Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

פרוטוקול כדי להפוך את הבחירה במבחנה אפיון של חומצה פתלית המיועדות לקבוצות אסתר-איגוד ה-DNA aptamers מוצג. היישום של aptamer שנבחר ב aptasensor אלקטרוכימי נכלל גם.

Abstract

חומצה פתלית והפרופסור אסטרים (פאיס) של הקבוצות הגדולות של מזהמים אורגניים מתמיד. זיהוי המיועדות לקבוצות פאיס רצוי מאוד עקב גידול מהיר של congeners. DNA aptamers הוחלו יותר ויותר כרכיבים זיהוי בפלטפורמות ביוסנסור, אך בחירת aptamers לעבר מטרות מולקולה קטנה מאוד הידרופוביות, כגון פאיס, לעתים נדירות דווח. עבודה זו מתאר שיטה המבוססת על חרוז תוכנן כדי לבחור קבוצה ספציפית aptamers ה-DNA אל פאיס. קבוצת אמינו functionalized dibutyl פתלאט (DBP-NH2) המטרה עוגן היה מסונתז, ותשמרו על החרוזים מופעל אפוקסי agarose, מאפשר את התצוגה של קבוצת אסתר phthalic על פני השטח של המטריצה הנייח, ו לכן הבחירה של קלסרים קבוצה ספציפית. אנחנו נקבע את קבועי דיסוציאציה של המועמדים aptamer על ידי תגובת שרשרת הפילמור כמותיים בשילוב עם הפרדה מגנטית. הזיקות היחסי ואת מידת הבררנות של aptamers אל פאיס אחרים נקבעו על ידי מבחני תחרותי, שבו המועמדים aptamer היו ותחום מראש ל DBP-NH2 המצורפת beads מגנטי, שוחרר תגובת שיקוע על דגירה עם פאיס שנבדקו או חומרים מפריעות פוטנציאליים אחרים. וזמינותו תחרותי הוחל משום שסיפקה השוואה נתיישב זיקה בין פאיס שהיה אין קבוצות פונקציונליות עבור משטח הנייח. לבסוף, אנו הפגינו הזיוף של aptasensor אלקטרוכימי, השתמשו בו על זיהוי העדינה, סלקטיבי של פתלאט bis(2-ethylhexyl). פרוטוקול זה מספק תובנות על גילוי aptamer של מולקולות קטנות הידרופוביות אחרות.

Introduction

יחד עם התפתחות כלכלית מהירה, האצה של ה תיעוש, הבנייה העירונית, זיהום סביבתי הוא חמור יותר מאי פעם. טיפוסי מזהמים סביבתיים כוללים יונים של מתכות כבדות, רעלים, אנטיביוטיקה, חומרי הדברה, משבשים האנדוקרינית ו מזהמים אורגניים מתמיד (אבא). מלבד יונים מתכתיים, רעלים, מזהמים אחרים הם מולקולות קטנות לעיתים קרובות מכילים מגוון רחב של congeners. לדוגמה, הטיילת הרעילים ביותר לכלול polychlorinated biphenyls (PCBs), פחמימנים ארומטיים polycyclic (PAHs), polybrominated biphenyl קטונים (PBDEs), dibenzo-p-דיוקסין polychlorinated (PCDDs), polychlorinated dibenzofuran (PCDFs), ו phthalic חומצה אסטרים (פאיס)1,2, אשר כולם מורכב congeners רבים. גילוי מולקולה קטנה בוצעה בעיקר על-ידי טכניקות מבוססות ספקטרומטר מסה/כרומטוגרפיה בשל מגוון של יישומים3,4,5,6. עבור גילויים באתר, נוגדן מבוססי שיטות לאחרונה היה מפותח7,8,9. עם זאת, מאז שיטות אלה הם מאוד ספציפי congener מסוימים, יש לבצע בדיקות מרובות. מה זה חמור יותר הוא כי הרומן congeners לגדול כל כך מהר, כי לא ניתן ליצור נוגדנים שלהם בזמן. לכן, ההתפתחות של קבוצה ספציפית ביולוגיים כדי לנטר את רמות סך כל congeners במבחן אחד עשוי לספק מדד לא בפז להערכת מצב זיהום סביבתי.

לאחרונה, חומצת גרעין aptamers נרחב הוחלו כרכיבים זיהוי של פלטפורמות שונות biosensing עקב שלהם יכולת זיהוי מגוון רחב של מטרות, יונים ומולקולות קטנות חלבונים ותאים10,11 ,12. Aptamers מזוהים באמצעות שיטה במבחנה בשם האבולוציה שיטתית של ליגנדים מאת העשרה מעריכית (SELEX)13,14. SELEX מתחיל עם הספרייה oligonucleotide אקראיים סינתטי לחוט אחד, אשר מכיל כ רצפים15 14-10 10. הגודל של הספרייה אקראי מבטיחה את המגוון של המבנים המועמד RNA או DNA. תהליך SELEX טיפוסי מורכב מספר סיבובים של העשרה עד הספרייה מועשר ברצפים עם זיקה גבוהה וספציפיות אל המטרה. מועשר בבריכה הסופי אז הוא רציף, ולסנן קבועי דיסוציאציה (דK) ואת סלקטיביות נגד פוטנציאל חומרים מפריעות נקבעים על-ידי טכניקות שונות כגון איגוד, כרומטוגרפיית זיקה משטח פלזמון תהודה (SPR), וכו '. 15

בשל מסיסות המים ירודה ביותר וחוסר קבוצות פונקציונליות עבור משטח הנייח, הבחירה aptamer של סבא קשה באופן תיאורטי. התקדמויות משמעותיות עבור SELEX יש speeded את הגילוי של aptamers. עם זאת, הבחירה של קבוצה ספציפית aptamers עבור סבא יש וטרם דווחו. עד כה, רק מחייב PCB DNA aptamers עם ירידה לפרטים גבוה עבור congener מסוימים כבר מזוהה16. פאיס משמשים בעיקר בחומרים פוליוויניל כלוריד, שינוי במבנהו מפלסטיק קשיח לפלסטיק גמיש, ובכך כסוכנות מרכך ומגמיש. כמה פאיס זוהו משבשים האנדוקרינית, יכול לגרום נזק חמור בכבד, תפקוד כליות, להפחית את תנועתיות הזרע הגברי, עלול לגרום סרטן האשכים17ומורפולוגיה זרע לא תקין. המתחם - וגם המיועדות לקבוצות PAE מחייב aptamers דווחו.

