İntramural finansman bu proje için Intramural araştırma bölümü, ulusal kalp, akciğer ve kan Enstitüsü'nde Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından sağlandı. Dr James Hawkins, Dr Robert Hoyt, hayvan hastalıklarıyla ilgili kaynaklar bölümü NIH ve personel NIH de kardiyotorasik cerrahi araştırma programı kabul etmek istiyoruz.

burada açıklanan yordamları Ulusal kalp, akciğer ve kan Enstitüsü hayvan bakım ve kullanım Komitesi, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından kabul edildi ve halk sağlığı hizmet İlkesi'nde belirtilen ilkelerine uygun İnsana ilişkin bakım ve laboratuvar hayvanları, hayvan hakları yasası ve Bakım Kılavuzu ve Use of Laboratory Animals.
 Not: Bu yordamın amacı, cerrahi klinik hasta şiddetli CAD ile ilgilidir tedavileri geliştirmek için kullanılan kronik miyokardiyal iskemi bir hayvan modeli üretmektir. Bu bir vitro modelini kullanarak başarılı olamaz.
 1. hayvanlar <ol><li>kullanın erkek Yorkshire domuz arasında 12 ve 15 kg ağırlığında</li></ol>
 2. pre-surgical yordamları <ol><li>profilaktik antibiyotik için amoksisilin ve clavulanate potasyum (15 mg/kg) günde iki kez sözlü olarak ameliyat öncesi 24 h başlayan kullanın. 
	Not: Bu oral antibiyotik domuz yutmak emin olmak için ve ayrıca onlar post-operatively ilaç Alerjik bir reaksiyon yok edecektir emin olmak için ameliyattan önce başlatılır.</li>
	<li>Gıda ve domuz ameliyat öncesi 12 h su kesintisi.</li>
	<li>Ameliyat günü, domuz ketamin (33 mg/kg), midazolam (0,5 - 0,75 mg/kg) ve glycopyrrolate (0.01 mg/kg) kas içi (IM) verilen bir kokteyl ile anestezi.</li>
	<li>Bir kulak ven bir 20 G intravenöz (IV) kateter yerleştirin ve 7.0 Fr endotrakeal tüp ile hayvan entübe. 
	Not: IV kateter ve domuz boyutu için uygun endotrakeal tüp boyutunu ayarlamak.</li>
	<li>Göbeğini için omuz ve karın orta hat vertebral sütun için domuz sol tarafında (tıraş) saç kaldırmak.</li>
	<li>Profilaktik antibiyotik yönetmek (piperacillin ve tazobactam: 100 mg/kg IV) ve ağrı ilaç (buprenorfin sürekli yayın: 0.2 mg/kg subkutan (SC) veya bir fentanyl transdermal yama 25-50 µg/h). 
	Not: hayvanlar için ameliyat öncesi 12 h Oruç ve daha önce bahsedilen oral antibiyotik bu süre zarfında almazsınız çünkü IV antibiyotik verilir.</li>
	<li>Domuz ameliyathane için taşıma ve endotrakeal tüp hava yolu gazlar izlemek için bir sidestream sensörüne sahip anestezi makineye bağlayın. Mekanik olarak 10 mL/kg gelgit hacmi bir başlangıç noktası olarak kullanarak domuz havalandırın ve bir hava yolu basıncı 30 cm H 2 O. Set min (bpm) başına 10-20 nefes arasında solunum hızı aşan ve sonunda tidal CO 2 (tutmak için gereken şekilde ayarlayın PetCO 2) düzeyleri arasında 28 ve 35 mm Hg. koru isoflurane (% 1-3) ya da sevoflurane (% 2-5) ile anestezi.</li>
	<li>Domuz sağdaki ameliyat masasında aşağı getirin. Vücut ısısı (BT), Elektrokardiyogram (EKG), Nabız oksimetri (SpO 2) vb. izlemek için tüm gerekli sonda takmak</li> <li>%2 chlorohexidine ve % 70 alkol ile üç alternatif scrubs ile cerrahi site hazırlamak (geçerli bir dairesel hareket Merkezi ile başlayan ve dışa doğru hareket).</li>
	<li>Aseptik teknik 21 kullanarak cerrahi sitesi asmak.</li>
</ol> 3. Cerrahi işlem <ol><li>sol torakotomi kalbine maruz.
	<ol><li>Bir cilt kesi için 4 th paralel yapmak ve 5 inci interkostal alan yaklaşık 8-9 cm uzunluğunda bir No 10 neşter bıçak kullanarak.</li>
		<li>Latissimus dorsi ve serratus bir çift eğri Metzenbaum makas ve Brown Adson forseps kullanarak ventralis kasları kesmiş. Elektrokoter hemostaz gerektiği gibi güncelleştirmek için kullanın.</li>
		<li>Th 4 ve 5 inci kaburga ile 4 inci kaburga ön yönünü boyunca Metzenbaum makas kesim arasında interkostal kaslara aracılığıyla plevral boşluğu girin. Yanlışlıkla akciğer zarar verme olasılığını azaltmak, solunum plevral boşluğu girmeden önce nefes üzerinde devre dışı bırakın. Bir kez plevral boşluğu delindi, solunum yeniden açın.</li>
		<li>Kalp açığa ayrı, kaburga yaymak için küçük bir Finochietto Retraktörü kullanın.</li>
	</ol></li> <li>Kullanım Debakey forseps kavramak ve kalp zarını kaldırın. Potts makas Perikardiyal boşluk bırakmak hava izin kalp zarını küçük bir delik açmak için kullanın. DELİKANLI ve LCX arterler kesişimine Potts makasla kesmeye devam.</li>
	<li>Sol atriyal apendiks geri çekmek için kullanmak Babcock forseps. DeBakey ve küçük dik açı forseps kullanarak, teşrih çevreleyen doku önce veya proksimal LCX arterin 1 st kalın kafalı marjinal şube için.</li>
	<li>İki gemi döngü disseke LCX arter, tek tek her iki ucu altında yerleştirin. Bir boyutu 3.0 mm ameroid yılanı küçük dik açı Forseps ile tutun ve hafifçe yılanı delikten LCX arter yol gemi döngüler kaldırın. Açılış karşı karşıya olduğu bu yüzden yılanı Yavaşça döndürün. Gemi döngüler kaldırın. Bkz: şekil 1. 
	Not: Arter yeterli diseksiyon kırışma önlemek için önemlidir. Uygun ölçekli yılanı bireysel hayvan için seçin. Uygun ölçekli yılanı yakından başlangıçta gemi constricting olmadan gemi çevreler. Yerli domuzlar arasında 12 ve 15 kg ağırlığında ameroid kıskaçlar 2.5-3.5 mm boyutlu gerektirir. Gemide ameroid yılanı konumunu iskemik çevrenin istenen boyutuna bağlıdır.</li>
	<li>Kalp zarını yeniden yaklaşık ve 4-0 polipropilen sütür ile yakın.</li>
	<li>Sonunda dışarı kapatma, genellikle iki interkostal boşluk Torakotomi siteye posterior katmanlar arasında çıkmadan ile plevral boşlukta 12 Fr göğüs tüpü veya eşdeğer ekleyerek negatif torasik basınç yeniden. 
	Not: kaburga kapatmadan önce akciğer atelectasis için gözlemlemek. Eğer belirtisi underinflation gözlenir, el ile en fazla 30 mm Hg baskısı akciğerler tekrar havalanmasını sağladık.</li>
	<li>1 polipropilen sütür kullanarak interkostal katmanı, subkutan katman için polipropilen sütür 2-0 ve 3-0 polipropilen sütür subcuticular katman için serratus ve Fasial katmanı için 0 polipropilen sütür için göğüs kapatın. Zımba veya deri dikiş.</li>
	<li>Üç yollu dur horoz Göğüs tüpünü sonuna eklemek ve negatif bir mühür elde kadar göğüs havada bir 40-60 cc şırınga tahliye edin. Hayvan tüm havayı çıkarma kolaylaştırmak için göğüs kemiği ya tam tersi yan üzerine rulo. Bir kez negatif basınç göğüs tutar, göğüs tüpü çıkarması ve çıkış sitesi dikiş. Eğer hayvanlar tek başına post-operatively yerleştirilmiştir, birkaç gün için belgili tanımlık kesme sargılı.</li>
</ol> 4. Post Operatif <ol><li>her iki taraf boyunca kesi ile % 0.25 bupivacaine Torakotomi sitesinin kapatılması sızmak.</li>
	<li>Hayvan solunum kapalı vazgeçirmek ve anestezi açmak. Hayvan kendi başına nefes alıyor bir kez Endotrakeal tüpü çıkarması ve yutma.</li>
	Bu tamamen iyileşti (uyanık ve sternal) kadar <li>hayvan izlemek. Orada-meli var olmak hiçbir anormallik veya EKG'nin, BT aritmiler 38,7-39.8 ° C olması gerektiğini, SpO %2 95-100 olmalıdır ve solunum hızı 32-58 bpm olmalıdır.</li>
	<li>Yönetici Amiodaron (100 mg, günde iki kez sözlü olarak) ve tromboz ve aritmiler önlemek için Klopidogrel bisulfate (75 mg, sözlü olarak günde bir). Amoksisilin ve clavulanate potasyum (15 mg/kg) ile sözlü olarak iki kere a gün için devam etmek 10 gün sonrası işlemi. Ameliyat sonrası ağrı buprenorfin SR (sürekli yayın) ile kontrollü 0.2 mg/kg. SQ üç günde. Buprenorfin SR carprofen (4,4 mg/kg) ile bir kez takviye ve o zaman (2.2 mg/kg) PO veya IM teklifi.</li>
	<li>Hayvan tüm yatak ve yiyecek malzemeden devam &#39; kesik tamamen iyileşene kadar alan konut s.</li>
</ol>

