bunu akvaryumun altına yerleştirin. Son olarak, yumurta kütlesini fotoğraflayarak yumurtaları sayın. <ol><li> Alternatif olarak, ebeveyn yumurta bakımı gözlemleri yumurtlamadan sonra yapılacak ise, yumurtaları suyun dışına çıkarmamak için dikkatli olun. Daha ziyade yumurta ve tabakayı akvaryum suyu ile birlikte toplayıp yumurta kütlesini çabucak fotoğraflamak için bir Petri kabını kullanın ve daha sonra yumurta kütlesi bulunan tabakayı aynı PVC borusuna geri koyarak hepsini orijinal konumuna getirin. Akvaryumun dibi. Sonunda resmi kullanarak yumurtaları sayın. </li></ol></li><li> ImageJ kullanarak yumurtaları sayın ( Şekil 3 </strong&gt;). Bu otomatik ve manuel hücre sayım yöntemleri aşağıda detaylı olarak açıklanmıştır: Temel hücre sayımı (Chicago Üniversitesi, Integrated Light Microscopy Core Facility, http://digital.bsd.uchicago.edu/image_j.php); Parçacık Analizi (http://imagej.net/Particle_Analysis); Hücre Sayacı (https://imagej.net/Cell_Counter). <ol><li> Yumurta yoğun yatırılır, aksi halde, alan yoğunluğu oranının hesaplanmasıyla yumurta sayısını tahmin: yumurta yoğunluğunu hesaplamak ImageJ tarafından yumurta kaplı yüzey alanı ölçmek için basılı bir 5 x 5 mm 2 &#39;ızgara yumurta sayısı, Ve ünite ve yüzey alanı başına yüksek yoğunluktan gelen toplam yumurta sayısını hesaplayın. ImageJ&#39;nin yukarıdaki yüzey alanı ölçüm yöntemi aşağıda açıklanmıştır: Ölçeği ayarla ... (Araştırma Hizmetleri Şubesi, https://imagej.nih.gov/ij/docs/menus/analyze.html); Görüntünün mekansal ölçeğini nasıl tanımlayacağınızı açıklar; Yüzey Alanını Ölçmek için ImageJ Kullanımı (Keene State college, AkademikTeknoloji, https://dept.keene.edu/at/2011/04/15/by-matthew-ragan/). NOT: Yumurta şeffaf ise, otomatik su sayma yöntemi için siyah su geçirmez tabaka daha uygundur, çünkü ImageJ yumurtaların dış çizgilerini ayrı ayrı tanıyabilir. </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Helfman, G., Collette, B. B., Facey, D. E., Bowen, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Diversity of Fishes: Biology, Evolution, and Ecology. , (2009).</li><li>Davies, N. B., Krebs, J. R., West, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> An Introduction to Behavioural Ecology. , (2012).</li><li>Fukuda, K., Manabe, H., Sakurai, M., Dewa, S., Shinomiya, A., Sunobe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monogamous+mating+system+and+sexuality+in+the+gobiid+fish,+Trimma+marinae+(Actinopterygii:+Gobiidae).">Monogamous mating system and sexuality in the gobiid fish, Trimma marinae (Actinopterygii: Gobiidae).</a> J Ethol. 35 (1), 121-130 (2017).</li><li>Manabe, H., Matsuoka, M., Goto, K., Dewa, S., Shinomiya, A., Sakurai, M., Sunobe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bi-directional+sex+change+in+the+gobiid+fish+Trimma+sp.:+does+size-advantage+exist?.">Bi-directional sex change in the gobiid fish Trimma sp.: does size-advantage exist?.</a> Behaviour. 145 (1), 99-113 (2008).</li><li>Sakurai, M., Nakakoji, S., Manabe, H., Dewa, S., Shinomiya, A., Sunobe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bi-directional+sex+change+and+gonad+structure+in+the+gobiid+fish+Trimma+yanagitai.">Bi-directional sex change and gonad structure in the gobiid fish Trimma yanagitai.</a> Ichthyol Res. 56 (1), 82-86 (2009).</li><li>Sunobe, T., Nakazono, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sex+change+in+both+directions+by+alteration+of+social+dominance+in+Trimma+okinawae+(Pisces:+Gobiidae).">Sex change in both directions by alteration of social dominance in Trimma okinawae (Pisces: Gobiidae).</a> Ethology. 94 (4), 339-345 (1993).</li><li>Wong, M. Y., Munday, P. L., Buston, P. M., Jones, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monogamy+when+there+is+potential+for+polygyny:+tests+of+multiple+hypotheses+in+a+group-living+fish.">Monogamy when there is potential for polygyny: tests of multiple hypotheses in a group-living fish.</a> Behav Ecol. 19 (2), 353-361 (2008).</li><li>Kuwamura, T., Suzuki, S., Tanaka, N., Ouchi, E., Karino, K., Nakashima, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sex+change+of+primary+males+in+a+diandric+labrid+Halichoeres+trimaculatus:+coexistence+of+protandry+and+protogyny+within+a+species.">Sex change of primary males in a diandric labrid Halichoeres trimaculatus: coexistence of protandry and protogyny within a species.</a> J Fish Biol. 70 (6), 1898-1906 (2007).</li><li>Winterbottom, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+new+species+of+the+Trimma+tevegae+species+group+from+the+Western+Pacific+(Percomorpha:+Gobiidae).">Two new species of the Trimma tevegae species group from the Western Pacific (Percomorpha: Gobiidae).</a> Aqua J Ichthyol Aquat Biol. 10, 29-38 (2005).</li><li>Frederick, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+fluorescent+elastomer+injection+as+a+method+for+marking+small+fish.">Evaluation of fluorescent elastomer injection as a method for marking small fish.</a> Bull Mar Sci. 61 (2), 399-408 (1997).</li><li>Olsen, E. M., V&#248;llestad, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+evaluation+of+visible+implant+elastomer+for+marking+age-0+brown+trout.">An evaluation of visible implant elastomer for marking age-0 brown trout.</a> N Am J Fish Manag. 21 (4), 967-970 (2001).</li><li>Leblanc, C. A., Noakes, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visible+implant+elastomer+(VIE)+tags+for+marking+small+rainbow+trout.">Visible implant elastomer (VIE) tags for marking small rainbow trout.</a> N Am J Fish Manag. 32 (4), 716-719 (2012).</li><li>Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraperitoneal+injection+into+adult+zebrafish.">Intraperitoneal injection into adult zebrafish.</a> J Vis Exp. (42), e2126 (2010).</li><li>Reavis, R. H., Grober, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+integrative+approach+to+sex+change:+social,+behavioural+and+neurochemical+changes+in+Lythrypnus+dalli+(Pisces).">An integrative approach to sex change: social, behavioural and neurochemical changes in Lythrypnus dalli (Pisces).</a> Acta Ethol. 2 (1), 51-60 (1999).</li><li>Milinski, M., Bakker, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Female+sticklebacks+use+male+coloration+in+mate+choice+and+hence+avoid+parasitized+males.">Female sticklebacks use male coloration in mate choice and hence avoid parasitized males.</a> Nature. 344, 330-333 (1990).</li><li>Basolo, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phylogenetic+evidence+for+the+role+of+a+pre-existing+bias+in+sexual+selection.">Phylogenetic evidence for the role of a pre-existing bias in sexual selection.</a> Proc R Soc Lond B Biol Sci. 259 (1356), 307-311 (1995).</li><li>Milinski, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimal+forging:+the+influence+of+intraspecific+competition+on+diet+selection.">Optimal forging: the influence of intraspecific competition on diet selection.</a> Behav Ecol Sociobiol. 11 (2), 109-115 (1982).</li><li>Manabe, H., Ishimura, M., Shinomiya, A., Sunobe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Field+evidence+for+bidirectional+sex+change+in+the+polygynous+gobiid+fish+Trimma+okinawae.">Field evidence for bidirectional sex change in the polygynous gobiid fish Trimma okinawae.</a> J Fish Biol. 70 (2), 600-609 (2007).</li><li>Stammler, K. L., Corkum, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+fish+size+on+shelter+choice+and+intraspecific+interactions+by+round+gobies+Neogobius+melanostomus.">Assessment of fish size on shelter choice and intraspecific interactions by round gobies Neogobius melanostomus.</a> Environ Biol Fishes. 73 (2), 117-123 (2005).</li><li>Matsumoto, Y., Tawa, A., Takegaki, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Female+mate+choice+in+a+paternal+brooding+blenny:+the+process+and+benefits+of+mating+with+males+tending+young+eggs.">Female mate choice in a paternal brooding blenny: the process and benefits of mating with males tending young eggs.</a> Ethology. 117 (3), 227-235 (2011).</li><li>McCormick, M. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behaviorally+induced+maternal+stress+in+a+fish+influences+progeny+quality+by+a+hormonal+mechanism.">Behaviorally induced maternal stress in a fish influences progeny quality by a hormonal mechanism.</a> Ecology. 79 (6), 1873-1883 (1998).</li><li>Knaepkens, G., Bruyndoncx, L., Coeck, J., Eens, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spawning+habitat+enhancement+in+the+European+bullhead+(Cottus+gobio),+an+endangered+freshwater+fish+in+degraded+lowland+rivers.">Spawning habitat enhancement in the European bullhead (Cottus gobio), an endangered freshwater fish in degraded lowland rivers.</a> Biodivers Conserv. 13 (13), 2443-2452 (2004).</li><li>Shiogaki, M., Dotsu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+life+history+of+the+gobiid+fish,+Zonogobius+boreus.">The life history of the gobiid fish, Zonogobius boreus.</a> Bulletin of the Faculty of Fisheries, Nagasaki University. 37, 1-8 (1974).</li><li>Meunier, B., Yavno, S., Ahmed, S., Corkum, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=First+documentation+of+spawning+and+nest+guarding+in+the+laboratory+by+the+invasive+fish,+the+round+goby+(Neogobius+melanostomus).">First documentation of spawning and nest guarding in the laboratory by the invasive fish, the round goby (Neogobius melanostomus).</a> J Great Lakes Res. 35 (4), 608-612 (2009).</li></ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Çok sayıda balıkların üreme ekolojisi genellikle deneysel yetiştirme yoluyla ortaya çıkarılmıştır. Özellikle cinsiyet değişimi 6 , 8 , 14 , eş seçimi 15 , 16 ve özel spesifik rekabet 7 , 17 , akvaryumda tutulan balıkları kullanarak detaylı incelemelerde sıkça yer alan konular olmuştur. Ay...

