2非生物の動物モデルを組み合わせた顕微トレーニング方法：ステップバイステップ

要約

Here we describe how to set up a small microsurgical practice station and a simple and inexpensive method for the training of microsurgery with non-living animal models.

要約

The learning of microsurgical techniques and the maintenance of microsurgical skills have been traditionally based on the use of living animals, mainly laboratory rats. This method although extremely valuable can be economically demanding both for the surgeon and the sponsoring institution; it also requires special training facilities that may not always be available or accessible. Furthermore ethical concerns can limit the use of living animals for training purposes. Alternative training methods, such as inert tubes and gloves have not gained popularity among surgeons since they do not offer an experience similar to that of a clinical situation. Non-living animal models include the use of chicken thighs and wings; they offer a practice experience that resembles a clinical situation to a considerable extent. This type of training is relatively cheap and easily available. The microscope and instruments required can be acquired over the internet, and the chicken pieces can be bought at the local supermarket.

This approach allows a motivated trainee to rehearse different types of surgical techniques several times at a reasonable expense, helping to develop or maintain his surgical expertise if more complex facilities are not available. On the current manuscript we describe how to setup a small practice station, how to dissect the specimens, and how to practice both with the chicken thighs and with the chicken wings in a progressive fashion. This approach takes advantage on the versatility of the chicken thigh model and the small size of the chicken wing Brachial artery.

概要

An ample array of training models have been described for the learning and maintenance of both basic and advanced microsurgical skills. These include living animals^1,2, human cadaveric specimens³, inert models^4,5 and non-living animal models^6-9.The Living animal models, specifically those using rats have been extensively used in the teaching of microsurgery ^1,2; and they are considered the current gold standard of training. In spite of their remarkable instructive value, when an intensive or prolonged training is required; economical and ethical concerns can hinder their practical usage.

Cadaveric models³ offer the opportunity to practice in an environment similar to that of the actual clinical situation; they are unfortunately restricted to anatomy labs and similar facilities, a microscope must be available at the lab as well; these models are therefore not widely available. Inert models such as rubber tubes, or gloves^4,5 are cheap, and easily accessible, the required equipment for their application is minimal. The resemblance to a clinical situation is tenuous however; and their application is generally limited to the introductory stages of training, before the trainee starts practicing on rats. To the best of our knowledge Hino⁶ was the first to propose the use of non-living chicken for the development and maintenance of clinical microsurgical skills. His model is based on the extraction and subsequent usage of the chicken brachial artery from commercial chicken wings. This approach does not need institution review board approval, rodent anaesthesia, laboratory technicians or postoperative care.

Following Hino´s description of the chicken wing artery model numerous other nonliving animal models were published. The use of commercial chicken thighs was first suggested by Marsh et al.⁷ who reported the use of the femoral artery, vein and nerve for didactic purposes. This particular model expands the possibilities of training including structures different from the arteries; it permits the trainee to perform a variety of complex procedures such as vein grafts, nerve grafts or fascicular repairs. Jeong et al.⁸ Further studied Marsh’ chicken thigh model and its applications to the teaching of resident doctors. The authors analysed chicken tissue samples histologically and found that it presented similarities to human tissues. The time to perform an anastomosis by the trainee was significantly reduced by practice in their study. They concluded that “the femoral neurovascular bundles of chicken are an appropriate and effective model for teaching and practicing microsurgery”. In 2013 my colleagues and I⁹ published a microsurgical training regimen that combined both the chicken thigh and the chicken wing models; this approach benefits from the versatility of the chicken thighs and from the limited size of the chicken wing artery which can represent more of a challenge than the femoral vessels for the more advanced trainees.

On the current manuscript we describe step by step the process of setting up a microsurgical practice station; the materials required, how to dissect the neurovascular structures of each model and how to effectively apply the training regimen.

プロトコル

1.準備：

1. 45Xズームに変数3,5 xは、卓上ステレオ顕微鏡を取得し、200ミリメートル作動距離、55〜75ミリメートル変数間瞳孔距離とアクセサリは、リングライトを導きました。任意の同様の顕微鏡は、それが小さなテーブルの上に設定することができ、適切であると非常に高価ではありません。
2. 収集し、2顕微ピックアップ、1解剖はさみ、一針ドライバで顕微楽器のセットを用意。これは必要最低限​​で、これらは、実際の機器であることを考慮しなければならず、ハイエンド品質の機器が必要とされません。
3. すべての実践のための9/0モノフィラメントマイクロ縫合糸を使用してください。地元のスーパーで市販されている鶏の太ももや翼と食品着色剤を購入します。
4. 20gの血管カテーテルはニワトリ大腿動脈に開通性試験のために使用されます。上腕動脈のために、より薄い27 Gカテーテルが必要とされています。これらは地元の薬局で、インターネット上で取得することができますか設定の楽器で。食品着色剤を注入するために、市販の注射器を購入。

2.肉眼解剖技術：

1. 大腿血管へのアプローチは簡単です。鶏もも肉の場合、大腿骨軸にちょうど内側鈍的切開法を行い、骨から大腿筋を分離し、大腿動脈、静脈や神経を露出。神経はさらに神経修復の実践の異なるタイプのための2つの別々の繊維束に切断することができます。
2. 手羽先に鶏の上腕動脈にアクセスするためには、肩から上翼の先端に、はさみで縦方向に皮膚を切開。上腕二頭筋と上腕三頭の間を走る動脈を観察します。

3.推奨トレーニング計画：

1. 大腿動脈とトレーニング。
   注：トレーニング計画の最初のステップは、鶏大腿動脈に練習することです。

1. 顕微鏡下でピースを配置し、顕微解剖を開始します。下にある組織から大腿動脈を解放。と水平方向に分割します。 adventicectomyを実行します。動脈内腔を覆う任意のadventiciaをトリミングするマイクロピックアップやマイクロはさみを使用してください。定期的な水道水で内腔を洗い流します。開始時間を書​​き留めます
2. 吻合をエンドツーエンドを実行します。
   1. オペレータとは反対側の動脈の背壁に開始します。最初のステッチを配置。垂直方向に作業している場合下側に、水平に作業している場合、左側に開始します。内腔に向かって、その後、内腔からの動脈の外側に動脈の外から針を渡します。
   2. ステッチを結ぶ、最初の二重結び目を実行し、2単一が交互に方向をスローします。上記の技術では、全体のバック壁を完了します。
   3. あなたが水平に作業または上側されている場合は、woのであれば、右サイドの起動垂直rking、内腔にした後、内腔から外に外部からシングルステッチを配置します。上記のように結び目を作ります。 3.1.2.2に記載された手順を繰り返す前壁を完了します。
   4. これはあなたの進行を制御することができるようにあなたは、時間の記録を保持することができます最終的な時間を書き留めます。
      注：著者は技術を一つの方法を好みます。しかし、顕微手術縫合糸の任意のタイプを練習することができます。それは彼が他の臨床シナリオを試すことができます前に、トレーニング者がこのようにして約25顕微吻合を完了することが推奨されます。これらは、静脈、動脈ギャップに対する移植、神経の修復を終了する終了、および神経ギャップの治療のための静脈管路の使用を含みます。このトレーニング方法で学習することができる微小血管手術において重要な技術は、3.1.2.1のようにこの技術を研修生が進行を行うために、連続的または連続縫合であるが、シュティッヒはなしで3.1.2.1のようにステッチを実行するために継続し、切断されていませんそれらuを切断ntilあなたは全体の縫合糸を完了し、終了時に元のステッチにそれを結びます。

2. 上腕動脈とトレーニング
   1. 顕微鏡下で作品を配置します。大腿動脈のために上記のような手順を実行します。
      注：唯一の違いはサイズです。上腕動脈は大腿動脈よりもはるかに小さく、吻合はかなり困難です。
3. 開通試験
   1. 一緒に両方の血管壁を縫合ステッチによって引き起こされる障害物を確認するために、吻合を介して滑らかに20または27のGアンギオカテーテルを渡ります。
   2. アンギオカテーテルの端部に市販食品の着色剤と注射器を適用し、ジェット漏れをテストするために動脈に色素を灌流
   3. ステッチ、その並列性と撮影した壁の量を可視化するために、長手方向に動脈を開きます。

結果

著者は、現在のトレーニング方法で自分の時間をchronometeredており、大幅に第3週の終わりに大腿動脈のための吻合時間を短縮するためにそれを見てきました。研修生は、彼の時代、彼の開存率と彼の縫い目の位置合わせをチェックすることによって、彼の技術の改良を制御することができます。本稿に記載されたシステムは、それが卓上顕微鏡顕微器具のセットを含む、図1に示されています?...

ディスカッション

The clinical practice of microsurgery requires a continuous practice and a high level of expertise; it’s applications include free flaps, replantation and revascularization procedures, intracranial – extracranial anastomoses for neurosurgical procedures, peripheral nerve surgery and others. In spite of the wide variety of procedures that require microsurgical techniques, some of them are seldom performed in many centers. The surgeons therefore need sometimes to maintain their skill level rehearsing the surge...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Stereomicroscope	Amscope	SM-1BX	Microscope
Led light	Amscope	LED-80S-YA	illumination system
Microsurgical instruments set	Chen hen microsurgical instruments	HC- X803-1	Microsurgical instruments
Microsurgical sutures	S/T microsurgical	9/0 Suture	Sutures