Viyana Genel Hastanesi ve Viyana Tıp Üniversitesi, Viyana Hepatik Hemodinamik Laboratuvarı'nın altyapısını sağlamaktadır. Viyana Hepatik Hemodinamik Laboratuvarı'nın önceki üyeleri ve iş arkadaşları, kurumumuzda HVPG ölçümü ve transjuguler karaciğer biyopsisi metodolojisini sürekli iyileştirmeye yardımcı olan değerli girdileri için bilgilendirilmelidir. Buna ek olarak, Viyana Hemodinamik Laboratuvarı'nın önemli bir parçası olan ve hastalara sürekli olarak mükemmel bakım sağlayan Gastroenteroloji ve Hepatoloji Bölümü hemşirelerine teşekkür ediyoruz.

Burada açıklanan protokol, Viyana Tıp Üniversitesi insan araştırma etik komitesinin yönergelerine uygundur.
1. Hazırlıklar
<ol><li>Dijital x-ışını floroskopi sistemi (Şekil 1A), bir monitör sistemi (Şekil1B), bir yazıcıya veya kayıt yazılımına bağlı bir basınç kaydedici ve dönüştürücü ( Şekil 1C) ve bir ultrason cihazı (Şekil 1D) ile donatılmışx-raykullanan prosedürler için özel /onaylı özel bir oda kullanın. Ayrıca, hasta bankın yanında steril bir çalışma alanı(Şekil 1E)için yeterli alan olduğundan emin olun.</li>
	<li>HVPG ölçümü ile KSS için ileri kronik karaciğer hastalığı (ACLD) şüphesi olan hastaları değerlendirin. Özellikle, aşağıdaki özelliklerden birine sahip hastalar HVPG ölçümüne tabi tutulabilir: trombositopeni <150 G/L, kesit görüntülemede portosystemik kollateraller, seçici olmayan betablocker tedavisine başlanmadan önce gastroözofageal varisler, assitler ve rezeksiyon için planlanan hepatik tümörler.</li>
	<li>İşlem için aşağıdaki kontrendikasyonları kullanın: (i), juguler veya kaval ven trombozu nedeniyle damar erişiminin olmaması, (ii) klinik olarak belirgin kanama bozuklukları (örneğin yaygın intravasküler koagülasyon), (iii) kontralteral pnömotoraks ve (iv) önemli kardiyak aritmiler.</li>
	<li>İşlemin amacı ve potansiyel riskleri hakkında bilgilendirildikten sonra hastanın sabitlenerek yazılı olarak bilgilendirilmiş onam vermesini sağlayın.</li>
	<li>İşlemin genel anestezi olmadan yapılması gerektiğini açıklayın. Bununla birlikte, endişeli hastalara düşük dozda midazolam (0.02 mg/kg vücut ağırlığına kadar) sunulabilir.</li>
	<li>Standart bir monitör sistemi kullanarak invaziv olmayan arteriyel kan basıncı ölçümü, nabız oksimetresi ve elektrokardiyografi ile hastanın yaşamsal belirtilerini izleyin.</li>
	<li>Basınç dönüştürücü setini steril salin çözeltisini bir basınç torbasında kullanarak yıkayın.</li>
	<li>Basınç dönüştürücüsünü kalibre edin (önceden kalibre edilmemişse, ölçümlere başlamadan önce harici bir basınç referansı karşısında kalibre edin, örneğin 13,6 cm H2O'nun 10 mm Hg'ye eşit olduğu bir su sütunu kullanarak).</li>
	<li>Transdüseri hastanın orta saksafon hattına nişan alarak sağ kulakçık seviyesine yerleştirin.</li>
	<li>Basınç kaydedici/kayıt yazılımını, basınç izlemelerini kaydetmeye hazır olacak şekilde hazırlayın.</li>
	<li>Gerekli tüm steril ekipmanların hazır olduğundan emin olun (bkz. Malzeme Tablosu).</li>
	<li>Hastadan hasta kürsüsünde bir destek pozisyonu almasını isteyin.</li>
	<li>Operatörün ellerini ve kollarını yıkamasını ve dezenfekte etmesine neden olun.</li>
	<li>Cerrahi kapak ve yüz maskesi, steril eldivenler ve steril bir ceket takin.</li>
	<li>Steril bir masa örtüsü kullanın ve merkezi venöz erişim için gerekli ekipman için steril bir çalışma alanı hazırlayın (Şekil 2A).</li>
</ol>2. Steril koşullar altında merkezi venöz erişim
<ol><li>Hastaya başını hafifçe sol tarafa çevirmesini söyleyin, ardından sağ ön ve lateral boyun bölgesini dezenfektan solüsyonu ile dezenfekte edin.</li>
	<li>Karotis üçgeninin etrafına cildi kaplayan steril havlular yerleştirin.</li>
	<li>Doğru iç juguler damarı ve uygun delinme bölgesini tanımlamak için ultrason probu (steril bir ABD probu kapak kılıfı ile kaplı) kullanın.</li>
	<li>Sonraki vasküler erişim alanına 21 G iğne ile sızın ve lokal anestezi uygulayın (lidokin% 2, 5 mL). Ardından, tam etkisi için 1-2 dakika bekleyin.</li>
	<li>Merkezi venöz erişim için gereken tüm malzemeleri hazırlayın (bkz. Malzeme Tablosu).</li>
	<li>7,5 F kateter indirgeyici kılım setinin ekipmanlarını kullanarak, ultrason kılavuzunu kullanarak iğneyi sağ iç juguler damara yerleştirin ve Seldinger tekniğini kullanarak kılavuz telleri iğneden ilerletin (Şekil 3A). NOT: HVPG ölçümünden sonra transjuguler biyopsi yapılması gerekiyorsa, daha büyük çaplı 10 F karaciğer biyopsi indeksleyici kılıf seti (ekstra 18 G iğne ve kılavuz tel ile) kullanılmalıdır.</li>
	<li>Dilatatörle yüklü damar erişim kılıfinin girişini kolaylaştırmak için bir bıçak 11 neşter kullanarak kılavuz tel boyunca 2-3 mm'lik bir kesi yapın.</li>
	<li>Dilatatörle yüklü damar erişimli perkütan kılıfi kılavuz telin üzerindeki iç juguler damara yerleştirin.</li>
	<li>Damar erişim kılıfinin kılavuz telini ve dilatatörünü çıkarın.</li>
	<li>Vasküler erişim kılıfasının sabit bir intravasküler pozisyonda kaldığından emin olun ve vasküler erişim kılıfinin enjeksiyon portunu yanal tarafa doğru yönlendirin (Şekil 3B). NOT: Dikiş veya bantlama gerekli değildir.</li>
</ol>3. Balon kateterin hepatik bir damara yerleştirilmesi
<ol><li>Balon kateterinin hepatik bir damar içine yerleştirilmesi için gerekli tüm malzemeleri hazırlayın (Şekil 2B).</li>
	<li>Balon kateterini kontrast ortam (boya) ile yıkayın ve salin çözeltisi içine batırılmış kateter ucu ile tekrarlayan insufflation/deflasyon ile balonun bütünlüğünü kontrol edin. Hava kabarcıkları oluşmamalıdır. NOT: Kateterin x-ray üzerindeki görünürlüğüne bağlı olarak, kateterin lümenini yıkamak için sadece steril salin veya seyreltilmiş boya da kullanabilirsiniz.</li>
	<li>Balon kateteri damar erişim kılıfine sokmadan önce steril tuzlu su çözeltisi ile dışarıdan nemlendirin.</li>
	<li>Balon kateterini floroskopik rehberlik altında alt kava damarına (IVC) ilerletin. Balon kateterin ucunu hastanın arkasına doğru hizalamak ve kateterin hafif dönüşleri genellikle sağ kulakçıktan IVC'ye ilerlemeyi sağlar. Hastaya derin nefes alma talimatı vermek bazı durumlarda yardımcı olabilir(Şekil 3B).</li>
	<li>Balon kateterini IVC'den hepatik damara ilerletin. Balon kateterin ucu sağa bakacak şekilde hepatik damarlar ve IVC kavşağının şüpheli bölgesine doğru tekrar tekrar hareket ederek hepatik damarlara erişmeye çalışın (Şekil 3C).</li>
	<li>Kateterin, serbest hepatik venöz basıncın (FHVP) IVC'ye açılmasından 2-4 cm mesafede tekrar tekrar ölçülmesini sağlayan kararlı bir konuma ve sıkışmış hepatik venöz basıncı (WHVP) kaydetmek için hepatik damarın lümeninde şişirilmiş balon için yeterli alana sahip olduğundan emin olun.</li>
	<li>Şişirilmiş balona hepatik damar distal görselleşene kadar balonu (balon lümenine yaklaşık 2 mL hava) ve kontrast madde enjeksiyonunu (vasküler lümene yaklaşık 5 mL) şişirerek damarın yeterli tıkanmasını (kama pozisyonu) kontrol edin (Şekil 3D).</li>
	<li>Kontrast ortamın durağanlığını gözlemleyin ve venöz lümenin balon tarafından yetersiz tıkanması veya damar-damar iletişiminin varlığı nedeniyle kontrast ortamın yıkanmasını hariç tutun. Önemli kontrast ortam yıkama gözlenirse, balon kateterini yeniden konumlandırmayı deneyin.</li>
	<li>Balonu söndür ve kateterin lümenini tuzlu suyla yıkayın.</li>
</ol>4. HVPG'yi değerlendirmek için hemodinamik okumalar
<ol><li>Balon kateterin vasküler lümenini bir infüzyon hattı kullanarak basınç dönüştürücüye bağlayın.</li>
	<li>Hepatik damarın açılmasından IVC'ye kadar 2-4 cm uçlu balonun ucuyla FHVP'yi kaydetmeye başlayın. Eğrinin dalga formu zaman içinde varyasyonlar olmadan kararlı olmalıdır. NOT: Kararlı değerler genellikle 15 sn'den sonra elde edilir.</li>
	<li>Balonu şişirin ve ölçüm zaman içinde hiçbir varyasyon olmadan sabit bir yatay çizgi haline gelene kadar WHVP'yi kaydetmeye devam edin. NOT: Kamalı basıncın kararlı izlemeleri genellikle >40 sn'den sonra elde edilir.</li>
	<li>Üç taraflı yüksek kaliteli okumalar elde etmek için FHVG (>15 s) ve WHVP (>40 s) ölçümünü en az üç kez tekrarlayın (Şekil 3E). NOT: Tek FHVP/WHVP okumaları arasında ≥2 mm Hg'lik önemli tutarsızlıklar gözlenirse ek ölçümler alınmalıdır. Öksürük, hareket etme veya hemodinamik kaydın ilgili zaman noktalarında konuşma gibi potansiyel eserlerin nedenlerine dikkat edin.</li>
	<li>IVC'de hepatik damarın ostyum seviyesinde ve doğru atriyal basınçta (RAP) rekor basınç.</li>
	<li>Kayıtları durdurun.</li>
	<li>Balon kateterini çıkarın.</li>
	<li>HVPG'nin (WHVP'den çıkarılan FHVP) 3 ölçümün ortalaması olarak hesaplayın. NOT: Ardışık olarak elde edilen HVPG okumaları arasında önemli farklılıklar ≥2 mm Hg farkları tespit edilirse ek ölçümler alınmalıdır.</li>
	<li>Transjuguler biyopsiye (adım 5.1) geçin veya kateter indirgeyici kılımını iç juguler damardan çıkarın. NOT: Sert bir kılavuz tel takılması, sonraki transjuguler karaciğer biyopsisi için aynı intrahepatik pozisyona ulaşmada yardımcı olabilir.</li>
	<li>Steril bir gazlı bez kullanarak en az 5 dakika boyunca iç juguler damarın vasküler yerleştirme bölgesinin üzerine basınç uygulayın.</li>
</ol>5. Transjuguler karaciğer biyopsisi için hazırlık
NOT: Transjuguler karaciğer biyopsisi elde etmek için iki farklı biyopsi metodolojisi kullanılabilir: aspirasyon (adım 6) veya çekirdek biyopsi (adım 7). Önce hangi sistemin kullanılacağına karar verin ve ardından 5.1 ila 5.3 adımlarına geçmeden önce uygun biyopsi iğne indeksleyici kılımını seçin). Alternatif olarak, çekirdek TJBLX setinin iğnesi aspirasyon kümesine de takılabilir (NOT: uygun çapları kullanın), bu da hepatik bir damara daha kolay sokulabilecek daha esnek bir çekirdek biyopsi sistemi ile sonuçlanır (NOT: bu yaklaşım burada ayrıntılı olarak açıklanmamıştır).
<ol><li>İlgili transjuguler karaciğer biyopsisi (TJLBX) setini hazırlayın (aspirasyon TJLBX: Şekil 4A-B; çekirdek TJLBX: Şekil 4C; Bkz. Malzeme Tablosu).</li>
	<li>Biyopsi iğne indeksleyici kılıfını steril salinle veya transjuguler aspirasyon karaciğer biyopsisi durumunda, daha iyi görselleştirme için kontrast madde ile yıkayın.</li>
	<li>Biyopsi iğne indeksleyici kılımını 3.4'te açıklanan teknikle aynı tekniği kullanarak hepatik bir damara ilerletin.</li>
	<li>Kullanılan biyopsi kümesine bağlı olarak, aspirasyon TJBX için adım 6.1'e veya çekirdek TJBX için 7.1 adımına geçin.</li>
</ol>6. Transjuguler aspirasyon karaciğer biyopsisi
<ol><li>Aspirasyon TJLBX iğnesini steril salinle yıkamak için 10 mL Luer-lock şırınga kullanın, ancak aspirasyonu kolaylaştırmak için şırıngada yaklaşık 3 mL bırakın.</li>
	<li>Biyopsi iğnesini, iğnenin ucu indeksleyici kılımının sonuna ulaşana kadar biyopsi iğnesi indeksleyici kılım boyunca hafifçe ilerletin. NOT: İğneyi ilerletirken herhangi bir kuvvet veya hızlı hareketten kaçının. Biyopsi iğnesinin daha kolay ilerlemesi için hastadan derin bir nefes almasını istemek, IVC ile hepatik damarlar arasındaki açıyı azaltacaktır.</li>
	<li>Hastadan nefesini tutmasını iste.</li>
	<li>10 mL Luer-lock şırıngayı kullanarak emiş uygulayın ve iğneyi karaciğer parenkimine ilerletin.</li>
	<li>Emme (negatif basınç) uygularken iğneyi geri çek.</li>
	<li>Hastaya normal nefes almaya devam etmesini tavsiye edin.</li>
	<li>İğneyi çıkarın (ancak iğne indeksleyici kılımını değil) ve karaciğer örneğini hasat edin. NOT: Karaciğer örneği genellikle iğnede değil şırıngada tutulur (Şekil 4D).</li>
	<li>Yeterli karaciğer örnekleri elde edilene kadar ek iğne geçişleri için 6.1 ile 6.6 arasında olan adımları tekrarlayın.</li>
	<li>Karaciğer kapsülünün delinmesini ekarte etmek için kateter indirgeyici kılıba 5-10 mL kontrast ortamı enjekte edin.</li>
	<li>Biyopsi iğne indeksleyici kılımını çıkarın.</li>
	<li>10 F karaciğer biyopsi seti introdüktör kılıfasını çıkarın ve steril gazlı bez kullanarak en az 5 dakika boyunca iç juguler damarın vasküler yerleştirme bölgesinin üzerine basınç uygulayın.</li>
</ol>7. TRANSJUGULER ÇEKIRDEK KARACIĞER BIYOPSISI
<ol><li>Çekim mekanizması kilitlenene kadar kavramayı çekerek çekirdek TJLBX iğnesini yükleyin. Çekirdek biyopsi iğnesini biyopsi iğnesi indeksleyici kılının içinden, iğnenin ucu indeksleyici kılının sonuna yaklaşana kadar hafifçe ilerletin. NOT: İğneyi ilerletirken herhangi bir kuvvet veya hızlı hareketten kaçının.</li>
	<li>Hastadan nefesini tutmasını isteyin.</li>
	<li>İğneyi karaciğer parenkimine ilerletin.</li>
	<li>Çekim mekanizmasının tetiğini çekerek çekirdek biyopsisini gerçekleştirin.</li>
	<li>Hastaya normal nefes almaya devam etmesini tavsiye edin.</li>
	<li>İğneyi çıkarın (ancak iğne indeksleyici kılımını değil) ve karaciğer örneğini hasat edin. Küçük bir iğne karaciğer örneğinin çıkarılmasına yardımcı olabilir (Şekil 4D).</li>
	<li>Yeterli karaciğer örnekleri elde edilene kadar ek iğne geçişleri için 7.1 ile 7.6 adımlarını tekrarlayın.</li>
	<li>Karaciğer kapsülünün delinmesini ekarte etmek için kateter indirgeyici kılımının yan bağlantı noktasına 5-10 mL kontrast ortam enjekte edin.</li>
	<li>Biyopsi iğne indeksleyici kılımını çıkarın.</li>
	<li>10 F karaciğer biyopsi seti introdüktör kılıfasını çıkarın ve steril gazlı bez kullanarak yaklaşık 5 dakika boyunca iç juguler damarın vasküler yerleştirme bölgesinin üzerine basınç uygulayın.</li>
</ol>

Thomas Reiberger, Cook Medical tarafından hibe ve malzeme desteğinin yanı sıra W.L. Gore & Associates'ten dersler için hibe desteği ve onur ödülü almıştır. Philipp Schwabl, Markus Peck-Radosavljevic ve Michael Trauner'in bu el yazması ile ilgili açıklayacak hiçbir şeyi yoktur. Mattias Mandorfer, W.L. Gore & Associates'ten konferanslar için onur ödülü aldı.

HVPG ölçümleri önemli kaynaklar gerektirirken ve basınç izlemelerinin okunmasında girişimsel becerilere ve uzmanlığa sahip kişisel eğitimli, prognozu geliştirir ve tedavi kararlarına rehberlik edebilir ve böylece kişiselleştirilmiş tıbbı kolaylaştırır. Ayrıca aynı seansta transjuguler rota üzerinden karaciğer biyopsisi örneklerinin güvenli bir şekilde elde etme imkanı da üçüncül bakım merkezlerinde hepatik hemodinamik laboratuvarların uygulanması lehine olan bir başka argümandır. ...

Sirozlu hastalar, mide veya özofagus varislerinden kaynaklanan assitler veya kanamalar gibi çoğunlukla portal hipertansiyon (PHT) ile ilgili komplikasyonlar geliştirme riski altındadır1,2,3. Hepatik ayrışma riski PHT2derecesi ile ilgilidir. Hepatik venöz basınç gradyanının (HVPG) ölçümü, sirozlu hastada portal venöz basıncı tahmin etmek, yani sinüzoidal portal hipertansiyonun şiddetini değerlendirmek için altın standarttır4. ≥6 mm Hg ila 9 mm Hg HVPG, portal basıncının yükseldiğini ('subklinik portal hipertansiyon') gösterirken, HVPG ≥10 mm Hg CSPH tanımlar. Bu protokol, ekipmanın ve prosedürün ayrıntılı bir açıklamasını sağlar ve ayrıca olası tuzakları vurgular ve sorun giderme için tavsiyeler sunar.
Klinik olarak, HVPG ölçümü endikedir (i) sinüzoidal portal hipertansiyon tanısını belirlemek için, (ii) KSS (HVPG ≥10 mm Hg) tanısı koyarak hepatik dekomitasyon riski olan hastaları tanımlamak, (iii) varis kanamasının primer veya sekonder profilaksisinde farmakolojik tedaviye rehberlik etmek ve (iv) kısmi hepatektomi sonrası hepatik başarısızlık riskini değerlendirmek için2,4. HVPG, karaciğer fibrozis / fonksiyonunun iyileştirilmesi ve / veya kötüleştirilmesi için yerleşik bir vekil belirteç olarak kullanılır, çünkü HVPG'deki bir azalma klinik olarak anlamlı bir faydaya dönüşür5, oysa daha yüksek HVPG değerleri artan varis kanama riski ile ilişkilidir6. Seçici olmayan beta-bloker (NSBB) veya etiyolojik tedaviler altındaki hastalarda HVPG'deki değişikliklere ilişkin gözlemlere dayanarak, HVPG'de % 10'luk bir azalma klinik olarak ilgili olarak kabul edilir7,8.
Bugüne kadar, HVPG ile benzer doğrulukta portal basıncının derecesini yansıtan alternatif, invaziv olmayan parametreler yoktur. HVPG aslında portal basıncını ölçmenin 'dolaylı' bir yolu olsa bile, sirozlu hastalarda 'doğrudan' ölçülen portal basıncını güçlü bir şekilde ilişkilendirir ve böylece doğru bir şekilde yansıtır9. Daha da önemlisi, HVPG ölçümleri, değerlendirilen karaciğer parankim miktarını en üst düzeye çıkarmak için bir balon kateteri kullanılarak yapılmalıdır10,11,12. HVPG ölçümleri invaziv, kaynak yoğun olmasına ve basınç okumalarının güvenilirliğini ve inandırıcılığını yorumlamada girişimsel beceri ve uzmanlık gerektirmesine rağmen, bu yöntem sirozlu hastalarda portal hipertansiyon tanısı ve izlenmesi için mevcut altın standarttır13,14,15.
Trombosit sayısı gibi basit laboratuvar değerleri CSPH olasılığını tahmin etmeye yardımcı olabilir. Bununla birlikte, trombosit sayısı veya trombosit sayısını içeren invaziv olmayan puanlar sınırlı tahmin değerine sahiptir16. Sirozlu hastalarda splenomegali17 veya portosystemik kollateral18 gösteren görüntüleme yöntemleri KSS varlığını göstermektedir, ancak portal hipertansiyonun gerçek derecesini ölçmek için yardımcı değildir. Karaciğer19 ve/veya dalak20'nin elastografisi gibi yeni non-invaziv görüntüleme araçları, KSS'nin varlığını yönetmek veya dışlamak için yararlıdır. Yine de, kullanılabilir yöntemlerin hiçbiri portal basıncı21'dekidinamik değişiklikleri doğrudan ölçemiyor.
HVPG'nin prognostik değerinin birkaç dönüm noktası çalışması ile altı çizilmiştir, bir HVPG ≥10 mm Hg (yani KSS) varis oluşumu için tahmine dayalı olduğunu gösteren8 (ve portal hipertansiyon22ile ilgili komplikasyonların gelişimi için , HVPG'nin (farmakolojik olarak indüklenen) bir düşüşü ise ilgili varis büyümesi riskini modüle eder23 ve dekomsasyon7. HVPG-response, NSBB'lerin (tekrarlayan) varis kanamasını önlemedeki etkinliği için kurulan tek taşıyıcıdır. HVPG ≤12 mm Hg değerine düşerse veya NSBB tedavisi sırasında %≥10-20 oranında azalırsa hastalar varis kanamalarından korunur ve sağkalım24,25artar. Benzer şekilde, HVPG-yanıtı da telafi sirozlu hastalarda assitlerin ve ilgili komplikasyonların insidansını azaltır5,26. Çeşitli çalışmalar HVPG güdümlü tedavi27 , 28,29,30,31,32kullanımını destekleyen kanıtlar sağlamıştır. Bu nedenle, yeterli deneyime sahip merkezlerde, HVPG yanıtı tedavi kararlarına rehberlik edebilir ve portal hipertansiyonu olan hastalar için kişiselleştirilmiş tıbbı kolaylaştırabilir.
Ayrıca, HVPG ölçümü, siroz ve / veya portal hipertansiyon için yeni tedavilerin etkinliğini değerlendiren kavram kanıtı çalışmaları için bir taşıyıcı uç nokta olarak hizmet edebilir, örneğin sorafenib33 , 34,simvastatin 35 ,36,taurin37veya emricasan38. Sonuçta, HVPG ölçümleri ayrıca HCC39 gelişimi ve karaciğer yetmezliği sonrası hepatik rezeksiyon40için risk hakkında önemli prognostik bilgiler sağlayabilir.
HVPG'yi ölçecek altyapı ikincil ve üçüncül bakım merkezlerinde hazır bulunmalıdır. HVPG ölçüm tekniği özel eğitim ve ekipman gerektirdiğinden, akademik ve nakil merkezlerinin hepatik hemodinamik bir laboratuvar kurarak portal hipertansiyonun son teknoloji tanı ve yönetimini kolaylaştırması rasyonel görünmektedir. Büyük hacimli merkezler yılda birkaç yüz HVPG ölçümü gerçekleştirir. Deneyimlerimize dayanarak, doğru HVPG ölçümleri yapmak için yeterli uzmanlık genellikle 50-100 gözetimli HVPG ölçümünden sonra elde edilir.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1628px;" width="1627">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:315px;">10 mL Luer-Lock syringe</td>
			<td style="width:335px;">Braun</td>
			<td style="width:317px;">REF 4617100V, LOT 17G03C8</td>
			<td style="width:661px;">Luer-Lock Syringe for connection with the aspiration biopsy set</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">10 mL Syringe 2x</td>
			<td>Braun</td>
			<td style="width:317px;">REF 4606108V</td>
			<td>Snonpyrogenic, nontoxic 10 mL syringe</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">10 F liver biopsy&#160; introducer sheath set</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF RCFW-10.0-38, REF G07600</td>
			<td>Percutaneous Sheath Introducer Set (TJBX), 10F Port, 13cm, Check-Flo Performer Introducer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">18 G needle for biopsy introducer sheat</td>
			<td>Arrow International</td>
			<td style="width:317px;">REF AN-04318</td>
			<td>Introducer Needle for TJBX Set, 18 G, 6.35 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">21 G needle</td>
			<td>Henke Sass Wolf</td>
			<td style="width:317px;">REF 0086, Fine-Ject 21Gx2&#34;</td>
			<td>Sterile injeciton needle, 21 Gx2&#34;, 0.8 x 50 mm, for local anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">3-way channels</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td style="width:317px;">BD Connecta Luer-Lok, REF 39402</td>
			<td>Three way channel with Luer-Lok connection system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">7.5 F catheter introducer sheath set</td>
			<td>Arrow International</td>
			<td style="width:317px;">REF SI_09875-E</td>
			<td>Percutaneous Sheath Introducer Set, 7.5 F Port</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Aspiration TJLBX set</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF RMT-16-51.0-TJL, REF G20521</td>
			<td>TJ Liver Access and Biopsy Needle Set (Aspiration Set), 9 F-45 cm, 16 G-50.5 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Balloon catheter</td>
			<td>Gerhard Pejcl Medizintechnik Austria</td>
			<td style="width:317px;">REF 500765B</td>
			<td>Ferlitsch HVPG Catheter, 7F-65cm, Balloon:2.5mL, Pressure 50-90 kPa, GW: 0.032&#34;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Blade 11 scalpel</td>
			<td>Medi-Safe Surgicals</td>
			<td style="width:317px;">MS Safety Scalpel REF /Batch 18012424</td>
			<td>11 blade safety scalpels, retractable, single use, 10 scalpels per package</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Blunt tip fill needle</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td style="width:317px;">REF 303129</td>
			<td>Sterile blunt tip fill needle, single use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Contrast media (dye)</td>
			<td>Dr. Franz K&#246;hler Chemie GmbH, Bensheim, GER</td>
			<td style="width:317px;">ZNR 1-24112</td>
			<td>Peritrast 300 mg Iod/mL, 50 mL, contrastmedia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Core TJLBX set</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF RMT-14XT-50.5-LABS-100, REF G08285</td>
			<td>TJ Needle Introducer and Bx-Needle 7 F-53.5 cm, 14 G-53.5 cm/20 mm, 18 G-60 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Digital x-ray fluoroscope system</td>
			<td>Siemens</td>
			<td style="width:317px;">Model No 07721710</td>
			<td>ARCADIS Varic, mobile x-ray fluoroscope system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Disinfectant solution</td>
			<td>Gebro Pharma</td>
			<td style="width:317px;">1-20413</td>
			<td>Isozid-H</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Face mask</td>
			<td>MSP Medizintechnik GmbH</td>
			<td style="width:317px;">REF HSO36984</td>
			<td>Surgical face mask from double fleece, with tie, 50 pieces</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Guide wire for biopsy introducer sheat</td>
			<td>Arrow International</td>
			<td style="width:317px;">REF AW-14732</td>
			<td>Marked Spring-Wire Guide, TJBX Set, 0.032&#34;, 0.81 mm, 68 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Infusion line</td>
			<td>Rosstec Medical Products b Cardea GmbH &#38; Co</td>
			<td style="width:317px;">REF 220010, 100m</td>
			<td>Infusion line, Luer-Lok for connection of balloon catheter and pressure transducer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Lidocaine 2%</td>
			<td>Gebro Pharma</td>
			<td style="width:317px;">Xylanaest, ZNR 17.792, 20mg/1mL (2%)</td>
			<td>Sterile vials Xylanest including 2% Lidocain hydrochloride for local anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Midazolame</td>
			<td>Roche</td>
			<td style="width:317px;">Dormicum, ZNr 1-18809, Midazolam 5mg/5mL</td>
			<td>Sterile vials Dormicum including Midazolam for sedation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Monitor system</td>
			<td>Datex-Ohmeda by GE</td>
			<td style="width:317px;">Type F-CMREC1</td>
			<td>Patient monitoring system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Patient bench</td>
			<td>Silerlen-MAQET</td>
			<td style="width:317px;">Model No 7474.00A</td>
			<td>Mobile patient bench for x-ray fluoroscopy</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pressure bag</td>
			<td>Ethox Corp</td>
			<td style="width:317px;">REF 4005</td>
			<td>Pressure Infuser Bag 500 mL</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pressure recorder</td>
			<td>Edwards Lifesciences</td>
			<td style="width:317px;">Ref T001631A, Lot 61202039</td>
			<td>TruWave 3 cc/150 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pressure transducer</td>
			<td>Edwards Lifesciences TM</td>
			<td style="width:317px;">REF T001631A</td>
			<td>Pressure Monitoring Set (1x), 3 cc/150 cm, TruWave TM</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Recording software&#160;</td>
			<td>Datex Ohmeda by GE</td>
			<td style="width:317px;">Software S/5 is property of Instrumentarium Corp of Datex-Ohmeda TM</td>
			<td>Datex-Ohmeda S/5TM Collect - Software to record pressure tracings of the patient monitor system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile coat</td>
			<td>Lohmann &#38; Rauscher International GmbH &#38; Co</td>
			<td style="width:317px;">REF 19351</td>
			<td>Surgical Gown, Different sizes, e.g. L-130 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile gauze</td>
			<td>Hartmann</td>
			<td style="width:317px;">REF 401798, 10x10cm gauze</td>
			<td>10 x 10 cm sterile gauze, 10 pieces per package</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile gloves</td>
			<td>Meditrade</td>
			<td style="width:317px;">REF 9021</td>
			<td>Gentle Skin sterile gloves, different sizes, e.g. 7.5</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile saline solution</td>
			<td>Fresenius Kabi</td>
			<td style="width:317px;">NaCl 0.9%, B009827 REV 03</td>
			<td>Physiologic Saline Solution 0.9% NaCl, 309 mosmol/L, pH-Wert: 4.5-7.0</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile saline vessel</td>
			<td>KLS Martin</td>
			<td style="width:317px;">REF K8A,&#160; 18/10 Jonas</td>
			<td>Sterilizable Metal Vessel for sterile saline</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile table cover</td>
			<td>Hartmann</td>
			<td style="width:317px;">REF 2502208</td>
			<td>Table Cover, Foliodrape 150 x 100 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile towel</td>
			<td>BARRIER by M&#246;lnlycke Health Care</td>
			<td style="width:317px;">REF 706900</td>
			<td>Adhesive OP-Towel, 100 x 100 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile US probe cover sheath</td>
			<td>Websinger</td>
			<td style="width:317px;">REF 07014</td>
			<td>Sterile ultrasound probe cover, 20 x 60 cm, inluding two sterie adhesive tapes</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Stiff guidewire</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF TSMG-35-180-4-LES, G46729</td>
			<td>Lunderquist Extra Stiff Wire Guide, 0.035&#34;-.89 mm, 180 cm, 4 cm flexible tip</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Surgical cap</td>
			<td>BARRIER by M&#246;lnlycke Health Care</td>
			<td style="width:317px;">REF 620500, PCS 100, Colour Green</td>
			<td>Surgical Cap</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ultrasound device</td>
			<td>FUJIFILM SonoSite</td>
			<td style="width:317px;">Model M-Turbo, REF P17000-17</td>
			<td>Mobile ultrasound system</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

measurement of the hepatic venous pressure gradient and transjugular liver biopsy

Burada, ileri kronik karaciğer hastalığı olan hastalarda hepatik venöz basınç gradyanı (HVPG) ölçümünün klinik prosedürünü ve ardından transjuguler biyopsi için bir talimatı açıklayan ayrıntılı bir protokol sunuyoruz. Lokal anestezi ve ultrason rehberliği altında, sağ iç juguler damara kateter indeksleyici kılıbı yerleştirilir. Floroskopik rehberlik kullanılarak, bir balon kateteri alt vena kavasına (IVC) ilerletilir ve büyük bir hepatik damar içine yerleştirilir. Balon konserve hepatik damarın çıkışını engellerken kontrast ortamı enjekte edilerek kateterin doğru ve yeterli kama pozisyonu sağlanır. Harici basınç dönüştürücüsüyü kalibre ettikten sonra, kamalı hepatik venöz basıncın (WHVP) triplikat kayıtları ve serbest hepatik venöz basınç (FHVP) ile sürekli basınç kayıtları elde edilir. FHVP ve WHVP arasındaki fark HVPG olarak adlandırılır ve klinik olarak anlamlı portal hipertansiyonu (KSS) gösteren 10 mm Hg ≥ değerlere sahip. Kateteri çıkarmadan önce, IVC'de aynı seviyede elde edilen basınç okumalarının yanı sıra doğru atriyal basınç kaydedilir.
Son olarak aynı damar yolu ile transjuguler karaciğer biyopsisi elde edilebilir. Farklı sistemler mevcuttur; bununla birlikte, özellikle siroz karaciğerleri için aspirasyon iğnelerine göre çekirdek biyopsi iğneleri tercih edilir. Yine, floroskopik rehberlik altında biyopsi iğne indeksleyici kılıt hepatik bir damar içine ilerletilir. Daha sonra, transjuguler biyopsi iğnesi indükleyici kılıftan hafifçe ilerletilir: (i) aspirasyon biyopsisi durumunda, iğne aspirasyon altında karaciğer parenkimine ilerletilir ve daha sonra hızlı bir şekilde çıkarılır veya (ii) çekirdek biyopsisi durumunda, kesme mekanizması parenkim içinde tetiklenir. Transjuguler biyopsi ile yeterli karaciğer örneği elde etmek için birkaç ayrı geçit güvenli bir şekilde gerçekleştirilebilir. Deneyimli ellerde, bu prosedürlerin kombinasyonu yaklaşık 30-45 dakika sürer.

İyi korunmuş karaciğer fonksiyonuna sahip telafi edilmiş hastalarda (yani, assitler veya varis kanaması gibi hepatik dekompansasyon öyküsü olmadan) ölçülen HVPG değerleri normal veya subklinik portal hipertansiyon aralığında (HVPG 6-9 mm Hg) olabilir. Bununla birlikte, telafi edilen hastalarda varis veya hepatik dekompansasyon gelişme riskinin arttığını gösteren KSS (HVPG ≥10 mm Hg) gelişebilir. Buna karşılık, özofagus veya mide varisli hastalar, HVPG genellikle KSS aralığındadır, eğer de...

Watch this Scientific Journal Video about Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy at JoVE.com

Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy

Burada, klinik olarak anlamlı portal hipertansiyonu teşhis etmek için altın standart olan hepatik venöz basınç gradyanının (HVPG) ölçümü için bir protokol sunuyoruz. Ayrıca, aynı seans içinde transjuguler karaciğer biyopsisinin nasıl yapıldığını anlatıyoruz.

Hepatik Venöz Basınç Gradyanı ve Transjuguler Karaciğer Biyopsisinin Ölçümü

Here we provide a detailed protocol describing the clinical procedure of hepatic venous pressure gradient (HVPG) measurement in patients with advanced ...

measurement-hepatic-venous-pressure-gradient-transjugular-liver

Research

JoVE Journal

Medicine

19.2K Görüntüleme.  Medical University of Vienna. Burada, klinik olarak anlamlı portal hipertansiyonu teşhis etmek için altın standart olan hepatik venöz basınç gradyanının (HVPG) ölçümü için bir protokol sunuyoruz. Ayrıca, aynı seans içinde transjuguler karaciğer biyopsisinin nasıl yapıldığını anlatıyoruz.

Video: Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy

Epidural Intracranial Pressure Measurement in Rats Using a Fiber-optic Pressure Transducer

Elevated intracranial pressure (ICP) is a significant problem in several forms of ischemic brain injury including stroke, traumatic brain injury and cardiac arrest. This elevation may result in further neurological injury, in the form of transtentorial herniation1,2,3,4, midbrain compression, neurological deficit or increased cerebral infarct2,4. Current therapies are often inadequate to control elevated ICP in the clinical setting5,6,7 . Thus there is a need for accurate methods of ICP measurement in animal models to further our understanding of the basic mechanisms and to develop new treatments for elevated ICP.
In both the clinical and experimental setting ICP cannot be estimated without direct measurement. Several methods of ICP catheter insertion currently exist. Of these the intraventricular catheter has become the clinical 'gold standard' of ICP measurement in humans8. This method involves the partial removal of skull and the instrumentation of the catheter through brain tissue. Consequently, intraventricular catheters have an infection rate of 6-11%9. For this reason, subdural and epidural cannulations have become the preferred methods in animal models of ischemic injury. 
Various ICP measurement techniques have been adapted for animal models, and of these, fluid-filled telemetry catheters10 and solid state catheters are the most frequently used11,12,13,14,15. The fluid-filled systems are prone to developing air bubbles in the line, resulting in false ICP readings. Solid state probes avoid this problem (Figure 1). An additional problem is fitting catheters under the skull or into the ventricles without causing any brain injury that might alter the experimental outcomes. Therefore, we have developed a method that places an ICP catheter contiguous with the epidural space, but avoids the need to insert it between skull and brain. 
An optic fibre pressure catheter (420LP, SAMBA Sensors, Sweden) was used to measure ICP at the epidural location because the location of the pressure sensor (at the very tip of the catheter) was found to produce a high fidelity ICP signal in this model. There are other manufacturers of similar optic fibre technologies13 that may be used with our methodology. Alternative solid state catheters, which have the pressure sensor located at the side of the catheter tip, would not be appropriate for this model as the signal would be dampened by the presence of the monitoring screw. 
Here, we present a relatively simple and accurate method to measure ICP. This method can be used across a wide range of ICP related animal models.

A novel technique to record the pressures within the skull is described. The minimally invasive method uses a fibre-optic pressure sensing system to accurately measure intracranial pressure (ICP) in anaesthetized rats without causing significant brain trauma. The technique may be used in a wide range of experimental models.

Bir Fiber optik Basıç kullanarak Sıçanlarda Epidural İntrakraniyal Basınç Ölçümü

Elevated intracranial pressure (ICP) is a significant problem in several forms of ischemic brain injury including stroke, traumatic brain injury and ...

Tıp

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as studies on graft preservation and ischemia-reperfusion injury 1,2, immunological responses 3,4, hemodynamics 5,6, and small-for-size syndrome 7. The rat OLT is among the most difficult animal models in experimental surgery and demands advanced microsurgical skills that take a long time to learn. Consequently, the use of this model has been limited. Since the reliability and reproducibility of results are key components of the experiments in which such complex animal models are used, it is essential for surgeons who are involved in rat OLT to be trained in well-standardized and sophisticated procedures for this model.
While various techniques and modifications of OLT in rats have been reported 8 since the first model was described by Lee et al. 9 in 1973, the elimination of the hepatic arterial reconstruction 10 and the introduction of the cuff anastomosis technique by Kamada et al. 11 were a major advancement in this model, because they simplified the reconstruction procedures to a great degree. In the model by Kamada et al., the hepatic rearterialization was also eliminated. Since rats could survive without hepatic arterial flow after liver transplantation, there was considerable controversy over the value of hepatic arterialization. However, the physiological superiority of the arterialized model has been increasingly acknowledged, especially in terms of preserving the bile duct system 8,12 and the liver integrity 8,13,14.
In this article, we present detailed surgical procedures for a rat model of OLT with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft after ex vivo liver resection. The reconstruction procedures for each vessel and the bile duct are performed by the following methods: a 7-0 polypropylene continuous suture for the supra- and infrahepatic vena cava; a cuff technique for the portal vein; and a stent technique for the hepatic artery and the bile duct.

Orthotopic liver transplantation in rats is an indispensable experimental model for biomedical research. Here we present our surgical procedures for orthotopic rat liver transplantation with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft.

Hepatik Arter İmar Kısmi Ortotopik Karaciğer Nakli Bir Rat Modeli Cerrahi İşlemleri

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

A Preclinical Murine Model of Hepatic Metastases

Numerous murine models have been developed to study human cancers and advance the understanding of cancer treatment and development. Here, a preclinical, murine pancreatic tumor model of hepatic metastases via a hemispleen injection of syngeneic murine pancreatic tumor cells is described. This model mimics many of the clinical conditions in patients with metastatic disease to the liver. Mice consistently develop metastases in the liver allowing for investigation of the metastatic process, experimental therapy testing, and tumor immunology research.

A preclinical, murine model of hepatic metastases performed via a hemispleen injection technique.

Karaciğer metastazları Klinik öncesi fare modeli

Numerous murine models have been developed to study human cancers and advance the understanding of cancer treatment and development. Here, a preclinical, ...

Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. However, due to the small size of the mouse, technical details of the intraoperative monitoring procedure suitable for the mouse were rarely described. Previously we have reported a monitoring procedure to obtain hemodynamic parameters for rats. Now, we adapted the procedure to acquire systemic and hepatic hemodynamic parameters in mice, a species ten-fold smaller than rats. This film demonstrates the instrumentation of the animals as well as the data acquisition process needed to assess systemic and hepatic hemodynamics in mice. Vital parameters, including body temperature, respiratory&#160;rate&#160;and heart&#160;rate were recorded throughout the whole procedure. Systemic hemodynamic parameters consist of carotid artery pressure (CAP) and central venous pressure (CVP). Hepatic perfusion parameters include portal vein pressure (PVP), portal flow rate as well as the flow rate of the common hepatic artery (table 1). Instrumentation and data acquisition to record the normal values was completed within 1.5 h. Systemic and hepatic hemodynamic parameters remained within normal ranges during this procedure.
This procedure is challenging but feasible. We have already applied this procedure to assess hepatic hemodynamics in normal mice as well as during 70% partial hepatectomy and in liver lobe clamping experiments. Mean PVP after resection (n= 20), was 11.41&#177;2.94 cmH2O which was significantly higher (P&#60;0.05) than before resection (6.87&#177;2.39 cmH2O). The results of liver lobe clamping experiment indicated that this monitoring procedure is sensitive and suitable for detecting small changes in portal pressure and portal flow rate. In conclusion, this procedure is reliable in the hands of an experienced micro-surgeon but should be limited to experiments where mice are absolutely needed.

This film demonstrates how to acquire systemic and hepatic hemodynamics in mice. The whole monitoring includes acquisition of vital parameters, systemic blood pressure, central venous pressure, common hepatic artery flow rate, and portal vein pressure as well as the portal flow rate in mice.

Farelerde Sistemik ve Karaciğer Hemodinamik Parametrelerin İzleme

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. ...

Measurement of the Pressure-volume Curve in Mouse Lungs

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential phenotypic changes are best assessed by measurement of the changes in lung elasticity. To best understand specific mechanisms underlying such pathologies in mice, it is essential to make functional measurements that can reflect the developing pathology. Although there are many ways to measure elasticity, the classical method is that of the total lung pressure-volume (PV) curve done over the whole range of lung volumes. This measurement has been made on adult lungs from nearly all mammalian species dating back almost 100 years, and such PV curves also played a major role in the discovery and understanding of the function of pulmonary surfactant in fetal lung development. Unfortunately, such total PV curves have not been widely reported in the mouse, despite the fact that they can provide useful information on the macroscopic effects of structural changes in the lung. Although partial PV curves measuring just the changes in lung volume are sometimes reported, without a measure of absolute volume, the nonlinear nature of the total PV curve makes these partial ones very difficult to interpret. In the present study, we describe a standardized way to measure the total PV curve. We have then tested the ability of these curves to detect changes in mouse lung structure in two common lung pathologies, emphysema and fibrosis. Results showed significant changes in several variables consistent with expected structural changes with these pathologies. This measurement of the lung PV curve in mice thus provides a straightforward means to monitor the progression of the pathophysiologic changes over time and the potential effect of therapeutic procedures.

Here we present a protocol to simply and reliably measure the lung pressure-volume curve in mice, showing that it is sufficiently sensitive to detect phenotypic parenchymal changes in two common lung pathologies, pulmonary fibrosis and emphysema. This metric provides a means to quantify the lung&#8217;s structural changes with developing pathology.

Fare Akciğerler Basınç-hacim Eğrisi Ölçümü

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential ...

Isolated Hepatic Perfusion as a Treatment for Liver Metastases of Uveal Melanoma

Isolated hepatic perfusion (IHP) is a procedure where the liver is surgically isolated and perfused with a high concentration of the chemotherapeutic agent melphalan. Briefly, the procedure starts with the setup of a percutaneous veno-venous bypass from the femoral vein to the external jugular vein. Via a laparotomy, catheters are then inserted into the proper hepatic artery and the caval vein. The portal vein and the caval vein, both supra- and infrahepatically, are then clamped. The arterial and venous catheters are connected to a heart lung machine and the liver is perfused with melphalan (1 mg/kg body weight) for 60 min. This way it is possible to locally perfuse the liver with a high dose of a chemotherapeutic agent, without leakage to the systemic circulation.
In previous studies including patients with isolated liver metastases of uveal melanoma, an overall response rate of 33-100% and a median survival between 9 and 13 months, have been reported. The aim of this protocol is to give a clear description of how to perform the procedure and to discuss IHP as a treatment option for liver metastases of uveal melanoma.

Here, we present a protocol how to perform an isolated liver perfusion (IHP) with melphalan and we also discuss IHP as a treatment option for liver metastases of uveal melanoma.

Uveal Melanom Karaciğer Metastazlı için bir tedavi olarak izole Karaciğer Perfüzyon

Isolated hepatic perfusion (IHP) is a procedure where the liver is surgically isolated and perfused with a high concentration of the chemotherapeutic ...

Generation of a Humanized Mouse Liver Using Human Hepatic Stem Cells

A novel animal model involving chimeric mice with humanized livers established via human hepatocyte transplantation has been developed. These mice, in which the liver has been repopulated with functional human hepatocytes, could serve as a useful tool for investigating human hepatic cell biology, drug metabolism, and other preclinical applications. One of the key factors required for successful transplantation of human hepatocytes into mice is the elimination of the endogenous hepatocytes to prevent competition with the human cells and provide a suitable space and microenvironment for promoting human donor cell expansion and differentiation. To date, two major liver injury mouse models utilizing fumarylacetoacetate hydrolase (Fah) and uroplasminogen activator (uPA) mice have been established. However, Fah mice are used mainly with mature hepatocytes and the application of the uPA model is limited by decreased breeding. To overcome these limitations, Alb-toxin receptor mediated cell knockout (TRECK)/SCID mice were used for in vivo differentiation of immature human hepatocytes and humanized liver generation. Human hepatic stem cells (HpSCs) successfully repopulated the livers of Alb-TRECK/SCID mice that had developed lethal fulminant hepatic failure following diphtheria toxin (DT) treatment. This model of a humanized liver in Alb-TRECK/SCID mice will have functional applications in studies involving drug metabolism and drug-drug interactions and will promote other in vivo and in vitro studies.

Here, we present a novel humanized mouse liver model generated in Alb-toxin receptor mediated cell knockout (TRECK)/SCID mice following the transplantation of immature and expandable human hepatic stem cells.

İnsan Karaciğer Kök Hücreler kullanma Insanlaşmış Fare Karaciğer Üretimi

A novel animal model involving chimeric mice with humanized livers established via human hepatocyte transplantation has been developed. These mice, in ...

Method of Direct Segmental Intra-hepatic Delivery Using a Rat Liver Hilar Clamp Model

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ischemia/reperfusion (I/R) injury with myriad negative consequences. Potential I/R injury in marginal organs destined for liver transplantation contributes to the current donor shortage secondary to a decreased organ utilization rate. A significant need exists to explore hepatic I/R injury in order to mediate its impact on graft function in transplantation. Rat liver hilar clamp models are used to investigate the impact of different molecules on hepatic I/R injury. Depending on the model, these molecules have been delivered using inhalation, epidural infusion, intraperitoneal injection, intravenous administration or injection into the peripheral superior mesenteric vein. A rat liver hilar clamp model has been developed for use in studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating I/R injury. The described model for rat liver hilar clamp includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic hepatic segment via a side branch of the portal vein, allowing for direct segmental hepatic delivery. Our approach is to induce ischemia in the left lateral and median lobes for 60 min, during which time the substance under study is infused. In this case, pegylated-superoxide dismutase (PEG-SOD), a free radical scavenger, is infused directly into the ischemic segment. This series of experiments demonstrates that infusion of PEG-SOD is protective against hepatic I/R injury. Advantages of this approach include direct injection of the molecule into the ischemic segment with consequent decrease in volume of distribution and reduction in systemic side effects.

A unique rat liver hilar clamp model was developed for studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating ischemia-reperfusion injury. This model includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic liver segment via a branch of the portal vein, allowing for direct hepatic delivery.

Bir Sıçan Karaciğer Hilar Kelepçe Modeli Kullanılarak Doğrudan Segmental İçi hepatik Dağıtım Yöntemi

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ...

Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. Research focusing on cardiovascular disease models, potential cardiovascular therapeutic targets or pharmaceutical agents requires assessment of systemic arterial pressure and heart rhythm changes. In situations where radio telemetry systems are not available or affordable, the technique of femoral artery cannulation is an alternative way to obtain intra-arterial pressure waveform recordings and systemic BP measurements. This technique is economical and can be performed with standard equipment in animal facilities. However, invasive arterial pressure recording requires cannulation of small arteries, which can be a challenging surgical skill. Here, we present step-by-step protocols for femoral artery cannulation procedures. Key procedures include the calibration of the data acquisition system, tissue dissection and femoral artery cannulation, and setup of the arterial cannulation system for pressure recording. Surface electrocardiography recording procedures are also included. We also present examples of BP recordings from normotensive and hypertensive rats. This protocol allows reliable direct recordings of systemic BP with simultaneous electrocardiography.

Here, we describe a setup for simultaneous recording of electrocardiography and intra-arterial blood pressure (BP) in experimental rats, which can be done with standard equipment in animal facilities and can be applied to physiological or pharmacological studies to investigate pathogenic or therapeutic mechanisms in cardiovascular medicine.

Eşzamanlı elektrokardiyografi kayıt ve invaziv kan basınç ölçüm sıçanlarda

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. ...

Measurement of Natural Killer Cell-Mediated Cytotoxicity and Migration in the Context of Hepatic Tumor Cells

Natural killer (NK) cells are a subset of the cytotoxic lymphocyte population of the innate immune system and participate as a first line of defense by clearing pathogen-infected, malignant, and stressed cells. The ability of NK cells to eradicate cancer cells makes them an important tool in the fight against cancer. Several new immune-based therapies are under investigation for cancer treatment which rely either on enhancing NK cell activity or increasing the sensitivity of cancer cells to NK cell-mediated eradication. However, to effectively develop these therapeutic approaches, cost-effective in vitro assays to monitor NK cell-mediated cytotoxicity and migration are also needed. Here, we present two in vitro protocols that can reliably and reproducibly monitor the effect of NK-cell cytotoxicity on cancer cells (or other target cells). These protocols are non-radioactivity-based, simple to set up, and can be scaled up for high-throughput screening. We also present a flow cytometry-based protocol to quantitatively monitor NK cell migration, which can also be scaled up for high-throughput screening. Collectively, these three protocols can be used to monitor key aspects of NK cell activity that are necessary for the cells&#39; ability to eradicate dysfunctional target cells.

Evasion of natural killer (NK) cell-mediated eradication by cancer cells is important for cancer initiation and progression. Here, we present two non-radioactivity-based protocols to evaluate NK cell-mediated cytotoxicity toward hepatic tumor cells. Additionally, a third protocol is presented to analyze NK cell migration.

Hepatik Tümör Hücreleri Bağlamında Doğal Öldürücü Hücre Aracılı Sitotoksisite ve GöçÖlçümü

Natural killer (NK) cells are a subset of the cytotoxic lymphocyte population of the innate immune system and participate as a first line of defense by ...