Muhteşem uyarlamalı evrim, balıkların morfolojisi, ekolojisi ve davranışında belirgindir 1 . Özellikle üreme ile ilgili ekolojik özellikler özellikle çeşitlidir ve bunların çoğu bireysel uygunluk 2 tarafından doğrudan etkilenebilir. Farklı balık türlerinde benzersiz özelliklerin gelişmesine yol açan seçici baskılar hakkında fikir edinmek için, canlı balık kullanarak üreme ve sosyal davranışların doğrudan gözlemlenmesi teorik hipotezleri doğrulamak için genellikle yararlıdır. Bununla birlikte, balıkların kesintisiz saha gözlemleri, muhafaza edilmesi güç olan özel sualtı ekipman ve tesislerini gerektirebilir. Bu vakalarda, vahşi yakalanmış akvaryum yetiştirme balıklarının gözlemleri 3 , 4 , 5&#39;e yardımcı olabilir . Buna ek olarak, aksi takdirde nadir veya farklı olan balık davranışlarının etkili gözlemleriAkvaryumdaki deneyleri manipüle ederek doğal koşullar altında gözlemlemek mümkün olabilir 6 , 7 , 8 . Yapay stres ve fiziksel hasarı en aza indirgemek suretiyle iyi koşullar altında balık yetiştirmek doğru ekolojik araştırmalar için kritik önem taşır. Pigmit gobi Trimma marinası 23-25 ​​mm toplam uzunluğa ulaşır ve 9-26 m 9 derinlikte sessiz, korunaklı koylarda bulunan batı Pasifik Okyanusunda dağıtılır. Bu çalışmada, T. marinae , kendine yeten sualtı nefes alma aparatı (SCUBA), balık nakli ve balıkların akvaryuma doğrudan gözlem için nihai olarak aklimasyonu ile balık toplama için bir dizi temel tekniği tanımlamak için bir model olarak kullanılır Çalışma türü &#39;üreme davranışı ve ekolojisi.

