Bu araştırma, &quot;Sanal Karaciğer Ağ&quot; finanse Eğitim ve Araştırma Federal Bakanlığı (Bmbf) tarafından desteklenmiştir. Ben videoyu üreten ve ses kayıt için animasyon ve Isabel Jank yaratarak onların yardım için Jena Üniversitesi Hastanesi medya merkezinden Frank Schubert ve Rene GUMPERT teşekkür etmek istiyorum.

Konut ve yürütülen tüm işlemler Alman Hayvan Refahı Mevzuatına uygun vardı. 1. Sensörler Kalibrasyon (Sensörler Kalibrasyon için üreticinin talimatlarına uyun) 1.1) Millar kateter kalibrasyonu. 30 dakika önce dengelemek için (sıfırlar) ve kalibrasyon için steril su ya da tuzlu su içinde kateterin ucu ön-ıslatma. <ol><li> Köprü amplifikatör millar1 kanalına millar sensörünü bağlayın ve su sütununa millar sensör ucu takın. </li><li> 0 cmH2O O. su sütunu değerini ayarlayın Veri analiz yazılımı penceresinde, yükseltmek köprü seçin ve onu sıfır. Bazal değer 0 cmH2O ayarlanabilir. </li><li> 20 cmH2O O. su sütunu değerini ayarlayın Veri analiz yazılımı penceresi ilerlemeyi çalıştırın ve durdurun. Yükseltmek köprü penceresinde &quot;birimleri&quot; seçiniz, 2 O buna göre 0 ve 20 CMH taban ayarlamak. &lt;CMH &quot;birimi&quot; ayarlayınsub&gt; 2 O. </li><li> Aynı şekilde CAP ölçülmesi için millar2 kalibre (iki taban hattı 90 ve 110 cmH2O ayarlanır). </li></ol> 1.2) Kan akım probu kalibrasyonu <ol><li> Iyonu giderilmiş su içine sonda yerleştirin. Transonik akış prob sistemi ile prob bağlayın. </li><li> Veri analiz yazılımı penceresinde, Giriş akış probu sıfıra yükseltmek seçin. Birimleri ayarlayın. </li><li> &quot;Test kanalı&quot; sinyal toplamak için düğmeye basın: sinyal 3-4 bar varsa, bu sinyalin iyi olduğu anlamına gelir. Iyi bir sinyal elde edilir durumda, prosedür devam edilebilir. </li><li> Değeri kalibre edilmiş veya edilmemiş olup olmadığını &quot;sıfır kanal&quot; ve ölçek görmek için kanalı için düğmeye basın. </li><li> Daha sonra ölçüm için &quot;tedbir kanal&quot; için düğmeye basın. </li></ol> 2. Cerrahi Prosedür için Fare hazırlayın <ol><li> Indüksiyon odasında fare yerleştirin ve% 2 izofluran ile fare uyutmak ve0.3 ml / dakika oksijen. Fare ayak parmağı sıkıştırma çekme refleksi mevcut olmaması halinde işlemi gerçekleştirilebilir. </li><li> Sol boyun ve karın dahil cerrahi bölgelerde, kürk tıraş. </li><li> Ameliyat masasında fare yerleştirin ve kasetleri kullanarak sabitleyin. Işletme süresince kuruluğunu önlemek için gözlerin veteriner merhem kullanın. </li><li> Boyun operasyon alanının optimal pozlama için boyun altında bir gazlı bez yastık yerleştirin. </li><li> Operasyon alanı dezenfekte edin ve sadece açık cerrahi alanını terk fareyi kapsayacak şekilde sterilize Gauzes yerleştirin. </li></ol> 3. Vital Parametreler Ölçüm <ol><li> Deri altından fare pençeleri içine EKG iğneler takın. </li><li> Fare arkasına altında solunum sensörü yerleştirin. </li><li> Fare rektum içine, sıcaklık probu yerleştirin. </li><li> Tutanak sıcaklığı, EKG ve veri analizi yazılımı fare solunum hızı. </li></ol> S 4. Boyun Operasyonuystemic Kardiyovasküler İzleme 4.1) Gemi diseksiyonu <ol><li> Boyun orta hattı, klavikula orta noktası, mandibulanın açısını tanımlayın. </li><li> Orta çizginin sol tarafına 0.5cm olan klavikula orta noktaya mandibula açısı bir 2cm boyuna kesi yapmak. </li><li> , Submandibular bez disseke ters çevirin ve tuzlu batırılmış gazlı bez ile örtün. </li><li> , Juguler ven tespit teşrih ve daha sonra ligasyon ve sabitleme için ven altına üç 6-0 ipek sütür koyun. </li><li> , Sternokleidomastoid kas tespit digastricus&#39;un omohyoid ve arka karnının üstün karnından ayırmak ve karotis arter kolay maruz kalma bir ekartör ile çekin. </li><li> Karotis arter incelemek ve daha sonra ligasyon ve sabitleme için arterin altında üç 6-0 ipek sütür koyun. </li></ol> 4.2) Karotis arter kan akım ölçümü <ol><li> Transonic yerleştirin, karotis arter etrafında soruşturma sabit tutmak ve ultrason jeli veya tuzlu su kullanılarak kişiyi optimize. </li><li> Veri analiz yazılımı kullanılarak transonik cihazın küçük ekranda gösterildiği gibi karotis arter rekor kan akım hızı </li><li> Ölçümü tamamladıktan sonra probu çıkarın </li></ol> 4.3) Karotis arter basıncı ölçümü (CAP) <ol><li> Karotid arterin distal ucunu birbirine bağlamak ve yakın uca kelepçe. </li><li> Karotis arter etrafında 2 sabitleme sütür koyun. Kalmak dikiş için 10-0 proleni kullanın. </li><li> Geminin ön duvarında küçük bir kesi yapmak. </li><li> Millar kateter yerleştirin ve önceden yerleştirilmiş dikişler ile sabitleyin. </li><li> Veri analizi yazılımı CAP kaydedin. </li></ol> 4.4) Boyun ven kan akımı ölçümü <ol><li> Juguler ven kaldırın ve akış hızını ölçmek için transonik akış probu yerleştirin. </li><li> Veri işleme ve akış hızı kaydedin. </li></ol> 4.5) Santral venöz basınç ölçümü (CVP) <ol><li> Şahdamarından proksimal ucunu Kelepçe ve distal ucu Arter. </li><li> Kabın ön duvar microscissors kullanarak küçük bir kesik kesin. </li><li> Sıvı dolu kateter yerleştirin ve önceden yerleştirilmiş dikiş hatları ile sabitleyin. </li><li> Veri analizi yazılımı CVP kaydedin. </li></ol> Karaciğer Hemodinamiğin Edinme 5. Karın Çalışması 5.1) Gemi tanımlama <ol><li> Karın üzerinde enine kesi yapmak. </li><li> Sol tarafa bağırsakları Eventerate ve ıslak bir gazlı bez ile kaplayın. </li><li> Inferior vena kava, portal ven, ortak hepatik arter ve uygun hepatik arter tanımlayın. </li><li> Bütün izleme işlemi sırasında karın ve bağırsak her 5 dakika yüzeyinde bir ılık tuzlu su bırakın. </li></ol> Portal kan akışının 5.2) Ölçüm <ol><li> Portal ven teşrih. </li><li> Akış prob yerleştirirken, teknenin kaldırma sağlamak için, portal ven altında 6-0 ipek yerleştirin. </li><li> Portal ven etrafında transonik akış probu yerleştirin ve kan akış hızını ölçmek. </li><li> Portal ven kan akış hızını kaydedin. </li></ol> Ortak hepatik arter akış 5.3) Ölçme <ol><li> Dikkatli ortak hepatik arter ayır. </li><li> Teknenin kaldırma sağlamak için teknenin yaklaşık bir 6-0 ipek dikiş yerleştirin. </li><li> Arter etrafında akış probu yerleştirin. </li><li> Kendi kan akımını ölçmek ve veri elde. </li></ol> Portal ven basıncı 5.4) Ölçüm (PVP) <ol><li> Düz portal ven içine akıtır az yan dalları ile mezenterik ven, bir dalı seçin. </li><li> Seçilen mezenterik ven uzak ucunu Arter. Ligasyon bağırsak tüp yakın olduğundan emin olun. Onun küçük dalları bağlayan </li><li> 2 f yerleştirinven çevresinde 6-0 prolen sütür kullanarak ixing. Bu prosedürün kilit noktası ven bağlanarak zaman mezenterik arter dokunmamak için. </li><li> Portal ven proksimal ucunu sıkıştırın. </li><li> 10-0 prolen kullanılarak 2 kalmak sütür koyun. Kalmak dikiş ince mezenterik ven damar duvarına nüfuz etmelidir yana bazı kanama meydana gelecektir. </li><li> 45 derece açıyla eğik bir microscissor kullanarak ven küçük bir kesi yapmak. </li><li> Portal ven içine mezenterik ven aracılığıyla Millar kateter yerleştirin ve bunu düzeltmek </li><li> Portal ven basıncını kaydedin. Prosedürün sonunda, anestezi altında kanı akıtılarak kurban fareler. </li></ol>

<ol>
	<li>Albuszies, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+increased+cardiac+output+on+hepatic+and+intestinal+microcirculatory+blood+flow,+oxygenation,+and+metabolism+in+hyperdynamic+murine+septic+shock.">Effect of increased cardiac output on hepatic and intestinal microcirculatory blood flow, oxygenation, and metabolism in hyperdynamic murine septic shock.</a> Crit Care Med. 33 (10), 2332-2338 (2005).</li><li>Bernhard, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phosphatidylcholine+molecular+species+in+lung+surfactant:+composition+in+relation+to+respiratory+rate+and+lung+development.">Phosphatidylcholine molecular species in lung surfactant: composition in relation to respiratory rate and lung development.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 25 (6), 725-731 (2001).</li><li>Cheever, A. W., Warren, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Portal+vein+ligation+in+mice:+portal+hypertension,+collateral+circulation,+and+blood+flow.">Portal vein ligation in mice: portal hypertension, collateral circulation, and blood flow.</a> 18, 405-407 (1963).</li><li>Costa, G., Aguiar, B. G., Coelho, P. M., Cunha-Melo, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+increase+of+portal+pressure+during+the+acute+and+chronic+phases+of+murine+schistosomiasis+mansoni+and+its+reversibility+after+treatment+with+oxamniquine.">On the increase of portal pressure during the acute and chronic phases of murine schistosomiasis mansoni and its reversibility after treatment with oxamniquine.</a> Acta Trop. 89 (1), 13-16 (2003).</li><li>Cui, S., Shibamoto, T., Zhang, W., Takano, H., Kurata, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Venous+resistance+increases+during+rat+anaphylactic+shock.">Venous resistance increases during rat anaphylactic shock.</a> Shock. 29 (6), 733-739 (2008).</li><li>Geerts, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+three+research+models+of+portal+hypertension+in+mice:+macroscopic,+histological+and+portal+pressure+evaluation.">Comparison of three research models of portal hypertension in mice: macroscopic, histological and portal pressure evaluation.</a> Int. J. Exp. Pathol. 89 (4), 251-263 (2008).</li><li>Huang, H., Deng, M., Jin, H., Dirsch, O., Dahmen, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraoperative+vital+and+haemodynamic+monitoring+using+an+integrated+multiple-channel+monitor+in+rats.">Intraoperative vital and haemodynamic monitoring using an integrated multiple-channel monitor in rats.</a> Lab Anim. 44 (3), 254-263 (2010).</li><li>Krege, J. H., Hodgin, J. B., Hagaman, J. R., Smithies, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+noninvasive+computerized+tail-cuff+system+for+measuring+blood+pressure+in+mice.">A noninvasive computerized tail-cuff system for measuring blood pressure in mice.</a> Hypertension. 25 (5), 1111-1115 (1995).</li><li>Kuga, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+and+local+autoregulation+of+cerebrovascular+blood+flow:+a+deep-brain+imaging+study+in+the+mouse.">Rapid and local autoregulation of cerebrovascular blood flow: a deep-brain imaging study in the mouse.</a> J. Physiol.. 587 (Pt 4), 745-752 (2009).</li><li>Muraki, T., Strain Kato, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=difference+in+the+effects+of+morphine+on+the+rectal+temperature+and+respiratory+rate+in+male+mice.">difference in the effects of morphine on the rectal temperature and respiratory rate in male mice.</a> Psychopharmacology (Berl). 89 (1), 60-64 (1986).</li><li>Nielsen, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+ventricular+volume+measurement+in+mice+by+conductance+catheter:+evaluation+and+optimization+of+calibration.">Left ventricular volume measurement in mice by conductance catheter: evaluation and optimization of calibration.</a> Am. J. Physiol Heart Circ. Physiol. 293 (1), H534-H540 (2007).</li><li>Sakamoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improvement+of+portal+hypertension+and+hepatic+blood+flow+in+cirrhotic+rats+by+oestrogen.">Improvement of portal hypertension and hepatic blood flow in cirrhotic rats by oestrogen.</a> Eur. J. Clin. Invest. 35 (3), 220-225 (2005).</li><li>Reverter, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+deep+sedation+on+the+accuracy+of+hepatic+and+portal+venous+pressure+measurements+in+patients+with+cirrhosis.">Impact of deep sedation on the accuracy of hepatic and portal venous pressure measurements in patients with cirrhosis.</a> Liver Int. 34 (1), 16-25 (2014).</li></ol>

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının olmadığını beyan ederim.

Hepatik Hemodinamiğin izlenmesi Hepatoloji ve karaciğer cerrahisinde önemli bir araştırma aracı. Hepatik hemodinamik verilerin elde dolaşım sistemi üzerinde hepatobilier prosedürlerin etkisini belirlemek için yardımcı olur. Vazoaktif ilaçlar değerlendiren çalışmalarda gerektiği gibi hepatik hemodinamik verilerin elde edilmesi de, örneğin portal basıncı ve portal akışını etkileyen ilaçların etkilerini incelemek için gereklidir. Küçük boyutuna rağmen,...

Bu videonun genel amacı, sistemik ve hepatik hemodinamik parametrelerini elde etmek için gerçek-zamanlı izleme prosedürü göstermekti. Bu prosedürü geliştirmek için gerekçe sistemik ve hepatik hemodinamik parametrelerin elde edilmesi gerektiren farelerde deneysel müdahaleler için büyük bir değerdir. Prosedür böyle hepatektomiden, portal ven ligasyonu ve karaciğer nakli gibi, naif hayvanlara ve sırasında veya belirli bir hepatobiliyer deneysel cerrahi müdahale sonrasında uygulanabilir. Kemirgenlerde karaciğer hemodinamik verilerin elde edilmesi önerilen invaziv prosedür gerektirir. Karaciğer perfüzyon non-invaziv elde edilemez. Ancak, sistemik kan basıncı edinimi için alternatifler vardır. Böyle kuyruk manşet tekniği 8 olarak izleme teknikleri sıçan ve farelerde hem de kan basıncını elde etmek için kullanılmıştır. Kuyruk manşet tekniği consci uygulanabilirlı hayvanlar. Kan basıncını ölçerken, hayvan belirli bir rahatsız bir pozisyonda yerleştirilir ve düzeltilmesi gerekiyor. Kuyruk manşet cihaz kılavuzda, üretici farenin sinir olur ve kuyruk dolaşımını azaltabilir hangi vurguladı belirtmektedir. Bu koşullar altında, kuyruk elde edilen periferik kan basıncı merkezi kan basıncından daha düşük olabilir. Tam izleme prosedürü veri toplama için sensörler bir dizi kullanarak bir tümleşik çoklu-kanal monitör ile gerçekleştirildi. Kan basıncı, mikroskop altında dikkatli bir mikrocerrahi diseksiyon ve maruz kaldıktan sonra söz konusu kabı içine bir kateter sokulması ile elde edilmiştir. Akış hızı, her bir kabın etrafına transonik akış prob yerleştirilmesi ile ölçülmüştür. Biz zaten SINGL karşılaştırılabilir fizyolojik hemodinamik verileri kapsamlı bir dizi sonuçlanan sıçanlar için benzer intraoperatif izleme prosedürü bildirdiDiğer grup 7 rapor E verileri. Bu nedenle fare, sıçan daha küçük 10-kat bir türe adapte için iyi bir temel temsil etmek için bu prosedürü kabul. Sıçan prosedüre en önemli fark, kan basıncı verileri yerine sıvı tabanlı kateter sistemi elde etmek için Millar kateter kullanılmasıdır. Akış veriler de transonik akış sondaları, gelen sıçan gemiler için daha sadece daha küçük olanlar ile elde edildi. Nedeniyle hayvanın küçük boyutu, farelerin enstrümantasyon teknik açıdan zorlayıcı, ama mümkündür. Enstrümantasyon tamamlandıktan sonra önceden tanımlanmış bir ayar dosyası kullanılabilir beri, veri toplama ve birincil yaşam veri analizi, basittir. Ayar dosyası bir dizi deney başında bir kez tanımlanması ve bu depolanmış ve daha sonraki deneyler için kullanılabilir sahiptir. Şimdiye kadar akut deneylerde karaciğer hemodinamik etkilerini değerlendirmek için bu prosedürü uygulanır. Biz CA ölçülenP ve PVP önce ve hemen% 70 parsiyel hepatektomi (PH) sonra ve / de-sıkma deneyler kıstırma. Biz karaciğer kütlesinin tamamen% 90&#39;ını temsil eden kitle medyan kısa (5 dakika) sıkıştırma ve sol lateral lob ardından karaciğer% 20 temsil eden sağ lobunun Hepato-duodenum ligament kenetlenir. De-sıkma medyan ve sol lateral lobu boşaltarak ardından sağ lob kelepçeyi serbest başladı. Maksimum bağlama süresi 10 dakikanın altında idi.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="606">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:104px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">PowerLab 16/30&#160;</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>PL3516</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Quad Bridge Amp</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>&#160;FE224</td>
			<td>Bridge amplifier&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Animal Bio Amp</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>&#160;FE136</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Needle Electrodes for FE136 (3 pk)</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>&#160;MLA1213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Perivascular Flowmeter Module</td>
			<td style="width:104px;">Transonic</td>
			<td style="width:119px;">TS420&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Flowprobe MA0.5PSB/MA1PSB</td>
			<td style="width:104px;">Transonic</td>
			<td style="width:119px;">MA0.5PSB/MA1PSB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">SPR-1000 Mouse Pressure Catheter</td>
			<td style="width:104px;">Millar instruments</td>
			<td>841-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">fluid filled catheter&#160;</td>
			<td>Terumo</td>
			<td style="width:119px;">SR+DU2619PX</td>
			<td>26G, 0.64&#215;19mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;"></td>
			<td></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">micro scissors</td>
			<td>F&#183;S&#183;L</td>
			<td>No. 14058-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">micro serrefine</td>
			<td>F&#183;S&#183;L</td>
			<td>No.18055-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Micro clamps applicator</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 18057-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Straight micro forceps</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 00632-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Curved micro forceps</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 00649-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">needle-holder</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 12061-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;"></td>
			<td style="width:104px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">6-0 silk</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">6-0 prolene</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">7-0 prolene</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">10-0 prolene</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Tail cut-off device&#160;</td>
			<td style="width:104px;">Kent Scientific</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">www.kentscientific.com</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">LabChart7</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">data&#160; analysis software&#160;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

monitoring of systemic and hepatic hemodynamic parameters in mice

Deneysel araştırma fare modellerinin kullanımı hepatik fizyolojisi ve patofizyolojik rahatsızlıkların çalışma için çok büyük önem taşıyor. Ancak nedeniyle fare, küçük boyutu, fare için uygun intraoperatif izleme prosedürünün teknik detayları nadiren tarif edildi. Daha önce biz fareler için hemodinamik parametrelerini elde etmek için bir izleme prosedürü bildirdi. Şimdi, farelerde sistemik ve hepatik hemodinamik parametrelerini elde etmek için prosedür, sıçanlar daha küçük on kat bir tür adapte. Bu film, hayvanların aletleri hem de farelerde karaciğer ve sistemik hemodinamikler değerlendirmek için gerekli olan veri toplama işlemini göstermektedir. Vücut ısısı, solunum hızı ve kalp hızı dahil yaşamsal parametreleri, işlem boyunca kaydedildi. Sistemik hemodinamik karotis arter basıncı (CAP) ve santral venöz basınç (CVP) oluşmaktadır. Karaciğer perfüzyon parametreleri portalı v dahilEin basıncı (PVP), köprülü akış hızı hem de ortak hepatik arter (Tablo 1) akış hızı. Enstrümantasyon ve veri toplama normal değerler 1.5 saat içinde tamamlandı kaydetmek için. Sistemik ve hepatik hemodinamik parametreler bu işlem sırasında normal sınırlar içinde kalmıştır. Bu prosedür zor ama mümkündür. Biz zaten deneyler sıkma normal farelerde olduğu gibi% 70 hepatektomiden sırasında ve karaciğer lobunda hepatik hemodinamikleri değerlendirmek için bu prosedürü uyguladık. Rezeksiyon (n = 20), rezeksiyon (6.87 ± 2.39 cmH2O) daha önce anlamlı derecede yüksek olduğu cmH2O (p &lt;0.05) 11.41 ± 2.94 idi sonra PVP idi. Denemeyi sıkma lob sonuçları bu izleme prosedürü portal basınçta ve portal akış hızında küçük değişiklikler tespit etmek için hassas ve uygun olduğunu belirtti. Sonuç olarak, bu yordamı tecrübeli bir mikro-cerrahın elinde güvenilir ama exp sınırlı olmalıdıreriments farenin kesinlikle nerede ihtiyaç vardır.

Böyle solunum hızı ve kalp hızı gibi farelerin hayati parametreleri açıkça sıçan çok daha yüksektir. Ortalama sistemik kan basıncı ve boyun ven basıncı sıçan değerlere benzer ve insan verilerinden bile benzer. Karaciğer hemodinamik veriler açıkça farklıdır. Biz 8 farelerin normal değerleri elde edilmiştir. Normal farelerde, portal kan akışı 1,6-2,3 ml / dakika arasında değişmektedir. Ortak hepatik arter akış 0.10 0.35 ml / dk arasında değişmektedir. Norm...

Watch this Scientific Journal Video about Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice at JoVE.com

Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

Bu film farelerde sistemik ve hepatik hemodinamik kazanmak için nasıl gösterir. Tüm izleme hayati parametrelerin, sistemik kan basıncı, santral venöz basınç, ortak hepatik arter akım hızı ve portal ven basıncı yanı sıra farelerde portal akış hızı edinimini içerir.

Farelerde Sistemik ve Karaciğer Hemodinamik Parametrelerin İzleme

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. ...

monitoring-of-systemic-and-hepatic-hemodynamic-parameters-in-mice

Research

JoVE Journal

Medicine

15.9K Görüntüleme.  Jena University Hospital.  Bu film farelerde sistemik ve hepatik hemodinamik kazanmak için nasıl gösterir. Tüm izleme hayati parametrelerin, sistemik kan basıncı, santral venöz basınç, ortak hepatik arter akım hızı ve portal ven basıncı yanı sıra farelerde portal akış hızı edinimini içerir. 

Video: Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

The bm12 Inducible Model of Systemic Lupus Erythematosus (SLE) in C57BL/6 Mice

Systemic lupus erythematosus (SLE) is an autoimmune disease with diverse clinical and immunological manifestations. Several spontaneous and inducible animal models mirror common components of human disease, including the bm12 transfer model. Upon transfer of bm12 splenocytes or purified CD4 T cells, C57BL/6 mice rapidly develop large frequencies of T follicular helper cells (Tfh), germinal center (GC) B cells, and plasma cells followed by high levels of circulating anti-nuclear antibodies. Since this model utilizes mice on a pure C57BL/6 background, researchers can quickly and easily study disease progression in transgenic or knockout mouse strains in a relatively short period of time. Here we describe protocols for the induction of the model and the quantitation Tfh, GC B cells, and plasma cells by multi-color flow cytometry. Importantly, these protocols can also be used to characterize disease in most mouse models of SLE and identify Tfh, GC B cells, and plasma cells in other disease models.

The bm12 Inducible Model of Systemic Lupus Erythematosus SLE in C57BL/6 Mice

The transfer of bm12 lymphocytes into a C57BL/6 recipient is an established model of systemic lupus erythematosus. Here we describe how to initiate disease using this model and how to characterize T follicular helper cells, germinal center B cells and plasma cells by flow cytometry.

C57BL / 6 FARELERDE SLE bm12 İndüklenebilir Modeli (SLE)

Systemic lupus erythematosus (SLE) is an autoimmune disease with diverse clinical and immunological manifestations. Several spontaneous and inducible ...

Tıp

Uncontrolled Hemorrhagic Shock Modeled via Liver Laceration in Mice with Real Time Hemodynamic Monitoring

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via a liver laceration that results in consistent blood loss, hemodynamic alterations, and survival.
Mice undergo a standardized resection of the left-middle lobe of the liver. They are allowed to bleed without mechanical intervention. Hemostatic agents can be administered as pre-treatment or rescue therapy depending on the interest of the investigator. During the time of hemorrhage, real-time hemodynamic monitoring via a left femoral arterial line is performed. Mice are then sacrificed, blood loss is quantified, blood is collected for further analysis, and organs are harvested for analysis of injury. Experimental design is described to allow for simultaneous testing of multiple animals.
Liver hemorrhage as a model of uncontrolled hemorrhage exists in the literature, primarily in rat and porcine models. Some of these models utilize hemodynamic monitoring or quantify blood loss but lack consistency. The present model incorporates quantification of blood loss, real-time hemodynamic monitoring in a murine model that offers the advantage of using transgenic lines and a high-throughput mechanism to further investigate the pathophysiologic mechanisms in uncontrolled hemorrhage.

Uncontrolled hemorrhage, an important cause of mortality among trauma patients, can be modeled using a standard liver laceration in a murine model. This model results in consistent blood loss, survival, and allows for testing hemostatic agents. This article provides the step-by-step process to perform this valuable model.

Gerçek Zamanlı Hemodinamik İzlemli Farelerde Karaciğer Yırtıklaması İle Kontrol Edilen Kontrolsüz Hemorajik Şok

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via ...

Invasive Hemodynamic Characterization of the Portal-hypertensive Syndrome in Cirrhotic Rats

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. Portal hypertension (PHT) due to cirrhosis is responsible for the most severe complications in patients with liver disease. The full picture of the portal hypertensive syndrome is characterized by increased portal pressure (PP) due to the increased intrahepatic vascular resistance (IHVR), hyperdynamic circulation, and increased splanchnic blood flow. Progressive splanchnic arterial vasodilation and increased cardiac output with elevated heart rate (HR) but low arterial pressure characterizes the portal hypertensive syndrome.
Novel therapies are currently being developed that aim to decrease PP by either targeting IHVR or increased splanchnic blood flow &#8212; but side effects on systemic hemodynamics may occur. Thus, a detailed characterization of portal venous, splanchnic, and systemic hemodynamic parameters, including measurement of PP, portal venous blood flow (PVBF), mesenteric arterial blood flow, mean arterial pressure (MAP), and HR is needed for preclinical evaluation of the efficacy of novel treatments for PHT. Our video article provides the reader with a structured protocol for performing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats. In particular, we describe the catheterization of the femoral artery and the portal vein via an ileocolic vein and the measurement of portal venous and splanchnic blood flow via perivascular Doppler-ultrasound flow probes. Representative results of different rat models of PHT are shown.

Here we describe a detailed protocol for invasive measurements of hemodynamic parameters including portal pressure, splanchnic blood flow, and systemic hemodynamics in order to characterize the portal hypertensive syndrome in rats.

Sirozlu fareleri Portal hipertansif sendromunda invaziv hemodinamik karakterizasyonu

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. ...

Invasive Hemodynamic Monitoring of Aortic and Pulmonary Artery Hemodynamics in a Large Animal Model of ARDS

One of the leading causes of morbidity and mortality in patients with heart failure is right ventricular (RV) dysfunction, especially if it is due to pulmonary hypertension. For a better understanding and treatment of this disease, precise hemodynamic monitoring of left and right ventricular parameters is important. For this reason, it is essential to establish experimental pig models of cardiac hemodynamics and measurements for research purpose. 
This article shows the induction of ARDS by using oleic acid (OA) and consequent right ventricular dysfunction, as well as the instrumentation of the pigs and the data acquisition process that is needed to assess hemodynamic parameters. To achieve right ventricular dysfunction, we used oleic acid (OA) to cause ARDS and accompanied this with pulmonary artery hypertension (PAH). With this model of PAH and consecutive right ventricular dysfunction, many hemodynamic parameters can be measured, and right ventricular volume load can be detected. 
All vital parameters, including respiratory rate (RR), heart rate (HR) and body temperature were recorded throughout the whole experiment. Hemodynamic parameters including femoral artery pressure (FAP), aortic pressure (AP), right ventricular pressure (peak systolic, end systolic and end diastolic right ventricular pressure), central venous pressure (CVP), pulmonary artery pressure (PAP) and left arterial pressure (LAP) were measured as well as perfusion parameters including ascending aortic flow (AAF) and pulmonary artery flow (PAF). Hemodynamic measurements were performed using transcardiopulmonary thermodilution to provide cardiac output (CO). Furthermore, the PiCCO2 system (Pulse Contour Cardiac Output System 2) was used to receive parameters such as stroke volume variance (SVV), pulse pressure variance (PPV), as well as extravascular lung water (EVLW) and global end-diastolic volume (GEDV). Our monitoring procedure is suitable for detecting right ventricular dysfunction and monitoring hemodynamic findings before and after volume administration.

We present a protocol of creating right ventricular dysfunction in a pig model by inducing ARDS. We demonstrate invasive monitoring of left and right ventricular cardiac output using flow probes around the aorta and the pulmonary artery, as well as blood pressure measurements in the aorta and pulmonary artery.

Aort ve pulmoner arter hemodinami ARDS, büyük bir hayvan modeli invaziv hemodinamik izleme

One of the leading causes of morbidity and mortality in patients with heart failure is right ventricular (RV) dysfunction, especially if it is due to ...

Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy

Here we provide a detailed protocol describing the clinical procedure of hepatic venous pressure gradient (HVPG) measurement in patients with advanced chronic liver disease followed by an instruction for transjugular biopsy. Under local anesthesia and ultrasound guidance, a catheter introducer sheath is placed in the right internal jugular vein. Using&#160;fluoroscopic guidance, a balloon catheter is advanced into the inferior vena cava (IVC) and inserted into a large hepatic vein. Correct and sufficient wedge position of the catheter is ensured by injecting contrast media while the balloon is blocking the outflow of the cannulated hepatic vein. After calibrating the external pressure transducer, continuous pressure recordings are obtained with triplicate recordings of the wedged hepatic venous pressure (WHVP) and free hepatic venous pressure (FHVP). The difference between FHVP and WHVP is referred to as HVPG, with values &#8805;10 mm Hg indicating clinically significant portal hypertension (CSPH). Before removing the catheter, pressure readings obtained in the IVC at the same level, as well as the right atrial pressure are recorded.
Finally, a transjugular liver biopsy can be obtained via the same vascular route. Different systems are available; however, core biopsy needles are preferred over aspiration needles, especially for cirrhotic livers. Again, under fluoroscopic guidance a biopsy needle introducer sheath is advanced into an hepatic vein. Next, the transjugular biopsy needle is gently advanced through the introducer sheath: (i) in case of aspiration biopsy, the needle is advanced into the liver parenchyma under aspiration and then removed quickly, or (ii) in case of a core biopsy, the cutting-mechanism is triggered inside the parenchyma. Several separate passages can be safely performed to obtain sufficient liver specimens via transjugular biopsy. In experienced hands, the combination of these procedures takes about 30-45 min.

Here, we present a protocol for measurement of hepatic venous pressure gradient (HVPG),the gold standard to diagnose clinically significant portal hypertension. Moreover, we describe how to perform a transjugular liver biopsy within the same session.

Hepatik Venöz Basınç Gradyanı ve Transjuguler Karaciğer Biyopsisinin Ölçümü

Here we provide a detailed protocol describing the clinical procedure of hepatic venous pressure gradient (HVPG) measurement in patients with advanced ...

Standardized Hemorrhagic Shock Induction Guided by Cerebral Oximetry and Extended Hemodynamic Monitoring in Pigs

Hemorrhagic shock ranks among the main reasons for severe injury-related death. The loss of circulatory volume and oxygen carriers can lead to an insufficient oxygen supply and irreversible organ failure. The brain exerts only limited compensation capacities and is particularly at high risk of severe hypoxic damage.This article demonstrates the reproducible induction of life-threatening hemorrhagic shock in a porcine model by means of calculated blood withdrawal. We titrate shock induction guided by near-infrared spectroscopy&#160;and extended hemodynamic monitoring to display systemic circulatory failure, as well as cerebral microcirculatory oxygen depletion. In comparison to similar models that primarily focus on predefined removal volumes for shock induction, this approach highlights a titration by means of the resulting failure of macro- and microcirculation.

Hemorrhagic shock is a severe complication in seriously injured patients, which leads to life-threatening oxygen undersupply. We present a standardized method to induce hemorrhagic shock via blood withdrawal in pigs that is guided by hemodynamics and microcirculatory cerebral oxygenation.

Domuzlarda serebral oksimetre ve genişletilmiş hemodinamik Izleme güdümlü standartlaştırılmış hemorajik şok Indüksiyon

Hemorrhagic shock ranks among the main reasons for severe injury-related death. The loss of circulatory volume and oxygen carriers can lead to an ...

LPS İnfüzyonu Yoluyla Domuzlarda Endotokseminin Doza Bağlı İndüksiyonu

Lipopolysaccharide Infusion as a Porcine Endotoxemic Shock Model

Sepsis and septic shock are frequently encountered in patients treated in intensive care units (ICUs) and are among the leading causes of death in these patients. It is caused by a dysregulated immune response to an infection. Even with optimized treatment, mortality rates remain high, which makes further insights into the pathophysiology and new treatment options necessary. Lipopolysaccharide (LPS) is a component of the cell membrane of gram-negative bacteria, which are often responsible for infections causing sepsis and septic shock. 
The severity and high mortality of sepsis and septic shock make standardized experimental studies in humans impossible. Thus, an animal model is needed for further studies. The pig is especially well suited for this purpose as it closely resembles humans in anatomy, physiology, and size. 
This protocol provides an experimental model for endotoxemic shock in pigs by LPS infusion. We were able to reliably induce changes frequently observed in septic shock patients, including hemodynamic instability, respiratory failure, and acidosis. This will allow researchers to gain valuable insight into this highly relevant condition and evaluate new therapeutic approaches in an experimental setting.

Yazar Spotlight: Hemodinamik ve Solunum Yetmezliğini İncelemek İçin Domuzlarda Deneysel Endotoksemik Şokun İndüksiyonu

We provide a protocol for an experimental endotoxemic shock model in pigs by infusion of lipopolysaccharide.

Domuz Endotoksemik Şok Modeli Olarak Lipopolisakkarit İnfüzyonu

Sepsis and septic shock are frequently encountered in patients treated in intensive care units (ICUs) and are among the leading causes of death in these ...

<meta charset="utf8"></head><body>Domuzlarda Oleik Asit ile İndüklenen Akut Solunum Dekompansasyonu

A Porcine Model of Acute Respiratory Failure with a Continuous Infusion of Oleic Acid

This protocol outlines an acute respiratory distress model utilizing centrally administered oleic acid infusion in Yorkshire pigs. Prior to experimentation, each pig underwent general anesthesia, endotracheal intubation, and mechanical ventilation, and was equipped with bilateral&#160;jugular vein central vascular access catheters. Oleic acid was administered through a dedicated pulmonary artery catheter at a rate of 0.2 mL/kg/h. The infusion lasted for 60-120 min, inducing respiratory distress. Throughout the experiment, various parameters including heart rate, respiratory rate, arterial blood pressure, central venous pressure, pulmonary artery pressure, pulmonary capillary wedge pressure, end-tidal carbon dioxide, peak airway pressures, and plateau pressures were monitored. Around the 60 min mark, decreases in partial arterial oxygen pressure (PaO2) and fraction of oxygen-saturated hemoglobin (SpO2) were observed. Periodic hemodynamic instability, accompanied by acute increases in pulmonary artery pressures, occurred during the infusion. Post-infusion, histological analysis of the lung parenchyma revealed changes indicative of parenchymal damage and acute disease processes, confirming the effectiveness of the model in simulating acute respiratory decompensation.

<meta charset="utf8"></head><body>Yazar Spotlight: Domuzlarda Non-İnvaziv Solunum İzleme için Venöz Dalga Formlarını Keşfetmek

Infusing oleic acid continuously into the pulmonary artery of an anesthetized adult pig induces acute respiratory failure, enabling controlled experimentation during acute respiratory decompensation.