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요약

Here we describe how to set up a small microsurgical practice station and a simple and inexpensive method for the training of microsurgery with non-living animal models.

초록

The learning of microsurgical techniques and the maintenance of microsurgical skills have been traditionally based on the use of living animals, mainly laboratory rats. This method although extremely valuable can be economically demanding both for the surgeon and the sponsoring institution; it also requires special training facilities that may not always be available or accessible. Furthermore ethical concerns can limit the use of living animals for training purposes. Alternative training methods, such as inert tubes and gloves have not gained popularity among surgeons since they do not offer an experience similar to that of a clinical situation. Non-living animal models include the use of chicken thighs and wings; they offer a practice experience that resembles a clinical situation to a considerable extent. This type of training is relatively cheap and easily available. The microscope and instruments required can be acquired over the internet, and the chicken pieces can be bought at the local supermarket.

This approach allows a motivated trainee to rehearse different types of surgical techniques several times at a reasonable expense, helping to develop or maintain his surgical expertise if more complex facilities are not available. On the current manuscript we describe how to setup a small practice station, how to dissect the specimens, and how to practice both with the chicken thighs and with the chicken wings in a progressive fashion. This approach takes advantage on the versatility of the chicken thigh model and the small size of the chicken wing Brachial artery.

서문

An ample array of training models have been described for the learning and maintenance of both basic and advanced microsurgical skills. These include living animals1,2, human cadaveric specimens3, inert models4,5 and non-living animal models6-9.The Living animal models, specifically those using rats have been extensively used in the teaching of microsurgery 1,2; and they are considered the current gold standard of training. In spite of their remarkable instructive value, when an intensive or prolonged training is required; economical and ethical concerns can hinder their practical usage.

Cadaveric models3 offer the opportunity to practice in an environment similar to that of the actual clinical situation; they are unfortunately restricted to anatomy labs and similar facilities, a microscope must be available at the lab as well; these models are therefore not widely available. Inert models such as rubber tubes, or gloves4,5 are cheap, and easily accessible, the required equipment for their application is minimal. The resemblance to a clinical situation is tenuous however; and their application is generally limited to the introductory stages of training, before the trainee starts practicing on rats. To the best of our knowledge Hino6 was the first to propose the use of non-living chicken for the development and maintenance of clinical microsurgical skills. His model is based on the extraction and subsequent usage of the chicken brachial artery from commercial chicken wings. This approach does not need institution review board approval, rodent anaesthesia, laboratory technicians or postoperative care.

Following Hino´s description of the chicken wing artery model numerous other nonliving animal models were published. The use of commercial chicken thighs was first suggested by Marsh et al.7 who reported the use of the femoral artery, vein and nerve for didactic purposes. This particular model expands the possibilities of training including structures different from the arteries; it permits the trainee to perform a variety of complex procedures such as vein grafts, nerve grafts or fascicular repairs. Jeong et al.8 Further studied Marsh’ chicken thigh model and its applications to the teaching of resident doctors. The authors analysed chicken tissue samples histologically and found that it presented similarities to human tissues. The time to perform an anastomosis by the trainee was significantly reduced by practice in their study. They concluded that “the femoral neurovascular bundles of chicken are an appropriate and effective model for teaching and practicing microsurgery”. In 2013 my colleagues and I9 published a microsurgical training regimen that combined both the chicken thigh and the chicken wing models; this approach benefits from the versatility of the chicken thighs and from the limited size of the chicken wing artery which can represent more of a challenge than the femoral vessels for the more advanced trainees.

On the current manuscript we describe step by step the process of setting up a microsurgical practice station; the materials required, how to dissect the neurovascular structures of each model and how to effectively apply the training regimen.

프로토콜

1. 준비 :

  1. 45 배 줌에 변수 3,5 X로, 탁상 스테레오 현미경을 확보, 200mm 작동 거리, 55-75mm 변수 간 동공 거리와 액세서리 링 라이트를 이끌었다. 유사한 현미경이 작은 테이블에 설정할 수 있습니다, 적절하고 매우 비용이.
  2. 모아 두 미세 수술 픽업, 하나 해부 가위, 한 바늘 드라이버와 미세 수술기구 세트를 준비; 이 필요 최소한이며, 이는 이러한 연습기구이며, 상한 품질 장비가 필요하지 않은 것으로 고려되어야한다.
  3. 모든 사례에 대해 9/0 모노 필라멘트 미세 봉합사를 사용합니다. 로컬 슈퍼마켓에서 닭 허벅지 또는 날개와 식품 착색제 시판 주문.
  4. 20 G의 angio-카테터 닭 대퇴 동맥에 개통 시험에 사용된다. 상완 동맥은 얇은 27 G 카테터가 필요합니다. 이들은 로컬 약국에서 인터넷을 통해 획득 될 수 있거나설정 악기. 식품 착색제를 주입 주사기 시판 구입.

2. 육안 해부 기술 :

  1. 대퇴 혈관에 대한 접근 방법은 간단합니다. 닭 허벅지를 들어, 무딘 해부 기술은 단지 대퇴골 간부에 내측 수행 뼈에서 대퇴 근육을 분리하고, 대퇴 동맥, 정맥 신경을 노출. 신경은 더 신경 수리 관행의 다른 유형에 대한 두 개의 다발로 해부 할 수 있습니다.
  2. 날개의 끝 부분까지 어깨, 가위로 길이 방향으로 피부를, 닭 날개에 닭 상완 동맥을 절개에 액세스하기 위해. 이두근과 삼두근 상완 사이에 실행하는 동맥을 관찰한다.

3. 권장 훈련식이 요법 :

  1. 대퇴 동맥과 훈련.
    주 : 훈련 요법의 첫 번째 단계는 닭 대퇴 동맥 연습한다.

  1. 현미경으로 조각을 배치하고 미세 수술 절개를 시작합니다. 기본 조직에서 대퇴 동맥 무료; 수평으로 나눕니다. adventicectomy을 수행합니다. 동맥 내강 위에 놓인 어떤 adventicia 트림 마이크로 픽업 및 마이크로 가위를 사용합니다. 일반 수돗물로 내부 루멘을 씻어. 시작 시간을 기록
  2. 문합을 종료 종료를 수행합니다.
    1. 운영자 반대측 동맥 뒷벽에 시작한다. 첫 번째 스티치를 놓고; 수직으로 작동하는 경우, 하측에 가로로 작동하는 경우, 좌측에 시작한다. 동맥의 외측 루멘으로부터 다음 동맥 내강쪽으로의 외부에서 바늘 합격.
    2. 스티치 타이 최초의 이중 매듭을 수행 한 다음 두 개의 싱글 교류 방향을 던졌습니다. 상기 기술로 전체 다시 벽을 완료합니다.
    3. 만약 하시다하고 있으면 가로 작업 또는 상측 경우 오른쪽부터수직 rking, 외측 루멘으로부터 다음 루멘 외부로부터 단일 스티치를 배치하고. 전술 한 바와 같이 매듭을 묶어. 3.1.2.2에 기재된 절차를 반복 전벽 완료.
    4. 이것은 당신이 시간 기록을 유지 할 수 있도록 마지막 시간을 기록, 그래서 당신은 당신의 진행을 제어 할 수 있습니다.
      주 : 저자는 하나의 방식으로 기술을 선호한다; 그러나 미세 수술 봉합사의 어떤 유형은 훈련 될 수있다. 그가 다른 임상 시나리오를 시도하기 전에 연수생이 방법으로 약 25 미세 수술 문합을 완료 것을 권장합니다. 이들은 정맥 동맥 갭위한 그 래프팅, 신경 수리 끝과 끝, 및 신경 갭의 치료를위한 정맥 도관의 사용을 포함한다. 이 훈련 방법으로 배울 수있는 미세 혈관 수술의 중요한 기술은없는 3.1.2.1에서와 같이 바늘을 수행하기 위해 계속 3.1.2.1로이 기술을 연수 진행을 수행 할 수 있지만, 스티치가 절단되지 않고, 연속 또는 실행 봉합입니다 그들에게 U 절단ntil는 전체 봉합사를 완성하고 마지막에 원래 스티치에 넥타이.

  1. 상완 동맥와 교육
    1. 현미경으로 조각을 놓습니다. 대퇴부 동맥에 대해 상술 한 바와 같이 절차를 완료.
      주 : 유일한 차이점은 크기입니다. 상완 동맥은 대퇴 동맥보다 훨씬 작고 문합은 상당히 도전이다.
  2. 개통 테스트
    1. 함께 모두 혈관 벽을 봉합 바늘에 의한 방해를 확인하기 위해, 문합을 통해 부드러운 20 27 G의 angio-카테터를 교차.
    2. 제트 누설 테스트하기 위해 동맥에 염료 angio-카테터의 끝으로 상용 식품 착색제와 주사기를 적용하고 관류
    3. 바늘, 자신의 병렬 처리 및 촬영 벽의 양을 시각화하기 위해 길이 방향으로 동맥을 엽니 다.

결과

저자는 본 교육 방법으로 자신의 시간을 chronometered하고 크게 세 번째 주말에 대퇴 동맥의 문합 시간을 단축하기 위해 그것을 보았다. 연수생은 자신의 시간, 자신의 개통 비율과 그의 바늘의 정렬을 체크하여 자신의 기술에 개선을 제어 할 수 있습니다. 이 논문에 설명 된 시스템으로는 탁상 현미경 및 미세 수술 도구의 세트를 포함하고도 1에 도시되어있다. 거시적 해부은 그림 2와 3 대퇴 동맥 미...

토론

The clinical practice of microsurgery requires a continuous practice and a high level of expertise; it’s applications include free flaps, replantation and revascularization procedures, intracranial – extracranial anastomoses for neurosurgical procedures, peripheral nerve surgery and others. In spite of the wide variety of procedures that require microsurgical techniques, some of them are seldom performed in many centers. The surgeons therefore need sometimes to maintain their skill level rehearsing the surge...

공개

The authors have nothing to disclose.

감사의 말

The authors have no acknowledgements.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
StereomicroscopeAmscopeSM-1BXMicroscope
Led lightAmscopeLED-80S-YAillumination system
Microsurgical instruments setChen hen microsurgical instrumentsHC- X803-1Microsurgical instruments
Microsurgical suturesS/T microsurgical9/0 SutureSutures

참고문헌

  1. Lee, S. Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation. Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).
  2. Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).
  3. Olabe, J., Olabe, J., Sancho, V. Human cadaveric infusión model for neurosurgical training. Surg Neurol. 72, 700-702 (2009).
  4. Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R. Microsilicone anastomoses. Ann Plast Surg. 10 (4), 331-332 (1983).
  5. Gluer, N. M., Rao, G. S. Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery. Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).
  6. Hino, A. Training in microvascular surgery using a Chicken wing artery. Neurosurgery. 52 (6), 1495-1498 (2003).
  7. Marsh, D. J., Norton, S. E., Mok, J., Patel, H. D., Chen, H. C. Microsurgical training the Chicken thigh model. Ann Plast Surg. 59 (3), 355-356 (2007).
  8. Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics. Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).
  9. Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. Microsurgical training regimen with nonliving chicken models. Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).
  10. Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model. Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).
  11. Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant. Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).

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