<table><tbody><tr><td>Hand net</td><td>Nisso</td><td>AQ-17</td><td>Select for the target species size.</td></tr><tr><td>Polyethylene bag</td><td>San-U Fish Farm</td><td>8194</td><td></td></tr><tr><td>Rubber band</td><td>ESCO Co. LTD.</td><td>78-0420-64</td><td>&amp;oslash; 80 mm x 6 mm</td></tr><tr><td>Oxygen cylinder</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Oxgen cylinder for diving equipment suits.</td></tr><tr><td>Elbagin</td><td>Japan Pet Design Co. Ltd.</td><td>75950</td><td>Pafurazine F (provided from same company) is equivalent drug to Elbagin.</td></tr><tr><td>Polystyrene foam box</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Pipette</td><td>AS ONE</td><td>1-8625-04</td><td></td></tr><tr><td>Rope</td><td>Mizukami Kinzoku Co. LTD.</td><td>95301601</td><td></td></tr><tr><td>Weight</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Weight for diving equipment suits.</td></tr><tr><td>Water tank</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Air pump</td><td>KOTOBUKI</td><td>4972814 062115</td><td></td></tr><tr><td>Air stone</td><td>KOTOBUKI</td><td>4972814 232204</td><td></td></tr><tr><td>2-Methylquinoline&amp;nbsp;</td><td>Wako</td><td>170-00376</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol (99.5)</td><td>Wako</td><td>057-00456</td><td></td></tr><tr><td>Visible implant elastomer tag kit</td><td>Northwest Marine Technology</td><td>N/A</td><td>http://www.nmt.us/products/vie/vie.shtml</td></tr><tr><td>Soft sponge</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>PVC board</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>0.3 mm thickness is easy to use.</td></tr><tr><td>Petri dish</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>A large one, such as&amp;nbsp; &amp;oslash; 160 mm and 30 mm depth, is convenient for the injection of the VIE tag.</td></tr><tr><td>Transparent acrylic board</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>UVA filtered light&amp;nbsp;</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>PVC pipe</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>&amp;oslash; 5 cm</td></tr><tr><td>Waterproof sheet</td><td>SOMAR Corp.</td><td>3EKW03</td><td>The film for the plain copier.</td></tr><tr><td>Sand</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Stereo microscope</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Camera</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr></tbody></table>

