Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

ويرد وضع بروتوكول للتحديد في المختبر وتوصيف الابتامرات الحمض النووي ملزم إستر حامض فثاليك الخاصة بالمجموعة. ويرد أيضا تطبيق ابتمر المحدد في أبتاسينسور الكهروكيميائية.

Abstract

حمض فثاليك أرون استرات (آيس) من المجموعات الرئيسية للملوثات العضوية الثابتة. الكشف عن مجموعة محددة من آيس المطلوب هو درجة عالية نظراً لتزايد سريع للمتجانسات. الابتامرات الحمض النووي قد طبقت متزايدة كعناصر الاعتراف على منصات بيوسينسور، ولكن الابتامرات تحديد اتجاه أهداف جزيء صغير جداً مسعور، مثل آيس، نادراً ما يقال. هذا العمل وصف أسلوب المستندة إلى حبة مصممة لتحديد الابتامرات الحمض النووي الخاصة بالمجموعة لايس. المجموعة الأمينية فونكتيوناليزيد والفثالات الفثالات (دبة-NH2) المستهدف مرساة توليفها ومعطلة في الخرز [اغروس] تنشيط الإيبوكسي، مما يتيح عرض مجموعة إستر الافثاليك في سطح المصفوفة التثبيت، و ولذلك اختيار الاضبارات الخاصة بالمجموعة. حددنا الثوابت تفارق المرشحين ابتمر بتفاعل سلسلة البلمرة الكمية مقترنة بالفصل المغناطيسي. الوشائج النسبية والانتقائية في الابتامرات لايس أخرى تحددها الاختبارات التنافسية، حيث كان يحدها المرشحين ابتمر مسبقاً إلى دبة-NH2 تعلق الخرز المغناطيسي وصدر للمادة طافية على الحضانة مع آيس تم اختبارها أو مواد أخرى التدخل المحتملة. تم تطبيق التحليل التنافسي لأنها تتيح مقارنة السطحية تقارب بين آيس أن كان لا من المجموعات الوظيفية للتثبيت السطحي. أخيرا، أظهرت تلفيق أبتاسينسور الكهروكيميائية وتستخدم للكشف عن bis(2-ethylhexyl) فتالات أولتراسينسيتيفي وانتقائية. يوفر هذا البروتوكول رؤى لاكتشاف ابتمر الجزيئات الصغيرة الأخرى مسعور.

Introduction

جنبا إلى جنب مع التنمية الاقتصادية السريعة، وتسريع التصنيع والبناء الحضري والتلوث البيئي أكثر حدة من أي وقت مضى. وتشمل الملوثات البيئية النموذجية أيونات المعادن الثقيلة والسموم والمضادات الحيوية، ومبيدات الآفات، واختلال الغدد الصماء والملوثات العضوية الثابتة (POPs). أيونات المعادن والسموم، وإلى جانب الملوثات الأخرى جزيئات صغيرة جداً التي غالباً ما تتألف من مجموعة متنوعة من متجانسات. على سبيل المثال، تتضمن الملوثات العضوية الثابتة الأكثر سمية ثنائي الفينيل متعدد الكلور (PCBs)، والهيدروكربونات العطرية (العطرية)، ثنائيات الفينيل متعدد الكلور الاثير ثنائي الفينيل، وثنائي بنزو-فالديوكسينات (PCDDs)، ديبينزوفوران متعدد الكلور (PCDFs)، والافثاليك استرات حمض (آيس)1،2، التي تتكون من العديد من متجانسات كافة. وقد أجريت الكشف عن جزيء صغير أساسا بالأساليب المستندة إلى الطيف اللوني/الجماهيري نظراً لتنوعها من التطبيقات3،4،،من56. المكتشفة في الموقع، كانت الأساليب المستندة إلى جسم مؤخرا نمواً7،،من89. ومع ذلك، نظراً لهذه الأساليب محددة للغاية لمتجانسات معينة، يجب إجراء اختبارات متعددة. ما أخطر أن المتجانسات الرواية التي تنمو بسرعة أنه لا يمكن إنشاء تلك الأجسام المضادة في الوقت المناسب. ولذلك، وضع أجهزة الاستشعار الخاصة بفريق لرصد المستويات الإجمالية لجميع المتجانسات في اختبار واحد قد توفر مقياس لا تقدر بثمن لتقييم حالة التلوث البيئي.

في الآونة الأخيرة، الابتامرات الحمض النووي طبقت على نطاق واسع كعناصر الاعتراف في مختلف المنابر بيوسينسينج بسبب قدرتها على الاعتراف بطائفة واسعة من الأهداف، من الأيونات والجزيئات الصغيرة للبروتينات والخلايا10،11 ،12. يتم تحديد الابتامرات من خلال أسلوب في المختبر يسمى التطور المنهجي من يغاندس بتخصيب الأسية (سيليكس)13،14. ويبدأ سيليكس المكتبة اليغنوكليوتيد عشوائي جديلة واحدة الاصطناعية، والذي يحتوي على حوالي 1014-1015 تسلسل. حجم المكتبة عشوائي يضمن تنوع هياكل مرشح الجيش الملكي النيبالي أو الحمض النووي. عملية سيليكس نموذجي يتكون من جولات متعددة لتخصيب اليورانيوم حتى هو إثراء المكتبة في تسلسل مع تقارب عالية وخصوصية إلى الهدف. ثم يتم تعيين تسلسل تجمع التخصيب النهائي، وثوابت التفكك (كد) وانتقائية ضد إمكانية التدخل المواد تتحدد بواسطة تقنيات مختلفة مثل تصفية ملزمة، تقارب اللوني، السطحية صدى مأكل مثل الطحين (موارد البرنامج الخاصة)، إلخ. 15

نظراً لقابلية الذوبان في الماء سيئة للغاية وعدم وجود المجموعات الوظيفية لتجميد السطحية، التحديد ابتمر من الملوثات العضوية الثابتة من الصعب نظرياً. وقد تقدما ملحوظا سيليكس الإسراع باكتشاف الابتامرات. ومع ذلك، اختيار مجموعة محددة الابتامرات للملوثات العضوية الثابتة لم قد يبلغ بعد. حتى الآن، كانت فقط الدنا ثنائي الفينيل متعدد الكلور-ربط الابتامرات مع خصوصية عالية لمتجانسات معينة حددت16. آيس تستخدم أساسا في مواد البولي فينيل كلوريد، تغيير البولي فينيل كلوريد من بلاستيك الصلب البلاستيك مرنة، وبالتالي بوصفها الملدنات. بعض آيس قد حددت كعوامل اختلال الغدد الصماء، ويمكن أن تسبب ضررا خطيرا للكبد ووظائف الكلي، تقليل حركية الحيوانات المنوية الذكور، وقد تسفر عن مورفولوجيا الحيوانات المنوية غير طبيعي وسرطان الخصية17. وأبلغ مجمع-وﻻ الابتامرات PAE الملزمة الخاصة بالمجموعة.

والهدف من هذا العمل تقديم بروتوكول ممثل لاختيار مجموعة محددة الحمض النووي الابتامرات إلى جزيئات صغيرة جداً مسعور مثل آيس، مجموعة تمثيلية من الملوثات العضوية الثابتة. ونحن أيضا بيان تطبيق ابتمر المحددة للكشف عن التلوث البيئي. يوفر هذا البروتوكول توجيهات ورؤى لاكتشاف ابتمر الجزيئات الصغيرة الأخرى مسعور.

Protocol

1-المكتبة والتصميم التمهيدي والتوليف

  1. تصميم المكتبة الأولى والإشعال.
    مكتبة (تجمع0): 5 '-تكككاكجكاتكتككاكاتك-N40-ككتتكتجتككتككجتكاك-3'
    إلى الأمام التمهيدي (FP):-تكككاكجكاتكتككاكاتك 5 '-3'
    فوسفوريلاتيد عكس التمهيدي (ص. ب.4-RP): 5 'بو4-جتجاكجاجاكاجااج-3'
  2. توليف تجمع0، وتنظيم الأسرة، وبو4-البرنامج العادي باستخدام فوسفوراميديتي القياسية الكيمياء18،،من1920، وتنقية جميع السلطات الوطنية المعينة واسطة قياسية عالية الأداء اللوني السائل ([هبلك])21.
  3. إعادة تشكيل تجمع0، وتنظيم الأسرة، وبو4-RP في الصف خالية من نوكلياسي الماء في 100 ميكرومتر، اليكووت، وتخزينها في-20 أو-80 درجة مئوية لمدة تصل إلى سنة واحدة.
    ملاحظة: يقترح بشدة تخزين تجمع0، وتنظيم الأسرة، وبو4-RP في 10-20 ميليلتر مختبرين لتجنب التلوث المتبادل ممكن.

2-توليف هدف الربط والتثبيت، على تنشيط الإيبوكسي حبة [اغروس]

  1. توليف فثالات والفثالات المجموعة الأمينية فونكتيوناليزيد (دبة-NH2) كهدف الربط.
    ملاحظة: قد وصف تفاصيل التجريبية في التوليف وتوصيف دبة-NH2 في الأدب22.
  2. إعداد نقطة ارتساء الحلول المستهدفة المخزون في وسيلة مناسبة للذوبان المستهدفة. لهذه الدراسة، وإعداد حل الأسهم 100 مم دبة-NH2 في ثنائي ميثيل سلفوكسيد ([دمس]) وتخزين الحل في 4 أو-20 درجة مئوية لمدة تصل إلى سنة واحدة.
  3. شل دبة-NH2 على [اغروس] تنشيط الإيبوكسي الخرز وفقا لبروتوكول تم تعديل من الشركة المصنعة.
    1. تزن بمسحوق تجميد المجفف 0.1 غ من حبات [اغروس] تنشيط الإيبوكسي وتعليقه في الماء المقطر. أغسل متوسطة لمدة 1 ساعة باستخدام 20 مل المقطر ماء أضيف في مختبرين عدة. غسل المتوسطة مع 0.2 م Na2CO3 (الرقم الهيدروجيني 12).
      ملاحظة: المتوسط تتضخم فورا بعد إضافة الماء في ذلك.
    2. حل دبة-NH2 (46.7 ملغ، 0.15 ميللي مول) في المخزن المؤقت لاقتران ميليلتر 500 (0.2 م Na2CO3 المخزن المؤقت).
    3. مزيج من اقتران الحل المتضمن يجند مع المتوسط. استخدام شاكر 5 لفة في الدقيقة ل 48 ساعة في درجة حرارة الغرفة.
    4. تكرار غسل المنتج ثلاث مرات، التتابع باستخدام 0.1 م خلات المخزن المؤقت (0.5 م NaCl، الأس الهيدروجيني 4.5) وكربونات 0.2 م المخزن المؤقت (0.5 م NaCl، الأس الهيدروجيني 12) في كل دورة غسيل. أغسل وتعليق المنتج في المياه لجعل وحدة التخزين النهائي من 500 ميليلتر.
    5. تخزين المنتج في 4 درجات مئوية قبل الاستخدام.
    6. تأكيد نجاح التثبيت الهدف من تحليل عنصري.

3-سيليكس

  1. إعداد 500 مل من المخزن المؤقت ملزم PAE في المياه النقية فائقة أو المياه خالية من نوكلاس الصف مع 20 مم Tris· HCl، 100 ملم كلوريد الصوديوم و مجكل 2 مم2، 5 ملم بوكل، كاكل 1 مم2، 1% بوليوكسيثي لين مونولوراتي سوربيتان (20) وعامل نشط غير الأيونية سطح 0.03 في المائة (الرقم الهيدروجيني 7.9). تصفية المخزن المؤقت من خلال عامل تصفية النيتروسليلوز 0.22 ميكرومتر عقيمة وتخزينها عند درجة حرارة أعلى من 20 درجة مئوية لمدة أشهر.
    ملاحظة: من المهم للحفاظ على حالة جيدة تشتت آيس في المخزن المؤقت لربط ملحق العنوان الفعلي. أنواع متعددة من التوتر السطحي هناك حاجة لتعزيز قابلية الذوبان لايس في المحلول. ومع ذلك، ينبغي إبقاء العدد من التوتر السطحي للحد أدنى لتجنب تشكيل المذيلات السطح التي سوف تغلف جزيئات PAE. عامل نشط السطحية عدم الأيونية، من السهل أن يعجل في درجات حرارة أقل من 20 درجة مئوية، وذلك يجب تخزين المخزن المؤقت عند درجة حرارة أعلى من 20 درجة مئوية.
  2. تمييع 10 ميليلتر من 100 ميكرومتر تجمع0(نمول ~1.0 لتسلسل15 14-10 10) في ميليلتر 490 PAE ملزمة المخزن المؤقت. الحرارة مختبرين0 مسبح (5 × 100 ميليلتر) في أنابيب رقيقة الجدار أجهزة الطرد المركزي في مجموعة حمام المياه عند 95 درجة مئوية للحد الأدنى 10 مكان الأنابيب على الجليد لمدة 5 دقائق وبعد ذلك احتضان هذه الأنابيب لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة (~ 25 درجة مئوية في هذا العمل).
  3. الجولة الأولى من التحديد: الحضانة لتجمع0 و2DBP−NH −coated المتوسطة.
    1. غسل 200 ميليلتر من DBP−NH2−coated متوسطة ثلاث مرات مع 500 ميليلتر من المخزن المؤقت ملزم PAE. DBP−NH ميكس2المتوسطة −coated مع تجمع0 واحتضان الخليط في درجة حرارة الغرفة ح 1 تحت الهز الخفيف.
    2. منفصلة المتوسطة −coated2DBP−NH ملزمة مع الابتامرات من السلطات الوطنية المعينة غير منضم بأنبوب أولترافيلتريشن أوسينجان أولترافيلتريشن مع وقف جزيئية كاتشين 100. تغسل في المتوسط ثلاث مرات مع 500 ميليلتر PAE ملزمة المخزن المؤقت والطرد المركزي في ز × 9,168 لمدة 10 دقائق في 4 درجات مئوية.
  4. الجولة الأولى من التحديد: شطف ابتمر من DBP−NH2−coated متوسطة.
    1. إضافة 50 ميليلتر من المخزن المؤقت ملزم PAE لغسلها المتوسطة وحرارة الخليط عند 90 درجة مئوية لمدة دقيقة 9 تحت تهز.
    2. جمع المادة طافية التي تحتوي على DNAs التيد أولترافيلتريشن. كرر هذه العملية شطف ثلاث مرات لاسترداد أكثر من ملزمة المعينة.
  5. الجولة الأولى من التحديد: بكر
    1. نطاق صغير بكر
      1. أداء نطاق صغير بكر23 (4 × 20 ميليلتر مختبرين) استخدام ~ 15-30 دورات. إعداد رد فعل بكر24 كما يلي: 6.5 ميليلتر من المياه خالية من رناسي، ميليلتر 1 من كل 10 ميكرون التمهيدي (FP، ص4-RP، نمول 0.01 كل) 1.5 ميليلتر التيد تجمع من القسم 3.4 (أو المياه خالية من رناسي كالمراقبة السلبية) وممزوجة مسبقاً 10 ميليلتر من رد الفعل الذي يحتوي على خليط بدء دنتبس، الساخنة بوليميريز، و 2 × [بكر] رد فعل المخزن المؤقت (tris· 20 مم HCl، 100 ملم بوكل، 3 مم مجكل2، الرقم الهيدروجيني 8.3).
      2. تشغيل PCR استخدام cycler حرارية بالإعدادات التالية: 1 دورة 95 درجة مئوية، 1 دقيقة؛ 30 دورات من [95 درجة مئوية، 30 s; 56 درجة مئوية، 30 s; 72 درجة مئوية، 30 s]؛ 1 دورة 72 درجة مئوية، 2 دقيقة وعقد في 4 درجات مئوية. عندما يتم تشغيل الأداة قال 20 من الخطوات تمديدها 15، 20، 25، ودورات 30، اضغط على مفتاح الإيقاف المؤقت، فتح الغطاء الصك وأخذ أنبوب واحد من ثم اضغط مفتاح وقفه مرة أخرى لاستئناف PCR.
      3. إعداد 12% التشويه والتحريف polyacrylamide هلام استشراد (صفحة)25،26. مزيج 4.8 غم يوريا، 6 مل مياه النقية فائقة، 1 مل حمض تريس/بوريك × 10/الإيثيلين ديامينى tetraacetic حمض (TBE)، 3 مل اكريلاميد 40 ٪، 10 ميليلتر من تيتراميثيليثيلينيدياميني (تيميد)، و 100 ميليلتر 10% الأمونيوم فوق كبريتات (الجزائرية)، بهذا الترتيب. يقلب جيدا وانتظر ح 1.5-2 ضمان الهلام يتصلب تماما.
      4. تحليل نتائج دورة التحسين: الجمع بين 1 ميليلتر من كل منتج PCR مع 5 ميليلتر من الجيش الملكي النيبالي تحميل المخزن المؤقت (62.5 في المائة ميثلامين، والفورمالديهايد 0.4 متر، 1.25×3-(N-morpholino) بروبانسولفونيك المخزن المؤقت حامض، 0.02% زيلين نفط زايلين فرنك فرنسي، 0.02% بروموفينول الأزرق)، و 4 ميليلتر من المياه خالية من رناسي؛ تسخين المزيج في 95 درجة مئوية لمدة 10 دقائق، وتبرد بسرعة إلى 0 درجة مئوية على الجليد؛ احتضان لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة؛ تحميل 5 آبار منفصلة من 12% إلى التشويه والتحريف صفحة؛ تشغيل التفريد بنظام التفريد رأسي في 1 × TBE العازلة في 170 الخامس لمدة 45 دقيقة.
      5. بعد التفريد، وصمة عار الجل مع ميليلتر 3 1 × الحمض النووي جل وصمة عار في 30 مل من 1 × TBE العازلة لمدة 10 دقائق، وتأخذ صورة للهلام.
    2. الكبيرة مقياس PCR: حدد العدد المناسب من دورات لإنتاج شريط كثافة أعلى في علامة الحجم الصحيح دون الجانبية غير المرغوب فيها. تنفيذ نطاق واسع بكر (20 × 100 ميليلتر مختبرين) الاستفادة من الظروف والعدد المناسب من دورات مصممة في القسم 3.5.1.
      ملاحظة: المبلغ النهائي لمكتبة واحدة-الذين تقطعت بهم السبل التي يمكن الحصول عليها النسبي إلى الحجم الكلي لبكر، عدم التركيز القالب. نموذجياً, يحتاج تجمع واحد-الذين تقطعت بهم السبل للحصول على 1 نمول من مكتبة، 2 مل PCR. [بكر] حساسة للغاية والملوثة بسهولة من خارج السلطات الوطنية المعينة. وينبغي اتخاذ خطوات للحد من فرصة للتلوث، مثل ارتداء القفازات واستخدام تلميحات معقمة وعدم البصق في الأنابيب وعدم فتح غطاء أنبوب PCR قبل الطرد المركزي.
  6. الجولة الأولى من التحديد: تنقية المنتج بكر بترسيب الإيثانول.
    1. ضم أنبوبين من مزيج PCR في أنبوب واحد (200 ميليلتر في كل). كرر هذه العملية لجميع الأنابيب.
    2. إضافة 15 ميليلتر من صوديوم اسيتات (3m, pH 5.2) الحل و 4 ميليلتر من الحمض النووي/رنا هطول الأمطار حاملة الحل وأوقات 2.5 حجم الإيثانول يبرد قبل في-20 درجة مئوية في كل أنبوب. الخلط بينهما بالتساوي.
      ملاحظة: يستخدم الناقل ترسيب الحمض النووي/الجيش الملكي النيبالي على نطاق واسع في الإيثانول الأمطار تجارب لتحسين نسبة الاسترداد من الحمض النووي/رنا تركيزات منخفضة بشكل ملحوظ. لا تتداخل مع تطبيقات المصب مثل PCR وتسلسلها.
    3. الطرد المركزي الخليط في 20,627 × ز لمدة 20 دقيقة في 4 درجات مئوية وعناية تجاهل المادة طافية وترك ترسبات بيضاء.
    4. إضافة 400 ميليلتر من 70% قبل التبريد الحل الإيثانول في-20 درجة مئوية في كل أنبوب يغسل هطول الأمطار. الطرد المركزي الخليط في 20,627 × ز لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية، وتجاهل المادة طافية بعناية وترك ترسبات بيضاء. كرر الخطوة يغسل مرتين أخريين.
    5. قم بفتح غطاء الأنبوبة؛ وخز الغشاء الختم؛ واسمحوا الإيثانول تطيير عند 40 درجة مئوية في كتلة التدفئة حتى يصبح ترسبات بيضاء شفافة. تخزين متسرعا في-20 درجة مئوية.
      ملاحظة: يمكن تخزين المنتج بكر المنقي في-20 درجة مئوية.
  7. الجولة الأولى من التحديد: واحد-الذين تقطعت بهم السبل الحمض النووي (الجيل تجمع المخصب1) عن طريق إجراء رد فعل [ااكسونوكلس] λ لهضم حبلا عكس فوسفوريلاتيد.
    1. رد فعل [ااكسونوكلس] λ صغيرة الحجم
      1. إضافة 100 ميليلتر من المياه خالية من رناسي إلى أنبوب واحد يحتوي على المنتج بكر المنقي من المقطع 3.6. دوامة الأنبوب تماما حل متسرعا في الأنبوب.
      2. إعداد خمسة أنابيب الطرد المركزي، وإضافة 5 ميليلتر من الحل أعلاه، 11 ميليلتر من رناسي-المياه مجاناً، و 2 ميليلتر من المخزن المؤقت رد فعل × 10 (670 مم جليكاين-كوه، 25 مم مجكل2 ، 0.1% (v/v) الأس الهيدروجيني X-100 تريتون 9.4) في كل أنبوب.
      3. إضافة 2 ميليلتر من الماء أو λ المخفف [ااكسونوكلس] محلول يحتوي على 2 يو و 5 ش 8 ش 10 ش λ [ااكسونوكلس] إلى هذه الأنابيب، على التوالي. مزيج الحل جيدا من قبل بيبيتينج برفق. يتم توفيرها جنبا إلى جنب مع اكسونوكليسيفروم λ × 10 رد فعل المخزن المؤقت الموفر.
      4. احتضان هذه الأنابيب لمدة 35 دقيقة على 37 درجة مئوية، 15 دقيقة في 80 درجة مئوية، وعقد في 4 درجات مئوية.
      5. إعداد الصفحة الأصلية 12%. مزيج 6 مل مياه النقية فائقة، 1 مل 10 × TBE، 3 مل من الاكريلاميد 40% و 10 ميليلتر من تيميد ميليلتر 100% 10 وكالة الأنباء الجزائرية، بهذا الترتيب. يقلب جيدا والانتظار لمدة 60-90 دقيقة لضمان الجل يتصلب تماما.
      6. تحليل النتائج من ردود الفعل من خلال الجمع بين 5 ميليلتر من كل رد فعل مع ميليلتر 1 تحميل صبغ و 4 ميليلتر من المياه خالية من رناسي، وتحميل هذه المخاليط إلى 5 آبار منفصلة من 12% أصلي صفحة (150 الخامس لمدة 45 دقيقة).
        ملاحظة: يمكن أيضا تحميل سلم الحمض النووي مزدوج-الذين تقطعت بهم السبل بي بي 20 في الجل، ولكن قد لا يكون ضروريا نظراً لإظهار النطاقات مميزة بكر المنتج والمكتبة الذين تقطعت بهم السبل الوحيدة التي تم إنشاؤها في الهلام.
        ملاحظة: قد رد فعل [ااكسونوكلس] λ انتقائية هيكلية ممتازة. يمكن هضمها المنتج بكر مزدوجة-الذين تقطعت بهم السبل (يسمى حبلا المضادة الشعور مع مجموعة فوسفات في نهاية 5 ') تماما في مكتبة واحدة-الذين تقطعت بهم السبل في حضور [ااكسونوكلس] λ في طائفة واسعة جداً من تركيز (الشكل 4). الحد الأدنى لمبلغ λ [ااكسونوكلس] التي يمكن أن تولد تماما دنا مفرد-الذين تقطعت بهم السبل في رد فعل [ااكسونوكلس] λ صغيرة الحجم يستخدم أيضا لرد فعل [ااكسونوكلس] λ واسعة النطاق. كما يمكن استخدام تركيز أعلى من λ [ااكسونوكلس]، حيث λ [ااكسونوكلس] يعمل جيدا في طائفة واسعة من تركيز دون أن تفقد في هيكل الانتقائية والمنتج العائد. تحول دون رد فعل [ااكسونوكلس] λ بتركيزات عالية من الملح. الهضم غير مكتملة من المنتج بكر يعني عادة وجود الكثير جداً من الملح في المنتج PCR. تنقية منتجات PCR بترسيب الإيثانول (قسم 3.6) عادة ما تكون متوافقة مع هذه الخطوة، بينما المنتج بكر المنقي بترسيب الايزوبروبانول في كثير من الأحيان يحتوي على الكثير من الملح.
    2. رد فعل [ااكسونوكلس] λ واسعة النطاق: اختيار الحد الأدنى لمبلغ λ [ااكسونوكلس] التي يمكن أن تولد تماما واحد-الذين تقطعت بهم السبل المعينة لرد فعل [ااكسونوكلس] λ واسعة النطاق. رد الفعل هو الارتقاء بالتناسب وفقا لهذا الشرط. فعلى سبيل المثال: إذا كان 2 يو هو الحد الأدنى من المطلوب [ااكسونوكلس] λ، مزيج ميليلتر 38 من المياه خالية من رناسي، 10 ميليلتر من 10 × المخزن المؤقت، 50 ميليلتر من الحمض النووي بركة1 و 2 ميليلتر من 10 [ااكسونوكلس] λ U/ميليلتر.
  8. الجولة الأولى من التحديد: تنقية حوض واحد-الذين تقطعت بهم السبل1 بترسيب الإيثانول.
    1. اتبع الإرشادات التي تظهر الخطوة 3، 6.
    2. تحديد التركيز تنقيته تجمع1 بامتصاص الأشعة فوق البنفسجية في 260 نيوتن متر.
    3. تشكيل تجمع 90% تنقية1 في وحدة تخزين مناسبة PAE ملزمة المخزن المؤقت. إذا لم يكن هناك ما يكفي الحمض النووي التي تم الحصول عليها للجولة القادمة من التحديد، كرر المقاطع 3.5-3.8.2.
      ملاحظة: حجم المخزن المؤقت ملزم PAE عادة تختلف من 200 إلى 500 ميليلتر وفقا للكمية من مكتبة وتركيز النهائية المرجوة من مكتبة في الجولة القادمة من سيليكس.
  9. الثانية والثالثة، والرابعة، والخامسة جولات سيليكس.
    1. السلوك الثاني والثالث والرابع، وجولات الخامسة من سيليكس بعد ذلك اتباع نفس الإجراءات المذكورة أعلاه (القسم 3.2-3.8)، إلا أنه تم إدخال المكتبة pmol ~ 300 زيادة صرامة الانتقاء.
    2. للتقليل من امتصاص غير محدد للسلطات الوطنية المعينة في المتوسط، احتضان حوض السباحة مع متوسط غير معدلة على شاكر دوارة لمدة 30 دقيقة في الثالثة والجولة الرابعة للتحديد قبل الحضانة مع المتوسطة −coated2DBP−NH.
      ملاحظة: عملية سيليكس انتهت في الجولة الخامسة بسبب التشعب خطيرة بين السلطات الوطنية المعينة التي كشفت عنها كمية كبيرة من المنتجات عالية الوزن الجزيئي التي لم تهاجر إلى الهلام.

4-الفائق التسلسل

  1. إعداد تجمع4 من قسم 3.9.2 لتسلسل من [بكر] تضخيم مع الإشعال متوافقة.
    1. تصميم وتجميع مفهرس تمهيدي إلى الأمام مع 6 nt في النهاية 5 ' لتسهيل تحليل تسلسل.
      فهرسة التمهيدي إلى الأمام (FP-التسلسل):-أجتاكجاتكككاكجكاتكتككاكاتك 5 '-3'
    2. إعداد رد فعل 1,000 µLPCR كما يلي: ميليلتر 380 من المياه خالية من رناسي، 50 ميليلتر من كل التمهيدي 10 ميكرون (FP-التسلسل، ص4-RP، نمول 0.5 كل)، 20 ميليلتر من تجمع التيد من قسم 3.9.2، و 500 ميليلتر من رد فعل مزيج يحتوي على دنتبس ممزوجة مسبقاً، وبدء الساخنة بوليميراز ، ورد فعل المخزن المؤقت PCR × 2. قاسمة هذا الخليط إلى 10 أنابيب PCR. استخدام نفس شروط بكر كما هو موضح في القسم 3.5.1.2.
  2. تنقية المنتج PCR للوفاء بمتطلبات المرفق التسلسل. على سبيل المثال، استخدام أدوات استرداد صفحة-جل الحمض النووي وفقا لإرشادات الشركة المصنعة.
  3. إرسال المنتج بكر المنقي (~ 2 ميكروغرام) إلى مرفق تسلسل ظروف الشحن المطلوبة مرفق التسلسل. على سبيل المثال، شحن المنتج بكر في أنبوب الطرد مركزي مع قبعات مختومة تماما مع حزم الجليد إلى مرفق التسلسل.
    ملاحظة: تلقي النتائج التي احتلت المرتبة في تسلسل وفقا لعدد النسخ لكل تسلسل لتقييم في إثراء مجموعة متسلسلة. التسلسل الأعلى الذي كان اسمه دبة-1 (-كتتكتجتككتككجتكاكاتكككاكجكاتكتككاكات 5 '-3'). وقيست تقارب والانتقائية ببروتوكول التالية (القسم 5 و 6). تطبيقه في بيو-استشعار الكهروكيميائية اتضح فيما بعد في القسم 7.

5- كد "عزم لتحديد ابتمر المرشحين" باستخدام PCR كمي Magnetic Bead-Based (قبكر)

  1. توليف دبة-1-قبكر وكبسولة تفجير باستخدام الكيمياء فوسفوراميديتي القياسية وتنقية حسب معيار [هبلك].
    مرشح ابتمر (دبة-1-قبكر):-ككاكجكاتكتككاكاتاجاتاجتاجتجكاتكت أتاككاجكتاتكاتكتتكتجتككتككجتكاكاتك 5 '-3'
    إلى الأمام التمهيدي ل qPCR (FP-قبكر):-أتاككاجكتاتكات 5 '-3'
    عكس التمهيدي ل qPCR (RP-قبكر):-أجاتجكاكتاكتاتكت 5 '-3'
    ملاحظة: مناطق تسلسل اختبار التمهيدي مختلفة عن تلك التي تجمع0 المستخدمة في القسم 3. والغرض من تغيير المناطق التمهيدي اختبار تقارب تسلسل الأساسية وحدها، باستثناء منطقتي التمهيدي.
  2. شل دبة-NH2 على الخرز المغناطيسي المغلفة بحمض الكربوكسيلية اتباع إرشادات الشركة المصنعة.
    1. أغسل حبات مغناطيسية المغلفة بحمض الكربوكسيلية مرتين مع 25 مم 2-(ن-morpholino) اثانيسولفونيك حمض (MES) (pH 5.0)، باستخدام وحدة تخزين متساوية من حبات مغناطيسية (100 ميليلتر) بيبيتيد خارج القنينة، لمدة 10 دقيقة مع خلط جيدة (أكثر من النهاية أو ما شابه).
    2. فورا قبل الاستخدام، إعداد 50 ملغ/مل من 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) كاربودييميدي هيدروكلوريد (EDC) الحل مع مس (pH 5.0) الباردة 25 مم.
    3. فورا قبل الاستخدام، إعداد 50 ملغ/مل من محلول N-هيدروكسيسوكسينيميدي (NHS) مع مس (pH 5.0) الباردة 25 مم.
    4. مزيج 100 ميليلتر من حل المؤسسة و 100 ميليلتر من الحل الصحي مع الخرز غسلها واحتضان مدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة مع تناوب إمالة بطيئة.
    5. وضعت الأنبوب على مغناطيس لمدة 4 دقائق بعد الاحتضان وتجاهل المادة طافية، وتغسل حبات مرتين مع 100 ميليلتر من مس (pH 5.0) الباردة 25 مم.
    6. احتضان 6 ميليلتر من الحل الأسهم 100 مم دبة-NH2 و 25 مم مس (pH 5.0، 290 ميليلتر) مع الخرز تنشيط إطار تناوب على الأقل 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة أو ح 2 في 4 درجات مئوية، مع تناوب إمالة بطيء 5 لفة في الدقيقة.
    7. وضع الأنبوب على المغناطيس لمدة 4 دقائق بعد الاحتضان وتجاهل المادة طافية. تغسل حبات مغلفة 4 مرات وريسوسبيند الخرز مع 200 ميليلتر PAE ملزمة المخزن ومخزن في 4 درجات مئوية حتى الاستخدام.
  3. جمع منحنى المعايرة لتحديد كد.
    1. إعداد مجموعة من الحلول دبة-1 (500 ميليلتر) بتركيزات مختلفة في المخزن المؤقت لربط ملحق العنوان الفعلي من 01:00 م إلى 300 نانومتر.
    2. إضافة 10 ميليلتر من دبة-NH2-المغلفة المغناطيسي الخرز كما هو موضح في قسم 5.2.7 لكل حل دبة-1. احتضانها ح 1 في درجة حرارة الغرفة بالتناوب.
    3. ضع الأنابيب في مغناطيس لدقيقة 4 وإزالة المادة طافية. أغسل حبات 4 مرات استخدام 200 ميليلتر من المخزن المؤقت ملزم PAE.
    4. إضافة 60 ميليلتر من المخزن المؤقت لربط ملحق العنوان الفعلي لكل أنبوبة. احتضان هذه الأنابيب عند 95 درجة مئوية عن 15 دقيقة جمع المادة طافية المحتوية على التيد دبة-1 من الفصل المغناطيسي. كرر هذه العملية شطف لاسترداد منضم أكثر دبة-1.
    5. تمييع الحل الوتي معززات وتأخذ 3 ميليلتر قبكر في الوقت الحقيقي. إعداد رد فعل قبكر على النحو التالي: 3 ميليلتر من المياه خالية من رناسي، ميليلتر 2 من كل 10 ميكرون التمهيدي (FP، ص4-RP، نمول 0.01 كل) 3 ميليلتر من الوتيد وتضعف دبة-1 وممزوجة مسبقاً 10 ميليلتر من رد فعل مزيج يحتوي على دنتبس وبوليميراز x PCR 2 رد فعل المخزن المؤقت.
    6. تحديد أرقام دبة-1 في كل عينة عن طريق تشغيل قبكر باستخدام cycler حرارية مع الإعدادات التالية: 1 دورة 95 درجة مئوية، 30 ثانية؛ 30 دورات من [95 درجة مئوية، 30 s; 45 درجة مئوية، 30 s; 72 درجة مئوية، 30 s]؛ 1 دورة 72 درجة مئوية، 30 ثانية وعقد في 4 درجات مئوية.
    7. ارسم منحنى المعايرة وتحديد كد بغير الخطية ملائمة منحنى افتراض نسبة 1:1 ربط27.

6-النسبي تقارب وخصوصية اختبار من الاختبارات التنافسية

  1. إضافة 10 ميليلتر من دبة-NH2-المغلفة الخرز المغناطيسي لحل دبة-1 (500 ميليلتر، 1 ميكرومتر). احتضانها ح 1 في درجة حرارة الغرفة بالتناوب. ضع الأنابيب في مغناطيس لدقيقة 4 وإزالة المادة طافية. أغسل حبات 4 مرات استخدام 200 ميليلتر من المخزن المؤقت ملزم PAE وريسوسبيند أنه في 10 ميليلتر من المخزن المؤقت ملزم PAE.
  2. إضافة 10 ميليلتر من دبة-NH2-منضم متوسطة المغلفة مع دبة-1 إلى 110 ميليلتر من كل 10 ميكرون اختبار العينة (دبة-NH2، دبة، DEHP، بوتيل البنزيل phthalate(BBP) وأيونات المعادن الثقيلة، إلخ.) احتضان في درجة حرارة الغرفة حاء 1 جمع المادة طافية بالفصل المغناطيسي.
  3. تمييع المادة طافية معززات وتأخذ 3 ميليلتر للقياس الكمي qPCR. إعداد رد فعل قبكر على النحو التالي: 3 ميليلتر من المياه خالية من رناسي، ميليلتر 2 من كل 10 ميكرون التمهيدي (FP، ص4-RP، نمول 0.01 كل) 3 ميليلتر من التيد وتضعف دبة-1 وممزوجة مسبقاً 10 ميليلتر من رد فعل مزيج يحتوي على دنتبس وبوليميراز x PCR 2 رد فعل المخزن المؤقت.
  4. تحديد أرقام دبة-1 في كل عينة عن طريق تشغيل قبكر باستخدام cycler حرارية مع الإعدادات التالية: 1 دورة 95 درجة مئوية، 30 ثانية؛ 30 دورات من [95 درجة مئوية، 30 s; 45 درجة مئوية، 30 s; 72 درجة مئوية، 30 s]؛ 1 دورة 72 درجة مئوية، 30 ثانية وعقد في 4 درجات مئوية.
  5. حساب تقارب النسبي بقسمة عدد دبة-1 الصادرة عن العدد من دبة-1 أطلق سراحه من الخرز في المخزن المؤقت ملزم PAE من الخرز حضور العينة: تقارب النسبي = Nعينة/Nالمخزن المؤقت.

7-تصنيع والقياسات الكهروكيميائية لأجهزة الاستشعار الكهروكيميائية DEHP

  1. تجميع التسلسل الأساسي ثيولاتيد (HS-دبة-1) والتحقيق إرسال الإشارات (دبة-1-ج-إف سي) باستخدام الكيمياء فوسفوراميديتي القياسية وتنقية حسب معيار [هبلك].
    النظام المنسق-دبة-1:5 '--النظام المنسق-(الفصل2)6-كتتكتجتككتككجتكاكاتكككاكجكاتكتككاكات-3'
    دبة-1-ج-Fc: 5 '--جاتجتجاكجاجتتتتتتت--(الفصل2)6إف سي-3'
    ملاحظة: وصف التصميم العقلاني لمجسات استشعار في أعمالنا السابقة18،ببوليكيشنز22.
  2. إعادة تشكيل النظام المنسق-دبة-1 وأفرجا-1-ج-Fc في المياه خالية من نوكلاس الصف في 100 ميكرومتر، الكوة، وتخزينها في-20 أو-80 درجة مئوية لمدة تصل إلى سنة واحدة.
  3. البولندية مسرى الذهب بعناية على سطح مرآة تشبه مع 1 و 0.3 و 0.05 ميكرومتر Al2O3 مسحوق في ميكروكلوث لمدة 5 دقائق و sonicate أنه في الماء عالي النقاوة لمدة 5 دقائق لإزالة بقايا Al2O3. ثم قم بتنظيف مسرى التلميع الكهروكيميائية مع 35 بمسح فولتاميتري دوري متتالية (CV) من 0.4 إلى + 1.2 V (مقابل الزئبق Hg2هكذا4) في 0.5 م ح2هكذا4 في 100 mV/s.
  4. إعداد خليط من 0.5 ميكرومتر HS-دبة-1 و 0.5 ميكرومتر دبة-1-ج-Fc في 100 ميليلتر 10 ملم الفوسفات مخزن يحتوي على كلوريد الصوديوم م 1، درجة الحموضة 7.4 (PBS). حرارة الخليط في أنبوب الطرد المركزي رقيقة الجدار في مجموعة حمام المياه عند 95 درجة مئوية لمدة 10 دقائق، وبطء تبريد الخليط في درجة حرارة الغرفة.
  5. أضف 1 ميليلتر تريس-(2-carboxyethyl)-الفوسفين هيدروكلوريد (تسيب، 10 مم، وحل الأسهم) إلى الخليط. الحفاظ على درجة حرارة الغرفة ح 1.
  6. تزج مسرى تنظيف الذهب في الحل أعلاه ح 12، أو بين ليلة وضحاها في درجة حرارة الغرفة.
  7. شطف مسرى مع برنامج تلفزيوني وتزج مسرى في 1 مم [S (الفصل2)2(أوتش2CH2)6أوتش3]2 (HS-على سبيل المثال6-OMe) في برنامج تلفزيوني حاء 1 شطف مسرى دقيق باستخدام ملحق العنوان الفعلي ربط المخزن المؤقت وتزج مسرى في المخزن المؤقت لربط ملحق العنوان الفعلي.
  8. أن تفحص خلفية مربع موجه فولتاميتري (SWV) في المخزن المؤقت ملزم PAE خالية من الهدف.
    1. تنظيف جميع المعدات التجريبية: الخلايا الكهرلية والذهب العامل القطب والقطب العداد البلاتين والقطب مرجع كالومل المشبعة (SCE).
    2. تنشيط البرامج المثبتة؛ تعيين معلمات التجريبية للقياسات SWV.
      ملاحظة: تم استخدام المعلمات التالية تجريبية لتجارب SWV: نطاق المحتملة: من-0.2 إلى 0.7 V؛ تعديل السعة: 25 أم؛ نبض العرض: 5 مللي ثانية؛ تفحص معدل: mV 50/ثانية؛ الخطوة المحتملة: 1 أم.
    3. الاتصال الذهب يعمل القطب، والقطب العداد البلاتين، ولجنة الخبراء الدائمة بوتينتيوستات، ووضع هذه الأقطاب الثلاثة في خلية كهروكيميائية تتضمن PAE ملزمة المخزن المؤقت.
    4. تشغيل القياس SWV.
      ملاحظة: مرة واحدة أن يبدأ قياس SWV، منحنى SWV سيتم عرضها على شاشة الكمبيوتر. يتم تكرار الفحص حتى يتم التفحص المستمر ويلاحظ أي تغييرات في ذروة الارتفاع أو الشكل.
  9. تزج الكهربائي العامل في المخزن المؤقت ملزم PAE التي تحتوي على نسبة معينة من DEHP (مثلاً، 10:00 م) لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. شطف مسرى دقيق باستخدام المخزن المؤقت ملزم PAE وتزج مسرى في المخزن المؤقت لربط ملحق العنوان الفعلي مع العداد الكهربائي ولجنة الخبراء الدائمة. جمع المنحنى SWV تحت نفس الشرط كما هو موضح في المقطع 7.8.
  10. كرر الخطوة 7.9، إلا أن تركيز DEHP (مثلاً 100 م, 1 نانومتر، 10 نانومتر، 100 نانومتر، 1 ميكرومتر) زيدت تسلسلياً. رسم منحنى المعايرة.
  11. اختبارات خصوصية: كرر الخطوات من 7.3-7.9، فيما عدا أنه يتم استبدال ربط PAE المخزن المؤقت الذي يحتوي على DEHP ملزم PAE المخزن المؤقت الذي يحتوي على مضمون التدخل المحتملة في تركيز المطلوب.

النتائج

نحن تصميم وتوليفها فثالات والفثالات المجموعة الأمينية فونكتيوناليزيد (دبة-NH2) كهدف الربط (الشكل 1F). ثم أجرينا التحديد ابتمر الحمض النووي لايس استخدام دبة-NH2 كهدف الربط واتباع أسلوب المستندة إلى تجميد الهدف الكلاسيكي (الشكل 2). ف?...

Discussion

فائدة المعلقة واحد من الابتامرات أن تحديدها من خلال الأسلوب في المختبر سيليكس، بينما الأجسام المضادة يتم إنشاؤها عن طريق إيمونوريكشنز في فيفو . ولذلك، يمكن تحديد الابتامرات مع الهدف المنشود خصوصية ظروف تجريبية مصممة تصميماً جيدا، بينما الأجسام المضادة تقتصر على الظروف الفسيول...

Disclosures

الكتاب يعلن أي مصلحة مالية المتنافسة.

Acknowledgements

ونحن ممتنون للدعم المالي من "مؤسسة العلوم الطبيعية الوطنية" (21675112)، المشاريع الرئيسية لخطة لجنة التعليم ببكين (KZ201710028027) ويانجينغ الشباب الباحث البرنامج من رأس المال الطبيعي جامعة العلوم والتكنولوجيا.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
UV-2550Shimadzu,Japanprotocol, section 3.8.2
DNA Engnine Thermal cycler,PTC0200BIO-RADsection 3.5.1.2 and 3.5.2
C1000 TouchBIO-RADsection 5.3.6 and 6.3
VMP3 multichannel potentiostatBio-Logic Science, Claix, Francesection 7.4,7.8 and 7.11
Epoxy-activated Sepharose 6BGE Healthcare (Piscataway, NJ, USA)10220020argarose beads, section 2.3 and 3.3
Dynabeads M-270 carboxylic acid magnetic beadsInvitrogen, USA420420magnetic beads,section 5.2. and 5.3
Premix Taq Hot Start VersionTakara,Dalian,ChinaR028Apolymerase, section 3.5.1.1
PARAFILM Sealing MembraneBemis, USAPM-996section 3.6.5
Lambda ExonucleaseInvitrogen, USAEN0561section3.7.1.2.The 10 × reaction buffer is provided along with λ exonuclease by the provider.
Dr. GenTLE
Precipitation Carrier		Takara,Dalian,China9094section 3.6.2 and 3.8.1
UNIQ-10 PAGE DNA recovery kitSangon Biotech (Shanghai)B511135section 4.2
SYBR Gold nucleic acid gel stainInvitrogen, USA1811838nucelic acid stain dye, section 3.5.1.5
SYBR Premix Ex Taq IITakara,Dalian,ChinaRR820Apolymerase mix contaning polymerase and dNTPs, section 5.3.5
2-(N-Morpholino)ethanesulfonic acid (MES)Sigma-AldrichCAS: 1132-61-2section 5.2.1
1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (EDC)Invitrogen, USACAS: 25952-53-8section 5.2.2
N-hydroxysuccinimide (NHS)Sigma-Aldrich6066-82-6section 5.2.3
mercaptohexanol (MCH)Sigma-AldrichCAS: 1633-78-9section 7.7
Gold electrodeShanghai ChenhuaCHI101section 7.4. - 7.11
tris(2-carboxyethyl) phosphine hydrochloride (TCEP)Sigma-AldrichCAS: 51805-45-9section 7.5
O-(2-Mercaptoethyl)-O'-methyl-hexa-(ethylene glycol)Sigma-AldrichCAS: 651042-82-9section 7.7
diethylhexyl phthalate (DEHP)National Institute of Metrology, ChinaCAS: 117-81-7section 7.11
Tween 20Sigma-AldrichCAS: 9005-64-5polyoxyethy-lene(20) sorbaitan monolaurate
Triton X-100Sigma-AldrichCAS: 9002-93-1non-ionic surface active agent
PBSSigma-AldrichP536810 mM phosphate buffer containing 1 M NaCl, pH 7.4

References

  1. Vorkamp, K., Riget, F. F. A review of new and current-use contaminants in the Arctic environment: Evidence of long-range transport and indications of bioaccumulation. Chemosphere. 111, 379-395 (2014).
  2. Net, S., Sempere, R., Delmont, A., Paluselli, A., Ouddane, B. Occurrence, fate, behavior and ecotoxicological state of phthalates in different environmental matrices. Environ Sci Technol. 49 (7), 4019-4035 (2015).
  3. Xie, Q. L., Liu, S. H., Fan, Y. Y., Sun, J. Z., Zhang, X. K. Determination of phthalate esters in edible oils by use of QuEChERS coupled with ionic-liquid-based dispersive liquid-liquid microextraction before high-performance liquid chromatography. Anal BioanalChem. 406 (18), 4563-4569 (2014).
  4. Ierapetritis, I., Lioupis, A., Lampi, E. Determination of phthalates into vegetable oils by isotopic dilution gas chromatography mass spectrometry. Food Anal Methods. 7 (7), 1451-1457 (2014).
  5. Sun, J. Z., He, H., Liu, S. H. Determination of phthalic acid esters in Chinese white spirit using dispersive liquid-liquid microextraction coupled with sweeping beta-cyclodextrin-modified micellar electrokinetic chromatography. J Sep Sci. 37 (13), 1679-1686 (2014).
  6. Yilmaz, P. K., Ertas, A., Kolak, U. Simultaneous determination of seven phthalic acid esters in beverages using ultrasound and vortex-assisted dispersive liquid-liquid microextraction followed by high-performance liquid chromatography. J Sep Sci. 37 (16), 2111-2117 (2014).
  7. Sun, R., Zhuang, H. An ultrasensitive gold nanoparticles improved real-time immuno-PCR assay for detecting diethyl phthalate in foodstuff samples. Anal Biochem. 480, 49-57 (2015).
  8. Sun, R. Y., Zhuang, H. S. A sensitive heterogeneous biotin-streptavidin enzyme-linked immunosorbent assay for the determination of di-(2-ethylhexyl)phthalate (DEHP) in beverages using a specific polyclonal antibody. Anal Methods. 6 (24), 9807-9815 (2014).
  9. Zhou, L., Lei, Y., Zhang, D., Ahmed, S., Chen, S. An ultra-sensitive monoclonal antibody-based enzyme-linked immunosobent assay for dibutyl phthalate in human urinary. Sci Total Environ. 541, 570-578 (2016).
  10. Shen, J., Li, Y., Gu, H., Xia, F., Zuo, X. Recent development of sandwich assay based on the nanobiotechnologies for proteins, nucleic Acids, small Molecules, and ions. Chem Rev. 114 (15), 7631-7677 (2014).
  11. Yin, X. -. B. Functional nucleic acids for electrochemical and electrochemiluminescent sensing applications. TrAC, Trends Anal Chem. 33, 81-94 (2012).
  12. Nguyen, V. -. T., Kwon, Y. S., Gu, M. B. Aptamer-based environmental biosensors for small molecule contaminants. Curr Opin Biotechnol. 45, 15-23 (2017).
  13. Groher, F., Suess, B. In vitro selection of antibiotic-binding aptamers. Methods. 106, 42-50 (2016).
  14. Yang, K. -. A., Pei, R., Stojanovic, M. N. In vitro selection and amplification protocols for isolation of aptameric sensors for small molecules. Methods. 106, 58-65 (2016).
  15. Jing, M., Bowser, M. T. Methods for measuring aptamer-protein equilibria: a review. Anal. Chim. Acta. 686 (1-2), 9-18 (2011).
  16. Mehta, J., et al. Selection and characterization of PCB-binding DNA aptamers. Anal Chem. 84 (3), 1669-1676 (2012).
  17. Matsumoto, M., Hirata-Koizumi, M., Ema, M. Potential adverse effects of phthalic acid esters on human health: A review of recent studies on reproduction. Regul Toxicol Pharm. 50 (1), 37-49 (2008).
  18. Goodchild, J. Conjugates of oligonucleotides and modified oligonucleotides: a review of their synthesis and properties. Bioconjug Chem. 1 (3), 165-187 (1990).
  19. Brown, D. M. A brief history of oligonucleotide synthesis. Protocols for Oligonucleotides and Analogs: Synthesis and Properties. , 1-17 (1993).
  20. Reese, C. B. Oligo-and poly-nucleotides: 50 years of chemical synthesis. Org Biomol Chem. 3 (21), 3851-3868 (2005).
  21. Sproat, B., Colonna, F., Mullah, B., et al. An efficient method for the isolation and purification of oligoribonucleotides. Nucleos Nucleot Nucl. 14 (1-2), 255-273 (1995).
  22. Han, Y., et al. Selection of group-specific phthalic acid esters binding DNA aptamers via rationally designed target immobilization and applications for ultrasensitive and highly selective detection of phthalic acid esters. Anal Chem. 89 (10), 5270-5277 (2017).
  23. Bartlett, J. M. S., Stirling, D. A short history of the polymerase chain reaction. PCR protocols. , 3-6 (2003).
  24. Saiki, R. K., Scharf, S., Faloona, F., et al. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. Science. 230, 1350-1354 (1985).
  25. Albright, L. M., Slatko, B. E. Denaturing polyacrylamide gel electrophoresis. Current Protocols in Nucleic Acid Chemistry. , A. 3B 1-A. 3B 5 (2001).
  26. Summer, H., Grämer, R., Dröge, P. Denaturing urea polyacrylamide gel electrophoresis (Urea PAGE). JoVE. (32), e1485 (2009).
  27. Jing, M., Bowser, M. T. Methods for measuring aptamer-protein equilibria: a review. Anal Chim Acta. 686 (1), 9-18 (2011).
  28. Sharma, T. K., Bruno, J. G., Dhiman, A. ABCs of DNA aptamer and related assay development. Biotechnol Adv. 35 (2), 275-301 (2017).
  29. Liu, R., et al. Signaling-probe displacement electrochemical aptamer-based sensor (SD-EAB) for detection of nanomolar kanamycin A. Electrochim Acta. 182, 516-523 (2015).
  30. Mendonsa, S. D., Bowser, M. T. In vitro evolution of functional DNA using capillary electrophoresis. J Am Chem Soc. 126, 20-21 (2004).
  31. Lou, X. H., et al. Micromagnetic selection of aptamers in microfluidic channels. Proc Natl Acad Sci USA. 106 (9), 2989-2994 (2009).
  32. Cho, M., et al. Quantitative selection of DNA aptamers through microfluidic selection and high-throughput sequencing. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 15373-15378 (2010).
  33. Cho, M., et al. Quantitative selection and parallel characterization of aptamers. Proc Nat Acad Sci USA. 110 (46), 18460-18465 (2013).
  34. Song, K. -. M., et al. Gold nanoparticle-based colorimetric detection of kanamycin using a DNA aptamer. Anal Biochem. 415 (2), 175-181 (2011).
  35. Yang, Z., Ding, X., Guo, Q., et al. Second generation of signaling-probe displacement electrochemical aptasensor for detection of picomolar ampicillin and sulfadimethoxine. Sens Actuators B. 253 (2017), 1129-1136 (2017).
  36. Lou, X., Zhao, T., Liu, R., Ma, J., Xiao, Y. Self-assembled DNA monolayer buffered dynamic ranges of mercuric electrochemical sensor. Anal Chem. 85 (15), 7574-7580 (2013).
  37. Zhao, T., et al. Nanoprobe-enhanced, split aptamer-based electrochemical sandwich assay for ultrasensitive detection of small molecules. Anal Chem. 87 (15), 7712-7719 (2015).
  38. Lou, X., He, L. A. Surface passivation using oligo(ethylene glycol) in ATRP-assisted DNA detection. Sens Actuators,B. 129 (1), 225-230 (2008).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

133

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved