Schritt für Schritt: Mikrochirurgische Trainingsmethode die Kombination von zwei nicht lebenden Tiermodellen

Zusammenfassung

Here we describe how to set up a small microsurgical practice station and a simple and inexpensive method for the training of microsurgery with non-living animal models.

Zusammenfassung

The learning of microsurgical techniques and the maintenance of microsurgical skills have been traditionally based on the use of living animals, mainly laboratory rats. This method although extremely valuable can be economically demanding both for the surgeon and the sponsoring institution; it also requires special training facilities that may not always be available or accessible. Furthermore ethical concerns can limit the use of living animals for training purposes. Alternative training methods, such as inert tubes and gloves have not gained popularity among surgeons since they do not offer an experience similar to that of a clinical situation. Non-living animal models include the use of chicken thighs and wings; they offer a practice experience that resembles a clinical situation to a considerable extent. This type of training is relatively cheap and easily available. The microscope and instruments required can be acquired over the internet, and the chicken pieces can be bought at the local supermarket.

This approach allows a motivated trainee to rehearse different types of surgical techniques several times at a reasonable expense, helping to develop or maintain his surgical expertise if more complex facilities are not available. On the current manuscript we describe how to setup a small practice station, how to dissect the specimens, and how to practice both with the chicken thighs and with the chicken wings in a progressive fashion. This approach takes advantage on the versatility of the chicken thigh model and the small size of the chicken wing Brachial artery.

Einleitung

An ample array of training models have been described for the learning and maintenance of both basic and advanced microsurgical skills. These include living animals^1,2, human cadaveric specimens³, inert models^4,5 and non-living animal models^6-9.The Living animal models, specifically those using rats have been extensively used in the teaching of microsurgery ^1,2; and they are considered the current gold standard of training. In spite of their remarkable instructive value, when an intensive or prolonged training is required; economical and ethical concerns can hinder their practical usage.

Cadaveric models³ offer the opportunity to practice in an environment similar to that of the actual clinical situation; they are unfortunately restricted to anatomy labs and similar facilities, a microscope must be available at the lab as well; these models are therefore not widely available. Inert models such as rubber tubes, or gloves^4,5 are cheap, and easily accessible, the required equipment for their application is minimal. The resemblance to a clinical situation is tenuous however; and their application is generally limited to the introductory stages of training, before the trainee starts practicing on rats. To the best of our knowledge Hino⁶ was the first to propose the use of non-living chicken for the development and maintenance of clinical microsurgical skills. His model is based on the extraction and subsequent usage of the chicken brachial artery from commercial chicken wings. This approach does not need institution review board approval, rodent anaesthesia, laboratory technicians or postoperative care.

Following Hino´s description of the chicken wing artery model numerous other nonliving animal models were published. The use of commercial chicken thighs was first suggested by Marsh et al.⁷ who reported the use of the femoral artery, vein and nerve for didactic purposes. This particular model expands the possibilities of training including structures different from the arteries; it permits the trainee to perform a variety of complex procedures such as vein grafts, nerve grafts or fascicular repairs. Jeong et al.⁸ Further studied Marsh’ chicken thigh model and its applications to the teaching of resident doctors. The authors analysed chicken tissue samples histologically and found that it presented similarities to human tissues. The time to perform an anastomosis by the trainee was significantly reduced by practice in their study. They concluded that “the femoral neurovascular bundles of chicken are an appropriate and effective model for teaching and practicing microsurgery”. In 2013 my colleagues and I⁹ published a microsurgical training regimen that combined both the chicken thigh and the chicken wing models; this approach benefits from the versatility of the chicken thighs and from the limited size of the chicken wing artery which can represent more of a challenge than the femoral vessels for the more advanced trainees.

On the current manuscript we describe step by step the process of setting up a microsurgical practice station; the materials required, how to dissect the neurovascular structures of each model and how to effectively apply the training regimen.

Protokoll

1. Vorbereitung:

1. Besorgen Sie sich eine Tischstereomikroskop, mit einer variablen 3,5 x bis 45x Zoom, 200 mm Arbeitsabstand, 55 bis 75 mm variable Interpupillenabstand und ein Zubehör LED-Ringlicht. Alle ähnlichen Mikroskop ist ausreichend, es kann bis auf einen kleinen Tisch gesetzt werden und ist nicht sehr teuer.
2. Sammeln und bereiten eine Reihe von mikrochirurgischen Instrumenten mit zwei mikro Pickups, einen Seziertisch Schere und eine Nadel-Treiber; dies ist die erforderliche Mindest, muss berücksichtigt werden, dass diese Praxis Instrumente und High-End-Qualität Instrumente werden nicht benötigt.
3. Verwenden Sie 9/0 Monofilament Mikronaht für alle Praktiken. Kaufen Sie im Supermarkt im Handel erhältlich Hähnchenschenkel oder Flügel und Lebensmittelfarbstoff.
4. A 20 G Angio-Katheter für die Durchgängigkeit Tests an den Hühnerbeinschlagadern eingesetzt. Für die Brachial Arterien ein dünner Katheter 27 G erforderlich ist. Diese können über das Internet in einem örtlichen Apotheke erworben werden odermit den Instrumenten gesetzt. Kaufen Sie einen handelsüblichen Spritze, um die Lebensmittelfarbstoff zu injizieren.

2. makroskopische Präparation Techniken:

1. Die Annäherung an den Femoralgefäße ist unkompliziert. Für Hähnchenschenkel, führen Sie eine stumpf Technik nur zum Femurschaft medial, trennen Sie die Oberschenkelmuskel vom Knochen und setzen die Oberschenkelarterie, Vene und Nerv. Der Nerv kann weiter in zwei getrennten Faszikel für verschiedene Arten von Nervenreparatur Praktiken seziert werden.
2. Um den chicken A. brachialis in den Hühnerflügel in Längsrichtung mit einer Schere bis zur Spitze des Flügels zuzugreifen, einzuschneiden die Haut, von der Schulter. Beachten Sie die Arterie, die zwischen dem Bizeps und Trizeps.

3. Empfohlene Trainingsprogramm:

1. Training mit der Oberschenkelarterie.
   HINWEIS: Der erste Schritt in dem Trainingsprogramm ist, mit dem Huhn Femoralarterie praktizieren.

1. Legen Sie das Stück unter dem Mikroskop und starten Sie die mikrochirurgische Dissektion. Befreien Sie die Oberschenkelarterie aus dem darunter liegenden Gewebe; und teilen sie horizontal. Führen Sie eine adventicectomy. Mithilfe der Mikro-Pickups und Mikro-Schere, jede adventicia die über den arteriellen Lumen trimmen. Spülen Sie das innere Lumen mit normalem Leitungswasser. Notieren Sie sich die Startzeit
2. Führen Sie ein Ende Anastomose beenden.
   1. Beginnen an der Rückwand der Arterie auf der Seite gegenüber dem Betreiber. Setzen Sie den ersten Stich; beginnen auf der linken Seite, wenn horizontal arbeiten, auf der unteren Seite, wenn vertikal arbeitet. Passieren die Nadel von der Außenseite der Arterie gegen das Lumen und aus dem Lumen zur Außenseite der Arterie.
   2. Binden Sie die Masche, führen Sie zunächst einen doppelten Knoten, und klicken Sie dann zwei Einzel wirft wechselnden Richtungen. Füllen Sie die gesamte Rückwand mit der oben beschriebenen Technik.
   3. Beginnend auf der rechten Seite, wenn Sie horizontal arbeiten oder die obere Seite, wenn Sie wo sindrking vertikal halten, setzen einen einzelnen Stich von außen in das Lumen und aus dem Lumen nach außen. Den Bund fürs Leben, wie oben beschrieben. Schließen Sie die vordere Wand Wiederholung der in 3.1.2.2 beschriebenen Vorgehensweise.
   4. Notieren Sie sich die letzte Zeit dies ermöglicht es Ihnen, einen Rekord zu halten, so dass Sie Ihre Progression zu steuern.
      HINWEIS: Die Autoren bevorzugen eine einfache Fahrt up-Technik; aber jede Art von mikrochirurgischen Naht kann geprobt werden. Es ist empfehlenswert, dass der Auszubildende vervollständigt rund 25 mikrochirurgischen Anastomosen auf diese Weise, bevor er anderen klinischen Szenarien versuchen. Diese umfassen Venentransplantation für die arterielle Lücken Ende an Nerven Reparatur zu beenden und die Verwendung von Venenleitungen für die Behandlung von Nervenlücken. Eine wichtige Technik in mikrovaskulären Chirurgie, die mit dieser Trainingsmethode erlernt werden kann, ist die kontinuierliche oder fortlaufende Naht, um diese Technik der Auszubildende läuft wie 3.1.2.1 durchzuführen, aber der Stich nicht geschnitten wird, weiterhin Stiche wie in 3.1.2.1 ohne führen Schneiden Sie until Sie die ganze Naht abzuschließen und binden Sie es auf die ursprüngliche Masche am Ende.

2. Training mit der Arteria brachialis
   1. Legen Sie das Stück unter dem Mikroskop. Vervollständigen die wie oben für die Femoralarterie beschriebenen Vorgehensweise.
      HINWEIS: Der einzige Unterschied ist die Größe. Oberarmarterie ist viel kleiner als die Femoralarterie und die Anastomose ist wesentlich schwieriger.
3. Durchgängigkeit Tests
   1. Überqueren Sie eine glatte 20 oder 27 G Angio-Katheter durch die Anastomose, um Hindernisse durch Stiche Nähen beide Gefäßwände zusammen verursacht überprüfen.
   2. Tragen Sie eine Spritze mit kommerziellen Lebensmittelfarbstoff, um zum Ende des Angio-Katheter und perfundieren Farbstoff in die Arterie, für jet Dichtheitsprüfung
   3. Öffnen Sie die Arterie in Längsrichtung, um die Maschen, die Parallelität und die Höhe der Wand genommen zu visualisieren.

Ergebnisse

Die Autoren haben ihre Zeiten der vorliegenden Trainingsmethode chronometered und es gesehen, um die Anastomose Zeiten für eine Femoralarterie am Ende der dritten Woche signifikant reduzieren. Der Auszubildende kann die Verbesserungen an seiner Technik, indem Sie seine Zeit, seine Durchgängigkeit Prozentsätze und die Ausrichtung seiner Maschen zu steuern. Die in diesem Manuskript beschriebene System ist in Figur 1 dargestellt er einen Tischmikroskop und einen Satz von mikrochirurgischen Instrumente. Die makroskopisch...

Diskussion

The clinical practice of microsurgery requires a continuous practice and a high level of expertise; it’s applications include free flaps, replantation and revascularization procedures, intracranial – extracranial anastomoses for neurosurgical procedures, peripheral nerve surgery and others. In spite of the wide variety of procedures that require microsurgical techniques, some of them are seldom performed in many centers. The surgeons therefore need sometimes to maintain their skill level rehearsing the surge...

Materialien

Name	Company	Catalog Number	Comments
Stereomicroscope	Amscope	SM-1BX	Microscope
Led light	Amscope	LED-80S-YA	illumination system
Microsurgical instruments set	Chen hen microsurgical instruments	HC- X803-1	Microsurgical instruments
Microsurgical sutures	S/T microsurgical	9/0 Suture	Sutures