basic methods for the study of reproductive ecology of fish in aquaria

Tutucu yetiştirme gözlemleri, sürekli saha araştırmaları imkansız olduğunda, balık davranışının ve ekolojinin özelliklerini ortaya çıkarmak için değerlidir. Burada, bir model olarak akvaryumda tutulan, vahşi yakalanmış gobiid bir balıkların üreme davranışlarının gözlemlenmesini sağlayacak bir dizi temel teknik açıklanmıştır. Yöntem, üç aşamaya odaklanır: bir substrat spawner&#39;ın üreme ekolojisinin toplanması, taşınması ve gözlemlenmesi. Canlı balık toplama ve nakliyeyle ilgili temel unsurlar, (1) balıkların yaralanmalarının önlenmesi ve (2) akvaryumun dikkatli bir şekilde aklimalandırılmasıdır. Herhangi bir fiziki hasarın balıkların hayatta kalmasını ve daha sonraki davranışlarını olumsuz etkilemesi muhtemel olduğu için, canlı balık toplamak için çizik veya su basıncının ani bir şekilde değişmesi gibi yaralanmalarla zararı önlemek zorunludur. Akvaryuma dikkatli bir şekilde uyum, insidans ölümünü azaltır ve ulaşım şokunu hafifletir. Esir avcılığı sırasında gözlemlere şunlar dahildir: (1)Çift balık ve (2) balık veya yumurta olumsuz etkileri olmadan yumurta yumurta izleme, böylece çalışma türlerinin üreme ekolojisi ayrıntılı bir araştırma sağlar. Görünür bir implant elastomer (VIE) etiketinin subkutan enjeksiyonu, bireysel balıkların daha sonra tanımlanması için kesin bir yöntemdir ve hayatta kalma ve davranışları üzerinde asgari derecede etkili olan geniş bir balık yelpazesinde kullanılabilir. Çalışma türü, yapışkan yumurta bırakan bir substrat ise, çıkarılabilir bir su geçirmez tabaka eklenerek polivinil klorür (PVC) borudan yapılmış bir suni yuva yumurta sayımını ve izlenmesini kolaylaştıracak ve araştırmacının yuva tutma üzerindeki etkisini azaltacaktır Ve yumurta koruyan balık davranışları. Bu temel yöntem, araştırma makalelerinde nadiren bahsedilen teknikleri gerektirse de, vahşi balığın esir alınmasını gerektiren deneyler yapmak için temel önemdedirler.

Yukarıdaki yöntemlerin ardından, T. marinee&#39;lerin 41, 15 ve 96&#39;sı Japonya, Kagoshima Bölgesi, Amami Oshima&#39;nın kıyıları sırasıyla 2014 Nisan 2015 ve 2016 yıllarında toplanmıştır ( Tablo 1 ). Her bir vakada, akvaryumda yumurta bırakılana kadar 25 (% 61), 14 (% 93) ve 91 (% 95) kişi yaşıyordu. Fukuda ve ark . Şekil 3&#39;de görüldüğü gibi, 2014 yılında gözlem döneminin bitiminden ...

Watch this Scientific Journal Video about Basic Methods for the Study of Reproductive Ecology of Fish in Aquaria at JoVE.com

Basic Methods for the Study of Reproductive Ecology of Fish in Aquaria

Akvaryumda tutulan balıkların üreme ekolojisinin incelenmesini sağlayacak bir dizi temel yöntem anlatılmıştır. Bunlar, SCUBA kullanarak balık toplamak, canlı balık taşımak ve akvaryumda tutulan vahşi balıkların üreme davranışlarını gözlemlemek için yararlı protokollerdir.

Akvaryumda Balıkların Üreme Ekolojisi Araştırmaları İçin Temel Yöntemler

Captive-rearing observations are valuable for revealing aspects of fish behavior and ecology when continuous field investigations are impossible. Here, a ...

basic-methods-for-the-study-of-reproductive-ecology-of-fish-in-aquaria

Research

JoVE Journal

Behavior

11.5K Görüntüleme.  Tokyo University of Marine Science and Technology.  Akvaryumda tutulan balıkların üreme ekolojisinin incelenmesini sağlayacak bir dizi temel yöntem anlatılmıştır. Bunlar, SCUBA kullanarak balık toplamak, canlı balık taşımak ve akvaryumda tutulan vahşi balıkların üreme davranışlarını gözlemlemek için yararlı protokollerdir. 

Video: Basic Methods for the Study of Reproductive Ecology of Fish in Aquaria

Development of New Methods for Quantifying Fish Density Using Underwater Stereo-video Tools

The use of video camera systems in ecological studies of fish continues to gain traction as a viable, non-extractive method of measuring fish lengths and estimating fish abundance. We developed and implemented a rotating stereo-video camera tool that covers a full 360 degrees of sampling, which maximizes sampling effort compared to stationary camera tools. A variety of studies have detailed the ability of static, stereo-camera systems to obtain highly accurate and precise measurements of fish; the focus here was on the development of methodological approaches to quantify fish density using rotating camera systems. The first approach was to develop a modification of the metric MaxN, which typically is a conservative count of the minimum number of fish observed on a given camera survey. We redefine MaxN to be the maximum number of fish observed in any given rotation of the camera system. When precautions are taken to avoid double counting, this method for MaxN may more accurately reflect true abundance than that obtained from a fixed camera. Secondly, because stereo-video allows fish to be mapped in three-dimensional space, precise estimates of the distance-from-camera can be obtained for each fish. By using the 95% percentile of the observed distance from camera to establish species-specific areas surveyed, we account for differences in detectability among species while avoiding diluting density estimates by using the maximum distance a species was observed. Accounting for this range of detectability is critical to accurately estimate fish abundances. This methodology will facilitate the integration of rotating stereo-video tools in both applied science and management contexts.

We describe a new method for counting fishes, and estimating relative abundance (MaxN) and fish density using rotating stereo-video camera systems. We also demonstrate how to use distance from camera (Z distance) to estimate species-specific detectability.

Sualtı Stereo video araçları kullanarak balık yoğunluğu miktarının için yeni yöntemler geliştirilmesi

The use of video camera systems in ecological studies of fish continues to gain traction as a viable, non-extractive method of measuring fish lengths and ...

Çevre

Protocol for Acute and Chronic Ecotoxicity Testing of the Turquoise Killifish Nothobranchius furzeri

The killifish Nothobranchius furzeri is an emerging model organism in the field of ecotoxicology and its applicability in acute and chronic ecotoxicity testing has been demonstrated. Overall, the sensitivity of the species to toxic compounds is in the range with, or higher than, that of other model species.
This work describes protocols for acute, chronic, and multigenerational bioassays of single and combined stressor effects on N. furzeri. Due to its short maturation time and life-cycle, this vertebrate model allows the study of endpoints such as maturation time and fecundity within four months. Transgenerational full life-cycle exposure trials can be performed in as little as 8 months. Since this species produces eggs that are drought-resistant and remain viable for years, the on-site culture of the species is not needed but individuals can be recruited when required. The protocols are designed to measure life-history traits (mortality, growth, fecundity, weight) and critical thermal maximum.

Protocol for Acute and Chronic Ecotoxicity Testing of the Turquoise Killifish Nothobranchius furzeri

In this work, we describe an acute, chronic and multigenerational bioassay to study the effects of single and combined stressors on the Turquoise killifish Nothobranchius furzeri. This protocol is designed to study life-history traits (mortality, growth, fecundity, weight) and critical thermal maximum.

Akut ve kronik Ecotoxicity test turkuaz Killifish Nothobranchius furzeri için iletişim kuralı

The killifish Nothobranchius furzeri is an emerging model organism in the field of ecotoxicology and its applicability in acute and chronic ecotoxicity ...

Raising the Mexican Tetra Astyanax mexicanus for Analysis of Post-larval Phenotypes and Whole-mount Immunohistochemistry

River and cave-adapted populations of Astyanax mexicanus show differences in morphology, physiology, and behavior. Research focused on comparing adult forms has revealed the genetic basis of some of these differences. Less is known about how the populations differ at post-larval stages (at the onset of feeding). Such studies may provide insight into how cavefish survive through adulthood in their natural environment. Methods for comparing post-larval development in the laboratory require standardized aquaculture and feeding regimes. Here we describe how to raise fish on a diet of nutrient-rich rotifers in non-recirculating water for up to two-weeks post fertilization. We demonstrate how to collect post-larval fish from this nursery system and perform whole-mount immunostaining. Immunostaining is an attractive alternative to transgene expression analysis for investigating development and gene function in A. mexicanus. The nursery method can also be used as a standard protocol for establishing density-matched populations for growth into adults.

Raising the Mexican Tetra Astyanax mexicanus for Analysis of Post-larval Phenotypes and Whole-mount Immunohistochemistry

In this protocol, we demonstrate how to breed Astyanax mexicanus adults, raise the larvae, and perform whole-mount immunohistochemistry on post-larval fish to compare the phenotypes of surface and cave morphotypes.

Meksika Tetra Astyanax mexicanus analiz Post-larval fenotipleri ve bütün Dağı immünhistokimya için yetiştirme

River and cave-adapted populations of Astyanax mexicanus show differences in morphology, physiology, and behavior. Research focused on comparing adult ...

Genetik

Using the FishSim Animation Toolchain to Investigate Fish Behavior: A Case Study on Mate-Choice Copying In Sailfin Mollies

Over the last decade, employing computer animations for animal behavior research has increased due to its ability to non-invasively manipulate the appearance and behavior of visual stimuli, compared to manipulating live animals. Here, we present the FishSim Animation Toolchain, a software framework developed to provide researchers with an easy-to-use method for implementing 3D computer animations in behavioral experiments with fish. The toolchain offers templates to create virtual 3D stimuli of five different fish species. Stimuli are customizable in both appearance and size, based on photographs taken of live fish. Multiple stimuli can be animated by recording swimming paths in a virtual environment using a video game controller. To increase standardization of the simulated behavior, the prerecorded swimming path may be replayed with different stimuli. Multiple animations can later be organized into playlists and presented on monitors during experiments with live fish.
In a case study with sailfin mollies (Poecilia latipinna), we provide a protocol on how to conduct a mate-choice copying experiment with FishSim. We utilized this method to create and animate virtual males and virtual model females, and then presented these to live focal females in a binary choice experiment. Our results demonstrate that computer animation may be used to simulate virtual fish in a mate-choice copying experiment to investigate the role of female gravid spots as an indication of quality for a model female in mate-choice copying.
Applying this method is not limited to mate-choice copying experiments but can be used in various experimental designs. Still, its usability depends on the visual capabilities of the study species and first needs validation. Overall, computer animations offer a high degree of control and standardization in experiments and bear the potential to &#39;reduce&#39; and &#39;replace&#39; live stimulus animals as well as to &#39;refine&#39; experimental procedures.

Using the FishSim Animation Toolchain to Investigate Fish Behavior: A Case Study on Mate-Choice Copying In Sailfin Mollies

Using the novel FishSim Animation Toolchain, we present a protocol for non-invasive visual manipulation of public information in the context of mate-choice copying in sailfin mollies. FishSim Animation Toolchain provides an easy-to-use framework for the design, animation and presentation of computer-animated fish stimuli for behavioral experiments with live test fish.

Balık davranış araştırmak için FishSim animasyon Toolchain kullanarak: Mate-seçim Sailfin molileri kopyalama üzerinde bir vaka çalışması

Over the last decade, employing computer animations for animal behavior research has increased due to its ability to non-invasively manipulate the ...

Davranış

A Standardized Protocol for Preference Testing to Assess Fish Welfare

Animal welfare assessment techniques try to take into consideration the specific needs and wants of the animal in question. Providing enrichment (the addition of physical objects or conspecifics in the housing environment) is often a way to give captive animals the opportunity to choose who or what they interact with and how they spend their time. A fundamental component of the aquatic environment that is often overlooked in captivity, however, is the ability for the animal to choose to engage in physical exercise. For many animals, including fish, exercise is an important aspect of their life history, and is known to have many health benefits, including positive changes in the brain and behavior. Here we present a method for assessing habitat preferences in captive animals. The protocol could easily be adapted to look at a variety of environmental factors (e.g., gravel versus sand as a substrate, plastic plants versus live plants, low flow versus high flow of water) in different aquatic species, or for use with terrestrial species. Statistical assessment of preference is carried out using Jacob&#39;s preference index, which ranks the habitats from -1 (avoidance) to +1 (most preferred). With this information, it can be determined what the animal wants from a welfare perspective, including their preferred location.

A fundamental aspect of assessing the welfare of animals in captivity is to ask whether the animals have what they want. Here, we present a protocol to determine housing preference in the zebrafish (Danio rerio) with respect to the presence/absence of environmental enrichment and access to flowing of water.

Balık Refahını Değerlendirmek Için Tercih Testi için StandartLaştırılmış Protokol

Animal welfare assessment techniques try to take into consideration the specific needs and wants of the animal in question. Providing enrichment (the ...

A Novel Method of Drug Administration to Multiple Zebrafish (Danio rerio) and the Quantification of Withdrawal

Anxiety testing in zebrafish is often studied in combination with the application of pharmacological substances. In these studies, fish are routinely netted and transported between home aquaria and dosing tanks. In order to enhance the ease of compound administration, a novel method for transferring fish between tanks for drug administration was developed. Inserts that are designed for spawning were used to transfer groups of fish into the drug solution, allowing accurate dosing of all fish in the group. This increases the precision and efficiency of dosing, which becomes very important in long schedules of repeated drug administration. We implemented this procedure for use in a study examining the behavior of zebrafish in the light/dark test after administering ethanol with differing 21 day schedules. In fish exposed to daily-moderate amounts of alcohol there was a significant difference in location preference after 2 days of withdrawal when compared to the control group. However, a significant difference in location preference in a group exposed to weekly-binge administration was not observed. 
This protocol can be generalized for use with all types of compounds that are water-soluble and may be used in any situation when the behavior of fish during or after long schedules of drug administration is being examined. The light/dark test is also a valuable method of assessing withdrawal-induced changes in anxiety.

A Novel Method of Drug Administration to Multiple Zebrafish Danio rerio and the Quantification of Withdrawal

A novel method for reducing variability when exposing fish to drugs is explained. Fish exposed to various patterns of ethanol exposure were found to have altered anxiety levels during withdrawal in a light/dark scototaxic assay.

Çoklu Zebra balığı için İlaç İdaresi Bir Roman Yöntemi (<em&gt; Danio rerio</em&gt;) Ve Çekilme Niceleme

Anxiety testing in zebrafish is often studied in combination with the application of pharmacological substances. In these studies, fish are routinely ...

Nörobilim

Boldness, Aggression, and Shoaling Assays for Zebrafish Behavioral Syndromes

A behavioral syndrome exists when specific behaviors interact under different contexts. Zebrafish have been test subjects in recent studies and it is important to standardize protocols to ensure proper analyses and interpretations. In our previous studies, we have measured boldness by monitoring a series of behaviors (time near surface, latency in transitions, number of transitions, and darts) in a 1.5 L trapezoidal tank. Likewise, we quantified aggression by observing bites, lateral displays, darts, and time near an inclined mirror in a rectangular 19 L tank. By dividing a 76 L tank into thirds, we also examined shoaling preferences. The shoaling assay is a highly customizable assay and can be tailored for specific hypotheses. However, protocols for this assay also must be standardized, yet flexible enough for customization. In previous studies, end chambers were either empty, contained 5 or 10 zebrafish, or 5 pearl danios (D. albolineatus). In the following manuscript, we present a detailed protocol and representative data that accompany successful applications of the protocol, which will allow for replication of behavioral syndrome experiments.

This manuscript describes the setup, implementation, and analysis of boldness, aggression, and shoaling in zebrafish and testing for the presence of a behavioral syndrome. A standardized approach for behavioral quantification will allow for easier comparison across studies. Modifications to this protocol are possible as each assay can be run individually.

Zebra balığı Davranış Sendromlardaki için cesaret, Saldırganlık ve shoaling Tahliller

A behavioral syndrome exists when specific behaviors interact under different contexts. Zebrafish have been test subjects in recent studies and it is ...

Tıp

Regular Care and Maintenance of a Zebrafish (Danio rerio) Laboratory: An Introduction

This protocol describes regular care and maintenance of a zebrafish laboratory. Zebrafish are now gaining popularity in genetics, pharmacological and behavioural research. As a vertebrate, zebrafish share considerable genetic sequence similarity with humans and are being used as an animal model for various human disease conditions. The advantages of zebrafish in comparison to other common vertebrate models include high fecundity, low maintenance cost, transparent embryos, and rapid development. Due to the spur of interest in zebrafish research, the need to establish and maintain a productive zebrafish housing facility is also increasing. Although literature is available for the maintenance of a zebrafish laboratory, a concise video protocol is lacking. This video illustrates the protocol for regular housing, feeding, breeding and raising of zebrafish larvae. This process will help researchers to understand the natural behaviour and optimal conditions of zebrafish husbandry and hence troubleshoot experimental issues that originate from the fish husbandry conditions. This protocol will be of immense help to researchers planning to establish a zebrafish laboratory, and also to graduate students who are intending to use zebrafish as an animal model.

Regular Care and Maintenance of a Zebrafish Danio rerio Laboratory: An Introduction

This protocol outlines regular maintenance and care to maintain optimal conditions for zebrafish husbandry. The video illustrates the protocol for system maintenance, regular housing, feeding, breeding, and raising of zebrafish larvae.

Bir Zebra balığı Düzenli Bakım ve Onarım (<em&gt; Br.rerio</em&gt;) Laboratuvar: An Introduction

This protocol describes regular care and maintenance of a zebrafish laboratory. Zebrafish are now gaining popularity in genetics, pharmacological and ...

Biyoloji

Gamete Collection and In Vitro Fertilization of Astyanax mexicanus

Astyanax mexicanus is emerging as a model organism for a variety of research fields in biological science. Part of the recent success of this teleost fish species is that it possesses interfertile cave and river-dwelling populations. This enables the genetic mapping of heritable traits that were fixed during adaptation to the different environments of these populations. While this species can be maintained and bred in the lab, it is challenging to both obtain embryos during the daytime and create hybrid embryos between strains. In vitro fertilization (IVF) has been used with a variety of different model organisms to successfully and repeatedly breed animals in the lab. In this protocol, we show how, by acclimatizing A. mexicanus to different light cycles coupled with changes in water temperature, we can shift breeding cycles to a chosen time of the day. Subsequently, we show how to identify suitable parental fish, collect healthy gametes from males and females, and produce viable offspring using IVF. This enables related procedures such as the injection of genetic constructs or developmental analysis to occur during normal working hours. Furthermore, this technique can be used to create hybrids between the cave and surface-dwelling populations, and thereby enable the study of the genetic basis of phenotypic adaptations to different environments.

Gamete Collection and In Vitro Fertilization of Astyanax mexicanus

In vitro fertilization is a commonly used technique with a variety of model organisms to maintain lab populations and produce synchronized embryos for downstream applications. Here, we present a protocol that implements this technique for different populations of the Mexican tetra fish, Astyanax mexicanus.

Gamete koleksiyonu ve Astyanax mexicanus In vitro fertilizasyon

Astyanax mexicanus is emerging as a model organism for a variety of research fields in biological science. Part of the recent success of this teleost fish ...

Sperm Collection and Computer-Assisted Sperm Analysis in the Teleost Model Japanese Medaka (Oryzias latipes)

Japanese medaka (Oryzias latipes) is a teleost fish and&#160;an emerging vertebrate model for ecotoxicology, developmental, genetics, and physiology research. Medaka is also used extensively to investigate vertebrate reproduction, which is an essential biological function as it allows a species to perpetuate. Sperm quality is an important indicator of male fertility and, thus, reproduction success. Techniques for extracting sperm and sperm analysis are well documented for many species, including teleost fish. Collecting sperm is relatively simple in larger fish but can be more complicated in small model fish as they produce less sperm and are more delicate. This article, therefore, describes two methods of sperm collection in the small model fish, Japanese medaka: testes dissection and abdominal massage. This paper demonstrates that both approaches are feasible for medaka and shows that abdominal massage can be performed a repeated number of times as the fish quickly recover from the procedure. This article also describes a protocol for computer-assisted sperm analysis in medaka to objectively assess several important indicators of medaka sperm quality (motility, progressivity, duration of motility, relative concentration). These procedures, specified for this useful small teleost model, will greatly enhance understanding of the environmental, physiological, and genetic factors influencing fertility in vertebrate males.

Sperm Collection and Computer-Assisted Sperm Analysis in the Teleost Model Japanese Medaka Oryzias latipes

This article describes two quick and efficient methods for collecting sperm from the small model fish medaka (Oryzias latipes), as well as a protocol for reliably assessing sperm quality using computer-assisted sperm analysis (CASA).

Teleost Modelinde Sperm Toplama ve Bilgisayar Destekli Sperm Analizi Japon Medakası (Oryzias latipes)

Japanese medaka (Oryzias latipes) is a teleost fish and&#160;an emerging vertebrate model for ecotoxicology, developmental, genetics, and physiology ...

Akvaryumda Balıkların Üreme Ekolojisi Araştırmaları İçin Temel Yöntemler

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler