خطوة بخطوة: أسلوب التدريب المجهرية الجمع بين اثنين من النماذج الحيوانية غير الحية

Summary

Here we describe how to set up a small microsurgical practice station and a simple and inexpensive method for the training of microsurgery with non-living animal models.

Abstract

The learning of microsurgical techniques and the maintenance of microsurgical skills have been traditionally based on the use of living animals, mainly laboratory rats. This method although extremely valuable can be economically demanding both for the surgeon and the sponsoring institution; it also requires special training facilities that may not always be available or accessible. Furthermore ethical concerns can limit the use of living animals for training purposes. Alternative training methods, such as inert tubes and gloves have not gained popularity among surgeons since they do not offer an experience similar to that of a clinical situation. Non-living animal models include the use of chicken thighs and wings; they offer a practice experience that resembles a clinical situation to a considerable extent. This type of training is relatively cheap and easily available. The microscope and instruments required can be acquired over the internet, and the chicken pieces can be bought at the local supermarket.

This approach allows a motivated trainee to rehearse different types of surgical techniques several times at a reasonable expense, helping to develop or maintain his surgical expertise if more complex facilities are not available. On the current manuscript we describe how to setup a small practice station, how to dissect the specimens, and how to practice both with the chicken thighs and with the chicken wings in a progressive fashion. This approach takes advantage on the versatility of the chicken thigh model and the small size of the chicken wing Brachial artery.

Introduction

An ample array of training models have been described for the learning and maintenance of both basic and advanced microsurgical skills. These include living animals^1,2, human cadaveric specimens³, inert models^4,5 and non-living animal models^6-9.The Living animal models, specifically those using rats have been extensively used in the teaching of microsurgery ^1,2; and they are considered the current gold standard of training. In spite of their remarkable instructive value, when an intensive or prolonged training is required; economical and ethical concerns can hinder their practical usage.

Cadaveric models³ offer the opportunity to practice in an environment similar to that of the actual clinical situation; they are unfortunately restricted to anatomy labs and similar facilities, a microscope must be available at the lab as well; these models are therefore not widely available. Inert models such as rubber tubes, or gloves^4,5 are cheap, and easily accessible, the required equipment for their application is minimal. The resemblance to a clinical situation is tenuous however; and their application is generally limited to the introductory stages of training, before the trainee starts practicing on rats. To the best of our knowledge Hino⁶ was the first to propose the use of non-living chicken for the development and maintenance of clinical microsurgical skills. His model is based on the extraction and subsequent usage of the chicken brachial artery from commercial chicken wings. This approach does not need institution review board approval, rodent anaesthesia, laboratory technicians or postoperative care.

Following Hino´s description of the chicken wing artery model numerous other nonliving animal models were published. The use of commercial chicken thighs was first suggested by Marsh et al.⁷ who reported the use of the femoral artery, vein and nerve for didactic purposes. This particular model expands the possibilities of training including structures different from the arteries; it permits the trainee to perform a variety of complex procedures such as vein grafts, nerve grafts or fascicular repairs. Jeong et al.⁸ Further studied Marsh’ chicken thigh model and its applications to the teaching of resident doctors. The authors analysed chicken tissue samples histologically and found that it presented similarities to human tissues. The time to perform an anastomosis by the trainee was significantly reduced by practice in their study. They concluded that “the femoral neurovascular bundles of chicken are an appropriate and effective model for teaching and practicing microsurgery”. In 2013 my colleagues and I⁹ published a microsurgical training regimen that combined both the chicken thigh and the chicken wing models; this approach benefits from the versatility of the chicken thighs and from the limited size of the chicken wing artery which can represent more of a challenge than the femoral vessels for the more advanced trainees.

On the current manuscript we describe step by step the process of setting up a microsurgical practice station; the materials required, how to dissect the neurovascular structures of each model and how to effectively apply the training regimen.

Protocol

1. إعداد:

1. الحصول على المجهر ستيريو الطاولة، مع متغير 3،5 x إلى 45X التكبير، 200 مم العمل عن بعد، 55-75 ملم متغير المسافة بين الحدقة وملحق أدى ضوء خاتم. أي المجهر مماثلة كافية، ويمكن إعداد على طاولة صغيرة وليس مكلفا للغاية.
2. جمع وإعداد مجموعة من الأدوات المجهرية مع اثنين من الشاحنات الصغيرة المجهرية، واحد مقص تشريح، وإبرة سائق واحد؛ هذا هو الحد الأدنى المطلوب، يجب أن يؤخذ في الاعتبار أن هذه هي أدوات الممارسة، وليس هناك حاجة إلى أدوات الجودة الراقية.
3. استخدام 9/0 حيدة الصغرى خياطة لجميع الممارسات. شراء المتاحة تجاريا الفخذين الدجاج أو أجنحة وتلوين المواد الغذائية في المتاجر المحلية.
4. ويستخدم 20 G-القسطرة القسطرة للاختبارات المباح على الدجاج الشرايين الفخذية. لالشرايين العضدية هناك حاجة إلى أرق 27 G القسطرة. هذه يمكن الحصول عليها عبر الإنترنت في صيدلية المحلية أومع الصكوك الموضوعة. شراء حقنة المتاحة تجاريا لحقن تلوين الطعام.

2. تقنيات تشريح مجهري:

1. النهج المتبع في الأوعية الفخذ واضح ومباشر. لالفخذين الدجاج، نفذ تقنية تشريح حادة فقط الإنسي إلى جسم الفخذ، فصل العضلات الفخذية من عظم الفخذ وفضح الشريان، عرق وعصب. العصب يمكن تشريح إلى مزيد من اثنين كراسات مستقلة لأنواع مختلفة من الممارسات إصلاح الأعصاب.
2. من أجل الوصول إلى الشريان العضدي الدجاج في أجنحة الدجاج، شق الجلد طوليا مع مقص، من الكتف حتى غيض من الجناح. مراقبة الشريان الذي يمتد بين العضلة ذات الرأسين العضدية وثلاثية الرؤوس.

3. الموصى بها نظام التدريب:

1. تدريب مع الشريان الفخذي.
   ملاحظة: الخطوة الأولى في نظام التدريب هو ممارسة مع الشريان الفخذي الدجاج.

1. وضع قطعة تحت المجهر وبدء تشريح المجهرية. تحرير الشريان الفخذي من الأنسجة الكامنة. وتقسم أفقيا. إجراء adventicectomy. استخدام الشاحنات الصغيرة ومقص الصغيرة لتقليم أي adventicia تغمر التجويف الشرياني. شطف التجويف الداخلي مع مياه الصنبور العادية. أكتب وقت البدء
2. تنفيذ حد لنهاية مفاغرة.
   1. تبدأ في الجدار الخلفي للشريان على عكس الجانب للمشغل. وضع غرزة الأول. تبدأ على الجانب الأيسر إذا كان يعمل أفقيا، على الجانب السفلي إذا كان يعمل عموديا. تمرير الإبرة من خارج الشريان نحو التجويف ومن ثم من التجويف إلى خارج الشريان.
   2. ربط غرزة، نفذ عقدة مزدوجة أولا، ثم اثنين واحد يلقي الاتجاهات بالتناوب. استكمال الجدار الخلفي كله مع تقنية الموضحة أعلاه.
   3. بدءا من الجهة اليمنى إذا كنت تعمل أفقيا أو الجانب العلوي إذا كنت التعليم الجامعيrking عموديا، ضع غرزة واحدة من الخارج إلى التجويف ومن ثم من التجويف إلى الخارج. قرانهما كما هو موضح أعلاه. استكمال الجدار الأمامي تكرار الإجراء الموضح في 3.1.2.2.
   4. أكتب مرة الأخيرة هذا سوف يسمح لك للحفاظ على وقت قياسي، حتى تتمكن من السيطرة تقدمك.
      ملاحظة: يفضل واضعو تقنية طريقة واحدة لأعلى؛ ولكن أي نوع من الخيط المجهرية يمكن التدرب عليها. ومن المفضل أن المتدرب اكتمال حوالي 25 anastomoses المجهرية في هذه الطريقة قبل أن يتمكن من محاولة السيناريوهات السريرية الأخرى. وتشمل هذه ترقيع الوريد للثغرات الشرايين، نهاية لهذه الغاية إصلاحات العصبية، واستخدام قنوات الوريد لعلاج الثغرات العصبية. تقنية هامة في جراحة الاوعية الدموية الدقيقة، التي يمكن استخلاصها مع هذا الأسلوب التدريب هو الخيط المستمر أو الركض، لأداء هذه التقنية حصيلة المتدرب كما 3.1.2.1 لكن ستيتش لا يتم قطع، ومواصلة تنفيذ غرز كما في 3.1.2.1 دون بالقص شntil إكمال خياطة كاملة وربطة عنق لغرزة الأصلي في نهاية المطاف.

2. التدريب مع الشريان العضدي
   1. وضع قطعة تحت المجهر. استكمال إجراءات كما هو موضح أعلاه لشريان الفخذ.
      ملاحظة: الفرق الوحيد هو الحجم. الشريان العضدي هو أصغر بكثير من الشريان الفخذي ومفاغرة إلى حد كبير أكثر تحديا.
3. اختبارات المباح
   1. عبور سلس 20 أو 27 G-القسطرة القسطرة من خلال مفاغرة، للتحقق من العوائق الناجمة عن غرز خياطة كل من جدران الأوعية معا.
   2. تطبيق المحاقن مع تلوين الطعام التجاري إلى نهاية للالقسطرة القسطرة، ويروي صبغ في الشريان لاختبار تسرب طائرة
   3. فتح الشريان طولي لتصور غرز، التوازي، وكمية من جدار اتخاذها.

النتائج

وقد chronometered المؤلفين أوقاتهم مع أسلوب التدريب الحالي، وشهدت أن تقلل بشكل كبير من الأوقات مفاغرة للشريان الفخذي في نهاية الأسبوع الثالث. المتدرب يمكن السيطرة على إدخال تحسينات على أسلوبه عن طريق فحص عصره، والنسب المئوية المباح له والمواءمة غرزة جراحية. ويصور النظام ?...

Discussion

The clinical practice of microsurgery requires a continuous practice and a high level of expertise; it’s applications include free flaps, replantation and revascularization procedures, intracranial – extracranial anastomoses for neurosurgical procedures, peripheral nerve surgery and others. In spite of the wide variety of procedures that require microsurgical techniques, some of them are seldom performed in many centers. The surgeons therefore need sometimes to maintain their skill level rehearsing the surge...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Stereomicroscope	Amscope	SM-1BX	Microscope
Led light	Amscope	LED-80S-YA	illumination system
Microsurgical instruments set	Chen hen microsurgical instruments	HC- X803-1	Microsurgical instruments
Microsurgical sutures	S/T microsurgical	9/0 Suture	Sutures