المقطع المستعرض من الأرز الناضج(Oryza sativa L.) حبات لمسح المجهر الإلكتروني التصوير باستخدام نصائح ماصة كدعم تعطيل

Summary

يسمح هذا البروتوكول بإعداد أقسام عرضية من بذور الحبوب (مثل الأرز) لتحليل مورفولوجيا حبيبات الإندوسبيرم والنشا باستخدام المجهر الإلكتروني المسح الضوئي.

Abstract

تظهر حبيبات النشا (SGs) مورفولوجيا مختلفة اعتمادا على أنواع النباتات ، خاصة في بطانة عائلة Poaceae. يمكن استخدام الفينوتينينج الإندوسبيرم لتصنيف الأنماط الجينية على أساس النمط المورفوبي SG باستخدام تحليل المجهر الإلكتروني المسح الضوئي (SEM). يمكن تصور SGs باستخدام SEM عن طريق تشريح من خلال النواة (pericarp، طبقات aleurone، و endosperm) وفضح محتويات organellar. تتطلب الطرق الحالية أن تكون نواة الأرز جزءا لا يتجزأ من الراتنج البلاستيكي وتقسم باستخدام ميكروتوم أو جزءا لا يتجزأ من طرف ماصة مبتورة ومقسمة باليد باستخدام شفرة حلاقة. وتتطلب الطريقة الأولى معدات متخصصة وتستغرق وقتا طويلا، في حين أن الطريقة الثانية تطرح مجموعة جديدة من المشاكل تبعا للنمط الجيني للأرز. أصناف الأرز الطباشيري، على وجه الخصوص، تشكل مشكلة لهذا النوع من الأقسام بسبب الطبيعة القابلة للتفتيت من أنسجة الاندوسبيرم الخاصة بهم. هنا هو تقنية لإعداد شفافة والطباشيري أقسام نواة الأرز للفحص المجهري، تتطلب نصائح ماصة فقط وشفرة مشرط. إعداد المقاطع داخل حدود طرف ماصة يمنع نواة الأرز الاندوسبيرم من التحطم (للأنماط الظاهرية شفافة أو "الزجاجية") وتنهار (للأنماط الظاهرية الطباشيرية). باستخدام هذه التقنية، يمكن ملاحظة نقوش الخلايا الداخلية وبنية SGs سليمة.

Introduction

حبيبات النشا (SGs) معرض مورفولوجيا مختلفة اعتمادا على الأنواع النباتية، وخاصة في endosperm من عائلة Poaceae ^1،2. يمكن استخدام الفينوتينينج الإندوسبيرم لتصنيف الأنماط الجينية على أساس النمط الظاهري SG باستخدام التحليل المجهري الإلكتروني المسح الضوئي. يمكن تصور SGs باستخدام المسح المجهري الإلكتروني (SEM) عن طريق تقطيع النواة والتطفل بعيدا جدران الخلايا endosperm².

الغرض من هذه التقنية هو إعداد أقسام نواة الأرز العرضية بسهولة فقط لتحليل SEM السريع. وكان الدافع وراء تطوير هذه التقنية هو ضرورة اتباع نهج سريع للتجزأ العرضي يتم بموجبه إعداد العينات للفحص المجهري ل SEM مباشرة قبل التصور باستخدام الحد الأدنى من المعدات.

تتضمن هذه التقنية إدخال نواة الأرز المقشورة في طرف المصصة للشلل التام. وهذا مهم بشكل خاص عند المقاطع العرضية الأنماط الظاهرية نواة الأرز طباشيري، والتي هي قابلة للتفتيت وتنهار بسهولة تحت الضغط³. الطباشيرية هي نوعية غير مرغوب فيها في الأرز لأنها تؤثر على مظهر النواة وتسبب النواة لكسر بسهولة أثناء تلميع وطحن³. Chalkiness يقدم كمنطقة مبهمة في مقطع عرضي من النواة التي يمكن ملاحظتها بالعين المجردة. على المستوى المجهري ، يتميز الطباشير حبيبات النشا الصغيرة المعبأة بشكل فضفاض. أسباب الطباشير يمكن أن تكون وراثية^4،5 أو^{البيئية 6،7}.

وقد تم تقليديا إعداد المقاطع العرضية بذور الحبوب باستخدام أساليب تحديد المواد الكيميائية والتقطيع بعد تضمين عينة في شمع البارافين أو مصفوفة صلبة أخرى^4،8،9،10. في عام 2010، تم إدخال طريقة ماتسوشيما كوسيلة لتجنب معقدة وتستغرق وقتا طويلا إعداد عينة نواة الأرز⁴. تضمن هذا الأسلوب إدراج نواة الأرز المقشورة في طرف ماصة مبتور. يتم الاحتفاظ بالطرف ثابتا بواسطة أداة تشذيب الكتلة ، ويتم حصاد أقسام الإندوسبيرم الجزئية الرقيقة باستخدام شفرة حلاقة يدوية. تقنية سريعة أخرى تم تطويرها في عام 2016 سمحت بقسمة كاملة رقيقة من مجموعة واسعة من البذور الجافة ، بما في ذلك الأصناف الطباشيرية^10. هذه الأساليب حفزت على تطوير تقنية سريعة المعروضة هنا.

هذه التقنية الجديدة مناسبة للباحثين الذين يرغبون في الحصول على مقاطع عرضية سليمة من حبات الأرز لenotyping endosperm وتحليل مورفولوجيا النشا باستخدام SEM.

يمثل هذا البروتوكول تكييفا لطريقة تلميح ماصة ماصة Matsushima المبتورة⁴، مع العديد من التعديلات الملحوظة: (1) لا يتم إدخال حبات في أي نقطة من هذه التقنية ؛ (1) لا يتم إدخالها في أي نقطة من هذه التقنية؛ (1) يتم إدخال تعديلات على 1. (2) لا يطلب من أداة تشذيب الكتلة أو البروتينات الفائقة إعداد المقاطع. نوع البرية 'شفافة' أصناف (Oryza sativa L. ssp. japonica cv. Nipponbare) وخط "طباشيري" محمود من نيبونباري (ssg1, دون المستوى النشا grain1)⁴ تم فحصها في هذه الدراسة. وقد تم اختيار هذين الصنفين للتحليل هنا لإظهار الاختلافات التقنية والبصرية في معالجة أقسام الأرز الشفافة والطباشيرية.

Protocol

1. إعداد مقطع الأرز المستعرض

1. دي قشر الجافة، حبات سليمة كما هو مبين في الشكل 1A.
   1. تخفيف قشور وحبات الأرز dehull عن طريق طحن حبات بين اثنين من سدادات المطاط شقة. إزالة حبات الأرز أجش من panicle، إذا لزم الأمر.
   2. ضع نواة واحدة على سدادة مطاطية مسطحة على مقعد العمل (الشكل 1B). تأكد من أن هذه السدادة لا تزال ثابتة.
   3. استخدام سدادة المطاط المسطح الثاني (الشكل 1C) لتآكل النواة عن طريق التواء في مقابل سدادة المطاط الأول، وذلك باستخدام ضغط كاف(الشكل 1D). إزالة قشور من النواة، مع الحرص على عدم تحطيم الاندوسبيرم. إزالة أي قشر المتبقية باستخدام ملقط غرامة. تظهر نواة مقشورة في الشكل 1E.
2. باستخدام ملقط ناعم، أدخل نواة فردية متقشرة في طرف ماصة بلاستيكي (حجم 250 ميكرولتر، بذرة واحدة/طرف واحد)(الشكل 1F). تأكد من أن نهاية الجنين من النواة تواجه نحو نهاية (مخروطية) من طرف ماصة(الشكل 1G).
   ملاحظة: إدراج النواة بهذه الطريقة يضمن أن النواة سوف تناسب بشكل مريح قدر الإمكان في تلميح ماصة كما النواة أضيق نحو نهايتها القريبة.
3. إدراج طرف ماصة 250 ميكرولتر الثانية لإجبار النواة في طرف ماصة والحفاظ على نواة غير متحركة أثناء تقسيم، مع الحرص على عدم تلف النواة أو ثني تلميح ماصة الثانية (الشكل 1H). يشار إلى تجميع "التلسكوب" المناسب في الشكل 1I.
4. وضع ماصة طرف تجميع شقة على مقاعد البدلاء العمل وعقد في مكان باليد (الشكل 1J). من ناحية أخرى، استخدم شفرة مشرط حادة (رقم 20) لشريحة من خلال وسط النواة وقطع نهاية تلميح ماصة قبالة(الشكل 1K). باستخدام مشرط قطع 1 مم أقسام سميكة من نواة الأرز (الشكل 1L).
   ملاحظة: يتم إحاطة قسم النواة بإحكام داخل أنولوس من البلاستيك(الشكل 1M). تم العثور على متوسط سمك المقطع لثلاثة أنماط جينية مثالية في الجدول 1. أقسام أرق بكثير من 1 مم سوف تتحطم أو تنهار. من المهم أن نلاحظ من أي جزء من النواة كل قسم ينبع إذا كان يجري تنفيذ هذه التجربة على عدة أصناف من الأرز للمقارنة، كما مورفولوجيا النشا لا تختلف في جميع أنحاء¹¹endosperm .

2. المجهر الضوء المنعكس من أقسام الأرز العرضي

1. استخدم ملقط دقيق لوضع أقسام الأرز المستعرض (المعدة في القسم 1) على قطعة سوداء من الورق الأسود الثقيل.
2. الحصول على صور ضوئية من أقسام عرضية من نيبونباري باستخدام مجسم مع goosenecks شنت للإضاءة المائلة، كما هو مبين في الشكل 1N-S.
3. مراقبة مورفولوجيا المناظير تحت التكبير 10x على الأقل.
   ملاحظة: أي مصدر ضوء أفضل من المجهر حقل مشرق كما المقاطع التي تم الحصول عليها باستخدام هذه التقنية ليست رقيقة بما يكفي للضوء لتمرير من خلال.

3. المسح المجهري الإلكتروني من أقسام الأرز العرضي

1. ضع العينات على قرص كربوني ملتصق بكعب الألومنيوم وضع على حامل عينة تقليل الشحنة. إزالة حلقة من البلاستيك من جبل تلميح ماصة باستخدام ملقط ناعم لمنع البلاستيك من دخول جهاز فراغ من SEM.
   ملاحظة: يتم الحصول على صور خلايا endosperm وSGs و subgranules باستخدام جهاز سطح المكتب SEM لا يتطلب عينات لتكون مغلفة.
2. الحصول على الصور باستخدام عالية الحساسية متعددة وضع جهاز الكشف عن الإلكترون (BSE) في 10 كيلو فولت.

النتائج

نوع البرية Nipponbare (الشكل 2A) وأقسام ssg1 (الشكل 2B) تم فحصها تحت ثلاثة تكبيرات: 260x، 920x، و 4200x. هذه التقنية تسمح لإعداد أقسام ذات جودة كافية لمراقبة الخلية endosperm كامل (الشكل 3A)، حبيبات النشا المركب (الشكل 3B)، والغرانول الفردية (الشكل 3C). حبات قشر يستغرق وقتا أطول لمعالجة من حبات مصقول كما هياكل الجافة تحتاج إلى إزالتها عن طريق الكشط قبل تقسيم. حبات طباشيري أيضا يستغرق وقتا أطول لمعالجة من حبات شفافة مصقول، كما يجب توخي الحذر لعدم تحطيم النواة أثناء المقطع. يجب أن يكون قسم الأرز المعد بشكل صحيح سمكه حوالي 0.9 مم (الجدول 1) مع الحد الأدنى من تحطيم الإندوسبيرم(الشكل 1N)وطبقات بيريكارب وألوروني سليمة (الشكل 1O). وضع غير لائق للمشرط على طرف ماصة عند تقسيم يمكن أن يؤدي إلى أقسام "متكسرة"(الشكل 1P). وبالمثل، أظهرت الصور الميدانية الساطعة للأقسام العرضية المثلى من ssg1 (الشكل 1Q) endosperm سليمة، pericarp، وطبقات aleurone سليمة ومتاحة للتصور (الشكل 1R). قد يكون مقطع النواة الطباشيري المكسور(الشكل 1S)لا يزال قابلا للاستخدام للتصور إذا كان الغرض الوحيد هو مراقبة SGs ، ولكن لن يكون نمط الخلية endosperm مرئيا. قد يكون من الصعب التعامل مع مقطع مكسور للتحليل. ولوحظ المزيد من القص من جدران الخلايا endosperm في نوع البرية Nipponbare، كما هي معبأة أكثر إحكاما الخلايا وأقل قابلية للتفتيت من حبات ssg1. لم يلاحظ أي قص لخلايا الإندوسبيرم في أقسام ssg1 وحبيبات النشا المركبة سليمة.

يوضح الشكل S1 موثوقية النتائج باستخدام تقنية "التلسكوب" لقسم حبات الأرز. خطوط الأرز التي تم تحديدها كمنتجين نواة شفافة – البرية نوع مقاومة النشا (RS) خط هجين Xieyou 7954 (Oryza sativa L. ssp. indica)^12,13,14 ( الشكلS1A) والكوبالت المولدة متحولة RS111^13,15 ( الشكلS1B) أنتجت الأقسام التي من خلالها كان الضوء مرئيا باستخدام منظار ستيريوميكيروسكوب. وكشفت الصور المقابلة SEM أن هذه الخطوط تنتج النمط الظاهري 'العادي' الاندوسبيرم الأرز: معبأة بإحكام، حبيبات النشا متعددة الهدرالية. Chalky نواة المنتجين ، والتجارية متنوعة يي تانغ¹⁶ (الشكل S1C)و RS4¹³، متحولة من RS111¹⁵ (الشكل S1D) ، وعرض الأبيض ، أقسام نواة مبهمة. صور SEM المقابلة المعروضة مورفولوجيا مختلفة بشكل ملحوظ بالمقارنة مع نوع البرية شفافة RS خط الخلفية: كانت حبيبات النشا جولة ومعبأة فضفاضة. البرية نوع Xiushui 11 (Oryza sativa L. ssp. japonica) (الشكل S1E) ومتحولة لها ، KMD1 (Kemingdao1) ، والتي تعبر عن الجين Cry1Ab لمنع افتراس الحشرات^17،18،19 ( الشكلS1F) عرضت أقسام و endosperm morphotypes مماثلة لخطوط RS شفافة.

التقنية المعروضة هنا هي الأمثل لإعداد عينات من حبات الأرز من نوع طباشيري للتحليل الظاهري، ولكن يوفر أيضا مزايا لقسم الأنماط الظاهرية نواة الأرز شفافة^20:تشريح العينات باستخدام الضغط من فوق يقلل من خطر تحطيم الاندوسبيرم والخلع. ويمكن بسهولة إعداد العينات في غضون ثوان(الجدول 2). تم تحليل أنماط جينية متعددة باستخدام هذه التقنية لاختبار فعاليتها (الجدول 3). كما هو مبين في الشكل S2، يمكن تطبيق هذه التقنية على بذور الأنواع الأخرى. نموذج مونوكوت براتاثيون Brachypodium تنتج بذور صلبة جدا تحتوي فقط على بي حبيبات النشا²¹، والتي تفتقر إلى puroindoline A ، وهو البروتين الذي يمنح ليونة ل حبيبات النشا²². كان لا يزال من الممكن الحصول على مقطع عرضي سليم(الشكل S2A). كان الحصول على مقطع عرضي سليم من القمح الشتوي الأبيض الناعم (SWWW) صعبا ولكن يمكن تنفيذه(الشكل S2B). بذور SWWW عالية في puroindoline A وكبيرة بالمقارنة مع بذور B. distachyon وحبات الأرز. هذه البذور تنهار في كثير من الأحيان عند تقسيم باستخدام تجميع التلسكوب.

الجيني	متوسط عرض المقطع (ميكرومتر) باستخدام تجميع التلسكوب	متوسط عرض المقطع (μm) المقطع اليدوي
نيبونباري (أجش)	971.7 ± 152.4ab	1059.571 ± 394.2ab
شييو 7954	825.1 ± 128.3ب	1306.187 ± 179.1أ
RS4	910.6 ± 165.0ab	1126.694 ± 395.3ab
لا تختلف الوسائل متبوعة بنفس الحروف اختلافا كبيرا في P < 0.01 باستخدام تحليل أحادي الاتجاه للتباين (ANOVA) واختبار Tukey (n = 10). وأجريت تحليلات إحصائية باستخدام برنامج JMP 15.

الجدول 1: متوسط سمك قسم النواة.

الجيني	متوسط الوقت (ق)*
نيبونباري (أجش)	14.7 ± 1.36أ
شييو 7954	9.81 ± 0.98ب
RS4	11.9 ± 1.28ج
* باستخدام تجميع التلسكوب.
لا تختلف الوسائل متبوعة بنفس الحروف اختلافا كبيرا في P < 0.01 باستخدام تحليل أحادي الاتجاه للتباين (ANOVA) واختبار Tukey (n = 10). وأجريت تحليلات إحصائية باستخدام برنامج JMP 15.

الجدول 2: متوسط وقت إعداد العينة.

الجيني	خلفية	جودة
نيبونباري	نوع البرية	شفافه
دون المستوى النشا الحبوب1 (ssg1)	نيبونباري	طباشيري
النشا المقاوم (RS) شييو 7954	نوع البرية	شفافه
RS111	شييو 7954	شفافه
RS4	RS111	طباشيري
يي تانغ، "حياة جديدة"، العلامة التجارية لوجورين	شييو 7954	طباشيري
شيوشوي 11	نوع البرية	شفافه
كيمينغداو1 (KMD1)	شيوشوي 11	شفافه

الجدول 3: الأنماط الجينية للأرز التي تم فحصها في هذه الدراسة.

الشكل 1: إعداد أقسام الأرز المستعرض. (أ) البرية نوع نيبونباري النواة مع قشر سليمة. (ب).وضعت نواة على سدادة مطاطية مسطحة قطرها أربعة بوصة. (ج)تمت إزالة قشور عن طريق طحن النواة بين اثنين من سدادات المطاط apposing. (د)تم فصل قشر من نواة الأرز. (ه) عن قرب من نواة الأرز قشور. يشار إلى نهاية الجنين. (F) إدراج النواة في تلميح ماصة باستخدام ملقط ناعم. (G)تم تقديم النواة في نهاية بعيدة من طرف ماصة. (H) إدراج طرف ماصة الثاني لشل النواة للتقسم (تجميع 'التلسكوب'). (I)تم تركيب نواة الأرز بشكل مريح في نهاية بعيدة من طرف ماصة. (J) تقسيم نواة الأرز داخل التجميع. (ك) عن قرب من قطع المقطع. (L) قسم من النواة محاطة أنولوس البلاستيك. (M) عن قرب من المقطع العرضي. (N) المقطع المستعرض من نوع البرية نيبونباري. (O) عن قرب من endosperm داخل نوع البرية Nipponbare القسم. (P) الفقراء، دون المستوى الأمثل قسم من نوع البرية نواة نيبونباري. (س) المقطع المستعرض من نيبونباري متحولة ssg1⁴. (R) عن قرب من الاندوسبيرم داخل القسم ssg1. (S) الفقر، دون المستوى الأمثل قسم من ssg1. شريط (لوحات A، N-S)= 1 مم. تم تصوير نواة الأرز الكاملة والأقسام باستخدام مجسم مع كاميرا التكبير الرقمية وأضواء gooseneck. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 2: صور SEM لأقسام النواة العرضية. (أ) نوع البرية نيبونباري، وهو أصناف شفافة. تم تدعيم حبيبات النشا المركبة بإحكام إلى بعضها البعض. (ب) نيبونباري متحولة ssg1⁴, النمط الظاهري طباشيري. كانت حبيبات النشا المركبة معبأة بشكل فضفاض وتفتقر إلى الطبيعة الإسمنتية للنوع البري نيبونباري نشا مورفوتيبي. التكبير من اليسار إلى اليمين: 260x، 920x، و 4200x. يشار إلى طول الشريط في لوحات. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 3: علم التشريح المجهري SEM لقسم النواة المستعرضة من Xiushui 11. (أ)يتم تحديد خلية واحدة endosperm باللون الأحمر. 260x التكبير. (ب)ويرد في حبيبات النشا المركب باللون الأحمر. 920x التكبير. (ج)ويرد وصف subgranules النشا متعددة باللون الأحمر. 2250x التكبير. يشار إلى أطوال الشريط في اللوحات. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل S1: أقسام عرضية من الأنماط الجينية للأرز الأخرى المعدة ل SEM باستخدام هذه التقنية. (أ) النشا المقاوم (RS) شييو 7954¹². (ب) RS111، متحولة شفافة عالية RS من 7954¹³. (C) RS4، متحول طباشيري من RS111¹⁵. (د) يي تانغ، مجموعة متنوعة تجارية من الأرز اميلوز عالية¹⁶. (ه) شيوشوى 11. (واو) KMD1 (Kemingdao1)^17،18،19. تكبير 10x لصور المجال الساطع. شريط أبيض = 1 مم 2250x تكبير لصور SEM. يشار إلى أطوال الشريط في اللوحات. يرجى الضغط هنا لتحميل هذا الرقم.

الشكل S2: تقنية مفيدة للبذور الأخرى. (أ) المقطع المستعرض من بروم الأرجواني كاذبة (Brachypodium distachyon L. الانضمام Bd21) البذور. (ب) المقطع المستعرض من القمح الشتوي الأبيض الناعم(تريتيكوم aestivum L. cv. Augusta) البذور. حقل مشرق، تكبير 20x. شريط = 1 مم. الرجاء الضغط هنا لتحميل هذا الرقم.

Discussion

تمثل التقنية المعروضة هنا نهجا سريعا وبسيطا وحريصا نحو إعداد مقاطع عرضية من الأرز لتصور SEM على سطح المكتب. تسمح تقنية الأقسام هذه بالملاحظة السريعة لهيكل الاندوسبيرم وشكل الخلية الداخلية والحجم والنمط وحبيبات المركب ومورفولوجيا النشا. لأغراض الفينوتيبينج إندوسبيرم وفحص الجرثومة، فمن الأهمية بمكان الحصول على مقطع عرضي كامل من نواة الأرز^4،23،24. من الأهمية بمكان إدراج النواة بالكامل داخل طرف ماصة لمنع ضغط شفرة المشرط من إجبار الاندوسبيرم على الانهيار أو التحطم. شريطة أن يتم بناء تجميع "التلسكوب" بشكل صحيح ، يمكن إعداد العينات للتصور في غضون 15 ثانية(الجدول 2)باستخدام المواد الموجودة بالفعل في إعداد مختبر نموذجي. وتنطبق هذه التقنية على المقطع العرضي لأي بذرة بيضاوية قطرها حوالي أربعة ملليمترات في أوسع نقطة لها. بذور العشب نموذج Brachypodium distachyon (الشكل S2A) يمكن تقسيمها بالمثل ولكن لا تبقى مغلقة داخل annulus. بذور أكبر، مثل القمح، كسر بسهولة وتتطلب الرعاية عند تقسيم (الشكل S2B).

ومع ذلك ، هناك العديد من القيود على هذه التقنية المعروضة هنا. المقاطع التي تم الحصول عليها باستخدام هذه التقنية ليست رقيقة بما يكفي للضوء لتمرير من خلالها الذي يحظر استخدام هذه التقنية للنهج المجهرية المرسلة على أساس الضوء مثل حقل مشرق (500 ميكرومتر سمك العينة القصوى لأقسام نواة الأرز²⁵) ونقل المجهر الإلكتروني (TEM) (500 نانومتر سمك العينة القصوى²⁶ ). استخدام طرف ماصة كما "مصفوفة" المقطع يحد أيضا من حجم البذور التي يمكن تقسيمها باستخدام هذه التقنية. وستكون هناك حاجة إلى مزيد من استكشاف الأخطاء وإصلاحها لتكييف هذه التقنية للأنواع التي تختلف كثيرا عن الأرز، ويقتصر حجم "المصفوفة" على حجم نصائح ماصة المتاحة للشراء.

ميزة أخرى متميزة أن هذه التقنية يوفر هو نوعية العينات التي يمكن أن تنتج من حبات الأرز النمط الظاهري طباشيري. تجدر الإشارة إلى أنه حتى دراسة ماتسوشيما أقرت بأنه كان من الصعب الحصول على مقاطع عرضية باستخدام هذه الطريقة الخاصة للأنماط الظاهرية الطباشيرية⁴، كما تكررت في هذه الدراسة لغرض المقارنة(الشكل 1S). في حالتهم ، أصبح من الضروري إصلاح عينات الأرز الطباشيري الخاصة بهم كيميائيا وتضمينها في الراتنج للقسم. تقنية جديدة، جنبا إلى جنب مع التصوير SEM سطح المكتب، يسمح للباحث لإعداد بسهولة أقسام عرضية من حبات الأرز للفحص المجهري مع مزيد من الاتساق من دون دعم شل الحركة(الجدول 3).

في العصر الجديد من علم وظائف الأعضاء ونواتج الأيض ، من المهم مراقبة الخطوط المبوبة والمكتبات الموسومة بالتناسب لفهم وظيفة وأهمية النشا في البذور بشكل أفضل. بالإضافة إلى ذلك، فإن جينبنك الأرز الدولي يحمل أكثر من 130 000 انضمام الأرز^27. تقنية الفينوتيبينج البذور السريعة مثل تلك المعروضة هنا من شأنه أن يعجل التصنيف وأخذ العينات للجودة الغذائية²⁸. وأخيرا، قد تكون هذه التقنية مفيدة في ضوء التعدي على آثار تغير المناخ. وقد تم بالفعل تحديد الإجهاد الموسمي في درجة الحرارة العالية أثناء ملء الحبوب كسبب رئيسي للطباشير⁶، ولكن الدراسات الحديثة تورطت في ارتفاع درجات الحرارة العالمية في زيادة الطباشير من غلة الأرز^7،29. وقد تساعد هذه الفينوتيبينج المعجلة للاندوسبيرم في توفير صورة زراعية واسعة النطاق لتأثير زيادة درجات الحرارة العالمية.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
JMP 15	SAS	N/A	N/A
Leit Adhesive Carbon Tabs 12 mm (Pack of 100)	Agar Scientific	AGG3347N	N/A
Phenom Pro Desktop SEM	Thermo Scientific	PHENOM-PRO	N/A
Pipette Tips RC UNV 250 µL	Rainin	17001116	N/A
SEM Pin Stub Ø12.7 Diameter Top, Standard Pin, Aluminium	Micro to Nano	10-002012-50	N/A
Shandon Microdissecting Fine Tips Thumb Forceps, Fine Tips, 12.7 cm	Thermo Scientific	3120019	N/A
Shandon Scalpel Blade No. 20, Sterile, 4.5 cm	Thermo Scientific	28618256	N/A
Shandon Stainless-Steel Scalpel Blade Handle	Thermo Scientific	5334	N/A
Zeiss V20 Discovery Stereomicroscope	Zeiss	N/A	N/A