A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Method Article
يصف هذا البروتوكول استخدام فحص رامزي لقياس معدلات إفراز السوائل من معزولة مالبيغي (الكلى) الأنابيب من ذبابة الفاكهة السوداء البطن. وبالإضافة إلى ذلك، فإن استخدام أقطاب أيون محددة لقياس تركيزات الصوديوم والبوتاسيوم في السائل يفرز، مما يتيح حساب تدفق بطريق الظهارة أيون، يوصف.
تعديل الكلوي النقل أيون الظهارية يسمح الكائنات الحية للحفاظ على التوازن الأيوني والاسموزي في مواجهة الظروف الخارجية متفاوتة. يقدم ذبابة الفاكهة السوداء البطن مالبيغي (الكلى) أنبوب صغير فرصة لا مثيل لها لدراسة الآليات الجزيئية لنقل أيون الظهارية، وذلك بسبب الوراثة قوية من هذا الحي وسهولة الحصول على الأنابيب في الكلى لدراسة فسيولوجية. هنا، نحن تصف استخدام فحص رامزي لقياس معدلات إفراز السوائل من ذبابة معزولة الأنابيب الكلوية، مع استخدام أقطاب أيون محددة لقياس تركيزات الصوديوم والبوتاسيوم في السائل المفرز. يسمح هذا الاختبار دراسة السوائل بطريق الظهارة والأيونات تدفقات ~ 20 الأنابيب في كل مرة، دون الحاجة لنقل السوائل تفرز لجهاز منفصل لقياس تركيزات أيون. وراثيا الأنابيب متميزة يمكن تحليلها لتقييم دور جينات معينة في عمليات النقل. بالإضافة إلى ذلك، بيمكن تعديل athing المالحة لدراسة آثار خصائصه الكيميائية، أو المخدرات أو الهرمونات المضافة. باختصار، هذه التقنية تسمح للالتوصيف الجزيئي من الآليات الأساسية للنقل الظهارية أيون في أنبوب صغير ذبابة الفاكهة، فضلا عن تنظيم آليات النقل هذه.
الكلوي النقل أيون الظهارية راء iono- العضوي، التنظيم الاسموزي. يقدم ذبابة الفاكهة السوداء البطن مالبيغي (الكلى) أنبوب صغير فرصة لا مثيل لها لدراسة الآليات الجزيئية لنقل أيون الظهارية. ويرجع ذلك إلى مزيج من الوراثة قوية من ذبابة الفاكهة، وإرفاقها مع إمكانية الوصول إلى الأنابيب الكلوية لها لدراسة فسيولوجية هذا. فحص رامزي، الذي سمي على اسم المحقق الذي كان رائدا في تقنية 1، يقيس معدلات إفراز السوائل من الأنابيب مالبيغي معزولة، وتأسست في ذبابة الفاكهة في عام 1994 من قبل شركة داو وزملاؤه 2. هذا مهد الطريق لمزيد من الدراسات باستخدام ذبابة الفاكهة الأدوات الوراثية، مثل نظام GAL4-UAS 3،4، لتحديد مسارات الإشارات خلية محددة تنظم إفراز السوائل. ويشمل على سبيل المثال يشير الكالسيوم في استجابة لهرمون الببتيد 5، وغيرها الكثير 6،7.
وقد أظهرت ve_content "> مزيج من التقنيات الوراثية ودراسة فسيولوجية الكلاسيكية التي الجيل البول في حدوث الطاير من خلال إفراز البوتاسيوم كلوريد الغنية السوائل من الجزء الرئيسي من أنبوب صغير. وهذا يحدث من خلال إفراز بطريق الظهارة مواز من الكاتيونات، في المقام الأول K + ولكن أيضا نا +، من خلال الخلية الأساسية، والكلورين - إفراز من خلال الخلايا النجمية 8-12 القدرة على قياس حدة بطريق الظهارة K + والصوديوم + تدفقات يسمح توصيف أكثر تفصيلا لآليات النقل من قياس إفراز السوائل وحده. على سبيل المثال، في الأنابيب ذبابة الفاكهة unstimulated، نا + / K + إطعام الفئران المانع ابائين ليس له تأثير على إفراز السوائل 2، حتى عندما يتم تثبيط امتصاص حيز الخلايا الرئيسية التي العضوية نقل أنيون المانع توروكولات 13. ومع ذلك، لينتون و أظهر أودونيل أن ابائين depolarizesإمكانات غشاء basolateral، ويزيد نا + تدفق 9. كما هو مبين في ممثل النتائج، ونحن تكرار هذه النتائج، وأظهرت أن K + تدفق هو انخفضت بصورة متزامنة 14؛ زيادة نا + التمويه وانخفض K + تدفق لها آثار معارضة على إفراز السوائل، مما أدى إلى عدم التغير الصافي في إفراز. وبالتالي، هناك قرارين ل"مفارقة ابائين"، أي مراقبة الأولية التي ابائين له أي تأثير على إفراز السائل في أنبوب صغير ذبابة الفاكهة: أولا، في الأنابيب حفز، وتأثير ابائين على إفراز السوائل غير واضح نظرا ل امتصاص من قبل الناقل أنيون العضوية 13؛ وثانيا، في الأنابيب unstimulated، ابائين ومعارضة الآثار على بطريق الظهارة نا + K + والتمويه، مما أدى إلى عدم التغير الصافي في إفراز السائل (انظر ممثل النتائج والمرجع 9). ولذلك، فإن الدور الرئيسي للنا + / K + -ATPبورصة عمان في الأنابيب unstimulated هو خفض داخل الخلايا نا + تركيز لتوليد التدرج تركيز مواتية لنا + -coupled عمليات النقل عبر الغشاء basolateral. في الواقع، عن طريق قياس حدة نا + وK + التدفقات، أثبتنا أن الأنابيب التي تفتقر إلى cotransporter ذبابة الصوديوم والبوتاسيوم-2-كلوريد (NKCC) قد انخفضت K بطريق الظهارة + التمويه، مع عدم وجود مزيد من الانخفاض بعد ابائين بالإضافة إلى ذلك، وأي تغيير في بطريق الظهارة غ + تدفق 14. وأيدت هذه النتائج استنتاجنا أن نا + دخول الخلية من خلال NKCC يتم إعادة تدويرها من خلال نا + / K + إطعام الفئران. وفي مثال آخر، Ianowski وآخرون. لاحظ أن خفض حمام K + تركيز من 10 ملم إلى 6 ملم انخفض بطريق الظهارة K + تدفق وزيادة بطريق الظهارة نا + تدفق في الأنابيب من الرادنة prolixus، مع عدم وجود صافي التغير في إفراز السوائل 15. كما لوحظت آثار تفاضلية على نا + التمويه وK + تدفق عبر الأنابيب اليرقات في الأنابيب ذبابة الفاكهة ردا على متفاوتة حمية الملح 16 و في نوعين من أنواع البعوض ردا على تربية ملوحة 17.التحدي الأكبر في قياس تدفق بطريق الظهارة أيون في إعداد مقايسة رامزي هو تحديد تركيزات الأيونات داخل السائل المفرز. وقد اجتمع هذا التحدي مع حلول مختلفة، بما في ذلك اللهب photometery 18، واستخدام أيونات المشعة 19، والإلكترون التحقيق الطول الموجي التحليل الطيفي والتشتت 20. هذه التقنيات تتطلب نقل قطرة السائل يفرز إلى أداة لقياس تركيزات أيون. منذ حجم السوائل التي يفرزها ذبابة الفاكهة أنبوب صغير unstimulated صغيرة، وعادة ~ 0.5 NL / دقيقة، وهذا يشكل تحديا تقنيا وأيضا يقدم الخطأ إذا كان بعض من السائل يفرز هوفقدت عند نقله. في المقابل، فإن استخدام أقطاب أيون محددة يسمح بقياس نشاط أيون (من الذي يمكن حساب تركيز أيون) في الموقع. تم تعديل البروتوكول الحالي من تلك المستخدمة من قبل Maddrell والزملاء لقياس بطريق الظهارة K + تدفق عبر أنبوب صغير الرادنة باستخدام valinomycin باسم K + حامل الأيون 21، ويصف أيضا استخدام -butylcalix 4- ثالثي [4]، دآرين tetraacetic حمض رابع إيثيل نا القائم على استر + -specific القطب أيون محددة تتميز Messerli وآخرون. آل 22. كما تم استخدام أقطاب أيون محددة لقياس تركيزات الأيونات في السوائل التي يفرزها الأنابيب مالبيغي في فحص رامزي في الكبار 9،23 واليرقات 16 ذبابة الفاكهة السوداء البطن، ونيوزيلندا جبال الألب يتا (Hemideina الماوري) 24 و 17 في البعوض.
هنا، نحن تصف بالتفصيل استخدام رامزي كماأقول لقياس معدلات إفراز السوائل في الأنابيب مالبيغي من ذبابة الفاكهة، فضلا عن استخدام أقطاب أيون محددة لتحديد تركيزات K + و + نا داخل السائل المفرز وبالتالي احتساب التدفقات بطريق الظهارة أيون. وتقدم لمحة عامة عن الفحص في الشكل 1.
الشكل 1. تخطيطي لمالبيغي الأنابيب الصغيرة والفحص رامزي مع استخدام ايون محددة أقطاب لقياس تركيزات الأيونات. ويوضح هذا الرقم الإعداد لفحص رامزي. (A) كل ذبابة أربعة الأنابيب، وزوج من الأنابيب الأمامية وزوج من الأنابيب الخلفية، التي تطفو في تجويف البطن وتحيط بها الدملمف. في كل زوج، والأنابيب اثنين من الانضمام في الحالب، والتي ثم يفرغ البول عند تقاطع المعي المتوسط وhindguت. الأنابيب عمياء العضوية. يتم إنشاء البول عن طريق القطاع الرئيسي إفراز السائل (كما هو موضح باللون الأحمر)، ويتدفق نحو الحالب والخروج إلى الأمعاء. بعد تشريح، وفصل الزوج أنبوب صغير من الأمعاء عن طريق transecting الحالب. (B) ثم يتم نقل زوج من الأنابيب إلى قطرة من الاستحمام المالحة داخل بئر للطبق الفحص. واحدة من الأنابيب اثنين، المشار إليها هنا باسم "مرساة أنبوبية،" هو التفاف حول مسمار معدني وغير خامل. نبيب الآخر هو أنبوب صغير إفراز. يبقى الجزء الأول (الذي لا تفرز السائل) والجزء الرئيسي من أنبوب صغير إفراز داخل قطرة من الاستحمام المالحة. الأيونات وتحرك المياه المالحة من الاستحمام وداخل تجويف أنبوب صغير من الجزء الرئيسي، ومن ثم تتحرك نحو الحالب، كما يمكن أن تحدث في الجسم الحي. الجزء السفلي (الأزرق) هو خارج المالحة الاستحمام، وبالتالي خاملة. منذ يتم قطع الحالب، السائل يفرز كما يظهر قطرات من نهاية قطع من الحالب. تانه يفرز السائل قطرات يوسع على مر الزمن مع استمرار إفراز، ويتم قياس قطرها باستخدام ميكرومتر بصري. هناك طبقة من الزيت المعدني يمنع تبخر السوائل تفرز. الأقطاب محددة المرجعية وأيون قياس تركيز أيون السائل المفرز. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
1. إعداد تشريح والمعايرة والفحص أطباق
ملاحظة: في هذه الخطوة، تم إعداد ثلاثة أطباق بتري البلاستيكية اصطف مع سيليكون المطاط الصناعي: واحد للتشريح، واحدة لأداء الفحص رامزي ("طبق فحص")، واحد لأداء المعايرة. وهذه الأطباق إعادة استخدامها من تجربة إلى تجربة، وبالتالي هذه الخطوة يحتاج فقط إلى أن تتكرر إذا فواصل الطبق. ويظهر صورة لطبق فحص في الشكل 2.
الشكل 2. طبق الفحص. ويرد الطبق المستخدمة في فحص رامزي هنا. فمن طبق بتري 10 سم الذي اصطف مع سيليكون المطاط الصناعي. نحتت بين 20 و 25 بئرا من المطاط الصناعي. A مسمار معدني Minutien، وقطع في نصف، يتم وضعها على يمين كل بئر (أو إلى اليسار، وإذا أعسر مجرب).TPS: //www.jove.com/files/ftp_upload/53144/53144fig2large.jpg "الهدف =" _ فارغة "> الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 3. قص الدبابيس Minutien. تصطف دبابيس حتى على قطعة من الشريط وضع العلامات في نفس الوقت. ثم، يتم استخدام مقص لقطع من المسامير في النصف.ge.jpg مرحبا "الهدف =" _ فارغة "> الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
2. إعداد الجميلة زجاج قضبان
ملاحظة: في هذه الخطوة، يتم إعداد قضيب الزجاج التي سيتم استخدامها لنقل الأنابيب من الطبق تشريح في انخفاض الاستحمام. إعادة استخدامها قضيب الزجاج من تجربة إلى تجربة، حتى يتم تنفيذ هذه الخطوة مرة واحدة فقط ما لم يلزم فواصل قضيب واحدة جديدة.
3. إعداد فسيولوجيا
ملاحظة: في هذه الخطوة، المجهر، يتم تعيين الدائرة الكهربية والكهربائية يصل. بخلاف الدوري إعادة chloriding (الخطوة 3.2) من أسلاك الفضة وإعادة معايرة للالكهربية (الخطوة 3.8)، يتم تنفيذ هذه الخطوة مرة واحدة فقط. الشكل 4 يوضح الإعداد.
الرقم 4. إعداد علم وظائف الأعضاء. هو صورة الإعداد علم وظائف الأعضاء هنا. (A) نظرة عامة حول الإعداد. يتم وضع stereomicroscope داخل قفص فاراداي مع micromanipulators على أي من الجانبين. هي الخيوط والألياف البصرية ضوء من خلال ثقب في جانب من قفص فاراداي. يتم وضع الكهربية خارج قفص فاراداي. (B) إلى كلوريد معطف الأسلاك الفضة، هي مغمورة السلك في التبييض. (C) عن قرب من الإعداد. صاحب مسرى مكروي على التوالي، كما هو موضح في هذه الصورة على اليسار، ومترابطة على التحقيق من الكهربية. وبعد ذلك يتم الخيوط القطب أيون محددة عبر السلك من الفضة في حامل الكهربائي. على اليمين، والخيوط القطب الإشارة عبر السلك الفضي لصاحب مسرى مكروي 45 درجة. ثم يجب أن تقوم على أساس الدائرة بشكل مناسب. ويرد الطبق الفحص كما سيتم وضعه عند إجراء القياسات. الرجاءانقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
4. إعداد تشريح وحمام حلول
5. جعل القطب الأيوني المحدد: Silanizing Pipets
ملاحظة: في هذه الخطوة، يتم استخدام dichlorodimethylsilane على محمل الجد "silanize" القطب أيون محددة. وهذا يضيف طبقة مسعور الى الداخل من القطب التي تتيح لها الإبقاء على حامل الأيون مسعور. يتم تجنب silanization المفرطة لمنع امتصاص الزيوت المعدنية عند اتخاذ مeasurements في قطرات تحت النفط. أقطاب Silanized جيدة لعدة أسابيع. لذلك، يتم تنفيذ هذه الخطوة كل بضعة أسابيع.
5 "SRC =" / ملفات / ftp_upload / 53144 / 53144fig5.jpg "/>
الرقم 5. Silanizing Pipets. (A) مثال الماصة مجتذب. (B) صورة pipets سحبت على طبق ساخن. تم مقلوب طبق زجاجية تحتوي على قطرة من dichlorodimethylsilane على pipets انسحبت. (C) تخطيطي يوضح التفاعل بين كوكتيل حامل الأيون والحل الردم. واجهة مسطحة تشير silanization الأمثل. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
6. إعداد شفط جهاز سلبي
ملاحظة: في هذه الخطوة، يتم إعداد جهاز شفط سلبي بسيط (الشكل 6) التي سيتم استخدامها لملء القطب أيون محددة. يتم تنفيذ هذه الخطوة مرة واحدة فقط.
الرقم 6. شفط جهاز سلبية. صورة لمكونات جهاز شفط سلبي (3 مل المحاقن مع قفل بالتركيبة، 3 في اتجاه ومحبس بالتناوب مع ذوي الياقات البيضاء والحراسة، بالتركيبة الإناث قفل موصل مع نهاية الشائكة، وأنابيب السيليكون، وأنابيب من البلاستيك) و المنتج النهائي. الرجاء النقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
7. الذباب وجمع للتشريح < / P>
8. سد الكهربائي ايون محددة (ISE)
e_content "> ملاحظة: في هذه الخطوة، وردم وISE بمحلول الملح ثم يتم إدخال حامل الأيون في تلميح وISE يمكن إعادة استخدامها من يوم لآخر طالما أنها تعمل بشكل جيد لذلك، هذه الخطوة يقوم كل بضعة أيام حسب الحاجة.9. إعداد مرجع الكهربائي
ملاحظة: خطوات 9،1-9،3 يمكن أن يؤديها في وقت مبكر. خطوات 9.4 - 9.6 تتم كل يوم التجريبية.
10. معايرة ISE
ملاحظة: يتم تنفيذ هذه الخطوة ثلاث مرات في اليوم التجربة: في وقت مبكر من اليوم للتأكد من يعمل ISE، ثم قبل وبعد قياسات 20-25 قطرات السوائل تفرز (الجدول 3).
> 11. أنبوب صغير تشريح
ملاحظة: يتم تنفيذ هذه الخطوة في يوم التجربة.
12. إجراء القياسات
> ملاحظة: يتم تنفيذ هذه الخطوة في يوم التجربة.
13. الحسابات
ملاحظة: هذه الخطوة لا يمكن أن يؤديها إما في نهاية المطاف تجربة، أو في وقت لاحق.
14. تنظيف
ملاحظة: يتم تنفيذ هذه الخطوة في نهاية المطاف تجربة.
أرقام 7 و 8 إثبات أن استخدام فحص رامزي مع أقطاب أيون محددة لقياس تركيزات K + ونا + يمكن أن تميز وراثيا ومتميزة دواء K + وتدفقات نا +، المعلومات التي لم يتم التقاطها بواسطة قياس معدلات إفراز السوائل وحدها. الشكل 7 عروض إنخفاضا إفراز...
استخدام فحص رامزي، جنبا إلى جنب مع أقطاب أيون محددة، يسمح للقياس معدلات إفراز السوائل وتدفقات ايون في الحشرات معزولة مالبيغي (الكلى) الأنابيب. يمكن أن يعاير عشرين أو أكثر من الأنابيب في وقت واحد، مما يتيح أعلى إنتاجية مقارنة مقايسة من فرد في المختبر microperfused الأن?...
The authors have nothing to disclose.
The authors wish to thank Drs. Sung-wan An and Mike O’Donnell for practical advice on establishing this assay, Dr. Chih-Jen Cheng for helpful discussions on the use of ion-specific electrodes, and Dr. Chou-Long Huang for his mentorship and support. This work was supported by the National Institutes of Health (K08DK091316 to ARR) and the American Society of Nephrology Gottschalk Award to ARR.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit | Ellsworth Adhesives | http://www.ellsworth.com/dow-corning-sylgard-184-silicone-encapsulant-0-5kg-kit-clear/ | May be purchased from multiple distributors |
Petri dish, polystyrene, 100 mm x 15 mm | Fisher | FB0875712 | Specific brand is not important |
Petri dish, polystyrene, 35 mm x 10 mm | Corning Life Sciences | Fisher 08-757-100A | Specific brand is not important |
Scalpel Handle #3 | Fine Science Tools | 10003-12 | Specific brand is not important |
Scalpel Blades #1 | Fine Science Tools | 10011-00 | Specific brand is not important; use appropriate sharps precautions |
Needle, 30 G x 1/2 | Becton Dickinson | 305106 | Use appropriate sharps precautions |
Minutien pins, black anodized, 0.15 mm | Fine Science Tools | 26002-15 | |
Stereomicroscope with ocular micrometer | Nikon | SMZ800 | Specific brand is not important; this is given as an example |
Sheet of black stained glass, 3 mm (1/8 inch) thick | Hobby shop | Example includes Spectrum Black Opal by Spectrum Glass (http://www.delphiglass.com/spectrum-glass/opalescent/spectrum-black-opal) | |
Glass cutting tools (glass cutter, glass cutting pliers) | Hobby shop | Examples include the Studio Pro Lightweight Running Pliers by Diamond Tech (http://www.delphiglass.com/glass-cutters-tools/pliers-nippers/studio-pro-lightweight-running-pliers) and the Studio Pro Brass Glass Cutter by Diamond Tech (http://www.delphiglass.com/glass-cutters-tools/glass-cutters/studio-pro-brass-glass-cutter). Use appropriate safety precautions when cutting glass | |
Borosilicate glass capillary tube, unfilamented, GC120-10, OD 1.2 mm, ID 0.69 mm, length 10 cm | Warner Instruments | 30-0042 | |
Borosilicate glass capillary tube, filamented, GC120F-10, OD 1.2 mm, ID 0.69 mm, length 10 cm | Warner Instruments | 30-0044 | |
Nitric acid, 70% | Sigma | 438073 | CAUTION: see Material Data Safety Sheet for appropriate storage and handling guidelines. Specific brand is not important |
Cimarec 7 in x 7 in hotplate | Fisher | 11675911Q | Specific brand is not important; caution when heated |
Selectophore dichlorodimethylsilane | Sigma | 40136-1ML | CAUTION: see Material Data Safety Sheet for appropriate storage and handling guidelines |
Two-step vertical pipet puller | Narishige | PC-10 | Other pipet pullers can be used; this is given as an example |
Glass petri dish, 150 mm diameter x 15 mm height | Fisher | 08-748E | Specific brand is not important; only one dish needed |
World Precision Instruments E210 1 mm micropipette storage jar | Fisher | 50-821-852 | May be available from other distributors. Useful to have two jars. Note that although this jar is specified for 1 mm pipets, and the pipets used here are 1.2 mm, in our experience the 1 mm jar works best for the 1.2 mm pipets. |
Silica Gel, Tel-Tale Desiccant, indicating, 10-18 mesh | Fisher | S161-500 | Indicating silica useful for determining whether silica gel retains desiccating ability |
World Precision Instruments MicroFil, 34G | Fisher | 50-821-914 | May be available from other distributors. |
1 ml syringe with luer lock | Becton Dickinson | 309659 | May be available from other distributors. |
3 ml syringe with luer lock | Becton Dickinson | 309657 | May be available from other distributors. |
D300 3-way stopcock with female luer lock inlet port, male luer outlet port with rotating collar and guard | Cole-Parmer | UX-30600-02 | Specific brand is not important |
Female Luer Locking Connector | 4 Medical Solutions | ADC 9873-10 | Specific brand is not important; barbed end is ~4 mm at narrowest point and ~7 mm at widest point. |
Silicone Tubing I.D. x O.D. x Wall: 1/16 x 1/8 x 1/32 in. (1.59 x 3.18 x 0.79 mm) | Fisher | 14-179-110 | Specific brand is not important |
E-3603 tubing, I.D. x O.D.: 1/32 x 3/32 in | Fisher | 14171208 | Specific brand is not important |
Modeling clay | Specific brand is not important | ||
Selectophore potassium ionophore I, cocktail B | Sigma | 99373 | CAUTION: see Material Data Safety Sheet for appropriate storage and handling guidelines |
Selectophore sodium ionophore X | Sigma | 71747 | Sodium ionophore X = 4-tert-butylcalix[4]arene-tetraacetic acid tetraethylester |
Selectophore 2-nitrophenyl octyl ether | Sigma | 73732 | |
Selectophore sodium tetraphenylborate | Sigma | 72018 | CAUTION: see Material Data Safety Sheet for appropriate storage and handling guidelines |
Schneider's Drosophila medium | Life Technologies | 21720024 | |
High impedance electrometer | World Precision Instruments | FD223a | |
Microelectrode holder 1 mm with 45° body, vented, with handle | Warner Instruments | 64-1051 | |
Microelectrode holder 1 mm with straight body, vented | Warner Instruments | 64-1007 | |
Silver wire | Warner Instruments | 64-1318 | |
Micromanipulators, pair | Leitz | Various brands/models will work; this is an example | |
Faraday cage | Technical Manufacturing Corporation | 81-334-03 | This is an example; any Faraday cage will work |
Single gooseneck fiberoptic light | Nikon | Specific brand is not important | |
mineral oil | Fisher | BP-2629 | Specific brand is not important |
forceps, Dumont #5 with Biologie tip | Fine Science Tool | 11295-10 | May be available from other distributors. |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved