Name: purification of viral dna for the identification of associated viral and cellular proteins
Uploaded: 2017-08-31T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 26 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Purification of Viral DNA for the Identification of Associated Viral and Cellular Proteins at JoVE.com

Bu yazının hazırlanmasında yardım için Hannah Fox anıyoruz. Bu eser NIH tarafından desteklenen R01AI030612 verin.

1. hücre kültürü, Viral enfeksiyon ve EdC etiketleme ( şekil 1) Aşağıdaki protokol virüsler ile çalışma gerektirir. Kurumunuzun için bakınız &#39; s biyo-güvenlik protokollerini virüsler ve diğer biyolojik ajanlar güvenli taşıma ile ilgili. Bu protokolün Pittsburgh Üniversitesi Kurumsal inceleme Kurulu tarafından kabul edildi.
<ol><li>Bir Konfluent 150 cm 2 doku kültürü şişesi MRC-5 hücre trypsinize ve hücreleri 100 mL DMEM artı % 10 içeren 600 cm 2 doku kültürü plakasına transfer FBS. Varlığında % 5 CO 2 3-4 gün confluency ve sabit faz ulaşmak için için 37 ° C'de kuluçkaya. Konfluent 600 cm 2 çanak ~ 7 x 10 7 hücreler içerir. Her koşul için 1 plaka ve her karşılık gelen negatif kontrol için 1 plaka hazırlayın. 
	Not: Bu sadece vDNA etiketli ve sonraki adımlar saf emin olmak için hücresel DNA ikileşmesi etkisizleştirmek için durağan faz hücre ulaşmalıdır. 
	Not: Her örnek ücretsiz bir negatif kontrol süresi noktası EdC ek olmadan ve aynı enfeksiyon koşulları kullanılarak hazırlanan etiketsiz gerektirir. 
	Not: Bu deneme sürümü ölçekli A tandem hücresel DNA'sı karşılaştırılabilir hücre büyüme, enfeksiyon, koşullar, etiketleme EdC kullanarak görüntüleme tarafından etiketleme için test etmek ve Puan zaman yapılmalıdır (see Adım 2).</li>
	<li>7 x 10 8 PFU HSV-1 7 ml seyreltik soğuk Tris-Buffered serum fizyolojik (TBS). Büyüme orta çıkarın ve 37 ° C'de saklayın Bulaştırmak için 7-mL sulandırılmış virüs MRC-5 hücreleri ve kaya oda sıcaklığında 1 h için ekleyin. Aşağıdaki adsorpsiyon, inoculum kaldırmak, 50 mL oda sıcaklığında TBS ile durulayın ve özgün büyüme orta yerine. Varlığında % 5 CO 2 37 ° C'de kuluçkaya. Bu adımı her deneysel durumu ve negatif kontrol yapılmalıdır. 
	Not: Artan EdC etiketleme HSV-1 mutantlar arızalı için viral dUTPase (UL50 gen) ve/veya urasil glycosylase (UL2 gen) ifade kullanılarak elde edilebilir. HSV-1 dUTPase düşük substrat özgüllüğü vardır ve birkaç nükleozit analogları 25 , 27 aktivasyonu düşürebilir.</li>
	<li>Etiketi viral genom EdC ile. Gelen genleri (1.3.1.), genleri (1.3.2.) veya viral çoğaltma çatal (1.3.3.) çoğaltma etiketlemek için yönergeleri izleyin. 
	Not: Tek adım 1.3.1, 1.3.2 veya 1.3.3 gelen genleri, çoğaltılmış genleri veya çoğaltma çatal sonraki adımlar sırasıyla analiz edilecek olup bağlı olarak yapılmalıdır. 
	Not: EdU veya f-ara EdU EdC için yedek olabilir. Nükleozit analogları toksisite izlenmeli ve en aza indirgemek.
	<ol><li>Kullanım prelabeled adım 1.2 enfeksiyonunda yürütmek ve adım 2'ye devam etmek için hisse senetleri veya 3 4 h içinde yazı çoğaltılmamış vDNA ( şekil 1A) araştırmak için enfeksiyon (HPI). 
		Not: yukarıda açıklanan protokol 25 kullanarak hisse senetleri prelabeled virüs hazırlayın. Virüs stokları herhangi bir kalıntı EdC kaldırmak için G-25 sütununu tarayarak geçti.</li>
		<li>Etiket kopyalayan vDNA 5-25 µM ekleyerek EdC için 2-4 h ( şekil 1B) enfekte hücreleri hücre kültür orta için. Eklemeden önce EdC seyreltik büyüme orta 1 mL.</li>
		Viral çoğaltma çatal, vDNA çoğaltma başlangıcından sonra etiketlemek için <li>(&#8805; 4 HPI), vDNA 5-25 µM ile çoğaltma darbe etiket EdC 5-20 dk için. Kovalamak için 3 x 25-100 µM 2´deoxycytidine içeren chase orta ile yıkayın (deoxyC) ve sonra chase orta bir ek 20-40 dakika ( şekil 1 c) huzurunda kuluçkaya. 
		Not: Kullanmadan önce 37 ° C ve % 5 CO 2 darbe ve chase orta equilibrated. 
		Not: darbe chase deneyler için bu hücreyi girmek ve onlar DNA çoğaltılıyor içine dahil edilebilir önce fosforile nükleozitler geçen süreyi dikkate almak önemlidir. Bu ampirik olarak belirlenmelidir. 
		Not: darbe chase deneyler çözünürlüğünü belirlemek için kullanılan deneysel koşullar altında viral çoğaltma oranını hesaplamak. Bu bir tek adım büyüme saat ders 26 sırasında viral genom kantitatif PCR tarafından belirlenebilir. 
		Not: Viral genom görüntüleme için adım 2'ye geçin ve viral genom arıtma için adım 3'e devam.</li>
	</ol></li></ol> 2. EdC görüntüleme etiketli DNA ( şekil 2A) Not: hücresel DNA deneyleri etiketli değildir doğrulamak için viral genom arıtma yöntemi ile tandem görüntüleme gerçekleştirmek yararlıdır. Görüntüleme etiketli vDNA doğası görselleştirmek için ve proteomik verileri doğrulamak için de kullanılabilir. Hücresel ve viral DNA desenleri boyama örnekleri şekil 3 ' te gösterilen.
<ol><li>Enfeksiyonlar taşımak ve EdC adım 1 kullanarak dışında gösterildiği gibi etiketleme coverslips büyüme orta 1 mL içeren bir 12-iyi doku kültürü tabak koşullara küçülttüm.</li>
	<li>1 mL % 3.7 hücrelerle düzeltme paraformaldehyde 1 x PBS RT., 15 dakika içinde Fiksasyon sonra durulama 2 x 1 mL % 3 BSA PBS ile hücreleri. 
	Dikkat: Paraformaldehyde kalıcı ya da ciddi yaralanmalara neden olabilir. Güvenlik önlemleri izleyin. 
	Not: Protokol burada durdu ve coverslips ikinci yıkamaya 4 ° c ilâ 3 gün saklanabilir için.</li>
	<li>Permeabilize 1 mL permeabilization arabellek içeren hücreleri [Tablo malzemeleri görmek] sallanan süre oda sıcaklığında 20 dk için.</li>
	<li>Durulama 1 mL % 3 BSA ve sonra oda sıcaklığında 30 dakika ile 1 mL % 3 BSA PBS içinde blok ile sallanan süre.</li>
	<li>Eklemek tıklayın tepki kokteyl 1 mL [Tablo malzemeleri görmek] kovalent Alexa Fluor 488 çekimlerine coverslips azid EdC için DNA etiketli. 30 dk için oda sıcaklığında sallanan süre kuluçkaya. Aspire edin ve durulama PBS ile iki kez 1 mL.</li>
	<li>Leke hücresel DNA ile sallanan süre bir 1:2,000 seyreltme Höchst içinde PBS, oda sıcaklığında 30 dk için 1 mL. Aspire edin ve durulama PBS ile iki kez 1 mL.</li>
	<li>Leke standartlarına göre birincil ve ikincil antikorlar ile dolaylı ayirt protokolleri 25. 
	Not: Etiketli vDNA ICP8, ICP4 veya UL42 ile colocalizes ve hücresel etiketli DNA ile Höchst leke colocalizes.</li>
	<li>Dağ coverslips slayta ve görüntü bir floresan mikroskop kullanarak hücreleri. 
	Not: Birkaç hafta için 4 ° C'de slaytlar depolanabilir.</li>
</ol> 3. VDNA ve ilişkili proteinler arıtma Not: Bu protokol çeşitli yönleri Leung ve ark. uyarlanmıştır 22 Not: tüm arabellekleri ve Kimyasalları kullanmadan önce buzda soğutulmuş ve tüm adımları buza aksi belirtilmedikçe yapılmalıdır.
<ol><li>Hasat çekirdeği. 
	Not: çekirdeklerin izolasyon önce formaldehit crosslink proteinler DNA için kullanılabilir. Daha sıkı yıkama koşulları daha sonra boncuk streptavidin kaplı üzerinde DNA arıtma sırasında kullanılabilir. CR içinSirbu vd. osslinking ve yıkama koşullara bakınız 21. <ol><li>20 mL çekirdek ayıklama arabellek (NF'leri) ile büyüme orta eski yerine koymak ve 4 ° C'de ara sıra sallanan ile 20 dk için kuluçkaya. Hücre çekirdeği içinde mikroskop görünür olacak.</li>
		<li>Çekirdeği kullanarak bir hücre sıyırıcı plaka scrape ve 50 mL konik tüp aktarmak. 2500 x g çekirdekleri cips, süpernatant atın için 4 ° c de 10 dakika santrifüj. 
		Not: mavi boyama çekirdeği hücrelerden yalıtım doğrulamak için kullanılabilir Trypan.</li>
		<li>Yavaşça 10 ml PBS, 15 mL konik tüp transferi nükleer Pelet çıkarmak ve cips 4 ° C. tamamen Kaldır PBS de 2500 x g, 10 dk centrifuging. 
		Not: Çekirdeklerin donmuş olabilir ve protokol bu noktada duraklatıldı. Bunu yapmak için yavaşça nükleer Pelet 500 resuspend buz gibi µL tampon ve bir etanol/kuru buz banyosu tüpte kuluçkaya. Çekirdeği-80 ° C'de dondurulmuş mağaza Kullanmadan, çekirdek, oda sıcaklığında erimek, hızlı bir şekilde aktarmak buz, 10 mL PBS, yavaşça karıştırın, 2500 x g 4 ° C'de 10 dakika aralıklarla tarafından cips için rock eklemek için ve tamamen PBS kaldırmak. Çekirdeği dondurma düşük verim neden olabilir.</li>
	</ol></li> <li>Kovalent eşlenik biotin azid EdC için etiketli vDNA.
	<ol><li>10 mL tıklayın tepki nükleer Pelet mix [Tablo malzemeleri görmek] yavaşça yukarı ve aşağı pipetting 5 kere ile 10 mL damlalıklı resuspend. 
		Not: Bu tıklayın tepki karışımda bulunan reaktifler belirtilen sıraya göre eklenir önemlidir.</li>
		<li>4 ° C'de 1 h için döndürme Döndürme sırasında hazırlamak ve arabellekleri B1, B2 ve B3 [bkz: Malzemeler tablo] chill.</li>
		<li>4 ° C. tamamen Kaldır'de 2500 x g, 10 dk centrifuging tarafından Pelet çekirdeği tepki karıştır'ı tıklatın ve yavaşça 10 mL PBS resuspending ve 4 de 2500 x g, 10 dk centrifuging Pelet yıkama ° C.</li>
		<li>Yavaşça 1 ml PBS nükleer Pelet ve transfer büyük pipet ucu kullanarak 1.5 mL microfuge Tube resuspend. Cips çekirdekler için 2.500 x 4 ° C. tamamen Kaldır PBS de g ve sıvı azot flaş donma, 10 dk centrifuging. 
		Not: Bu noktada protokol duraklatılmış ve donmuş çekirdeği saklanabilir sonraki lizis-80 ° C. donma çözülme yardımcı olur, dolayısıyla çekirdeklerin ne zaman adım 3.3 için aynı gün bile geçmeden dondurulmuş flaş önerilir.</li>
	</ol></li> <li>Çekirdeği lyse ve DNA parçası.
	<ol><li>Buz çekirdeği çözülme ve 500 µL arabellek B1 yukarı ve aşağı pipetting tarafından resuspend. 45 dakika süreyle buz üzerinde kuluçkaya</li>
		<li>Sonicate örnekleri 6 kere için 30 s her % 40 genlik 3 mm microtip sonda kullanarak. Buz 30 örnekleri yer s bakliyat arasında. Sonication sonra örnekleri görünmesi gereken açık, değil bulutlu. 
		Not: Sonication koşulları tek tek sonicators için optimize edilmelidir. Sonication koşulları optimize etmek ayrıntılı yönergeler için Leung ve ark. için başvurun 22.</li> <li>cips hücre artıkları 14.000 x g 4 ° C'de 10 dakika için de centrifuging tarafından Pelet boyutunu önemli ölçüde azaltmak gerekir. Süpernatant 100 µM hücre süzgeç aracılığıyla filtre ve aracılığıyla akış korumak.</li>
		<li>Ekle 500 µL arabellek B2 süzülmüş süpernatant. 900 µL Bu örnek için 3.4.2. adımda kullanılan.</li>
		<li>Bir aliquot DNA izolasyonu (50 µL veya 1/20 birim) için her durumun alıp 50 µL 2 x SDS-bikarbonat çözüm ekleyin [Tablo malzemeleri görmek]. DNA izolasyon Protokolü (Adım 3.6) devam.</li>
		<li>Her koşul giriş protein (50 µL veya 1/20 birim) için bir aliquot almak ve 50 µL 2 x Laemmli örnek arabellek eklemek, sıvı nitrojen içinde dondurmak ve depolamak-80 ° C. kullanımda adım 3.5.6.</li>
	</ol></li> <li>Bağlama biotinylated DNA streptavidin kaplı boncuklar.
	<ol><li>1.5 mL microfuge tüp boncuk Bulamaç 300 µL aktarma tarafından hazırlamak Streptavidin T1 manyetik boncuklar. Boncuk örnek başına bir tüp hazırlayın. Yıkama boncuk 3 x ile 1 mL arabellek B2 yanında vortexing resuspend, boncuk ayırmak için bir mıknatıs uygulamak ve yıkama arabellek aspirating. 
		Not: en yüksek düzeyde verim ve minimal arka plan bağlayıcı koşulları sonuç bağlama en iyi duruma getirilmiş. Deneysel Streptavidin T1 manyetik boncuklar özel boncuk yanı sıra diğer Streptavidin boncuk ve daha az arka plan bağlayıcı Streptavidin C1 boncuk daha önemli ölçüde daha fazla bir bağlama kapasitesine sahip olduğu belirlenmiştir ( şekil 4A ).</li>
		<li>Ekleyin 900 µL örnek adım 3.3.4. yıkanmış boncuk ve Döndür'ün gece saat 4'te ° C. 
		Not: örnek onlara eklendikten sonra girdap boncuk etmeyin. 
		Not: önemli miktarda DNA veya protein etiketlenmemiş negatif kontrol izole Eğer bu adım bir gecede 4 h için arka plan bağlayıcı azaltmak için azaltılabilir.</li>
	</ol></li> <li>Yıkama boncuk ve vDNA ve ilişkili proteinler elute. 
	Not: Bu filtre ipuçları için kalan adımları kullanmak için tavsiye edilir.
	<ol><li>Yer örnekleri süpernatant Kaldır, manyetik microfuge tüp raf içine yavaşça 1 ml arabellek B2, döndürme 4 ° C'de 5 dakika süreyle resuspend.</li>
		<li>Tekrarlama adım 3.5.1 üç kez.</li>
		<li>Örnekleri bir manyetik microfuge tüp raf içine yerleştirin, süpernatant kaldırmak, yavaşça 1 mL arabellek B3, resuspend ve 5 dakika süreyle 4 ° C'de döndürmek</li>
		<li>İlişkili DNA izolasyonu için yeni bir tüp transfer 100 µL boncuk karışıma (1/10 inci cilt). Bu tüp mıknatıs için geçerlidir, süpernatant kaldırmak, SDS-bikarbonat çözüm x 100 µL 1 boncuk resuspend ve DNA izolasyon Protokolü (Adım 3.6) devam.</li>
		<li>Kalan 900 µL boncuk karışımı adım 3.5.3 içeren tüp geçerlidir. mıknatıs için süpernatant kaldırmak ve protein ve DNA-protein kompleksleri elute için Laemmli örnek arabellek x 50 µL 2 boncuk resuspend.</li>
		<li>Kaynatın örnekleri 15 95 ° c min, girdap, hızlı spin microfuge ve mıknatıs uygulanır. Yeni tüp, flaş donma ve-80 mağazasında eluate transfer ° C. 
		Not: kullanım kap kilitleri tüpler pop sağlamak için süre kaynatma açın. 
		Not: Protokol bu noktada durdu ve örnekleri için birkaç hafta-80 ° C'de saklanabilir.</li>
		<li>Analiz protein örnekleri Coomassie mavi boyama, western Blot ya da Standart prosedürler 25 tarafından kütle spektrometresi. Temsilcisi-den sonuçlanmak göstermek şekil 4 ve şekil 5. 
		Not: protein verim için kütle spektrometresi yeterli olup olmadığını belirlemek için her örneğinin 7.5 µL analiz için Coomassie boyama mavi tarafından kullanılır ve Batı temsilcisi viral genom kurutma için 7,5 µL protein (ICP4, ICP8 veya UL42) ilişkili. Lysates adım 3.3.6 aynı hacmi. yanında giriş protein düzeyleri için denetime çalıştırılır. Kalan örnek (35 µL) sonra kitle tarafından analiz 25 daha önce açıklandığı gibi spektrometresi.</li>
	</ol></li> <li>DNA izolasyon <ol><li>adımları 3.3.5 örneklerinden kuluçkaya. ve 3.5.4. 65 ° c 4-16 h. çıkarmak için manyetik boncuklar, gerekirse örnek.</li>
		<li>Ayıklamak örnekleri ile 150 µL fenol: kloroform: izoamil alkol (PCI) ve sulu faz için yeni bir tüp transfer.</li>
		<li>100 µL ile kalan PCI ayıklamak Tris-EDTA (TE) ve sulu faz için yeni bir tüp ekleyin.</li>
		<li>Ayıklamak örnekleri ile 200 µL kloroform: izoamil alkol (24:1).</li>
		<li>Arındırmak PCR arıtma Kit üreticiye göre kullanarak sulu faz &#39; s protokolü. 
		Not: pH göstergesi arabellek PB ile örnek için eklendiğinde mor dönecek. 10 ve # eklemek181; L 3M NaOAc pH 5,0 örnek pH düşmesine.</li>
		<li>Bir yer kullanarak belirlemek DNA toplama. 
		Not: Bu protokol genellikle 100-400 ng boncuk bağlı DNA verir. Hiçbir DNA negatif kontrol içinde EdC değil eklendi adım 1. 3'eluate tespit edilmelidir.</li>
		<li>DNA'sı düşük bir DNA bağlamasında depolanan tüp 4 veya - 20 ° C ve gerçek zamanlı PCR veya yüksek işlem hacmi sıralama analizi için kullanılabilir.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol>
	<li>Knipe, D. M., Howley, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Fields virology. , (2013).</li><li>Engel, E. A., Song, R., Koyuncu, O. O., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Investigating+the+biology+of+alpha+herpesviruses+with+MS-based+proteomics.">Investigating the biology of alpha herpesviruses with MS-based proteomics.</a> Proteomics. 15, 1943-1956 (2015).</li><li>Wagner, L. M., DeLuca, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temporal+association+of+herpes+simplex+virus+ICP4+with+cellular+complexes+functioning+at+multiple+steps+in+PolII+transcription.">Temporal association of herpes simplex virus ICP4 with cellular complexes functioning at multiple steps in PolII transcription.</a> PloS One. 8, e78242 (2013).</li><li>Taylor, T. J., Knipe, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proteomics+of+herpes+simplex+virus+replication+compartments:+association+of+cellular+DNA+replication,+repair,+recombination,+and+chromatin+remodeling+proteins+with+ICP8.">Proteomics of herpes simplex virus replication compartments: association of cellular DNA replication, repair, recombination, and chromatin remodeling proteins with ICP8.</a> J Virol. 78, 5856-5866 (2004).</li><li>Fontaine-Rodriguez, E. C., Taylor, T. J., Olesky, M., Knipe, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proteomics+of+herpes+simplex+virus+infected+cell+protein+27:+association+with+translation+initiation+factors.">Proteomics of herpes simplex virus infected cell protein 27: association with translation initiation factors.</a> Virology. 330, 487-492 (2004).</li><li>Greco, T. M., Diner, B. A., Cristea, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Impact+of+Mass+Spectrometry-Based+Proteomics+on+Fundamental+Discoveries+in+Virology.">The Impact of Mass Spectrometry-Based Proteomics on Fundamental Discoveries in Virology.</a> Annu Rev Virol. 1, 581-604 (2014).</li><li>Conwell, S. E., White, A. E., Harper, J. W., Knipe, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+TRIM27+as+a+novel+degradation+target+of+herpes+simplex+virus+1+ICP0.">Identification of TRIM27 as a novel degradation target of herpes simplex virus 1 ICP0.</a> J Virol. 89, 220-229 (2015).</li><li>Suk, H., Knipe, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proteomic+analysis+of+the+herpes+simplex+virus+1+virion+protein+16+transactivator+protein+in+infected+cells.">Proteomic analysis of the herpes simplex virus 1 virion protein 16 transactivator protein in infected cells.</a> Proteomics. 15, 1957-1967 (2015).</li><li>Balasubramanian, N., Bai, P., Buchek, G., Korza, G., Weller, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physical+interaction+between+the+herpes+simplex+virus+type+1+exonuclease,+UL12,+and+the+DNA+double-strand+break-sensing+MRN+complex.">Physical interaction between the herpes simplex virus type 1 exonuclease, UL12, and the DNA double-strand break-sensing MRN complex.</a> J Virol. 84, 12504-12514 (2010).</li><li>Sampath, P., Deluca, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Binding+of+ICP4,+TATA-binding+protein,+and+RNA+polymerase+II+to+herpes+simplex+virus+type+1+immediate-early,+early,+and+late+promoters+in+virus-infected+cells.">Binding of ICP4, TATA-binding protein, and RNA polymerase II to herpes simplex virus type 1 immediate-early, early, and late promoters in virus-infected cells.</a> J Virol. 82, 2339-2349 (2008).</li><li>Amelio, A. L., McAnany, P. K., Bloom, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+chromatin+insulator-like+element+in+the+herpes+simplex+virus+type+1+latency-associated+transcript+region+binds+CCCTC-binding+factor+and+displays+enhancer-blocking+and+silencing+activities.">A chromatin insulator-like element in the herpes simplex virus type 1 latency-associated transcript region binds CCCTC-binding factor and displays enhancer-blocking and silencing activities.</a> J Virol. 80, 2358-2368 (2006).</li><li>Cliffe, A. R., Knipe, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Herpes+simplex+virus+ICP0+promotes+both+histone+removal+and+acetylation+on+viral+DNA+during+lytic+infection.">Herpes simplex virus ICP0 promotes both histone removal and acetylation on viral DNA during lytic infection.</a> J Virol. 82, 12030-12038 (2008).</li><li>Herrera, F. J., Triezenberg, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=VP16-dependent+association+of+chromatin-modifying+coactivators+and+underrepresentation+of+histones+at+immediate-early+gene+promoters+during+herpes+simplex+virus+infection.">VP16-dependent association of chromatin-modifying coactivators and underrepresentation of histones at immediate-early gene promoters during herpes simplex virus infection.</a> J Virol. 78, 9689-9696 (2004).</li><li>Kent, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=During+lytic+infection+herpes+simplex+virus+type+1+is+associated+with+histones+bearing+modifications+that+correlate+with+active+transcription.">During lytic infection herpes simplex virus type 1 is associated with histones bearing modifications that correlate with active transcription.</a> J Virol. 78, 10178-10186 (2004).</li><li>Oh, J., Fraser, N. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temporal+association+of+the+herpes+simplex+virus+genome+with+histone+proteins+during+a+lytic+infection.">Temporal association of the herpes simplex virus genome with histone proteins during a lytic infection.</a> J Virol. 82, 3530-3537 (2008).</li><li>Catez, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HSV-1+genome+subnuclear+positioning+and+associations+with+host-cell+PML-NBs+and+centromeres+regulate+LAT+locus+transcription+during+latency+in+neurons.">HSV-1 genome subnuclear positioning and associations with host-cell PML-NBs and centromeres regulate LAT locus transcription during latency in neurons.</a> PLoS Pathog. 8, e1002852 (2012).</li><li>Everett, R. D., Murray, J., Orr, A., Preston, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Herpes+simplex+virus+type+1+genomes+are+associated+with+ND10+nuclear+substructures+in+quiescently+infected+human+fibroblasts.">Herpes simplex virus type 1 genomes are associated with ND10 nuclear substructures in quiescently infected human fibroblasts.</a> J Virol. 81, 10991-11004 (2007).</li><li>Tang, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determination+of+minimum+herpes+simplex+virus+type+1+components+necessary+to+localize+transcriptionally+active+DNA+to+ND10.">Determination of minimum herpes simplex virus type 1 components necessary to localize transcriptionally active DNA to ND10.</a> J Virol. 77, 5821-5828 (2003).</li><li>Ishov, A. M., Maul, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+periphery+of+nuclear+domain+10+(ND10)+as+site+of+DNA+virus+deposition.">The periphery of nuclear domain 10 (ND10) as site of DNA virus deposition.</a> J Cell Biol. 134, 815-826 (1996).</li><li>Maroui, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Latency+Entry+of+Herpes+Simplex+Virus+1+Is+Determined+by+the+Interaction+of+Its+Genome+with+the+Nuclear+Environment.">Latency Entry of Herpes Simplex Virus 1 Is Determined by the Interaction of Its Genome with the Nuclear Environment.</a> PLoS Pathog. 12, e1005834 (2016).</li><li>Sirbu, B. M., Couch, F. B., Cortez, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monitoring+the+spatiotemporal+dynamics+of+proteins+at+replication+forks+and+in+assembled+chromatin+using+isolation+of+proteins+on+nascent+DNA.">Monitoring the spatiotemporal dynamics of proteins at replication forks and in assembled chromatin using isolation of proteins on nascent DNA.</a> Nat Protoc. 7, 594-605 (2012).</li><li>Leung, K. H., Abou El Hassan, M., Bremner, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+rapid+and+efficient+method+to+purify+proteins+at+replication+forks+under+native+conditions.">A rapid and efficient method to purify proteins at replication forks under native conditions.</a> BioTechniques. 55, 204-206 (2013).</li><li>Hobbs, W. E., DeLuca, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Perturbation+of+cell+cycle+progression+and+cellular+gene+expression+as+a+function+of+herpes+simplex+virus+ICP0.">Perturbation of cell cycle progression and cellular gene expression as a function of herpes simplex virus ICP0.</a> J Virol. 73, 8245-8255 (1999).</li><li>Lomonte, P., Everett, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Herpes+simplex+virus+type+1+immediate-early+protein+Vmw110+inhibits+progression+of+cells+through+mitosis+and+from+G(1)+into+S+phase+of+the+cell+cycle.">Herpes simplex virus type 1 immediate-early protein Vmw110 inhibits progression of cells through mitosis and from G(1) into S phase of the cell cycle.</a> J Virol. 73, 9456-9467 (1999).</li><li>Dembowski, J. A., DeLuca, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+recruitment+of+nuclear+factors+to+productively+replicating+herpes+simplex+virus+genomes.">Selective recruitment of nuclear factors to productively replicating herpes simplex virus genomes.</a> PLoS Pathog. 11, e1004939 (2015).</li><li>Dembowski, J. A., Dremel, S. E., DeLuca, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Replication-Coupled+Recruitment+of+Viral+and+Cellular+Factors+to+Herpes+Simplex+Virus+Type+1+Replication+Forks+for+the+Maintenance+and+Expression+of+Viral+Genomes.">Replication-Coupled Recruitment of Viral and Cellular Factors to Herpes Simplex Virus Type 1 Replication Forks for the Maintenance and Expression of Viral Genomes.</a> PLoS Pathog. 13, e1006166 (2017).</li><li>Bjornberg, O., Nyman, P. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+dUTPases+from+herpes+simplex+virus+type+1+and+mouse+mammary+tumour+virus+are+less+specific+than+the+Escherichia+coli+enzyme.">The dUTPases from herpes simplex virus type 1 and mouse mammary tumour virus are less specific than the Escherichia coli enzyme.</a> J Gen Virol. 77 (Pt 12), 3107-3111 (1996).</li><li>Chiou, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DNA-+and+protein-scission+activities+of+ascorbate+in+the+presence+of+copper+ion+and+a+copper-peptide+complex.">DNA- and protein-scission activities of ascorbate in the presence of copper ion and a copper-peptide complex.</a> J Biochem. 94, 1259-1267 (1983).</li><li>Kennedy, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+consequences+of+copper+complexes+used+to+catalyze+bioorthogonal+click+reactions.">Cellular consequences of copper complexes used to catalyze bioorthogonal click reactions.</a> J Am Chem Soc. 133, 17993-18001 (2011).</li><li>Snel, B., Lehmann, G., Bork, P., Huynen, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=STRING:+a+web-server+to+retrieve+and+display+the+repeatedly+occurring+neighbourhood+of+a+gene.">STRING: a web-server to retrieve and display the repeatedly occurring neighbourhood of a gene.</a> Nucleic Acids Res. 28, 3442-3444 (2000).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Bu iletişim kuralı, değilse dikkatle takip önemli ölçüde azaltılmış protein verim veya kirlenme hücresel DNA ile sonuçlanabilir birden çok adım içerir. Bu sabit hücre hücresel DNA etiketli saf ve değil emin olmak için tüm deneyler için kullanılır önemlidir. HSV-1 genomu sentez için hücresel DNA polimeraz kullanmaz çünkü bu hücresel DNA polimerazlar protein örnek yokluğunda tarafından onaylanabilir. EdC etiketleme ve çekirdekleri adımları hasat sırasında örnekleri her eşit işlenir ...

Virüs temel işlevlerini gerçekleştirecek ve bu nedenle enfeksiyon viral gen ekspresyonu, çoğaltma, tamir, Rekombinasyon ve ulaşım dahil olmak üzere önemli yönlerini kolaylaştırmak için ana bilgisayar etkenlere bağlı için sınırlı bir kapasiteye sahip. Bu ana faktörler faaliyetleri genellikle virally kodlanmış proteinler tarafından artar. Ayrıca, virüs algılama ve girişim tarafından hücresel yanıt için viral enfeksiyon kaçınmak gerekir. Bu nedenle, virüs ana etkileşimler enfeksiyon sonucu dikte. Büyük önem nasıl virüs viral işlemleri kolaylaştırmak için hücresel makine adapte hücresel ortamı alter anlaşılmasıdır. Özel ilgi hangi faktörler ve süreçleri viral genom bulaşıcı döngüsü boyunca hareket tespitidir.
Herpes simplex virüsü tip 1 (HSV-1) bir çift DNA virüs bulaşan insan nüfusunun önemli bir kısmı mahsur olduğunu. Enfeksiyonun ilk bir saat içinde nerede viral DNA (vDNA) çoğaltma1ile koordineli olarak viral gen ekspresyonu sıralı bir çağlayan ensues çekirdeği, viral genom girer. Çekirdek, genleri tabi epigenetik düzenleme, onarım ve rekombinasyon geçmesi ve öyle ki ilk döl virions 6 saat içinde üretilen capsids paketlenir. Viral genom ilişkili proteinler enfeksiyon seyri boyunca kapsamlı değerlendirme viral genom hareket ve hangi viral ve hücresel faktörler görmemizi sağlayacak süreçleri moleküler ayrıntılarını araştırmak için zemin enfeksiyon çeşitli aşamalarında yer alırlar.
Benzeşme arıtma ilişkili hücresel proteinler2,3,4,5 analizi için viral proteinlerin ana faktörler viral enfeksiyon katılan incelenmesi için önceki yöntemleri içerir , 6 , 7 , 8 , 9. bu deneyleri ana bilgisayar antiviral yanıt yanı sıra viral Kromatin değişiklik, gen ekspresyonu, enstrümantal hücresel faktörler katılan tanımlanması için edilmiş ve DNA tamir. Ancak, vDNA ilişkilendirmesiyle etkileşimleri bağlıdır ve proteomik yalnızca belirli bir viral faktör bir fonksiyonu olarak oluşan etkileşimleri içgörü sağlamak olup olmadığını tespit etmek zordur. Kromatin immunoprecipitation (ChIP) nerede belirli viral ve hücresel proteinler viral genom10,11,12,13,14 ' e bağlamak tanımlamak için kullanılan , 15 ve immunocytochemistry ile kombine floresan In situ hibridizasyon (balık) vDNA16,17,18ile, colocalize hücresel faktörler görselleştirme sağladı 19 , 20. bu deneyleri kayma ve temporal analiz için izin. Ancak, çok özel antikorlar, sınırlı hassasiyet ve virüs ana bilgisayar etkileşimleri önceki fikir ihtiyacını ihtiyacını sınırlamaları içerir. Bu nedenle bir yöntemi iPOND (yalıtım doğmakta olan DNA üzerinde proteinlerin)21 tarihinde göre geliştirilen ve seçmeli olarak etiket ve vDNA üzerinden arındırmak için aniPOND (hızlandırılmış yerli iPOND)22 viral genom tarafsız tanımlanması için hücreleri enfekte Kütle spektrometresi ile ilişkili proteinler. iPOND hücresel çoğaltma çatal dynamics soruşturma için vesile olmuştur.
Enfekte hücreleri üzerinden viral genom seçici arıtma için vDNA çoğaltılıyor modifiye ethynyl nükleozitler, 5-ethynyl-2´-deoxyuridine (EdU) veya 5-ethynyl-2´-kovalent tarafından takip deoxycytidine (EdC) (Resim 1), taşır konjugasyon için biotin azid viral genom ve ilişkili proteinler streptavidin kaplı boncuk (şekil 2B) üzerinde tek adım arıtma kolaylaştırmak için kimya'ı tıklatın. Önemlisi, enfeksiyonlar hücresel DNA ikileşmesi belirli vDNA etiketleme etkinleştirmek için nişanlı değil sabit hücrelerde, devam etmektedir. Ayrıca, HSV-1 enfeksiyonu hücre döngüsü tutuklama nedenleri ve hücresel DNA çoğaltma23,24engeller. Virüs önce gelen viral genom (şekil 1A) ile ilişkili protein analizi için enfeksiyon prelabeled ya da yeni sentezlenmiş vDNA (şekil 1B) ile ilişkili protein analizi için DNA ikileşmesi sırasında etiketli 25. Ayrıca, nabız chase analiz doğa viral çoğaltma çatal (şekil 1 c)26ile ilişkili proteinlerin araştırmak için kullanılabilir. Buna ek olarak, vDNA ethynyl-modified kovalent protein dinamiği (şekil 2A ve şekil 3) kayma soruşturma için bir fluorophore için Birleşik. Görüntüleme vDNA doğrudan görselleştirme için sağlar ve vDNA-protein etkileşimleri doğrulama için ücretsiz bir yaklaşımdır ve viral genom enfeksiyon boyunca izlemek için adapte edilebilir. Biz bu yaklaşımlar daha da herpesviral enfeksiyon, gecikme süresi ve yeniden etkinleştirme, dahil olmak üzere herhangi bir yönünü çalışmaya ve diğer DNA virüsleri çalışmaya değiştirilebiliyordu tahmin. Ayrıca, 5-ethynyl üridin ile etiketleme (AB) RNA viral genom analizi için izin verebilir.

<table><tbody><tr><td>MRC-5 cells</td><td>ATCC</td><td>CCL-171</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td><td>Gibco</td><td>26140-179</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco&#039;s Modified Eagle Medium (DMEM)</td><td>Gibco</td><td>12800-082</td><td>Substituted with 10% FBS, 2 mM L-glutamine, 12 mM&amp;nbsp; (for growth in flasks) or 30 mM (for growth in dishes) sodium-bicarbinate</td></tr><tr><td>600 cm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt; tissue culture dish</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>166508</td><td></td></tr><tr><td>Tris Buffered Saline (TBS), pH 7.4</td><td></td><td></td><td>137 mM NaCl, 5 mM KCl, 491 mM MgCl, 680 mM CaCl, 25.1 mM Tricine</td></tr><tr><td>HSV-1 stock</td><td></td><td></td><td>Stocks with titers greater than 1x10&lt;sup&gt;9&lt;/sup&gt; PFU/mL work best</td></tr><tr><td>Sephadex G-25&amp;nbsp; column (PD-10 Desalting Column)</td><td>GE Healthcare</td><td>17085101</td><td></td></tr><tr><td>Dimethyl sulfoxide (DMSO)</td><td>Fisher Scientific</td><td>D128-1</td><td></td></tr><tr><td>5&amp;acute;-Ethynyl-2&amp;acute;-deoxycytidine (EdC)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T511307</td><td>Dissolve in DMSO to prepare 40 mM stock, aliquot, and store at -20 &amp;deg;C&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>2&amp;acute;-deoxycytidine (deoxyC)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D3897</td><td>Dissolve in water to prepare 40 mM stock, aliquot, and store at -20 &amp;deg;C&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Nuclear Extraction Buffer (NEB)</td><td></td><td></td><td>Prepare fresh (20 mM Hepes pH 7.2, 50 mM NaCl, 3 mM MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;, 300 mM Sucrose, 0.5% Igepal)</td></tr><tr><td>Cell scraper</td><td>Bellco glass</td><td>7731-22000</td><td>Autoclave before use</td></tr><tr><td>Trypan blue solution</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>PBS, pH 7.2 (10x)</td><td></td><td></td><td>1.37 M NaCl, 27 mM KCl, 100 mM Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;, 18 mM KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; (dilute to 1x in sterile water before use)</td></tr><tr><td>Copper (II) sulfate pentahydrate (CuSO4-5H2O)</td><td>Fisher Scientific</td><td>C489</td><td>Prepare 100 mM stock and store at 4 &amp;deg;C for up to 1 month</td></tr><tr><td>(+) Sodium L-ascorbate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4034</td><td>Freshly prepare 100 mM stock and store on ice until use</td></tr><tr><td>Biotin azide</td><td>Invitrogen</td><td>B10184</td><td>Prepare 10 mM stock in DMSO, aliquot, and store at -20 &amp;deg;C for up to 1 year&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Click Reaction Mix</td><td></td><td></td><td>Prepare immediately before use by adding reagents in the indicated order (10 mL: 8.8 mL 1x PBS, 200 mL 100 mM CuSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;, 25mL 10 mM Biotin Azide, 1 mL 100 mM sodium ascorbate)&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Complete Protease Inhibitor Cocktail</td><td>Roche</td><td>11697498001</td><td>Dissolve in 1 mL water to prepare 50x stock, can store at 4 &amp;deg;C for up to 1 week, or directly add 1 pill to 50 mL buffer</td></tr><tr><td>Freezing buffer</td><td></td><td></td><td>Prepare fresh (7 mL 100% glycerol, 3 mL NEB, 200 &amp;mu;L 50x protease inhibitor)</td></tr><tr><td>Buffer B1</td><td></td><td></td><td>Prepare fresh (25 mM NaCl, 2 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8, 1% Igepal, 1x protease inhibitor)</td></tr><tr><td>Buffer B2</td><td></td><td></td><td>Prepare fresh (150 mM NaCl, 2 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8, 0.5% Igepal, 1x protease inhibitor)</td></tr><tr><td>Buffer B3</td><td></td><td></td><td>Prepare fresh (150 mM NaCl, 2 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8, 1x protease inhibitor)</td></tr><tr><td>Vibra Cell Ultra Sonic Processer equipped with a 3 mm microtip probe</td><td>Sonics</td><td>VCX 130</td><td></td></tr><tr><td>Cell strainer</td><td>Falcon</td><td>352360</td><td></td></tr><tr><td>Dynabeads MyOne Streptavidin T1</td><td>Life Technologies</td><td>65601</td><td></td></tr><tr><td>DynaMag-2 Magnet</td><td>Life Technologies</td><td>12321D</td><td></td></tr><tr><td>Mini-Tube Rotator</td><td>Fisher Scientific</td><td>260750F</td><td></td></tr><tr><td>2x Laemmli sample buffer</td><td></td><td></td><td>Mix 400 mg of SDS, 2 mL 100% glycerol, 1.25 mL of 1 M Tris (pH 6.8), and 10 mg of bromophenol blue in 8 mL water. Store at 4&amp;nbsp; &amp;deg;C for up to 6 months. Before use add 1 M DTT to a final concentration of 200 mM.</td></tr><tr><td>Cap locks for 1.5 mL tube</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9679153</td><td></td></tr><tr><td>Standard western blotting reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NOVEX Colloidal Blue Staining Kit</td><td>Invitrogen</td><td>LC6025</td><td></td></tr><tr><td>12-well tissue culture dish</td><td>Corning</td><td>3513</td><td></td></tr><tr><td>Coverslips</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-545-100</td><td>Autoclave before use</td></tr><tr><td>Microscope slides</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-552-5</td><td></td></tr><tr><td>16% paraformaldehyde</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>15710</td><td>Dilute to 3.7% in 1x PBS before use</td></tr><tr><td>Bovine serum albumin (BSA)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1605</td><td>Prepare 3% in 1x PBS</td></tr><tr><td>Permeabilization buffer (0.5% Triton-X 100)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td>Prepare 0.5% Triton-X 100 in 1x PBS</td></tr><tr><td>Click reaction cocktail - Click-iT EdU Alexa Fluor 488 Imaging Kit</td><td>Molecular Probes</td><td>C10337</td><td>Prepare according to manufactorer&#039;s protocol</td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Life Technologies</td><td>H1399</td><td>Prepare 10 mg/mL in water, can store at 4 &amp;deg;C for up to 1 year</td></tr><tr><td>Mouse anti-ICP8 primary antibody</td><td>Abcam</td><td>ab20194</td><td>Use a 1:200 dilution in 1x PBS</td></tr><tr><td>Mouse anti-UL42 primary antibody (2H4)</td><td>Abcam</td><td>ab19311</td><td>Use a 1:200 dilution in 1x PBS</td></tr><tr><td>Goat anti-mouse 594-conjugated secondary antibody</td><td>Life Technologies</td><td>a11005</td><td>Use a 1:500 dilution in 1x PBS</td></tr><tr><td>Immu-mount</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>9990402</td><td></td></tr><tr><td>2x SDS-bicarb solution</td><td></td><td></td><td>2% SDS, 200 mM NaHCO3</td></tr><tr><td>Phenol:chloroform:isoamyl alcohol</td><td></td><td></td><td>Mix 25:24:1 at least 1 day before use, store at 4 &amp;deg;C in the dark</td></tr><tr><td>chloroform:isoamyl alcohol</td><td></td><td></td><td>Mix 24:1 at least 1 day before use, store at room temperature in the dark</td></tr><tr><td>10x Tris EDTA (TE), pH 8.0</td><td></td><td></td><td>100 mM Tris, 10 mM EDTA (dilute to 1x before use)</td></tr><tr><td>Qiaquick PCR purification kit</td><td>Qiagen</td><td>28104</td><td></td></tr><tr><td>3 M sodium acetate pH 5.2</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Qubit 2.0 Fluorometer</td><td>Invitrogen</td><td>Q32866</td><td></td></tr><tr><td>Qubit dsDNA HS Assay Kit</td><td>Invitrogen</td><td>Q32851</td><td></td></tr><tr><td>Qubit assay tubes</td><td>Invitrogen</td><td>Q32856</td><td></td></tr><tr><td>Fluorescence microscope equipped with imaging software</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifuge for 1.5 mL tubes</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tabletop centrifuge for 15 and 50 mL tubes</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cell culture incubator</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biosafety cabinet</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heat blocks</td><td></td><td></td><td>65 &amp;deg;C and 95 &amp;deg;C</td></tr></tbody></table>

purification of viral dna for the identification of associated viral and cellular proteins

Bu iletişim kuralı kimliği için enfekte hücreleri DNA'dan (HSV-1) ilişkili herpes simplex virüsü tip 1 yalıtmak için viral ve hücresel proteinler tarafından kütle spektrometresi hedefidir. Her ne kadar viral genom ile etkileşim proteinler enfeksiyon sonucu belirlemede önemli rol oynarlar, viral genom ilişkili proteinler kapsamlı bir analiz daha önce mümkün değildi. Burada biz HSV-1 genleri enfekte hücreleri doğrudan arıtma sağlayan bir yöntem göstermek. Viral DNA çoğaltılıyor seçerek bir ALKİN fonksiyonel grup içeren değiştirilmiş nükleotit ile etiketlenir. Etiketli DNA sonra özellikle ve geri dönüşümsüz tagged biotin azid bir bakır (I) ile kovalent eki ile-katalize azid ALKİN reaksiyon cycloaddition ya da tıklayın. Biotin öğesini DNA streptavidin kaplı boncuk saflaştırılmış ve ilişkili protein eluted ve kütle spektrometresi tarafından tanımlanan. Bu yöntem seçici hedefleme ve yalıtım HSV-1 çoğaltma çatal veya karmaşık biyolojik ortamlardan bütün genleri etkinleştirir. Ayrıca, bu yaklaşım adaptasyon herpesviral enfeksiyon, çeşitli yönlerinin yanı sıra diğer DNA virüsleri genleri incelenmesi incelenmesi için izin verir.

Tıklayın kimya kullanım hücrelerden DNA arıtma için iPOND yöntemi21tarafından ilk başarılı oldu. İPOND hücresel çoğaltma çatal ilişkili proteinlerin tanımlanması için arındırmak için amaçtır. Bu teknik özellikle enfeksiyon sırasında vDNA protein etkileşimleri çalışmaya adapte olması. EdC (şekil 1), ile viral genom eşitlenmiş enfeksiyonlar ile kombine etiketlemek için yaklaşım manipülasyon seçici...

Watch this Scientific Journal Video about Purification of Viral DNA for the Identification of Associated Viral and Cellular Proteins at JoVE.com

Purification of Viral DNA for the Identification of Associated Viral and Cellular Proteins

Bu iletişim kuralı, özellikle etiket ve seçmeli olarak viral genom ilişkili proteinler karakterizasyonu için virüslü hücrelerinden viral DNA izole etmek için hedeftir.

Teşhis edilmesi için kullanılan ilişkili Viral ve hücresel proteinler Viral DNA'ın arıtma

The goal of this protocol is to isolate herpes simplex virus type 1 (HSV-1) DNA from infected cells for the identification of associated viral and ...

purification-viral-dna-for-identification-associated-viral-cellular

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

13.4K Görüntüleme.  University of Pittsburgh School of Medicine. Bu iletişim kuralı, özellikle etiket ve seçmeli olarak viral genom ilişkili proteinler karakterizasyonu için virüslü hücrelerinden viral DNA izole etmek için hedeftir.

Video: Purification of Viral DNA for the Identification of Associated Viral and Cellular Proteins

Preparation of Viral DNA from Nucleocapsids

Viruses are obligate cellular parasites, and thus the study of their DNA requires isolating viral material away from host cell contaminants and DNA. Several downstream applications require large quantities of pure viral DNA, which is provided by this protocol. These applications include viral genome sequencing, where the removal of host DNA is crucial to optimize data output for viral sequences, and the production of new viral recombinant strains, where co-transfection of purified plasmid and linear viral DNA facilitates recombination.1,2,3 
This procedure utilizes a combination of extractions and density-based centrifugation to isolate purified linear herpesvirus nucleocapsid DNA from infected cells.4,5 The initial purification steps aim to isolate purified viral capsids, which contain and protect the viral DNA during the extractions and centrifugation steps that remove cellular proteins and DNA. Lysis of nucleocapsids then releases viral DNA, and two final phenol-chloroform steps remove remaining proteins. The final DNA captured from solution is highly concentrated and pure, with an average OD260/280 of 1.90. Depending on the quantity of infected cells used, yields of viral DNA range from 150-800 &mu;g or more. The purity of this DNA makes it stable during long-term storage at 4C. This DNA is thus ideally suited for high-throughput sequencing, high fidelity PCR reactions, and transfections. 
Prior to beginning the protocol, it is important to know the average number of cells per dish (e.g. an average of 8 x 106 PK-15 cells in a confluent 15 cm dish), and the titer of the viral stock to be used (e.g. 1 x 108 plaque-forming units per ml). These are necessary to calculate the appropriate multiplicity of infection (MOI) for the protocol.6 For instance, to infect one 15 cm dish of PK-15 cells with the above viral stock, at an MOI of 5, you would use 400 &mu;l of viral stock and dilute it with 3.6 ml of medium (total inoculation volume of 4 ml for one 15 cm plate).
Multiple viral DNA preparations can be prepared at the same time. The number of simultaneous preparations is limited only by the number of tubes held by the ultracentrifuge rotor (one per virus; see step 3.9 below). Here we describe the procedure as though being done for one virus.

We describe the process of isolating high purity herpesvirus nucleocapsid DNA from infected cells. The final DNA captured from solution is of high concentration and purity, making it ideally suited for high-throughput sequencing, high fidelity PCR reactions, and transfections to produce new viral recombinants.

Nucleocapsids gelen Viral DNA hazırlanması

Viruses are obligate cellular parasites, and thus the study of their DNA requires isolating viral material away from host cell contaminants and DNA. ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Isolation and Genome Analysis of Single Virions using 'Single Virus Genomics'

Whole genome amplification and sequencing of single microbial cells enables genomic characterization without the need of cultivation 1-3. Viruses, which are ubiquitous and the most numerous entities on our planet 4 and important in all environments 5, have yet to be revealed via similar approaches. Here we describe an approach for isolating and characterizing the genomes of single virions called 'Single Virus Genomics' (SVG). SVG utilizes flow cytometry to isolate individual viruses and whole genome amplification to obtain high molecular weight genomic DNA (gDNA) that can be used in subsequent sequencing reactions.

Single Virus Genomics (SVG) is a method to isolate and amplify the genomes of single virons. Viral suspensions of a mixed assemblage are sorted using flow cytometry onto a microscope slide with discrete wells containing agarose, thereby capturing the virion and reducing genome shearing during downstream processing. Whole genome amplification is achieved using multiple displacement amplification (MDA) resulting in genomic material that is suitable for sequencing.

&#39;Tek Virüs Genomik&#39; kullanarak Tek viryonlar İzolasyonu ve Genom Analizi

Whole genome amplification and sequencing of single microbial cells enables genomic characterization without the need of cultivation 1-3. Viruses, which ...

Affinity Purification of Influenza Virus Ribonucleoprotein Complexes from the Chromatin of Infected Cells

Like all negative-strand RNA viruses, the genome of influenza viruses is packaged in the form of viral ribonucleoprotein complexes (vRNP), in which the single-stranded genome is encapsidated by the nucleoprotein (NP), and associated with the trimeric polymerase complex consisting of the PA, PB1, and PB2 subunits. However, in contrast to most RNA viruses, influenza viruses perform viral RNA synthesis in the nuclei of infected cells. Interestingly, viral mRNA synthesis uses cellular pre-mRNAs as primers, and it has been proposed that this process takes place on chromatin1. Interactions between the viral polymerase and the host RNA polymerase II, as well as between NP and host nucleosomes have also been characterized1,2.
Recently, the generation of recombinant influenza viruses encoding a One-Strep-Tag genetically fused to the C-terminus of the PB2 subunit of the viral polymerase (rWSN-PB2-Strep3) has been described. These recombinant viruses allow the purification of PB2-containing complexes, including vRNPs, from infected cells. To obtain purified vRNPs, cell cultures are infected, and vRNPs are affinity purified from lysates derived from these cells. However, the lysis procedures used to date have been based on one-step detergent lysis, which, despite the presence of a general nuclease, often extract chromatin-bound material only inefficiently. 
Our preliminary work suggested that a large portion of nuclear vRNPs were not extracted during traditional cell lysis, and therefore could not be affinity purified. To increase this extraction efficiency, and to separate chromatin-bound from non-chromatin-bound nuclear vRNPs, we adapted a step-wise subcellular extraction protocol to influenza virus-infected cells. Briefly, this procedure first separates the nuclei from the cell and then extracts soluble nuclear proteins (here termed the "nucleoplasmic" fraction). The remaining insoluble nuclear material is then digested with Benzonase, an unspecific DNA/RNA nuclease, followed by two salt extraction steps: first using 150 mM NaCl (termed "ch150"), then 500 mM NaCl ("ch500") (Fig. 1). These salt extraction steps were chosen based on our observation that 500 mM NaCl was sufficient to solubilize over 85% of nuclear vRNPs yet still allow binding of tagged vRNPs to the affinity matrix.
After subcellular fractionation of infected cells, it is possible to affinity purify PB2-tagged vRNPs from each individual fraction and analyze their protein and RNA components using Western Blot and primer extension, respectively. Recently, we utilized this method to discover that vRNP export complexes form during late points after infection on the chromatin fraction extracted with 500 mM NaCl (ch500)3.

Influenza viruses replicate their RNA genome in association with host-cell chromatin. Here, we present a method to purify intact viral ribonucleoprotein complexes from the chromatin of infected cells. Purified viral complexes can be analyzed by both Western blot and primer extension of protein and RNA content, respectively.

Enfekte Hücre Kromatin gelen Gribi ribonükleoprotein Komplekslerinin Affinity Arıtma

Like all negative-strand RNA viruses, the genome of influenza viruses is packaged in the form of viral ribonucleoprotein complexes (vRNP), in which the ...

Purification and Visualization of Influenza A Viral Ribonucleoprotein Complexes

The influenza A viral genome consists of eight negative-sense, single stranded RNA molecules, individually packed with multiple copies of the influenza A nucleoprotein (NP) into viral ribonulceoprotein particles (vRNPs). The influenza vRNPs are enclosed within the viral envelope. During cell entry, however, these vRNP complexes are released into the cytoplasm, where they gain access to the host nuclear transport machinery. In order to study the nuclear import of influenza vRNPs and the replication of the influenza genome, it is useful to work with isolated vRNPs so that other components of the virus do not interfere with these processes. Here, we describe a procedure to purify these vRNPs from the influenza A virus. The procedure starts with the disruption of the influenza A virion with detergents in order to release the vRNP complexes from the enveloped virion. The vRNPs are then separated from the other components of the influenza A virion on a 33-70% discontinuous glycerol gradient by velocity sedimentation. The fractions obtained from the glycerol gradient are then analyzed on via SDS-PAGE after staining with Coomassie blue. The peak fractions containing NP are then pooled together and concentrated by centrifugation. After concentration, the integrity of the vRNPs is verified by visualization of the vRNPs by transmission electron microscopy after negative staining. The glycerol gradient purification is a modification of that from Kemler et al. (1994)1, and the negative staining has been performed by Wu et al. (2007).2

The genome of the influenza A virus consists of eight separate complexes of RNA and proteins, termed viral ribonucleoprotein complexes (vRNPs). This paper describes the glycerol gradient purification and transmission electron microscopy visualization of influenza A vRNPs.

İnfluenza A Viral ribonükleoprotein Kompleksleri saflaştırılması ve Görselleştirme

The influenza A viral genome consists of eight negative-sense, single stranded RNA molecules, individually packed with multiple copies of the influenza A ...

Biyoloji

Isolation of Viral Replication Compartment-enriched Sub-nuclear Fractions from Adenovirus-infected Normal Human Cells

During infection of human cells by adenovirus (Ad), the host cell nucleus is dramatically reorganized, leading to formation of nuclear microenvironments through the recruitment of viral and cellular proteins to sites occupied by the viral genome. These sites, called replication compartments (RC), can be considered viral-induced nuclear domains where the viral genome is localized and viral and cellular proteins that participate in replication, transcription and post-transcriptional processing are recruited. Moreover, cellular proteins involved in the antiviral response, such as tumor suppressor proteins, DNA damage response (DDR) components and innate immune response factors are also co-opted to RC. Although RC seem to play a crucial role to promote an efficient and productive replication cycle, a detailed analysis of their composition and associated activities has not been made. To facilitate the study of adenoviral RC and potentially those from other DNA viruses that replicate in the cell nucleus, we adapted a simple procedure based on velocity gradients to isolate Ad RC and established a cell-free system amenable to conduct morphological, functional and compositional studies of these virus-induced subnuclear structures, as well as to study their impact on host-cell interactions.

We provide a novel strategy to isolate viral replication compartments (RC) from adenovirus (Ad)-infected human cells. This approach represents a cell-free system that can help to elucidate the molecular mechanisms regulating viral genome replication and expression as well as regulation of viral-host interactions established at the RC.

Adenovirüs ile enfekte Normal İnsan Hücreleri Viral Çoğaltma Bölme zenginleştirilmiş Alt nükleer Kesirler izolasyonu

During infection of human cells by adenovirus (Ad), the host cell nucleus is dramatically reorganized, leading to formation of nuclear microenvironments ...

Combining Analysis of DNA in a Crude Virion Extraction with the Analysis of RNA from Infected Leaves to Discover New Virus Genomes

This metagenome approach is used to identify plant viruses with circular DNA genomes and their transcripts. Often plant DNA viruses that occur in low titers in their host or cannot be mechanically inoculated to another host are difficult to propagate to achieve a greater titer of infectious material. Infected leaves are ground in a mild buffer with optimal pH and ionic composition recommended for purifying most bacilliform Para retroviruses. Urea is used to break up inclusion bodies that trap virions and to dissolve cellular components. Differential centrifugation provides further separation of virions from plant contaminants. Then proteinase K treatment removes the capsids. Then the viral DNA is concentrated and used for next-generation sequencing (NGS). The NGS data are used to assemble contigs which are submitted to NCBI-BLASTn to identify a subset of virus sequences in the generated dataset. In a parallel pipeline, RNA is isolated from infected leaves using a standard column-based RNA extraction method. Then ribosome depletion is carried out to enrich for a subset of mRNA and virus transcripts. Assembled sequences derived from RNA sequencing (RNA-seq) were submitted to NCBI-BLASTn to identify a subset of virus sequences in this dataset. In our study, we identified two related full-length badnavirus genomes in the two datasets. This method is preferred to another common approach which extracts the aggregate population of small RNA sequences to reconstitute plant virus genomic sequences. This latter metagenomic pipeline recovers virus related sequences that are retro-transcribing elements inserted into the plant genome. This is coupled to biochemical or molecular assays to further discern the actively infectious agents. The approach documented in this study, recovers sequences representative of replicating viruses that likely indicate active virus infection.

Here we present a new approach to identify plant viruses with double-strand DNA genomes. We use standard methods to extract DNA and RNA from infected leaves and carry out next-generation sequencing. Bioinformatic tools assemble sequences into contigs, identify contigs representing virus genomes and assign genomes to taxonomic groups.

Ham Virion ayıklama DNA analizi yeni virüs genleri keşfetmek için virüslü yaprakları gelen RNA analizi ile birleştirerek

This metagenome approach is used to identify plant viruses with circular DNA genomes and their transcripts. Often plant DNA viruses that occur in low ...

Identification of Protein Interacting Partners Using Tandem Affinity Purification

A critical and often limiting step in understanding the function of host and viral proteins is the identification of interacting cellular or viral protein partners. There are many approaches that allow the identification of interacting partners, including the yeast two hybrid system, as well as pull down assays using recombinant proteins and immunoprecipitation of endogenous proteins followed by mass spectrometry identification1. Recent studies have highlighted the utility of double-affinity tag mediated purification, coupled with two specific elution steps in the identification of interacting proteins. This approach, termed Tandem Affinity Purification (TAP), was initially used in yeast2,3 but more recently has been adapted to use in mammalian cells4-8.
As proof-of-concept we have established a tandem affinity purification (TAP) method using the well-characterized eukaryotic translation initiation factor eIF4E9,10.The cellular translation factor eIF4E is a critical component of the cellular eIF4F complex involved in cap-dependent translation initiation10. The TAP tag used in the current study is composed of two Protein G units and a streptavidin binding peptide separated by a Tobacco Etch Virus (TEV) protease cleavage sequence. The TAP tag used in the current study is composed of two Protein G units and a streptavidin binding peptide separated by a Tobacco Etch Virus (TEV) protease cleavage sequence8. To forgo the need for the generation of clonal cell lines, we developed a rapid system that relies on the expression of the TAP-tagged bait protein from an episomally maintained plasmid based on pMEP4 (Invitrogen). Expression of tagged murine eIF4E from this plasmid was controlled using the cadmium chloride inducible metallothionein promoter.
Lysis of the expressing cells and subsequent affinity purification via binding to rabbit IgG agarose, TEV protease cleavage, binding to streptavidin linked agarose and subsequent biotin elution identified numerous proteins apparently specific to the eIF4E pull-down (when compared to control cell lines expressing the TAP tag alone). The identities of the proteins were obtained by excision of the bands from 1D SDS-PAGE and subsequent tandem mass spectrometry. The identified components included the known eIF4E binding proteins eIF4G and 4EBP-1. In addition, other components of the eIF4F complex, of which eIF4E is a component were identified, namely eIF4A and Poly-A binding protein. The ability to identify not only known direct binding partners as well as secondary interacting proteins, further highlights the utility of this approach in the characterization of proteins of unknown function.

Tandem affinity purification is a robust approach for the identification of protein binding partners. As proof of concept, this methodology was applied to the well-characterized translation initiation factor eIF4E to co-precipitate the host cell factors involved in translation initiation. This method is easily adapted to any cellular or viral protein.

Tandem Affinity Arıtma kullanarak Protein etkileşim Ortaklar belirlenmesi

A critical and often limiting step in understanding the function of host and viral proteins is the identification of interacting cellular or viral protein ...

In Vitro Selection of Aptamers to Differentiate Infectious from Non-Infectious Viruses

Virus infections have a major impact on society; most methods of detection have difficulties in determining whether a detected virus is infectious, causing delays in treatment and further spread of the virus. Developing new sensors that can inform on the infectability of clinical or environmental samples will meet this unmet challenge. However, very few methods can obtain sensing molecules that can recognize an intact infectious virus and differentiate it from the same virus that has been rendered non-infectious by disinfection methods. Here, we describe a protocol to select aptamers that can distinguish infectious viruses vs non-infectious viruses using systematic evolution of ligands by exponential enrichment (SELEX). We take advantage of two features of SELEX. First, SELEX can be tailor-made to remove competing targets, such as non-infectious viruses or other similar viruses, using counter selection. Additionally, the whole virus can be used as the target for SELEX, instead of, for example, a viral surface protein. Whole virus SELEX allows for the selection of aptamers that bind specifically to the native state of the virus, without the need to disrupt of the virus. This method thus allows recognition agents to be obtained based on functional differences in the surface of pathogens, which do not need to be known in advance.

We provide a protocol that can be generally applied to select aptamers that bind to infectious viruses only and not to viruses that have been rendered non-infectious by a disinfection method or to any other similar viruses. This opens the possibility of determining infectivity status in portable and rapid tests.

Enfeksiyöz ve Enfeksiyöz Olmayan Virüsleri Ayırt Etmek için Aptamerlerin İn Vitro Seçimi

Virus infections have a major impact on society; most methods of detection have difficulties in determining whether a detected virus is infectious, ...

Biyomühendislik

<meta charset="utf8"></head><body>SARS-CoV-2'nin Çift Raportör ve Multipleks Teknolojisi Kullanılarak Analizi

Profiling of Surface Protein Epitopes on Viral Particles by Multiplex Dual-Reporter Strategy

Membrane proteins on enveloped viruses play an important role in many biological functions involving virus attachment to target cell receptors, fusion of viral particles to host cells, host-virus interactions, and disease pathogenesis. Furthermore, viral membrane proteins on virus particles and presented on host cell surfaces have proven to be excellent targets for antivirals and vaccines. Here, we describe a protocol to investigate surface proteins on intact severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) particles using the dual-reporter flow cytometric system. The assay exploits multiplex technology to obtain a triple detection of viral particles by three independent affinity reactions. Magnetic beads conjugated to recombinant human angiotensin-converting enzyme-2 (ACE2) were used to capture viral particles from the supernatant of cells infected with SARS-CoV-2. Then, two detection reagents labeled with R-phycoerythrin (PE) or Brilliant Violet 421 (BV421) were applied simultaneously. As a proof-of-concept, antibody fragments targeting different epitopes of the SARS-CoV-2 surface protein Spike (S1) were used. The detection of viral particles by three independent affinity reactions provides strong specificity and confirms the capture of intact virus particles. Dose-dependency curves of SARS-CoV-2 infected cell supernatant were generated with replicate coefficient variances (mean/SD) &#706;14%. Good assay performance in both channels confirmed that two virus surface target protein epitopes are detectable in parallel. The protocol described here could be applied for (i) high-multiplex, high-throughput profiling of surface proteins expressed on enveloped viruses; ii) detection of active intact viral particles; and (iii) assessment of specificity and affinity of antibodies and antiviral drugs for surface epitopes of viral antigens.The application can be potentially extended to any type of extracellular vesicles and bioparticles, exposing surface antigens in body fluids or other liquid matrices.

<meta charset="utf8"></head><body>Yazar Gündemi: Yeni İmmünoyakalama ve Kütle Spektrometresi Teknikleri ile Antiviral Stratejilerin Geliştirilmesi

Here, we describe a newly developed multiplex fluorescent immunoassay that uses a dual-reporter flow cytometric system to concurrently detect two unique spike protein epitopes on intact severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) viral particles that had been captured by angiotensin-converting enzyme-2-coupled magnetic microspheres.

Viral Partiküller Üzerindeki Yüzey Protein Epitoplarının Multipleks Çift Raportör Stratejisi ile Profillenmesi

Membrane proteins on enveloped viruses play an important role in many biological functions involving virus attachment to target cell receptors, fusion of ...

Teşhis edilmesi için kullanılan ilişkili Viral ve hücresel proteinler Viral DNA'ın arıtma

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Nucleocapsids gelen Viral DNA hazırlanması

'Tek Virüs Genomik' kullanarak Tek viryonlar İzolasyonu ve Genom Analizi

Enfekte Hücre Kromatin gelen Gribi ribonükleoprotein Komplekslerinin Affinity Arıtma

İnfluenza A Viral ribonükleoprotein Kompleksleri saflaştırılması ve Görselleştirme

Adenovirüs ile enfekte Normal İnsan Hücreleri Viral Çoğaltma Bölme zenginleştirilmiş Alt nükleer Kesirler izolasyonu

Ham Virion ayıklama DNA analizi yeni virüs genleri keşfetmek için virüslü yaprakları gelen RNA analizi ile birleştirerek

Tandem Affinity Arıtma kullanarak Protein etkileşim Ortaklar belirlenmesi

Enfeksiyöz ve Enfeksiyöz Olmayan Virüsleri Ayırt Etmek için Aptamerlerin İn Vitro Seçimi

Viral Partiküller Üzerindeki Yüzey Protein Epitoplarının Multipleks Çift Raportör Stratejisi ile Profillenmesi

Viral Partiküller Üzerindeki Yüzey Protein Epitoplarının Multipleks Çift Raportör Stratejisi ile Profillenmesi