<ol><li>Mozaffarian, D., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26811276">Executive Summary: Heart Disease and Stroke Statistics--2016 Update: A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 133 (4), 447-454 (2016).</li>
<li>Heron, M. Deaths: Leading causes for 2014. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHeron%2C+M+%22National+Vital+Statistics+Reports%22">National Vital Statistics Reports</a>. 65 (5), Public Health Service. Washington, DC. (2016).</li>
<li>Tsang, H. G., Rashdan, N. A., Whitelaw, C. B. A., Corcoran, B. M., Summers, K. M., MacRae, V. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+animal+models+of+cardiovascular+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biochem+Funct%22%5BJournal%5D)">Large animal models of cardiovascular disease.</a> Cell Biochem Funct. 34 (3), 113-132 (2016).</li>
<li>Lassaletta, A. D., Chu, L. M., Sellke, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+neovascularization+for+coronary+disease%3A+current+state+and+future+prospects%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Therapeutic neovascularization for coronary disease: current state and future prospects.</a> Basic Res Cardiol. 106 (6), 897-909 (2011).</li>
<li>Tuzun, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+of+Ischemic+Area+and+Coronary+Flow+With+Ameroid+Size+in+a+Porcine+Model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Correlation of Ischemic Area and Coronary Flow With Ameroid Size in a Porcine Model.</a> J Surg Res. 164 (1), 38-42 (2010).</li>
<li>Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translational+Physiology%3A+Porcine+models+of+human+coronary+artery+disease%3A+implications+for+preclinical+trials+of+therapeutic+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Translational Physiology: Porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis.</a> J Appl Physiol. 94 (5), 689-701 (2003).</li>
<li>Sabe, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+the+effects+of+resveratrol+on+chronically+ischemic+myocardium+in+a+swine+model+of+metabolic+syndrome%3A+a+proteomics+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Food%22%5BJournal%5D)">Investigating the effects of resveratrol on chronically ischemic myocardium in a swine model of metabolic syndrome: a proteomics analysis.</a> J Med Food. 18 (1), 60-66 (2015).</li>
<li>Santos, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+imaging%3A+what+have+we+learned+from+animal+models%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular imaging: what have we learned from animal models?</a> Front Pharmacol. 6, 227(2015).</li>
<li>Klocke, R., Tian, W., Kuhlmann, M. T., Nikol, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+animal+models+of+heart+failure+related+to+coronary+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Res%22%5BJournal%5D)">Surgical animal models of heart failure related to coronary heart disease.</a> Cardiovasc Res. 74 (1), 29-38 (2007).</li>
<li>Tarkia, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+remodeling+in+a+new+pig+model+of+chronic+heart+failure%3A+Assessment+of+left+ventricular+functional%2C+metabolic%2C+and+structural+changes+using+PET%2C+CT%2C+and+echocardiography%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nucl+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Cardiac remodeling in a new pig model of chronic heart failure: Assessment of left ventricular functional, metabolic, and structural changes using PET, CT, and echocardiography.</a> J Nucl Cardiol. 22 (4), 655-665 (2015).</li>
<li>Caillaud, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiographic+analysis+with+a+two-dimensional+strain+of+chronic+myocardial+ischemia+induced+with+ameroid+constrictor+in+the+pig%5BTitle%5D)+AND+%22Interact+Cardiovasc+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Echocardiographic analysis with a two-dimensional strain of chronic myocardial ischemia induced with ameroid constrictor in the pig.</a> Interact Cardiovasc Thorac Surg. 10 (5), 689-693 (2010).</li>
<li>Unger, E. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+evaluation+of+coronary+collateral+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Res%22%5BJournal%5D)">Experimental evaluation of coronary collateral development.</a> Cardiovasc Res. 49 (3), 497-506 (2001).</li>
<li>Giordano, C., Kuraitis, D., Beanlands, R. S., Suuronen, E. J., Ruel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-based+vasculogenic+studies+in+preclinical+models+of+chronic+myocardial+ischaemia+and+hibernation%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Opin+Biol+Ther%22%5BJournal%5D)">Cell-based vasculogenic studies in preclinical models of chronic myocardial ischaemia and hibernation.</a> Expert Opin Biol Ther. 13 (3), 411-428 (2013).</li>
<li>St Louis, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Experimental+Model+of+Chronic+Myocardial+Hibernation%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">An Experimental Model of Chronic Myocardial Hibernation.</a> Ann Thorac Surg. 69 (5), 1351-1357 (2000).</li>
<li>Green, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+X-ray+fluoroscopy+and+interventional+magnetic+resonance+imaging+for+the+assessment+of+coronary+artery+stenoses+in+swine%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Comparison of X-ray fluoroscopy and interventional magnetic resonance imaging for the assessment of coronary artery stenoses in swine.</a> Magn Reson Med. 54 (5), 1094-1099 (2005).</li>
<li>Qiu, Q., Lin, Y., Xiao, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time-Course+of+the+Effects+of+QSYQ+in+Promoting+Heart+Function+in+Ameroid+Constrictor-Induced+Myocardial+Ischemia+Pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Evid+Based+Complement+Alternat+Med%22%5BJournal%5D)">Time-Course of the Effects of QSYQ in Promoting Heart Function in Ameroid Constrictor-Induced Myocardial Ischemia Pigs.</a> Evid Based Complement Alternat Med. , (2014).</li>
<li>Zhou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Injection+of+Autologous+Mesenchymal+Stromal+Cells+Improves+Myocardial+Function%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commun%22%5BJournal%5D)">Direct Injection of Autologous Mesenchymal Stromal Cells Improves Myocardial Function.</a> Biochem Biophys Res Commun. 390 (3), 902-907 (2009).</li>
<li>Radke, P. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+porcine+ameroid+constrictor+model+of+myocardial+ischemia+for+therapeutic+angiogenesis+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Endothelium%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the porcine ameroid constrictor model of myocardial ischemia for therapeutic angiogenesis studies.</a> Endothelium. 13 (1), 25-33 (2006).</li>
<li>Estvold, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Does+laser+type+impact+myocardial+function+following+transmyocardial+laser+revascularization%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg+Med%22%5BJournal%5D)">Does laser type impact myocardial function following transmyocardial laser revascularization?</a> Lasers Surg Med. 42 (10), 746-751 (2010).</li>
<li>Kumar, A. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravascular+cell+delivery+device+for+therapeutic+VEGF-induced+angiogenesis+in+chronic+vascular+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Intravascular cell delivery device for therapeutic VEGF-induced angiogenesis in chronic vascular occlusion.</a> Biomaterials. 35 (32), 9012-9022 (2014).</li>
<li>JoVE Science Education Database. Essentials of Lab Animal Research: Considerations for Rodent Surgery. , JoVE, Cambridge, MA. Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.jove.com/science-education/10285/considerations-for-rodent-surgery">https://www.jove.com/science-education/10285/considerations-for-rodent-surgery</a> (2017).</li>
<li>Cao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+artery+vasospasms+in+a+microminipig+occurred+after+placing+an+ameroid+constrictor%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vet+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">Coronary artery vasospasms in a microminipig occurred after placing an ameroid constrictor.</a> J Vet Med Sci. 78 (7), 1213-1216 (2016).</li>
<li>Sereda, C. W., Adin, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+of+Gradual+Vascular+Occlusion+and+Their+Applications+in+Treatment+of+Congenital+Portosystemic+Shunts+in+Dogs%3A+A+Review%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Surgery%22%5BJournal%5D)">Methods of Gradual Vascular Occlusion and Their Applications in Treatment of Congenital Portosystemic Shunts in Dogs: A Review.</a> Veterinary Surgery. 34, 83-91 (2005).</li>
<li>Ikonen, T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ligation+of+ameroid-stenosed+coronary+artery+leads+to+reproducible+myocardial+infarction--a+pilot+study+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Ligation of ameroid-stenosed coronary artery leads to reproducible myocardial infarction--a pilot study in a porcine model.</a> J Surg Res. 142 (1), 195-201 (2007).</li>
<li>Adin, C. A., Gregory, C. R., Kyles, A. E., Griffey, S. M., Kendall, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+Petrolatum+Coating+on+the+Rate+of+Occlusion+of+Ameroid+Constrictors+in+the+Peritoneal+Cavity%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Surgery%22%5BJournal%5D)">Effect of Petrolatum Coating on the Rate of Occlusion of Ameroid Constrictors in the Peritoneal Cavity.</a> Veterinary Surgery. 33, 11-16 (2004).</li>
<li>Griffin, M. A., Hunt, G. B., Epstein, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavior+of+plastic+and+metal+ameroid+constrictors+during+in+vitro+incubation+in+physiologic+solutions+of+varying+glucose+concentration%5BTitle%5D)+AND+%22Res+Vet+Sci%22%5BJournal%5D)">Behavior of plastic and metal ameroid constrictors during in vitro incubation in physiologic solutions of varying glucose concentration.</a> Res Vet Sci. 105, 165-170 (2016).</li>
</ol>

Yazarlar hiçbir ifşa etmek çıkar çatışması var.

Ameroid kıskaçlar yoğun kronik miyokardiyal iskemi, kronik kalp krizi ve kalp yetmezliği5,6,7,9,10 hayvan modeller oluşturmak için kullanılan , 11 , 12 , 13 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. her ne kadar bu modelleri restenoz, hidrolik occluders veya sabit stenoz occluders kullanılarak oluşturulmuş daha doğru bir şekilde işlerini sonuçlarını karşılaştırmak araştırmacılar bilimsel literatürde ameroid kullanımına ilişkin yaygınlık sağlar daha önce yayınlanmamış çalışmalar5,6,7,9,10,11,12,13, 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. ameroid yılanı kullanmanın bir diğer avantajı prosedür nispeten basittir ve başarıyla makul cerrahi becerileri olan herkes tarafından gerçekleştirilen ve hiçbir özel araçlar gerektirir alır. Yukarıda belirtilen diğer yöntemleri büyük teknik becerileri gerektirir ve hidrolik occluder söz konusu olduğunda, yoğun ameliyat sonrası nedeniyle externalized aygıt6,13izleme gerektirir.
Ameroid yılanı kullanmanın ana tıkanıklığı9,13hızı değişkenliği kısıtlamadır. Genel olarak, çoğu çalışmalar ameroid yılanı kullanarak tam tıkanıklığı23,24oluşana kadar ilk iki hafta içinde en yüksek ve sonra yavaş yavaş kapalı konik olmak stenoz oranı bulduk. Doğrudan ameroid Lümen kapatma oranını ölçme ex vivo çalışmalar Lümen çapı en büyük azalma ilk iki hafta içinde oluşur ve bundan sonra25,26yavaşlar doğruladı. Ancak, bu aynı çalışmalar da glikoz ve protein konsantrasyonları çevreleyen oranı ve böylece vivo içinde koşulların değişkenliği için büyük olasılıkla sorumlu olduğunu düşündüren ameroid kapatılması completeness etkileyebilir göstermiştir ameroid içinde25,26tıkanıklığı oranları. Diğer araştırmacılar mekanik travma, inflamasyon, fibrozis ve ameroid yerleştirme yordam tarafından neden trombüsü oluşumu bu değişkenliği5,-6,25 katkıda bulunabilir tavsiye ettiler . İkinci senaryo olasılıkla erken ölüm ve kalp bu çalışmada gözlenen başarısızlık nedeni var. Narin, henüz yeterli, arter diseksiyon iki tarafında gemisini kırışma önlemek için ameroid yapmanın yeterince stresli önemini olamaz.
Uygun ameroid yılanı yerleşimini iskemik yüzölçümü de tedavi için büyük kalp geliştirmek için kritik ama değil çok büyük ölümle sonuçlanır. Yorkshire domuzlarda en iyisi için ilk kalın kafalı marjinal şube görüntülenmeden önce ameroid yılanı LCX yerleştirerek. Başka bir yerde bildirildiği gibi bu yaklaşık 25-%306sol ventrikül iskemik yüzölçümü sonuçlandı. Ameroid yerleştirerek herhangi sonuçlandı bu çalışmada araştırılmıştır belirli tedavisi için yetersiz bir iskemik alanda daha düşük.
Cerrahi işlem sırasında meydana gelen aritmiler nadirdir. Sözlü Amiodaron sonrası işlem sonuna kadar çalışma yönetme, ameroid kapalı kapatırken Aritmilere 2-3 hafta sonrası işlemi sırasında engelleyebilir. Ayrıca, kapıcılık ve sağlık personeli herhangi bir pulmoner ödem/kalp yetmezliği erken bir belirtisi olabilir bu süre içinde öksürük belirterek özellikle uyanık olmalıdır.
Yıllar içinde ameroid yılanı tasarım üzerine geliştirilmiş. Ameroids şu anda cerrah tıkandı için gemi çapını eşleşen bir ameroid seçmek izin çeşitli boyutlarda mevcuttur. Ameroid dış halkasındaki paslanmaz çelik, titanyum veya plastik mevcuttur. MRI kullanarak etkilenen kalpler değerlendirirken bu özellikle önemlidir. Tüm metal bir obje Mr görüntülerinde neden olur. Plastik hiçbiri vasıl tüm yapraklar ederken titanyum ameroids paslanmaz çelikten, daha bir obje daha az neden. MRI görüntüleri bir titanyum ameroid ve plastik ameroid arasındaki farkı gösteren Şekil 2 ve şekil 3, sırasıyla gösterilir. Yapının Şekil 2 kalbinde sağ tarafındaki ameroid kapatan titanyum halka tarafından nedeniyle oluşur. Yakın zamana kadar plastik ameroid kapsama halkada bir koroner arter gemi kırışma olmadan yerleştirmek için çok hantal. Bu çalışmada kullanılan ameroid yılanı (bakınız Tablo reçetesi) metal ameroids olarak aynı dış çapı çok daha akıcı bir sürüm olduğunu.

Miyokardiyal iskemi açan koroner arter hastalığı (CAD), önde gelen sakatlık, ölüm ve sağlık maliyetleri dünya4 civarında ve yaklaşık 1 ABD1,2 3 her ölüm için atfedilebilecek nedeni , 3 , 4 , 5 , 6. en çok üçte biri en düşük CAD hastalarda perkütan ve cerrahi tedaviler birçok gelişmeler rağmen yaş, kötü sağlık veya suboptimal anatomi4, nedeniyle bu tedaviler için uygun olmayan 5 , 6 , 7. Tanı görüntüleme veya tedavi yeni yöntemler değerlendirmek için uygun bir hayvan modeli geliştirilmesi önemlidir.
Bir hastalık için bir hayvan modeli geliştirirken, indüklenen bozukluğu yakından insanlar8,9bozuklukta anatomik ve fizyolojik özellikleri öykünüp. Bir kardiyovasküler çalışmalar için en çok kullanılan büyük hayvanların domuz var. Domuz kalbi en yakın boyut, anatomi ve fizyolojisi3,6açısından insan kalbi ROM'una benzer. Benzer şekilde insan kalbi, domuzun kalbi Miyokardiyum bir geniş Kollateral Dolaşım6sahip değil. Bu nedenle, domuz kalbi akut koroner oklüzyon de tahammül etmez ama yavaş yavaş koroner oklüzyon tolere edebilir. Bir Koroner yavaş yavaş tıkandı, o bir model olarak kronik miyokardiyal iskemi, kronik kalp krizi ve kalp yetmezliği5,6,9,10, için kullanılabilir 11 , 12 , 13. kronik miyokardiyal iskemi stent implantasyonu ve hidrolik occluder, sabit stenoz occluder veya bir ameroid yılanı yerleşimini ile indüklenen. Avantajları ve dezavantajları için çeşitli yayınlar6,9,13 ' te ayrıntılı olarak açıklanan tüm bu yöntemler vardır ama ameroid yerleşim5en sık kullanılan yöntemdir, 6,10,11.
Ameroid yılanı kazein malzeme kaplı paslanmaz çelik, plastik veya titanyum yüzük içinde oluşur. Bir kez bir arter (genellikle sol ön inen koroner arter (evlat) veya Sol Sirkumfleks koroner arter (LCX)) yerleştirilir, kazein malzeme yavaş stenoz, taklit eden yavaş yavaş, daraltmak iç Lümen neden çevresindeki sıvı emer bir sonunda, arter ve ortaya çıkan tıkanıklığı9,13,14tam. Bu yordam, tek başına veya diğer yöntemleri sonuçlarını bölge kronik miyokardiyal iskemi ve/veya geliştirmek ve yeni görüntüleme teknikleri8değerlendirmek için yararlı olmuştur kalbin sol ventrikül infarktüsü ile birlikte kullanılan 10,15, tedavi tedaviler7,16,17,18 ve cerrahi işlemler19,20.

<table><tbody><tr><td>Anesthesia: ketamine</td><td>Putney, INC</td><td></td><td>Dose: 25mg/kg, IM</td></tr><tr><td>Anesthesia: midazolam</td><td>App Pharmaceuticals</td><td></td><td>Dose: 0.75mg/kg, IM</td></tr><tr><td>Anesthesia: isoflurane</td><td>Baxter</td><td></td><td>Dose: 1-3%, INH</td></tr><tr><td>Antibiotics: amoxicillin and clavulanate potassium</td><td>WG Critical Care</td><td></td><td>Dose: 15mg/kg, IV</td></tr><tr><td>Antibiotics: piperacillin and tazobactam</td><td>Fresenius Kabl</td><td></td><td>Dose: 100mg/kg, PO</td></tr><tr><td>Analgesia: buprenorphine (sustained release)</td><td>Zoo Pharm</td><td></td><td>10mg/ml bottle, Dose: 0.2mg/kg SC</td></tr><tr><td>Analgesia: fentanyl patch</td><td>Mylan</td><td></td><td>Dose: 25-50mcg/hr, TD</td></tr><tr><td>Analgesia: bupivicaine 0.25%</td><td>Hospira</td><td></td><td>Give SC at incision site for analgesia</td></tr><tr><td>Alcohol 70%</td><td>Humco</td><td>NDC 0395-4202-28</td><td>for scrubbing surgical site</td></tr><tr><td>Chlorhexidine scrub 2%</td><td>Vet One</td><td>510083</td><td>for scrubbing surgical site</td></tr><tr><td>Datex-Ohmeda Aestiva /5 anesthesia machine</td><td>GE Healthcare Madison WI.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pediatric anesthesia circuit</td><td>Westmed</td><td>7-8901</td><td>www.westmedinc.com</td></tr><tr><td>Water blanket</td><td>Cincinnati Sub Zero</td><td>Blanketrol 2</td><td></td></tr><tr><td>EKG</td><td>Medtronics- Physiocontrol</td><td>LifePak 20</td><td></td></tr><tr><td>Oxygen saturation monitor</td><td>GE Healthcare Madison WI.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Temperature probe</td><td>GE Healthcare Madison WI.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Electrical cautery unit</td><td>Valley Labs</td><td>Force 2</td><td>Cut-30 Coag-40</td></tr><tr><td>Endotracheal tube</td><td>Hudson RCI</td><td>HUD510312</td><td>Hudson brand - appropriate size for animal</td></tr><tr><td>Intravenous catheter, size 20 gauge</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc</td><td>SC-360097</td><td>Fluid and drug administration</td></tr><tr><td>Lactated Ringers Solution</td><td>Hospira</td><td>NDC 0409-7953-03</td><td></td></tr><tr><td>Macro IV drip set 15 drops/ml</td><td>Hospira</td><td>12672-28</td><td></td></tr><tr><td>Surgical gowns</td><td>Kimberly Clark</td><td>90142</td><td></td></tr><tr><td>Utility drapes</td><td>Kimberly Clark</td><td>89731</td><td></td></tr><tr><td>Adult laparotomy drape</td><td>Medline</td><td>DYNJP3004</td><td></td></tr><tr><td>Sterile surgical gloves</td><td>Cardinal Health (Allegiance)</td><td>22537-570</td><td>Size 7 - use appropriate size for surgeon</td></tr><tr><td>Needle mat - sterile</td><td>Medline</td><td>NC30MBR</td><td></td></tr><tr><td>Cautery pencil</td><td>Medline</td><td>ESPB 2000</td><td></td></tr><tr><td>Suction tubing</td><td>Medline</td><td>DYND50251</td><td></td></tr><tr><td>Suction tip; Yankauer</td><td>Medline</td><td>DYND50130</td><td></td></tr><tr><td>Suction cannister</td><td>Cardinal Health (Allegiance)</td><td>65651-220</td><td></td></tr><tr><td>Ameroid constrictors sizes 2.5mm -3.5mm</td><td>Research Instruments SW, Inc.</td><td>760-764-9411</td><td>Types: Stainless steel, titanium, or plastic</td></tr><tr><td>3-way stopcock</td><td>Cardinal Health (Allegiance)</td><td>455991</td><td>For chest tube</td></tr><tr><td>Stomach tube - 18 Fr</td><td>Cardinal Health (Allegiance)</td><td>DC4418</td><td>For chest tube</td></tr><tr><td>60cc syringe</td><td>Cardinal Health (Allegiance)</td><td>SY35060LL</td><td>For chest tube</td></tr><tr><td>3cc syringe</td><td>Cardinal Health (Allegiance)</td><td>SY35003LL</td><td>For post-op analgesia injection</td></tr><tr><td>Skin stapler - 35W</td><td>Ethicon&amp;nbsp; Endo-Surgery</td><td>PMW 35</td><td>skin closure</td></tr><tr><td>Scalpel blade - size #10</td><td>Cardinal Health (Allegiance)</td><td>32295-010</td><td></td></tr><tr><td>Mini silicone vessel loops 1 Pak</td><td>Aspen Surgical</td><td>011001PBX</td><td>for elevating circumflex artery to apply ameroid</td></tr><tr><td>1 (polypropylene) taper</td><td>Ethicon</td><td>BB #8425H</td><td>close ribs</td></tr><tr><td>2-0 (polypropylene) taper</td><td>Ethicon</td><td>SH #8523</td><td>close muscle layers</td></tr><tr><td>4-0 (polypropylene) taper</td><td>Ethicon</td><td>BB #8581H</td><td>close pericardium</td></tr><tr><td>20 gauge needle</td><td>Cardinal Health (Allegiance)</td><td>81-200219</td><td>post-op analgesia injection</td></tr><tr><td>antimicrobial drape</td><td>3M</td><td>6640EZ</td><td></td></tr><tr><td>Finochietto rib retractor - infant size</td><td>Codman</td><td>50-8057</td><td></td></tr><tr><td>Potts-Smith scissors</td><td>Roboz</td><td>RS-6043</td><td></td></tr><tr><td>Babcock forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-8022</td><td></td></tr><tr><td>Pean hemostatic forceps curved</td><td>Codman</td><td>30-4565</td><td></td></tr><tr><td>scalpel handle #7</td><td>Codman</td><td>11-5534</td><td></td></tr><tr><td>Brown Adson forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-5231</td><td></td></tr><tr><td>Debakey forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-7562</td><td></td></tr><tr><td>Mayo scissors</td><td>Roboz</td><td>RS-6870SC</td><td></td></tr><tr><td>Metzenbaum dissecting scissors</td><td>Codman</td><td>36-5011</td><td></td></tr><tr><td>Metzenbaum dissecting scissors</td><td>Codman</td><td>36-5016</td><td></td></tr><tr><td>Mayo-Hegar needle holder</td><td>Codman</td><td>36-2017</td><td></td></tr><tr><td>Ryder needle holder</td><td>Codman</td><td>36-3012</td><td></td></tr><tr><td>Kelly hemostatic forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-7130</td><td></td></tr><tr><td>Reynolds hemostatic forcep</td><td>Roboz</td><td>RS-7211</td><td></td></tr><tr><td>Weitlander retractor</td><td>Roboz</td><td>RS-8612</td><td></td></tr><tr><td>Yorkshire domestic pigs</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

a chronic cardiac ischemia model in swine using an ameroid constrictor

Kalp-damar hastalıkları ölüm Amerika Birleşik Devletleri'nde bir numaralı nedeni kalır. Bu hastalıkların tedavisi için çok sayıda yaklaşım vardır ama yaklaşım ne olursa olsun, bir vivo modeli her tedavi test etmek için gereklidir. Domuz kalp-damar hastalıkları için en çok kullanılan büyük hayvan modellerinden biri. Onun kalp anatomi ve işlevi çok bir insan için benzer. Ameroid yerleştirme tekniği iskemik miyokard infarktüsü eğitim birçok yararlı uygulama olan kalp, yüzölçümü oluşturur. Bu model cerrahi araştırma, ilaç çalışmaları, görüntüleme teknikleri ve hücre tedavileri için kullanılmıştır.
Kalp iskemik bir alanda inducing birkaç yolu vardır. Her birinin avantajları ve dezavantajları vardır, ancak en çok kullanılan teknik bir ameroid yılanı yerleşimini kalır. Ameroid kullanarak ana avantajları mevcut araştırma yaygınlık, onun durumu çeşitli ebat anatomisine uyacak ve dar için gemi boyutunu, nispeten basit bir işlem ve izleme post operatif cerrahidir korumak için harici bir aygıt yok olduğundan, en az düzeydedir. Bu inceleme ameroid yılanı yerleşim için uygun tekniği ayrıntılı bir özetini sağlar.

Ameroid yerleştirme ameliyatları tesisimizde bir iki yıllık süre içinde yapılan elde edilen verileri analiz sonra sağkalım oranı % 80 olmak bulduk. Yordamı 12-15 kg arasında ağırlıklı 25 Yorkshire domuzlar üzerinde gerçekleştirildi. 25 domuzlar 20 izleme yordamı, kaplama ve sonra kısa bir süre kapatma, 2 ağır kalp yetmezliği ve akciğer ödemi için ötenazi ve 1 takip grafisi sırasında anestezik bir ölümdü öldü 2 hayatta kaldı. Nekropsi yordamı 24 saat içinde ölmüş hayvanlar sol ventrikül hazır bir bölümünü ortaya koydu. Bu şüpheli ama ameroid varlığı nedeniyle ameroid Lümen beri müstehcen arter hala açık onaylanamadı. Kalp yetmezliği nedeniyle euthanized hayvanlardan elde edilen ameroids incelenmiş. 18 gün Lümen toplam kapanış oldu.
Hayatta kalan hayvanlar manyetik rezonans görüntüleme (kalp fonksiyonları ve iskemik alanının boyutunu ölçmek için MRG tarafından) 28 gün post-ameroid yerleşim, görüntüsü. Şekil 2 ve şekil 3 titanyum kaplı ameroid bir domuz ve bir plastik encased ameroid bir domuzla sırasıyla elde edilen MRI resimleri göster. Görüntüleme sonra ikinci Torakotomi bir hücre enjeksiyon veya sahte yordam için gerçekleştirildi. Hayvanlar 16 hafta post-ameroid yerleşim olarak uzun bir süre izledi.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56190/56190fig1.jpg"> 
Şekil 1: domuz görüntülerini kalp ameroid yerleştirme işlemi sırasında. (A) delikanlı, LCX ve kalın kafalı marjinal arter (OM) gösteren domuz kalbi görüntüsünü. (B) görüntü disseke LCX arter ameroid yerleşim önce. LCX çevresinde ameroid uygun yerleştirme yukarı veya kalp uzak karşı karşıya ameroid açılması ile (C) görüntüsü. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56190/56190fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56190/56190fig2.jpg"> 
Şekil 2: MRG görüntüsü domuz kalbi bir titanyum ile kaplı ameroid. Dört hafta sonra bir titanyum encased ameroid yılanı LCX arter üzerinde yerleşimini alınan bir domuz kalbi Mr görüntüsü. Titanyum tarafından oluşturulan yapıya ok gösterir. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56190/56190fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56190/56190fig3.jpg"> 
Şekil 3: MRG görüntüsü bir domuz kalbi bir plastik kaplı ameroid. Dört hafta sonra bir plastik encased ameroid yılanı LCX arter üzerinde yerleşimini alınan bir domuz kalbi Mr görüntüsü. Ok ameroid yılanı işaret eder. Hiçbir yapı görülmektedir. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56190/56190fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor at JoVE.com

A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor

Bir Ameroid yılanı kullanarak domuz kronik kalp iskemi modelinde

Bu iletişim kuralının amacı bir domuz modelinde bir koroner arter etrafında gecikmeli kısıtlayıcı aygıtı (bir ameroid yılanı) yerleşimini göstermektir. Bu cihaz yeni tanı görüntüleme teknikleri ve yeni tedavi yöntemleri eğitimi için yararlıdır kalp iskemik bir bölümünü oluşturur.

Cardiovascular disease remains the number one cause of mortality in the United States. There are numerous approaches to treating these diseases, but ...

a-chronic-cardiac-ischemia-model-in-swine-using-an-ameroid-constrictor

Research

JoVE Journal

Medicine

10.5K Görüntüleme.  National Institutes of Health. Bu iletişim kuralının amacı bir domuz modelinde bir koroner arter etrafında gecikmeli kısıtlayıcı aygıtı (bir ameroid yılanı) yerleşimini göstermektir. Bu cihaz yeni tanı görüntüleme teknikleri ve yeni tedavi yöntemleri eğitimi için yararlıdır kalp iskemik bir bölümünü oluşturur.

Video: A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One important prerequisite is a good understanding of all safety and efficacy aspects obtained in a large animal model that validly reflect the human scenario of myocardial infarction (MI). Pigs are widely used in this regard since their cardiac size, hemodynamics, and coronary anatomy are close to that of humans. Here, we present an effective protocol for using the porcine MI model using a closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. This approach is based on 90 min of myocardial ischemia, inducing large left ventricle infarction of the anterior, septal and inferoseptal walls. Furthermore, we present protocols for various measures of outcome that provide a wide range of information on the heart, such as cardiac systolic and diastolic function, hemodynamics, coronary flow velocity, microvascular resistance, and infarct size. This protocol can be easily tailored to meet study specific requirements for the validation of novel cardioregenerative biologics at different stages (i.e. directly after the acute ischemic insult, in the subacute setting or even in the chronic MI once scar formation has been completed). This model therefore provides a useful translational tool to study MI, subsequent adverse remodeling, and the potential of novel cardioregenerative agents.

This protocol describes the porcine myocardial infarction (MI) model using a 90 min closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. Furthermore, the protocol for several outcome parameters, such as cardiac function, hemodynamics, microvascular resistance, and infarct size, are also presented.

Domuzlar miyokard enfarktüsü ve Fonksiyonel Sonuç Değerlendirmesi

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

Tıp

Surgical Placement of Catheters for Long-term Cardiovascular Exercise Testing in Swine

This protocol describes the surgical procedure to chronically instrument swine and the procedure to exercise swine on a motor-driven treadmill. Early cardiopulmonary dysfunction is difficult to diagnose, particularly in animal models, as cardiopulmonary function is often measured invasively, requiring anesthesia. As many anesthetic agents are cardiodepressive, subtle changes in cardiovascular function may be masked. In contrast, chronic instrumentation allows for measurement of cardiopulmonary function in the awake state, so that measurements can be obtained under quiet resting conditions, without the effects of anesthesia and acute surgical trauma. Furthermore, when animals are properly trained, measurements can also be obtained during graded treadmill exercise.
Flow probes are placed around the aorta or pulmonary artery for measurement of cardiac output and around the left anterior descending coronary artery for measurement of coronary blood flow. Fluid-filled catheters are implanted in the aorta, pulmonary artery, left atrium, left ventricle and right ventricle for pressure measurement and blood sampling. In addition, a 20 G&#160;catheter is positioned in the anterior interventricular vein to allow coronary venous blood sampling.
After a week of recovery, swine are placed on a motor-driven treadmill, the catheters are connected to pressure and flow meters, and swine are subjected to a five-stage progressive exercise protocol, with each stage lasting 3 min. Hemodynamic signals are continuously recorded and blood samples are taken during the last 30 sec of each exercise stage.
The major advantage of studying chronically instrumented animals is that it allows serial assessment of cardiopulmonary function, not only at rest but also during physical stress such as exercise. Moreover, cardiopulmonary function can be assessed repeatedly during disease development and during chronic treatment, thereby increasing statistical power and hence limiting the number of animals required for a study.

Here we present a protocol to assess cardiopulmonary function in awake swine, at rest and during graded treadmill exercise. Chronic instrumentation allows for repeated hemodynamic measurements uninfluenced by cardiodepressive anesthetic agents.

Domuz uzun süreli Kardiyovasküler Egzersiz Testi için Kateter Cerrahi Yerleştirme

This protocol describes the surgical procedure to chronically instrument swine and the procedure to exercise swine on a motor-driven treadmill. Early ...

Surgical Swine Model of Chronic Cardiac Ischemia Treated by Off-Pump Coronary Artery Bypass Graft Surgery

Chronic cardiac ischemia that impairs cardiac function, but does not result in infarct, is termed hibernating myocardium (HM). A large clinical subset of coronary artery disease (CAD) patients have HM, which in addition to causing impaired function, puts them at higher risk for arrhythmia and future cardiac events. The standard treatment for this condition is revascularization, but this has been shown to be an imperfect therapy. The majority of pre-clinical cardiac research focuses on infarct models of cardiac ischemia, leaving this subset of chronic ischemia patients largely underserved. To address this gap in research, we have developed a well-characterized and highly reproducible model of hibernating myocardium in swine, as swine are ideal translational models for human heart disease. In addition to creating this unique disease model, we have optimized a clinically relevant treatment model of coronary artery bypass surgery in swine. This allows us to accurately study the effects of bypass surgery on heart disease, as well as investigate additional or alternate therapies. This model surgically induces single vessel stenosis by implanting a constrictor on the left anterior descending (LAD) artery in a young pig. As the pig grows, the constrictor creates a gradual stenosis, resulting in chronic ischemia with impaired regional function, but preserving tissue viability. Following the establishment of the hibernating myocardium phenotype, we perform off-pump coronary artery bypass graft surgery to revascularize the ischemic region, mimicking the gold-standard treatment for patients in the clinic.

This protocol presents a surgical large animal model of chronic, single vessel ischemia that results in regional abnormalities but does not create infarct, known as hibernating myocardium. Following establishment of chronic ischemia, animals are treated with off-pump LIMA-LAD coronary artery bypass graft surgery to revascularize the ischemic tissue.

Kronik kalp iskemi "Off-Pump" koroner arter Bypass greft cerrahisi ile tedavi cerrahi domuz modeli

Chronic cardiac ischemia that impairs cardiac function, but does not result in infarct, is termed hibernating myocardium (HM). A large clinical subset of ...

Standardized Model of Ventricular Fibrillation and Advanced Cardiac Life Support in Swine

Cardiopulmonary resuscitation after cardiac arrest, independent of its origin, is a regularly encountered medical emergency in hospitals as well as preclinical settings. Prospective randomized trials in human subjects are difficult to design and ethically ambiguous, which results in a lack of evidence-based therapies. The model presented in this report represents one of the most common causes of cardiac arrests, ventricular fibrillation, in a standardized setting in a large animal model. This allows for reproducible observations and various therapeutic interventions under clinically accurate conditions, hence facilitating the generation of better evidence and eventually the potential for improved medical treatment.

Cardiopulmonary resuscitation and defibrillation are the only effective therapeutic options during cardiac arrest caused by ventricular fibrillation. This model presents a standardized regimen to induce, assess, and treat this physiological state in a porcine model, thus providing a clinical approach with various opportunities for data collection and analysis.

Domuzda Standart Ventriküler Fibrilasyon Ve İleri Kardiyak Yaşam Desteği Modeli

Cardiopulmonary resuscitation after cardiac arrest, independent of its origin, is a regularly encountered medical emergency in hospitals as well as ...

Novel Percutaneous Approach for Deployment of 3D Printed Coronary Stenosis Implants in Swine Models of Ischemic Heart Disease

Minimally invasive methods for creating models of focal coronary narrowing in large animals are challenging. Rapid prototyping using three-dimensionally (3D) printed coronary implants can be employed to percutaneously create a focal coronary stenosis. However, reliable delivery of the implants can be difficult without the use of ancillary equipment. We describe the use of a mother-and-child coronary guide catheter for stabilization of the implant and for effective delivery of the 3D printed implant to any desired location along the length of the coronary vessel. The focal coronary narrowing was confirmed under coronary cineangiography and the functional significance of the coronary stenosis was assessed using gadolinium-enhanced first-pass cardiac perfusion MRI. We showed that reliable delivery of 3D printed coronary implants in swine models (n = 11) of ischemic heart disease can be achieved through repurposing mother-and-child coronary guide catheters. Our technique simplifies the percutaneous delivery of coronary implants to create closed-chest swine models of focal coronary artery stenosis and can be performed expeditiously, with a low procedural failure rate.

We describe a novel, cost-effective, and efficient technique for percutaneous delivery of three-dimensionally printed coronary implants to create closed-chest swine models of ischemic heart disease. The implants were fixed in place using a mother-and-child extension catheter with high success rate.

İskemik Kalp Hastalığının Domuz Modellerinde 3D Baskılı Koroner Stenoz İmplantlarının Konuşlandırılmasında Yeni Perkütan Yaklaşım

Minimally invasive methods for creating models of focal coronary narrowing in large animals are challenging. Rapid prototyping using three-dimensionally ...

An Intact Pericardium Ischemic Rodent Model

This protocol has shown that the pericardium and its contents play an essential anti-fibrotic role in the ischemic rodent model (coronary ligation to induce myocardial injury). The majority of pre-clinical myocardial infarction models require the disruption of pericardial integrity with loss of the homeostatic cellular milieu. However, recently a methodology has been developed by us to induce myocardial infarction, which minimizes pericardial damage and retains the heart&#39;s resident immune cell population. An improved cardiac functional recovery in mice with an intact pericardial space following coronary ligation has been observed. This method provides an opportunity to study inflammatory responses in the pericardial space following myocardial infarction. Further development of the labeling techniques can be combined with this model to understand the fate and function of pericardial immune cells in regulating the inflammatory mechanisms that drive remodeling in the heart, including fibrosis.

This protocol outlines the steps for inducing myocardial infarction in mice while preserving the pericardium and its contents.

Bozulmamış Bir Perikard İskemik Kemirgen Modeli

This protocol has shown that the pericardium and its contents play an essential anti-fibrotic role in the ischemic rodent model (coronary ligation to ...

Large Animal Model for Evaluating the Efficacy of the Gene Therapy in Ischemic Heart

Coronary artery disease is one of the significant causes of mortality and morbidity worldwide. Despite the progression of current therapeutics, a considerable proportion of coronary artery disease patients remain symptomatic. Gene therapy-mediated therapeutic angiogenesis offers a novel therapeutic method for improving myocardial perfusion and relieving symptoms. Gene therapy with different angiogenic factors has been studied in few clinical trials. Due to the novelty of the method, the progress of myocardial gene therapy is a continuous path from bench to bedside. Therefore, large animal models are needed for evaluating the safety and efficacy. The more the large animal model identifies the original disease and the endpoints used in clinics, the more predictable outcomes are from clinical trials. Here, we introduce a large animal model for evaluating the efficacy of the gene therapy in the ischemic porcine heart. We use clinically relevant imaging methods such as ultrasound imaging and 15H2O-PET. For targeting the gene transfers into the desired area, electroanatomical mapping is used. The aim of this method is: (1) to mimic chronic coronary artery disease, (2) to induce therapeutic angiogenesis at hypoxic areas of the heart, and (3) to evaluate the safety and efficacy of the gene therapy by using relevant endpoints.

Myocardial gene therapy for ischemic heart disease holds great promise for future therapeutics. Here, we introduce a large animal model for evaluating the efficacy of gene therapy in the ischemic heart.

İskemik Kalpte Gen Tedavisinin Etkinliğini Değerlendirmek İçin Büyük Hayvan Modeli

Coronary artery disease is one of the significant causes of mortality and morbidity worldwide. Despite the progression of current therapeutics, a ...

Myocardial Infarction by Percutaneous Embolization Coil Deployment in a Swine Model

Myocardial infarction (MI) is the leading cause of mortality worldwide. Despite the use of evidence-based treatments, including coronary revascularization and cardiovascular drugs, a significant proportion of patients develop pathological left-ventricular remodeling and progressive heart failure following MI. Therefore, new therapeutic options, such as cellular and gene therapies, among others, have been developed to repair and regenerate injured myocardium. In this context, animal models of MI are crucial in exploring the safety and efficacy of these experimental therapies before clinical translation. Large animal models such as swine are preferred over smaller ones due to the high similarity of swine and human hearts in terms of coronary artery anatomy, cardiac kinetics, and the post-MI healing process. Here, we aimed to describe an MI model in pig by permanent coil deployment. Briefly, it comprises a percutaneous selective coronary artery cannulation through retrograde femoral access. Following coronary angiography, the coil is deployed at the target branch under fluoroscopic guidance. Finally, complete occlusion is confirmed by repeated coronary angiography. This approach is feasible, highly reproducible, and emulates the pathogenesis of human non-revascularized MI, avoiding the traditional open-chest surgery and the subsequent postoperative inflammation. Depending on the time of follow-up, the technique is suitable for acute, sub-acute, or chronic MI models.

Myocardial infarction (MI) animal models that emulate the natural process of the disease in humans are crucial to understanding pathophysiological mechanisms and testing the safety and efficacy of new emergent therapies. Here, we describe an MI swine model created by deploying a percutaneous embolization coil.

Bir Domuz Modelinde Perkütan Embolizasyon Bobini Dağıtımı ile Miyokard Enfarktüsü

Myocardial infarction (MI) is the leading cause of mortality worldwide. Despite the use of evidence-based treatments, including coronary revascularization ...

Swine Models of Aneurysmal Diseases for Training and Research

Large animal models, specifically swine, are widely used to research cardiovascular diseases and therapies, as well as for training purposes. This paper describes two different aneurysmal swine models that may help researchers to study new therapies for aneurysmal diseases. These aneurysmal models are created by surgically adding a pouch of tissue to carotid arteries in swine. When the model is used for research, the pouch must be autologous; for training purposes, a synthetic pouch suffices.
First, the right external jugular vein (EJV) and right common carotid artery (CCA) must be surgically exposed. The EJV is ligated and a vein pouch fashioned from a short segment. This pouch is then sutured to an elliptical arteriotomy performed in the CCA. Animals must be kept heparinized during model creation, and local vasodilators may be used to decrease vasospasms. Once the suture is completed, correct blood flow should be inspected, checking for bleeding from the suture line and vessel patency. Finally, the surgical incision is closed by layers and an angiography performed to image the aneurysmal model.
A simplification of this aneurysmal carotid model that decreases invasiveness and surgical time is the use of a synthetic, rather than venous, pouch. For this purpose, a pouch is tailored in advance with a segment of a polytetrafluoroethylene (PTFE) prosthesis, one end of which is sutured close using polypropylene vascular suture and sterilized prior to surgery. This "sac" is then attached to an arteriotomy performed in the CCA as described. 
Although these models do not reproduce many of the physiopathological events related to aneurysm formation, they are hemodynamically similar to the situation found in the clinical setting. Therefore, they can be used for research or training purposes, allowing physicians to learn and practice different endovascular techniques in animal models that are close to the human system.

<meta charset="utf8"></head><body>Eğitim ve Araştırma için Anevrizmal Hastalıkların Domuz Modelleri

Description of two different aneurysmal swine models for neuroradiology training courses and research studies. This study provides evidence of the feasibility of these aneurysm porcine model creations and the reproducible methods that are close to the clinical setting.

Eğitim ve Araştırma için Anevrizmal Hastalıkların Domuz Modelleri

Large animal models, specifically swine, are widely used to research cardiovascular diseases and therapies, as well as for training purposes. This paper ...

Bir Ameroid yılanı kullanarak domuz kronik kalp iskemi modelinde

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Domuzlar miyokard enfarktüsü ve Fonksiyonel Sonuç Değerlendirmesi

Domuz uzun süreli Kardiyovasküler Egzersiz Testi için Kateter Cerrahi Yerleştirme

Kronik kalp iskemi "Off-Pump" koroner arter Bypass greft cerrahisi ile tedavi cerrahi domuz modeli

Domuzda Standart Ventriküler Fibrilasyon Ve İleri Kardiyak Yaşam Desteği Modeli

İskemik Kalp Hastalığının Domuz Modellerinde 3D Baskılı Koroner Stenoz İmplantlarının Konuşlandırılmasında Yeni Perkütan Yaklaşım

Bozulmamış Bir Perikard İskemik Kemirgen Modeli

İskemik Kalpte Gen Tedavisinin Etkinliğini Değerlendirmek İçin Büyük Hayvan Modeli

Bir Domuz Modelinde Perkütan Embolizasyon Bobini Dağıtımı ile Miyokard Enfarktüsü

Eğitim ve Araştırma için Anevrizmal Hastalıkların Domuz Modelleri

Eğitim ve Araştırma için Anevrizmal Hastalıkların Domuz Modelleri