מטרת עבודה זו היא לספק פרוטוקול ייצוגית לבחירת המיועדות לקבוצות aptamers דנ א כדי מאוד הידרופובי מולקולות קטנות כגון פאיס, קבוצה ייצוגית של אבא. אנחנו גם להוכיח את היישום של aptamer שנבחר לגילוי זיהום סביבתי. פרוטוקול זה מספק הדרכה ותובנות על גילוי aptamer של מולקולות קטנות הידרופוביות אחרות.

Protocol

1. ספריית ועיצוב פריימר סינתזה

  1. לעצב את הספריה הראשונית ואת צבעי יסוד.
    ספריה (בריכת0): 5'-TCCCACGCATTCTCCACATC-N40-CCTTTCTGTCCTTCCGTCAC-3'
    קדימה פריימר (FP): 5'-TCCCACGCATTCTCCACATC-3'
    Phosphorylated תחל הפוכה (PO4- RP): 5'-פו4- GTGACGGAAGGACAGAAAGG-3... '
  2. לסנתז בריכה0FP, פו4- RP באמצעות תקן phosphoramidite כימיה18,19,20, ולטהר את כל DNAs על ידי תקן ביצועים גבוהים כרומטוגרפיה נוזלית (HPLC)21.
  3. לשקם בריכה0FP, פו4- RP בכיתה ללא נוקלאז מים ב 100 מיקרומטר, aliquot, ואחסן אותם ב-20 או -80 ° C עד שנה אחת.
    הערה: הוא הציע בתוקף לאחסון בריכה0FP, פו4- RP ב 10-20 µL aliquots כדי למנוע זיהום אפשרי לחצות.

2. לסנתז המטרה עוגן, שלה הנייח על חרוז Agarose מופעל אפוקסי

  1. לסנתז את קבוצת אמינו functionalized dibutyl פתלאט (DBP-NH2) כיעד עוגן.
    הערה: פרטי ניסיוני על סינתזה, אפיון DBP-NH2 תוארו בספרות22.
  2. הכינו העוגן יעד פתרונות מניות במדיום מתאים המסיסות היעד. במחקר זה, להכין פתרון 100 מ מ DBP-NH2 מניות ב דימתיל סולפוקסיד (דימתיל סולפוקסיד) ולאחסן את הפתרון ב-4 או-20 ° C עד שנה אחת.
  3. לשתק DBP-NH2 על גבי חרוזים מופעל אפוקסי agarose לפי פרוטוקול ששונה מהיצרן.
    1. שוקלים לצאת 0.1 גר' אבקת להקפיא מיובש של חרוזים agarose מופעל אפוקסי, להשעות אותו במים מזוקקים. לשטוף המדיום מאובטח באמצעות מים 20 מ"ל מזוקקים מוסיפים מספר aliquots. לשטוף את המדיום עם 0.2 מ' נה2CO3 (pH 12).
      הערה: המדיום מתנפח מיד לאחר הוספת המים לתוכו.
    2. להמיס DBP-NH2 (46.7 mg, 0.15 mmol) המאגר צימוד µL 500 (0.2 מ' נה2CO3 מאגר).
    3. מערבבים את הפתרון צימוד המכיל את ליגנד עם המדיום. השתמש מטרף-5 rpm 48 שעות בטמפרטורת החדר.
    4. חזור על נטילת המוצר שלוש פעמים, באופן רציף באמצעות מאגר אצטט 0.1 M (0.5 M NaCl, pH 4.5), 0.2 מ' קרבונט מאגר (0.5 M NaCl, pH 12) בכל מחזור השטיפה. רוחצים את להשעות את המוצר במים כדי להפוך את הנפח הסופי של 500 µL.
    5. לאחסן את המוצר לפי 4 ° C לפני השימוש.
    6. לאשר ההצלחה של קיבעון המטרה ידי לניתוח.

3. SELEX

  1. הכנת 500 מ"ל של PAE מחייב מאגר מים אולטרא טהורים או כיתה ללא נוקלאז מים עם 20 מ מ Tris· HCl, 100 מ מ NaCl, 2 מ מ MgCl2, 5 מ מ אשלגן כלורי, CaCl 1 מ2, 1% polyoxyethy-לין monolaurate sorbaitan (20) ו- 0.03% משטח ללא יונית פעיל הסוכן (pH 7.9). לסנן את המאגר דרך מסנן סטרילי ניטרוצלולוזה מיקרומטר 0.22 ואחסן אותו בטמפרטורה גבוהה יותר 20 ° C במשך חודשים.
    הערה: חיוני כדי לשמור על מצב פיזור טוב של פאיס במאגר PAE מחייב. מספר סוגים של פיתחה נחוצים כדי לשפר את המסיסות פאיס בתמיסה המימית. עם זאת, יש לשמור את המספר של פיתחה עד למינימום כדי למנוע היווצרות של חומרים פעילי שטח הקזאין הכומסים מולקולות PAE. Non-יוניים, משטח הסוכן הפעיל הוא קל לזרז בטמפרטורה נמוכה יותר מאשר 20 ° C, ולכן צריך להיות מאוחסן המאגר בטמפרטורה גבוהה יותר 20 º C.
  2. לדלל µL 10 100 מיקרומטר בריכה0(~1.0 nmol עבור 10 רצפים15 14-10) ב- µL 490 PAE מחייב המאגר. לחמם הבריכה aliquots0 (5 × 100 µL) במנורות קיר דק צנטריפוגה בערכת אמבט מים ב 95 מעלות צלזיוס במשך 10 דקות במקום הצינורות על קרח למשך 5 דקות, לאחר מכן דגירה של הצינורות עבור 5 דקות בטמפרטורת החדר (~ 25 ° C בעבודה זו).
  3. בסיבוב הראשון של בחירה: דגירה של הבריכה0 ו- DBP−NH2−coated בינונית.
    1. לשטוף 200 µL DBP−NH2−coated בינוני שלוש פעמים עם µL 500 PAE מחייב המאגר. מיקס DBP−NH2−coated בינוני עם בריכה0 , דגירה התערובת בטמפרטורת החדר במשך 1 h תחת רועד מתון.
    2. נפרד המדיום −coated2DBP−NH מחוייב עם aptamers מ DNAs לא מאוגד אולטראפילטרציה והשתמש אולטראפילטרציה שפופרת ניתוק מולקולרית של 100 kDa. לשטוף את המדיום שלוש פעמים עם 500 µL של PAE מחייב מאגר, צנטריפוגה ב 9,168 g × 10 דקות ב 4 º C.
  4. בסיבוב הראשון של בחירה: • תנאי aptamer מ- DBP−NH2−coated בינונית.
    1. להוסיף µL 50 PAE מחייב מאגר בינוני שטף של חום התערובת ב 90 מעלות צלזיוס במשך 9 דקות תחת רועדת.
    2. לאסוף את תגובת שיקוע המכילה את DNAs eluted על-ידי אולטראפילטרציה. חזור על תהליך זה • תנאי שלוש פעמים כדי לשחזר יותר מאוגדים DNAs.
  5. בסיבוב הראשון של בחירה: ה-PCR
    1. בקנה מידה קטן PCR
      1. ביצוע של מידה קטן PCR23 (4 × 20 µL aliquots) באמצעות ~ 15-30 מחזורים. להגדיר את התגובה של ה-PCR24 כדלקמן: µL 6.5 RNase ללא מים, µL 1 של 10 מיקרומטר פריימר (FP, פו4- RP, 0.01 nmol), 1.5 µL eluted בריכה סעיף 3.4 (או מים נטולי RNase כפקד שלילי) ו- 10 µL של premixed המכילה תערובת התגובה dNTPs, חם להתחיל פולימראז, ו 2 × PCR התגובה מאגר (20 מ מ tris· HCl, 100 מ מ אשלגן כלורי, 3 מ מ MgCl2, pH 8.3).
      2. להפעיל את ה-PCR באמצעות הצנטרפוגה תרמי עם ההגדרות הבאות: מחזור 1 של 95 ° C, 1 דקות; 30 מחזורים של [95 ° C, 30 s; 56 ° C, 30 s; 72 ° C, 30 s]; מחזור 1 של 72 מעלות צלזיוס, 2 דקות ו להחזיק על 4 מעלות צלזיוס. כאשר המכשיר פועל שה sה 20 של המדרגות סיומת ה-15, 20, 25, 30 מחזורים, הקש על מקש pause, פתח את המכסה כלי, קח שפופרת אחת החוצה ולאחר מכן הקש על מקש pause שוב כדי לחדש את ה-PCR.
      3. להכין 12% שפגע בסימני לזיהוי ג'ל אלקטרופורזה (עמוד)25,26. לערבב 4.8 גרם אוריאה, 6 מ של מים אולטרא טהורים, 1 מ"ל של 10 × טריס/boric חומצה/אתילן diamine ב tetraacetic חומצה (TBE), 3 מ"ל של אקרילאמיד 40%, µL 10 tetramethylethylenediamine (TEMED), 100 µL 10% קירור (APS), לפי הסדר הזה. מערבבים היטב והמתן 1.5-2 h כדי להבטיח שהג'ל עפור לחלוטין.
      4. לנתח את התוצאות אופטימיזציה מחזור: לשלב 1 µL של כל מוצר ה-PCR עם 5 µL RNA טעינת מאגר (62.5% formamide, פורמלדהיד 0.4 מ', מאגר החומצה propansulfonic 1.25×3-(N-morpholino), 0.02% קסילן cyanol FF, bromophenol 0.02% כחול), 4 µL של ללא RNase מים; מחממים את התערובת ב 95 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות, במהירות את תירגע עד 0 ° C-קרח; תקופת דגירה של 5 דקות בטמפרטורת החדר; נוסיף 5 בארות נפרדים של 12% שפגע בסימני עמוד; בהנהלת אלקטרופורזה מערכת אלקטרופורזה אנכי במאגר TBE 1 × ב-170 V למשך 45 דקות.
      5. לאחר אלקטרופורזה, הכתם הג'ל עם 3 µL של 1 × חומצת גרעין ג'ל כתם ב30 מ"ל 1 מאגר TBE × 10 דקות, וקח תמונה של הג'ל.
    2. גדול קנה המידה של ה-PCR: בחר מספר מתאים של מחזורי כדי לייצר את הלהקה בעוצמה הגבוהה ביותר ב דה מרקר בגודל הנכון ללא תוצרי לוואי לא רצויות. לבצע בקנה מידה גדול PCR (20 × 100 µL aliquots) ניצול את התנאים ואת מספר מחזורים נקבע סעיף 3.5.1 המתאים.
      הערה: הסכום הסופי של ספריית חד גדילי שניתן להשיג הוא יחסי הנפח הכולל של PCR, לא את הריכוז של תבנית. בדרך כלל, כדי להשיג nmol 1 של הספרייה, הבריכה חד גדילי צריך 2 מ ל PCR. PCR הוא מאוד רגיש, מזוהמים בקלות על-ידי DNAs בחוץ. צעדים יש לנקוט כדי להקטין את הסיכוי לזיהום, כגון לבש כפפות, באמצעות טיפים מעוקר, לא לירוק את החצוצרות שלה, לא פותחים את הפקק של הצינור PCR לפני צנטריפוגה.
  6. בסיבוב הראשון של בחירה: טיהור של מוצר ה-PCR על ידי משקעים אתנול.
    1. לשלב שני צינורות של תערובת PCR שפופרת אחת (200 µL כל אחד). חזור על הפעולה עבור כל הצינורות.
    2. להוסיף µL 15 של סודיום אצטט (3 מ', pH 5.2) פתרון µL 4 של ה-DNA/RNA משקעים המוביל פתרון, פי 2.5 הנפח של אתנול טרום מקורר ב-20 ° C לתוך כל שפופרת. מערבבים אותם באופן שווה.
      הערה: ה-DNA/RNA משקעים המוביל הוא בשימוש נרחב בניסויים משקעים אתנול לשפר באופן משמעותי את אחוזי ההחלמה DNA/RNA בריכוזים נמוכים. זה לא מפריע במורד יישומים כגון PCR ורצף.
    3. Centrifuge את התערובת ב g × 20,627 למשך 20 דקות ב 4 ° C ו בקפידה למחוק את תגובת שיקוע ולהשאיר התמיסה לבן.
    4. להוסיף 400 µL של 70% מראש קירור אתנול פתרון ב-20 ° C לתוך כל שפופרת לשטוף את המשקעים. Centrifuge את התערובת ב g × 20,627 במשך 5 דקות ב 4 ° C, ו בקפידה למחוק את תגובת שיקוע ולהשאיר התמיסה לבן. חזור על השלב לשטוף פעמיים נוספות.
    5. פתח את המכסה צינור; שמוק קרום איטום; תן אתנול התנדפות ב 40 מעלות צלזיוס על הבלוק חימום עד התמיסה לבן הופך שקוף. לאחסן את התמיסה ב-20 ° C.
      הערה: המוצר PCR מטוהרים ניתן לאחסן ב-20 ° C.
  7. בסיבוב הראשון של בחירה: דור דנ א חד גדילי (הדור של הבריכה מועשר1) על-ידי ביצוע התגובה אקסונוקלאז λ לעכל סטרנד הפוכה phosphorylated.
    1. בקנה מידה קטן λ אקסונוקלאז התגובה
      1. להוסיף 100 µL של מים נטולי RNase שפופרת אחת המכילה את המוצר PCR מטוהרים מהסעיף 3.6. מערבולת צינור כדי נמסים לחלוטין את התמיסה בצינור.
      2. הכן טורפדו צנטריפוגה חמש ולהוסיף 5 µL של הפתרון שלעיל, µL 11 של RNase - מים חינם, µL 2 × 10 תגובה מאגר (670 מ מ גליצין-KOH, 25 מ מ MgCl2 , 0.1% (v/v) טריטון X-100 pH 9.4) לתוך כל שפופרת.
      3. להוסיף 2 µL של מים או λ מדולל אקסונוקלאז בתמיסה המכילה 2 U, 5 U, 8 U ו 10 U λ אקסונוקלאז לתוך צינורות אלה, בהתאמה. מערבבים את הפתרון על ידי בעדינות pipetting. המאגר תגובה × 10 מסופק עם λ exonucleasefrom המתווכת.
      4. דגירה הצינורות במשך 35 דקות ב 37 מעלות צלזיוס, 15 דקות ב 80 ° C, ולהחזיק ב 4 º C.
      5. להכין את הילידים 12% דף. מערבבים 6 מ של מים אולטרא טהורים, 1 מ"ל של 10 × TBE, 3 מ"ל של אקרילאמיד 40%, 10 µL של TEMED µL 100 10% APS, לפי הסדר הזה. מערבבים היטב והמתן 60-90 דקות על מנת להבטיח שהג'ל עפור לחלוטין.
      6. לנתח את התוצאות של התגובות על-ידי שילוב 5 µL של כל תגובה עם µL 1 של טעינת צבע ו- 4 µL של מים נטולי RNase, loading תערובות אלה 5 בארות נפרדים של 12% ילידי עמוד (150 V למשך 45 דקות).
        הערה: סולם ה-DNA גדילי כפול 20 bp גם ניתן לטעון על הג'ל, אבל זה לא יהיה נחוץ מאז הלהקות ברורים של מוצר ה-PCR, הספרייה נטושים יחיד שנוצר להראות על הג'ל.
        הערה: התגובה אקסונוקלאז λ החינמי של סלקטיביות מבניים מעולה. המוצר PCR גדילי כפול (סטרנד אנטי-תחושה מסומן עם קבוצת פוספט בקצה 5') יכול להיות מתעכל לחלוטין לתוך ספרייה חד גדילי בנוכחות λ אקסונוקלאז במגוון רחב מאוד ריכוז (איור 4). הכמות המינימלית של אקסונוקלאז λ שיכולות לייצר לגמרי חד גדילי DNA ב התגובה אקסונוקלאז λ בקנה מידה קטן משמש גם עבור התגובה אקסונוקלאז λ בקנה מידה גדול. ריכוז גבוה יותר של אקסונוקלאז λ עשוי לשמש גם, מאז λ אקסונוקלאז עובד טוב בטווח רחב ריכוז מבלי לאבד את התשואה סלקטיביות והמוצר שלה מבנה. התגובה אקסונוקלאז λ מעוכבת על ידי ריכוז גבוה של מלח. עיכול לא שלם של המוצר PCR בדרך כלל מרמז על כי מדי מלח קיימת במוצר ה-PCR. הטיהור של מוצרי ה-PCR על ידי משקעים אתנול (סעיף 3.6) נמצא בדרך כלל תואם עם שלב זה, בעוד המוצר PCR מטוהרת על-ידי אלכוהול איזופרופיל משקעים לעתים קרובות מכיל יותר מדי מלח.
    2. בקנה מידה גדול λ אקסונוקלאז התגובה: בחר את הכמות המינימלית של אקסונוקלאז λ שיכולות לייצר לגמרי חד גדילי DNAs עבור התגובה אקסונוקלאז λ בקנה מידה גדול. התגובה תוגדל באופן פרופורציונלי לפי תנאי זה. לדוגמה: אם 2 U היא הכמות המינימלית של אקסונוקלאז λ הנדרש, לערבב µL 38 Rnase ללא מים, µL 10 של 10 x מאגר, µL 50 של מאגר דנ א1 ו- 2 µL של אקסונוקלאז λ U/µL 10.
  8. בסיבוב הראשון של בחירה: טיהור של הבריכה חד גדילי1 על ידי משקעים אתנול.
    1. בצע את ההוראות של צעד 3.6.
    2. לקבוע הריכוז מטוהרת בריכה1 על-ידי ספיגת UV ב-260 ננומטר.
    3. לשקם את בריכת 90% טהור1 בתוך אמצעי אחסון המתאים PAE מחייב המאגר. אם אין מספיק דנ"א שהושג לסיבוב הבא של בחירה, חזור על סעיפים 3.5-3.8.2.
      הערה: הנפח של PAE מחייב מאגר בדרך כלל משתנה מ- 200 500 µL על פי מידת הריכוז הסופי הרצוי של ספריית בסיבוב הבא של SELEX וספרייה.
  9. השני, שלישי, וחמישי סיבובים של SELEX.
    1. התנהלות השנייה, השלישית, הרביעית, החמישית סיבובים של SELEX לאחר מכן בעקבות ההליך אותו שתוארו לעיל (סעיף 3.2-3.8), פרט לכך הספרייה pmol ~ 300 היה קלט כדי להגביר את הבחירה לכתחילה.
    2. כדי למזער את הספיגה לא ספציפית של DNAs על בינוני, דגירה הבריכה בינונית שלא שונתה על מטרף רוטרי למשך 30 דקות השלישי, בסיבוב הרביעי של בחירה לפני הדגירה עם המדיום −coated2DBP−NH.
      הערה: תהליך SELEX הסתיימה בשעה הסיבוב החמישי בשל crosslink רציני בין DNAs על ידי כמות גדולה של המוצר משקל מולקולרי גבוה שלא הועברו לתוך הג'ל.

