Adım Adım: İki cansız hayvan modelleri birleştirerek Mikrocerrahi eğitim yöntemi

Özet

Here we describe how to set up a small microsurgical practice station and a simple and inexpensive method for the training of microsurgery with non-living animal models.

Özet

The learning of microsurgical techniques and the maintenance of microsurgical skills have been traditionally based on the use of living animals, mainly laboratory rats. This method although extremely valuable can be economically demanding both for the surgeon and the sponsoring institution; it also requires special training facilities that may not always be available or accessible. Furthermore ethical concerns can limit the use of living animals for training purposes. Alternative training methods, such as inert tubes and gloves have not gained popularity among surgeons since they do not offer an experience similar to that of a clinical situation. Non-living animal models include the use of chicken thighs and wings; they offer a practice experience that resembles a clinical situation to a considerable extent. This type of training is relatively cheap and easily available. The microscope and instruments required can be acquired over the internet, and the chicken pieces can be bought at the local supermarket.

This approach allows a motivated trainee to rehearse different types of surgical techniques several times at a reasonable expense, helping to develop or maintain his surgical expertise if more complex facilities are not available. On the current manuscript we describe how to setup a small practice station, how to dissect the specimens, and how to practice both with the chicken thighs and with the chicken wings in a progressive fashion. This approach takes advantage on the versatility of the chicken thigh model and the small size of the chicken wing Brachial artery.

Giriş

An ample array of training models have been described for the learning and maintenance of both basic and advanced microsurgical skills. These include living animals^1,2, human cadaveric specimens³, inert models^4,5 and non-living animal models^6-9.The Living animal models, specifically those using rats have been extensively used in the teaching of microsurgery ^1,2; and they are considered the current gold standard of training. In spite of their remarkable instructive value, when an intensive or prolonged training is required; economical and ethical concerns can hinder their practical usage.

Cadaveric models³ offer the opportunity to practice in an environment similar to that of the actual clinical situation; they are unfortunately restricted to anatomy labs and similar facilities, a microscope must be available at the lab as well; these models are therefore not widely available. Inert models such as rubber tubes, or gloves^4,5 are cheap, and easily accessible, the required equipment for their application is minimal. The resemblance to a clinical situation is tenuous however; and their application is generally limited to the introductory stages of training, before the trainee starts practicing on rats. To the best of our knowledge Hino⁶ was the first to propose the use of non-living chicken for the development and maintenance of clinical microsurgical skills. His model is based on the extraction and subsequent usage of the chicken brachial artery from commercial chicken wings. This approach does not need institution review board approval, rodent anaesthesia, laboratory technicians or postoperative care.

Following Hino´s description of the chicken wing artery model numerous other nonliving animal models were published. The use of commercial chicken thighs was first suggested by Marsh et al.⁷ who reported the use of the femoral artery, vein and nerve for didactic purposes. This particular model expands the possibilities of training including structures different from the arteries; it permits the trainee to perform a variety of complex procedures such as vein grafts, nerve grafts or fascicular repairs. Jeong et al.⁸ Further studied Marsh’ chicken thigh model and its applications to the teaching of resident doctors. The authors analysed chicken tissue samples histologically and found that it presented similarities to human tissues. The time to perform an anastomosis by the trainee was significantly reduced by practice in their study. They concluded that “the femoral neurovascular bundles of chicken are an appropriate and effective model for teaching and practicing microsurgery”. In 2013 my colleagues and I⁹ published a microsurgical training regimen that combined both the chicken thigh and the chicken wing models; this approach benefits from the versatility of the chicken thighs and from the limited size of the chicken wing artery which can represent more of a challenge than the femoral vessels for the more advanced trainees.

On the current manuscript we describe step by step the process of setting up a microsurgical practice station; the materials required, how to dissect the neurovascular structures of each model and how to effectively apply the training regimen.

Protokol

1. Hazırlama:

1. 45x zoom bir değişken 3,5 x ile, bir masa stereo mikroskop edinin, 200 mm çalışma mesafesi, 55-75 mm değişken arası pupiller mesafe ve bir aksesuar halkası led ışık. Herhangi benzer mikroskop küçük bir masanın üzerine kurulabilir, yeterli ve son derece pahalı değildir.
2. Toplayın ve iki mikrocerrahi manyetikler, tek kesme makas, ve bir iğne sürücü ile mikrocerrahi aletleri bir dizi hazırlamak; Bu gereken en düşük, bu uygulama aracı olan ve yüksek son kaliteli araçlar gerekli değildir dikkate alınmalıdır.
3. Tüm uygulamalar için 9/0 monofilament mikro sütür kullanın. Yerel süpermarkette tavuk uyluk ya da kanatları ve gıda renklendirici piyasadan temin satın alın.
4. A 20 G anjiyo-kateter tavuk femoral arterler üzerindeki açıklık testleri için kullanılır. Brakiyal arterler için daha ince 27 G kateter gereklidir. Bunlar yerel Eczacılık internet üzerinden elde edilebilir ya daset enstrümanlarla. Gıda renklendirici enjekte etmek için piyasada mevcut şırınga al.

2. Makroskopik diseksiyon teknikleri:

1. femoral damarların yaklaşım basittir. Tavuk uyluk için, bir künt diseksiyon tekniği sadece femur şaft medial gerçekleştirmek kemik femur kas ayırmak ve femoral arter, ven ve sinir maruz kalmaktadır. Sinir ayrıca sinir onarım uygulamalarının farklı türleri için iki ayrı fasiküller halinde disseke edilebilir.
2. Kanat ucuna kadar olan omuzdan, bir makas ile uzunlamasına deri, tavuk kanatları tavuk brakiyal arter erişmek kesilirken için. Biceps ve triseps brachii'nin arasında çalışan arter gözlemleyin.

3. Önerilen eğitim rejimi:

1. Femoral arter ile Eğitim.
   NOT: Eğitim rejiminde ilk adım tavuk femoral arter ile uygulama olduğunu.

1. Mikroskop altında parça yerleştirin ve mikrocerrahi diseksiyon başlar. Altta yatan dokulardan femoral arter özgür; ve yatay olarak bölmek. Bir adventicectomy gerçekleştirin. Arteriyel lümen örten herhangi adventicia trim mikro manyetikler ve mikro-makas kullanın. Düzenli musluk suyuyla iç lümen durulayın. Başlangıç ​​saati bir yere yazın
2. Anastomoz uçtan uca bir gerçekleştirin.
   1. Operatöre karşı tarafında arter arka duvarda başlatın. İlk dikiş yerleştirin; dikey çalışma ise alt tarafta, yatay çalışma ise sol tarafta başlayacak. Arterin dışına lümeninden sonra lümenin doğru arterin dışından iğne geçirin ve.
   2. , Dikiş Kravat ilk çift düğüm gerçekleştirmek ve sonra iki tek alternatif yön atar. Yukarıda tarif edilen tekniği ile tüm arka duvarını tamamlayın.
   3. Eğer wo iseniz yatay çalışan ya da üst tarafı ise sağ tarafta başlayarakdikey rking dışarıya lümenden daha sonra lümen dışında tek bir dikiş koyun. Yukarıda açıklandığı gibi düğüm. 3.1.2.2 açıklanan yordamı yinelenen ön duvarı tamamlayın.
   4. Bu bir zaman kaydını tutmak sağlayacak nihai zaman bir yere yazın, böylece ilerleme kontrol edebilirsiniz.
      NOT: Yazarlar tek yönlü yukarı tekniği tercih; ancak mikrocerrahi sütür her türlü prova edilebilir. O diğer klinik senaryolar deneyebilirsiniz önce stajyer bu şekilde yaklaşık 25 mikrocerrahi anastomoz tamamlar önerilebilir. Bu damar arter boşluklar aşılama sinir onarım uç uca ve sinir boşluklar tedavisi için damar boruları kullanımını içerir. Bu eğitim yöntemi ile öğrenilebilir mikrovasküler cerrahi önemli bir tekniktir, olmadan 3.1.2.1 gibi dikiş gerçekleştirmeye devam 3.1.2.1 olarak bu tekniği stajyer gelirleri gerçekleştirmek ancak stich kesmek değil, sürekli ya da devamlı sütür olduğunu Onlara u kesmentil Eğer bütün sütür tamamlamak ve sonunda orijinal dikiş kravat.

2. Brakial arter ile Eğitim
   1. Mikroskop altında parça yerleştirin. Femoral arter için yukarıda tarif edilen prosedür tamamlayın.
      NOT: Tek fark boyutudur. Brakiyal arter femoral arter çok daha küçüktür ve anastomoz çok daha zordur.
3. Açıklık testleri
   1. Birlikte hem damar duvarlarını dikilmesi dikiş kaynaklanan engellerden kontrol etmek için, anastomoz yoluyla pürüzsüz 20 veya 27 G anjiyo-kateter çapraz.
   2. Jet sızıntı testi için artere boya anjiyo-kateterin ucuna ticari gıda renklendirici ile bir şırınga uygulanır ve serpmek
   3. Dikiş, kendi paralelliği ve alınan duvarın miktarını görselleştirmek için uzunlamasına arter açın.

Sonuçlar

Yazarlar, bu eğitim yöntemi ile kere chronometered ve anlamlı üçüncü haftanın sonunda bir femoral arter için anastomoz sürelerini azaltmak için bunu gördük. stajyer onun kez onun açıklık yüzdeleri ve dikiş uyum kontrol ederek onun tekniği iyileştirmeler kontrol edebilirsiniz. Bu yazıda anlatılan sistem, bir masa mikroskop ve mikrocerrahi aletleri bir dizi içerir Şekil 1'de gösterilmiştir. makroskopik disseksiyonları, Şekil 2 ve 3, bir femoral arter mikro anastomoz bir örneği gösterilmi...

Tartışmalar

The clinical practice of microsurgery requires a continuous practice and a high level of expertise; it’s applications include free flaps, replantation and revascularization procedures, intracranial – extracranial anastomoses for neurosurgical procedures, peripheral nerve surgery and others. In spite of the wide variety of procedures that require microsurgical techniques, some of them are seldom performed in many centers. The surgeons therefore need sometimes to maintain their skill level rehearsing the surge...

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
Stereomicroscope	Amscope	SM-1BX	Microscope
Led light	Amscope	LED-80S-YA	illumination system
Microsurgical instruments set	Chen hen microsurgical instruments	HC- X803-1	Microsurgical instruments
Microsurgical sutures	S/T microsurgical	9/0 Suture	Sutures