4. רצף תפוקה גבוהה

  1. להכין בריכה4 מהסעיף 3.9.2 רצף על ידי הגברה PCR עם תחל תואם.
    1. עיצוב ולסינתזה של פריימר לפנים אינדקס עם 6 nt בסוף יונקות כדי להקל על הניתוח רצף.
      אינדקס פריימר לפנים (FP-רצף): 5'-agtacgaTCCCACGCATTCTCCACATC-3'
    2. להגדיר את תגובת 1,000 µLPCR כדלקמן: µL 380 RNase ללא מים, 50 µL של כל תחל 10 מיקרומטר (FP-רצף, פו4- RP, 0.5 nmol), µL 20 eluted ביליארד מהסעיף 3.9.2 ולאחר 500 µL של premixed תערובת התגובה המכיל dNTPs, לגיטימי פולימראז , 2 × PCR התגובה חיץ. Aliquot התערובת לתוך 10 המבחנות. השתמש באותם תנאים PCR כמתואר בסעיף 3.5.1.2.
  2. לטהר את המוצר PCR כדי לעמוד בדרישות של המתקן רצף. לדוגמה, השתמש ערכת שחזור דף-ג'ל הדנ א על פי הוראות היצרן.
  3. לשלוח את המוצר PCR מטוהרים (~ 2 µg) מתקן רצף בתנאים משלוח הנדרש על-ידי המתקן רצף. לדוגמה, לשלוח את המוצר PCR בשפופרת צנטרפוגה עם בקבוקים חתומים ביסודיות עם שקיות קרח על המתקן רצף.
    הערה: קיבל את התוצאות דירגו את רצפי לפי המספר עותק של כל רצף כדי להעריך את העשרת של הבריכה ברצף. הרצף העליון נקרא DBP-1 (5'-CTTTCTGTCCTTCCGTCACATCCCACGCATTCTCCACAT-3'). שלו זיקה, סלקטיביות נמדדו באמצעות פרוטוקול הבאים (סעיף 5 ו- 6). היישום שלה, ביו-חישה אלקטרוכימי הודגם בהמשך בסעיף 7.

5. Kd נחישות של נבחרת Aptamer מועמדים באמצעות PCR כמותי Magnetic Bead-Based (qPCR)

  1. לסנתז DBP-1-qPCR, תחל באמצעות הכימיה phosphoramidite סטנדרטי, יש לטהר אותה HPLC סטנדרטי.
    המועמד Aptamer (DBP-1-qPCR): 5'-ATACCAGCTTATTCAATTCTTTCTGTCCTTCCGTCACATC CCACGCATTCTCCACATAGATAGTAAGTGCAATCT-3'
    קדימה למתחילים qPCR (FP-qPCR): 5'-ATACCAGCTTATTCAATT-3'
    הפוך למתחילים qPCR (RP-qPCR): 5'-AGATTGCACTTACTATCT-3'
    הערה: האזורים פריימר של הרצף שנבדקו שונים מאלה של הבריכה0 השתמשו בסעיף 3. המטרה של שינוי האזורים פריימר היא לבחון את הזיקה של הרצף ליבה בלבד, למעט האזורים פריימר.
  2. לשתק DBP-NH2 על גבי beads מגנטי מצופה חומצה קרבוקסילית ההוראות של היצרן.
    1. לשטוף את החרוזים מגנטי מצופה חומצה קרבוקסילית פעמיים עם 25 מ מ 2-(N-מורפולינו) ethanesulfonic חומצה (MES) (pH 5.0), באמצעות אמצעי אחסון שווה של beads מגנטי (100 µL) pipetted החוצה המבחנה, 10 דקות עם ערבוב טוב (מעל קצה- או דומה).
    2. מיד לפני השימוש, להכין 50 מ"ג/מ"ל של 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide הידרוכלוריד (EDC) פתרון עם קר 25 מ מ MES (pH 5.0).
    3. מיד לפני השימוש, להכין 50 מ"ג/מ"ל של N-hydroxysuccinimide (NHS) פתרון עם קר 25 מ מ MES (pH 5.0).
    4. לערבב 100 µL של פתרון EDC, 100 µL של פתרון NHS עם החרוזים שטף, תקופת דגירה של 30 דקות בטמפרטורת החדר עם סיבוב איטי הטיה.
    5. לשים את הצינורית על מגנט 4 דקות לאחר דגירה, למחוק את תגובת שיקוע, לשטוף חרוזים פעמיים עם µL 100 מ מ 25 קר MES (pH 5.0).
    6. דגירה µL 6 של פתרון מניות 100 מ מ DBP-NH2 ו- 25 מ מ MES (pH 5.0, 290 µL) עם החרוזים מופעל תחת סיבוב במשך לפחות 30 דקות בטמפרטורת החדר או h 2-4 ° C, עם סיבוב איטי הטיה ב 5 סל ד.
    7. לשים את הצינורית על המגנט במשך 4 דקות לאחר דגירה וזורקים את תגובת שיקוע. רוחצים את החרוזים מצופה 4 פעמים את resuspend חרוזים עם 200 µL של PAE מחייב מאגר וחנות ב 4 ° C עד השימוש.
  3. לאסוף טיטור עקומה כדי לקבוע Kd.
    1. להכין סדרה של פתרונות DBP-1 (500 µL) בריכוזים שונים במאגר PAE מחייב בין השעות 1 ל- 300 ננומטר.
    2. להוסיף 10 µL של DBP-NH2-מצופה beads מגנטי כמתואר בסעיף 5.2.7 פתרון לכל DBP-1. תקופת דגירה של h 1 בטמפרטורת החדר תחת סיבוב.
    3. במקום הצינורות על מגנט 4 דקות ולהסיר את תגובת שיקוע. לשטוף את החרוזים 4 פעמים באמצעות µL 200 PAE מחייב המאגר.
    4. להוסיף µL 60 PAE מחייב מאגר כל שפופרת. דגירה הצינורות ב 95 מעלות צלזיוס במשך 15 דקות לאסוף תגובת שיקוע המכילה את eluted DBP-1 על-ידי הפרדה מגנטית. חזור על תהליך זה • תנאי להשיג DBP יותר מאוגד-1.
    5. לדלל את הפתרון elute 100-fold ולקחת µL 3 עבור qPCR בזמן אמת. להגדיר את תגובת qPCR כדלקמן: µL 3 RNase ללא מים, 2 µL של 10 מיקרומטר פריימר (FP, פו4- RP, 0.01 nmol) 3 µL של eluted, מדולל DBP-1, 10 µL של premixed תערובת התגובה המכיל dNTPs פולימראז, מאגר התגובה x PCR 2.
    6. לקבוע את המספרים של DBP-1 בכל מדגם על-ידי הפעלת qPCR באמצעות הצנטרפוגה תרמי עם ההגדרות הבאות: מחזור 1 של 95 ° C, 30 s; 30 מחזורים של [95 ° C, 30 s; 45 ° C, 30 s; 72 ° C, 30 s]; מחזור 1 של 72 מעלות צלזיוס, 30 s ו להחזיק על 4 מעלות צלזיוס.
    7. התווה את עקומת טיטור ולקבוע Kd על ידי התאמה לא-ליניאריות של העקומה בהנחה יחס של 1:1 מחייב27.

6. יחסי אהדה ובדיקה ירידה לפרטים על ידי מבחני תחרותי

  1. להוסיף 10 µL של DBP-NH2-מצופה beads מגנטי לפתרון DBP-1 (500 µL, 1 מיקרומטר). תקופת דגירה של h 1 בטמפרטורת החדר תחת סיבוב. במקום הצינורות על מגנט 4 דקות ולהסיר את תגובת שיקוע. רוחצים את החרוזים 4 פעמים באמצעות µL 200 PAE מחייב המאגר את resuspend אותו ב- µL 10 PAE מחייב המאגר.
  2. להוסיף 10 µL של DBP-NH2-מאוגד בינונית מצופה עם DBP-1 כדי µL 110 של כל 10 מיקרומטר נבדק מדגם (DBP-NH2, DBP, DEHP, בוטיל בנזיל phthalate(BBP), יונים של מתכות כבדות, וכו '.) דגירה בטמפרטורת החדר במשך ה 1 לאסוף תגובת שיקוע על ידי הפרדה מגנטית.
  3. לדלל את תגובת שיקוע 100-fold ולקחת µL 3 על כימות qPCR. להגדיר את תגובת qPCR כדלקמן: µL 3 RNase ללא מים, 2 µL של 10 מיקרומטר פריימר (FP, פו4- RP, 0.01 nmol) 3 µL של eluted, מדולל DBP-1, 10 µL של premixed תערובת התגובה המכיל dNTPs פולימראז, מאגר התגובה x PCR 2.
  4. לקבוע את המספרים של DBP-1 בכל מדגם על-ידי הפעלת qPCR באמצעות הצנטרפוגה תרמי עם ההגדרות הבאות: מחזור 1 של 95 ° C, 30 s; 30 מחזורים של [95 ° C, 30 s; 45 ° C, 30 s; 72 ° C, 30 s]; מחזור 1 של 72 מעלות צלזיוס, 30 s ו להחזיק על 4 מעלות צלזיוס.
  5. לחשב את הזיקה היחסי על-ידי חלוקת מספר DBP-1 שוחרר את החרוזים בנוכחות המדגם לפי מספר DBP-1 שוחרר את החרוזים במאגר איגוד PAE: זיקה יחסית = Nמדגם/Nמאגר.

7. ייצור ומדידות אלקטרוכימי של DEHP ביולוגיים אלקטרוכימי

  1. לסנתז את רצף ליבה thiolated (HS-DBP-1), החללית איתות (DBP-1-C-Fc) באמצעות תקן phosphoramidite כימיה, יש לטהר אותה HPLC סטנדרטי.
    HS-DBP-1: 5' - HS - (CH2)6- CTTTCTGTCCTTCCGTCACATCCCACGCATTCTCCACAT-3'
    DBP-1-C-Fc: 5 '- GATGTGACGGAAGGTTTTTTTT - (CH2)6Fc-3'
    הערה: עיצוב רציונלית הגששים חיישן תוארה שלנו18,הקודם pbulications22.
  2. לשקם HS-DBP-1, DBP-1-C-Fc במים נטולי נוקלאז כיתה ב 100 מיקרומטר, aliquot, ואחסן אותם ב-20 או -80 ° C עד שנה אחת.
  3. הפולני. האלקטרודה זהב בקפידה על משטח דמוי מראה עם 1, 0.3 ו- 0.05 מיקרומטר Al2O3 אבקת על microcloth עבור 5 דקות, sonicate אותו במים הנדסה גנטית למשך 5 דקות כדי להסיר שאריות אל2O3. ואז לנקות האלקטרודה על ידי ליטוש אלקטרוכימי עם סריקות וולטמטריה רצופים (CV) 35 מ 0.4 ל +1.2 V (לעומת Hg-Hg2אז4) 0.5 M H2אז4 -mV 100/s.
  4. להכין תערובת של 0.5 מיקרומטר HS-DBP-1 ו- 0.5 מיקרומטר DBP-1-C-Fc 100 µL 10 מ מ פוספט מאגר המכיל 1 M NaCl, pH 7.4 (PBS). מחממים את התערובת בצינור דק-קיר צנטריפוגה בערכת אמבט מים ב 95 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות, ומגניב לאט את התערובת לטמפרטורת החדר.
  5. להוסיף 1 µL של טריס הידרוכלוריד-(2-carboxyethyl)-פוספין (TCEP, 10 מ מ, פתרון מניות) לתוך התערובת. לשמור בטמפרטורת החדר מאובטח.
  6. לטבול האלקטרודה זהב נקי בפתרון לעיל במשך 12 שעות, או למשך הלילה בטמפרטורת החדר.
  7. לשטוף את האלקטרודה עם PBS, לטבול האלקטרודה 1 מ"מ [S (CH2)2(2CH ו2)6ו3]2 (HS-למשל6- הביתה) ב- PBS עבור ה 1 לשטוף את האלקטרודה ביסודיות באמצעות התכונה PAE איגוד מאגר, לטבול האלקטרודה במאגר PAE מחייב.
  8. לקחת סריקת רקע גל מרובע voltammetry (SWV) במאגר איגוד PAE ללא מטרה.
    1. לנקות את כל הציוד ניסיוני: תאים אלקטרוליטי, זהב עובד אלקטרודה, אלקטרודת פלטינה מונה ו calomel רווי הפניה אלקטרודה (SCE).
    2. להפעיל את התוכנה המותקנת; להגדיר את הפרמטרים ניסיוני עבור מדידות SWV.
      הערה: הפרמטרים הבאים ניסיוני שימשו את הניסויים SWV: מגוון אפשריות: מ--0.2 ל 0.7 וולט; אפנון משרעת: 25 mV; רוחב פולס: 5 ms; קצב סריקה: mV 50/s; צעד פוטנציאל: 1 mV.
    3. לחבר את הזהב עובד אלקטרודת פלטינה מונה אלקטרודה, SCE כדי potentiostat והניח אלה שלוש אלקטרודות לתוך תא אלקטרוליטי המכיל מאגר PAE מחייב.
    4. הפעל SWV מדידה.
      הערה: פעם מתחילה מדידה SWV, עיקול SWV תהיה המוצג על המסך של המחשב. הסריקה חוזרת עד הסריקות נמצאים מתמדת הם נצפו שינויים נוספים שיא גובה או צורה.
  9. לטבול האלקטרודה עבודה במאגר איגוד PAE המכילה ריכוז מסויים של DEHP (למשל, 10 בבוקר) במשך 30 דקות בטמפרטורת החדר. לשטוף ביסודיות באמצעות התכונה PAE מחייב מאגר האלקטרודה, לטבול האלקטרודה במאגר PAE מחייב עם מונה אלקטרודה, SCE. לאסוף את עקומת SWV תחת באותו המצב כמתואר בסעיף 7.8.
  10. וחזור על שלב מספר 7.9, למעט ריכוז DEHP (למשל 100 pM, 1 ננומטר, 10 nM, 100 ננומטר, 1 מיקרומטר) הוגדל ברצף. התווה את עקומת טיטור.
  11. בדיקות ירידה לפרטים: חזור על שלבים 7.3-7.9, פרט לכך המאגר bind PAE המכיל DEHP מוחלף על-ידי המאגר איגוד PAE המכיל את החומר מפריעות פוטנציאליים-הריכוז הרצויה.

תוצאות

אנו תוכנן, מסונתז פתלאט dibutyl את קבוצת אמינו functionalized (DBP-NH2) כיעד עוגן (איור 1F). אנחנו מכן ביצע את מבחר aptamer DNA פאיס באמצעות DBP-NH2 כיעד עוגן ובעקבות היעד הקלאסי מבוסס על הנייח השיטה (איור 2). בכל סבב, PCR פיילוט בוצעה באמצעות העמוד denatured כד...

Discussion

אחד מהיתרונות aptamers יוצא מן הכלל הוא כי הם מזוהים באמצעות השיטה במבחנה SELEX, בעוד נוגדנים נוצרים באמצעות ויוו immunoreactions. לכן, ניתן לבחור aptamers עם ירידה לפרטים היעד הרצוי בתנאים ניסיוני מעוצב היטב, ואילו נוגדנים מוגבלים בתנאים פיזיולוגיים.

כדי להקל על ההפרדה של רצפי מאו?...

Disclosures

המחברים מצהירים שום עניין פיננסי מתחרות.

Acknowledgements

. אנחנו אסירי תודה על תמיכה כספית של הטבע הקרן הלאומית למדע (21675112), מפתח הפרויקט בתכנית למדע וטכנולוגיה של בייג'ינג ועדת החינוך (KZ201710028027), Yanjing הצעיר המלומד תוכנית של הון רגיל אוניברסיטת...

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
UV-2550Shimadzu,Japanprotocol, section 3.8.2
DNA Engnine Thermal cycler,PTC0200BIO-RADsection 3.5.1.2 and 3.5.2
C1000 TouchBIO-RADsection 5.3.6 and 6.3
VMP3 multichannel potentiostatBio-Logic Science, Claix, Francesection 7.4,7.8 and 7.11
Epoxy-activated Sepharose 6BGE Healthcare (Piscataway, NJ, USA)10220020argarose beads, section 2.3 and 3.3
Dynabeads M-270 carboxylic acid magnetic beadsInvitrogen, USA420420magnetic beads,section 5.2. and 5.3
Premix Taq Hot Start VersionTakara,Dalian,ChinaR028Apolymerase, section 3.5.1.1
PARAFILM Sealing MembraneBemis, USAPM-996section 3.6.5
Lambda ExonucleaseInvitrogen, USAEN0561section3.7.1.2.The 10 × reaction buffer is provided along with λ exonuclease by the provider.
Dr. GenTLE
Precipitation Carrier		Takara,Dalian,China9094section 3.6.2 and 3.8.1
UNIQ-10 PAGE DNA recovery kitSangon Biotech (Shanghai)B511135section 4.2
SYBR Gold nucleic acid gel stainInvitrogen, USA1811838nucelic acid stain dye, section 3.5.1.5
SYBR Premix Ex Taq IITakara,Dalian,ChinaRR820Apolymerase mix contaning polymerase and dNTPs, section 5.3.5
2-(N-Morpholino)ethanesulfonic acid (MES)Sigma-AldrichCAS: 1132-61-2section 5.2.1
1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (EDC)Invitrogen, USACAS: 25952-53-8section 5.2.2
N-hydroxysuccinimide (NHS)Sigma-Aldrich6066-82-6section 5.2.3
mercaptohexanol (MCH)Sigma-AldrichCAS: 1633-78-9section 7.7
Gold electrodeShanghai ChenhuaCHI101section 7.4. - 7.11
tris(2-carboxyethyl) phosphine hydrochloride (TCEP)Sigma-AldrichCAS: 51805-45-9section 7.5
O-(2-Mercaptoethyl)-O'-methyl-hexa-(ethylene glycol)Sigma-AldrichCAS: 651042-82-9section 7.7
diethylhexyl phthalate (DEHP)National Institute of Metrology, ChinaCAS: 117-81-7section 7.11
Tween 20Sigma-AldrichCAS: 9005-64-5polyoxyethy-lene(20) sorbaitan monolaurate
Triton X-100Sigma-AldrichCAS: 9002-93-1non-ionic surface active agent
PBSSigma-AldrichP536810 mM phosphate buffer containing 1 M NaCl, pH 7.4

References

  1. Vorkamp, K., Riget, F. F. A review of new and current-use contaminants in the Arctic environment: Evidence of long-range transport and indications of bioaccumulation. Chemosphere. 111, 379-395 (2014).
  2. Net, S., Sempere, R., Delmont, A., Paluselli, A., Ouddane, B. Occurrence, fate, behavior and ecotoxicological state of phthalates in different environmental matrices. Environ Sci Technol. 49 (7), 4019-4035 (2015).
  3. Xie, Q. L., Liu, S. H., Fan, Y. Y., Sun, J. Z., Zhang, X. K. Determination of phthalate esters in edible oils by use of QuEChERS coupled with ionic-liquid-based dispersive liquid-liquid microextraction before high-performance liquid chromatography. Anal BioanalChem. 406 (18), 4563-4569 (2014).
  4. Ierapetritis, I., Lioupis, A., Lampi, E. Determination of phthalates into vegetable oils by isotopic dilution gas chromatography mass spectrometry. Food Anal Methods. 7 (7), 1451-1457 (2014).
  5. Sun, J. Z., He, H., Liu, S. H. Determination of phthalic acid esters in Chinese white spirit using dispersive liquid-liquid microextraction coupled with sweeping beta-cyclodextrin-modified micellar electrokinetic chromatography. J Sep Sci. 37 (13), 1679-1686 (2014).
  6. Yilmaz, P. K., Ertas, A., Kolak, U. Simultaneous determination of seven phthalic acid esters in beverages using ultrasound and vortex-assisted dispersive liquid-liquid microextraction followed by high-performance liquid chromatography. J Sep Sci. 37 (16), 2111-2117 (2014).
  7. Sun, R., Zhuang, H. An ultrasensitive gold nanoparticles improved real-time immuno-PCR assay for detecting diethyl phthalate in foodstuff samples. Anal Biochem. 480, 49-57 (2015).
  8. Sun, R. Y., Zhuang, H. S. A sensitive heterogeneous biotin-streptavidin enzyme-linked immunosorbent assay for the determination of di-(2-ethylhexyl)phthalate (DEHP) in beverages using a specific polyclonal antibody. Anal Methods. 6 (24), 9807-9815 (2014).
  9. Zhou, L., Lei, Y., Zhang, D., Ahmed, S., Chen, S. An ultra-sensitive monoclonal antibody-based enzyme-linked immunosobent assay for dibutyl phthalate in human urinary. Sci Total Environ. 541, 570-578 (2016).
  10. Shen, J., Li, Y., Gu, H., Xia, F., Zuo, X. Recent development of sandwich assay based on the nanobiotechnologies for proteins, nucleic Acids, small Molecules, and ions. Chem Rev. 114 (15), 7631-7677 (2014).
  11. Yin, X. -. B. Functional nucleic acids for electrochemical and electrochemiluminescent sensing applications. TrAC, Trends Anal Chem. 33, 81-94 (2012).
  12. Nguyen, V. -. T., Kwon, Y. S., Gu, M. B. Aptamer-based environmental biosensors for small molecule contaminants. Curr Opin Biotechnol. 45, 15-23 (2017).
  13. Groher, F., Suess, B. In vitro selection of antibiotic-binding aptamers. Methods. 106, 42-50 (2016).
  14. Yang, K. -. A., Pei, R., Stojanovic, M. N. In vitro selection and amplification protocols for isolation of aptameric sensors for small molecules. Methods. 106, 58-65 (2016).
  15. Jing, M., Bowser, M. T. Methods for measuring aptamer-protein equilibria: a review. Anal. Chim. Acta. 686 (1-2), 9-18 (2011).
  16. Mehta, J., et al. Selection and characterization of PCB-binding DNA aptamers. Anal Chem. 84 (3), 1669-1676 (2012).
  17. Matsumoto, M., Hirata-Koizumi, M., Ema, M. Potential adverse effects of phthalic acid esters on human health: A review of recent studies on reproduction. Regul Toxicol Pharm. 50 (1), 37-49 (2008).
  18. Goodchild, J. Conjugates of oligonucleotides and modified oligonucleotides: a review of their synthesis and properties. Bioconjug Chem. 1 (3), 165-187 (1990).
  19. Brown, D. M. A brief history of oligonucleotide synthesis. Protocols for Oligonucleotides and Analogs: Synthesis and Properties. , 1-17 (1993).
  20. Reese, C. B. Oligo-and poly-nucleotides: 50 years of chemical synthesis. Org Biomol Chem. 3 (21), 3851-3868 (2005).
  21. Sproat, B., Colonna, F., Mullah, B., et al. An efficient method for the isolation and purification of oligoribonucleotides. Nucleos Nucleot Nucl. 14 (1-2), 255-273 (1995).
  22. Han, Y., et al. Selection of group-specific phthalic acid esters binding DNA aptamers via rationally designed target immobilization and applications for ultrasensitive and highly selective detection of phthalic acid esters. Anal Chem. 89 (10), 5270-5277 (2017).
  23. Bartlett, J. M. S., Stirling, D. A short history of the polymerase chain reaction. PCR protocols. , 3-6 (2003).
  24. Saiki, R. K., Scharf, S., Faloona, F., et al. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. Science. 230, 1350-1354 (1985).
  25. Albright, L. M., Slatko, B. E. Denaturing polyacrylamide gel electrophoresis. Current Protocols in Nucleic Acid Chemistry. , A. 3B 1-A. 3B 5 (2001).
  26. Summer, H., Grämer, R., Dröge, P. Denaturing urea polyacrylamide gel electrophoresis (Urea PAGE). JoVE. (32), e1485 (2009).
  27. Jing, M., Bowser, M. T. Methods for measuring aptamer-protein equilibria: a review. Anal Chim Acta. 686 (1), 9-18 (2011).
  28. Sharma, T. K., Bruno, J. G., Dhiman, A. ABCs of DNA aptamer and related assay development. Biotechnol Adv. 35 (2), 275-301 (2017).
  29. Liu, R., et al. Signaling-probe displacement electrochemical aptamer-based sensor (SD-EAB) for detection of nanomolar kanamycin A. Electrochim Acta. 182, 516-523 (2015).
  30. Mendonsa, S. D., Bowser, M. T. In vitro evolution of functional DNA using capillary electrophoresis. J Am Chem Soc. 126, 20-21 (2004).
  31. Lou, X. H., et al. Micromagnetic selection of aptamers in microfluidic channels. Proc Natl Acad Sci USA. 106 (9), 2989-2994 (2009).
  32. Cho, M., et al. Quantitative selection of DNA aptamers through microfluidic selection and high-throughput sequencing. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 15373-15378 (2010).
  33. Cho, M., et al. Quantitative selection and parallel characterization of aptamers. Proc Nat Acad Sci USA. 110 (46), 18460-18465 (2013).
  34. Song, K. -. M., et al. Gold nanoparticle-based colorimetric detection of kanamycin using a DNA aptamer. Anal Biochem. 415 (2), 175-181 (2011).
  35. Yang, Z., Ding, X., Guo, Q., et al. Second generation of signaling-probe displacement electrochemical aptasensor for detection of picomolar ampicillin and sulfadimethoxine. Sens Actuators B. 253 (2017), 1129-1136 (2017).
  36. Lou, X., Zhao, T., Liu, R., Ma, J., Xiao, Y. Self-assembled DNA monolayer buffered dynamic ranges of mercuric electrochemical sensor. Anal Chem. 85 (15), 7574-7580 (2013).
  37. Zhao, T., et al. Nanoprobe-enhanced, split aptamer-based electrochemical sandwich assay for ultrasensitive detection of small molecules. Anal Chem. 87 (15), 7712-7719 (2015).
  38. Lou, X., He, L. A. Surface passivation using oligo(ethylene glycol) in ATRP-assisted DNA detection. Sens Actuators,B. 129 (1), 225-230 (2008).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

133Aptameraptasensor

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved