نموذج حيواني كبير لارتفاع ضغط الدم الرئوي وفشل البطين الأيمن: ربط الشريان الرئوي الأيسر وربط الشريان الرئوي الرئيسي التدريجي في الأغنام

Rei Ukita; John W. Stokes; W. Kelly Wu; Jennifer Talackine; Nancy Cardwell; Yatrik Patel; Clayne Benson; Caitlin T. Demarest; Erika B. Rosenzweig; Keith Cook; Emily J. Tsai; Matthew Bacchetta

doi:10.3791/62694

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

Summary

تصف هذه المخطوطة التقنية الجراحية والنهج التجريبي لتطوير الحمل الزائد الشديد لضغط البطين الأيمن لنمذجة أنماطها الظاهرية التكيفية وغير التكيفية.

Abstract

فشل البطين الأيمن غير المعوض (RVF) في ارتفاع ضغط الدم الرئوي (PH) قاتل ، مع خيارات علاج طبية محدودة. يتطلب تطوير واختبار علاجات جديدة للحموضة نموذجا حيوانيا كبيرا ذا صلة سريريا لزيادة مقاومة الأوعية الدموية الرئوية وحمى الوادي المتصدع. تناقش هذه المخطوطة أحدث التطورات لنموذج PH-RVF المبيض المنشور سابقا والذي يستخدم ربط الشريان الرئوي الأيسر (PA) وانسداد PA الرئيسي. هذا النموذج من PH-RVF هو منصة متعددة الاستخدامات للتحكم ليس فقط في شدة المرض ولكن أيضا في الاستجابة المظهرية ل RV.

خضعت الأغنام البالغة (60-80 كجم) لربط PA الأيسر (LPA) ، ووضع الكفة PA الرئيسية ، وإدخال جهاز مراقبة ضغط RV. تم توصيل الكفة PA ومراقبة ضغط RV بمنافذ تحت الجلد. خضع الأشخاص لربط PA التدريجي مرتين في الأسبوع لمدة 9 أسابيع مع مقاييس متسلسلة لضغط RV ، وضغط الكفة PA ، وغاز الدم الوريدي المختلط (_SvO2). عند بدء هذا النموذج ونقطة نهايته، تم تقييم وظيفة البطين وأبعاده باستخدام تخطيط صدى القلب. وفي مجموعة تمثيلية مؤلفة من 12 شخصا من الحيوانات، زاد متوسط RV والضغط الانقباضي من 28 ± 5 و57 ± 7 مم زئبق في الأسبوع 1، على التوالي، إلى 44 ± 7 و93 ± 18 مم زئبق (متوسط الانحراف المعياري ±) بحلول الأسبوع 9. أظهر تخطيط صدى القلب نتائج مميزة ل PH-RVF ، ولا سيما تمدد RV ، وزيادة سمك الجدار ، وانحناء الحاجز. يوضح الاتجاه الطولي لضغط الكفة _SvO2 و PA أنه يمكن معايرة معدل نطاقات PA لاستخلاص أنماط ظاهرية RV مختلفة. أدت استراتيجية نطاقات PA الأسرع إلى انخفاض حاد في SvO2 < 65٪ ،مما يشير إلى إزالة المعاوضة RV ، في حين أدت استراتيجية أبطأ وأكثر وتيرة إلى الحفاظ على SvO2 الفسيولوجي عند 70٪ -80٪. طور أحد الحيوانات التي شهدت الاستراتيجية المتسارعة عدة لترات من الانصباب الجنبي والاستسقاء بحلول الأسبوع 9. يوفر نموذج PH-RVF المزمن هذا أداة قيمة لدراسة الآليات الجزيئية ، وتطوير المؤشرات الحيوية التشخيصية ، وتمكين الابتكار العلاجي لإدارة التكيف مع RV وسوء التكيف من PH.

Introduction

فشل البطين الأيمن غير المعوض (RV) هو السبب السائد للاعتلال والوفيات للمرضى الذين يعانون من ارتفاع ضغط الدم الرئوي (PH). فشل RV هو المسؤول عن أكثر من 50 ٪ من دخول المستشفى في المرضى الذين يعانون من درجة الحموضة وهو سبب شائع للوفاة في هذه الفئة من ^{المرضى1,2}. على الرغم من أن العلاجات الطبية الحالية للدرجة الهيدروجينية يمكن أن توفر تدابير مؤقتة ، إلا أنها لا تعكس تطور المرض. على هذا النحو ، فإن العلاج الوحيد على المدى الطويل هو زرع الرئة. لاستكشاف واختبار علاجات وتدخلات طبية جديدة ل PH و RVF ، هناك حاجة إلى نموذج حيواني ذي صلة سريريا لتلخيص الفيزيولوجيا المرضية المعقدة للمرض. على وجه الخصوص ، هناك حاجة سريرية كبيرة لتطوير علاجات تستهدف RV لمرضى PH لتحسين وظيفة RV. حتى الآن ، اعتمدت معظم الدراسات الحيوانية المنشورة حول خلل PH و RV على الثدييات الصغيرة مثل الفئران والجرذان ³. من ناحية أخرى ، لم يكن هناك سوى عدد قليل من النماذج الحيوانية الكبيرة لدراسة المرض والفيزيولوجيا المرضية RV من الحمل اللاحق غير ^{الطبيعي4}،⁵^،⁶^،⁷. بالإضافة إلى ذلك ، لا تتضمن أي من النماذج الحيوانية الكبيرة المنشورة سابقا أوصافا للإجراءات التجريبية للمعايرة الخاضعة للرقابة لشدة المرض التي تؤدي بشكل مختلف إلى أنماط ظاهرية لفشل RV تعويضية مقابل غير معوضة. هناك حاجة إلى نموذج حيواني من درجة الحموضة يمكن معايرته للحث على فشل RV الحاد والمزمن بدرجات متفاوتة من التعويض لدراسة آليات المرض وتطوير واختبار وترجمة تشخيصات وعلاجات جديدة ل PH و RVF إلى ممارسة سريرية. مثل هذا النموذج في كبير له قيمة خاصة لتطوير أجهزة دعم الدورة الدموية ^{الميكانيكية8}.

هنا ، يتم تقديم نموذج PH-RVF حيواني كبير مزمن باستخدام ربط الشريان الرئوي الأيسر (PA) وربط PA الرئيسي التدريجي في الأغنام البالغة9,10. يزيد ربط PA الأيسر (LPA) من مقاومة الأوعية الدموية الرئوية ويقلل من سعة PA ^11,12. يسمح نهج النطاقات التقدمية PA بمعايرة دقيقة لشدة المرض والتكيف مع RV. يمكن أيضا استخدام هذه المنصة بسهولة للتحقيق الطولي في تطور المرض نحو إزالة المعاوضة من RV. يتم تقديم الإجراءات والعمليات اللازمة لتنفيذ هذا النموذج كمورد للمحققين المهتمين بمنصة حيوانية كبيرة لتطوير علاجات جديدة ل PH و RVF.

Protocol

وافقت اللجنة المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها في المركز الطبي بجامعة فاندربيلت على البروتوكول. تم إجراء الإجراءات الموصوفة وفقا لدليل المجلس القومي الأمريكي للبحوث لرعاية واستخدام المختبر ، الطبعة 8th. وترد في الشكل 1 لمحة عامة وجدول زمني للإجراء التجريبي. يصف الجدول التكميلي 1 جنس الأغنام ووزنها وسلالتها ومصدرها وغيرها من المعلومات ذات الصلة التي قد تكون مفيدة لأغراض التكاثر.

1. قبل يوم واحد من الجراحة ، وإعداد الحيوان

حجب الطعام لمدة 24-40 ساعة قبل الإجراء الجراحي لتخفيف ضغط الكرش الحيواني.
ضع رقعة فنتانيل 50 ميكروغرام / ساعة على منطقة مقصوصة على ظهرية الأغنام قبل 12 ساعة من الإجراء. نظف المنطقة بالكلورهيكسيدين لإزالة بقايا زيت اللانولين قبل تطبيق التصحيح. قم بتغطية وحماية الرقعة بضمادة أنبوبية مرنة.

2. يوم الجراحة ، خطوات ما قبل الجراحة في غرفة التحضير

إدارة البلاط / زولازيبام في العضل (2.2-5 ملغ / كغ) وتقديم 1 ٪ -3 ٪ من الايزوفلوران مختلطة مع 80 ٪ -100 ٪ من الأكسجين عن طريق قناع الوجه للحث على التخدير.
ضع الأغنام مستلقية على طاولة التحضير وقم بتأمين ساقيها.
قم بالتنبيب باستخدام أنبوب القصبة الهوائية مقاس 10 مم وابدأ التهوية الميكانيكية تحت وضع التحكم في مستوى الصوت (حجم المد والجزر ، التلفزيون = 10 مل / كجم ، معدل التنفس ، RR = 15 نفسا في الدقيقة).
حلق الحقل الجراحي من عنق الأغنام إلى أعلى بطنها ، كما هو مفصل أدناه.
1. حلق الرقبة الأمامية للأغنام لكشف الجلد الذي يغطي الأوردة الوداجية للقسطرة الوريدية المركزية (انظر الخطوة 3.7).
2. حلق الصدر الأمامي الجانبي بشكل ثنائي استعدادا لاستئصال الصدر (انظر الخطوة 4.1).
3. حلق الجانب الأيسر من الجذع من الصدر إلى الخلف (أي ظهريا بقدر ما تسمح به الطاولة مع وضع ضعيف) ، ومن الثدي إلى الجناح الخلفي بشكل سببي ، استعدادا لزرع منافذ تحت الجلد (انظر الخطوات 4.12-4.15).
أدخل قسطرة وعائية بوزن 20 جم في الشريان الأذني لمراقبة الضغط الشرياني وأخذ عينات من غازات الدم.
ضع أنبوب سيليكون بقطر داخلي 3/8 "-1/2" لإزالة ضغط الكرش. سيبقى الأنبوب الفموي المعدي في الكرش طوال العملية بأكملها.
نقل الحيوان من غرفة الإعداد قبل الجراحة إلى الجناح الجراحي.

3. يوم الجراحة ، خطوات ما قبل الجراحة في جناح العمليات

أعد توصيل الأغنام بجهاز التنفس الصناعي في الجناح الجراحي ، واستمر في التهوية في نفس الإعداد في الخطوة 2.3 (isoflurane 1٪ -3٪ ، TV = 10 مل / كجم ، RR = 15 نفسا في الدقيقة)
قم بتوصيل مستشعرات قياس التأكسج النبضي (_SpO2) وضغط الدم الشرياني ودرجة الحرارة وكابنوغراف نهاية المد والجزر ومخطط كهربية القلب (ECG) بجهاز التخدير.
قم بتوصيل أجهزة الاستشعار للعلامات الحيوية للحيوان.
1. ضع مقياس التأكسج النبضي على لسان الحيوان.
2. ضع مسبار درجة الحرارة في المستقيم.
3. توصيل مجسات تخطيط القلب الكهربائي المكونة من 3 رصاصات: ضع الرصاص الأحمر على الساق الخلفية اليسرى ، والرصاص الأبيض على الساق الأمامية اليمنى ، والرصاص الأسود على الساق الأمامية اليسرى.
4. قم بتوصيل نهاية اللوير الذكرية للتوقف ثلاثي الاتجاهات بقسطرة الشريان الأذني وقم بتوصيل نهاية اللوير الأنثوية المقابلة بمحول الضغط لمراقبة خط الشرايين باستخدام أنبوب ضغط مناسب الحجم.
  1. قم بمحاذاة محول الطاقة إلى مستوى طاولة التشغيل.
  2. افتح الوقف الثلاثي على الترجام.
  3. قم بتمرير المقبض الرئيسي لجهاز مراقبة الحيوية لتسليط الضوء على قناة ضغط الدم الشرياني ، ثم اضغط على المقبض لتحديد القناة.
  4. حدد ZERO IBP لتصفير محول الطاقة.
5. قم بتوصيل وصلة luer الذكرية لخط مراقبة capnography باتصال luer الأنثوي على أنبوب جهاز التنفس الصناعي لمراقبة _CO2 في نهاية المد والجزر.
قم بإعداد المضخات الوريدية للإعطاء المستمر للسوائل ودعم التقلص العضلي أو ضاغط الأوعية.
1. ثقب الحاجز على الكيس الملحي مع مجموعة الإدارة الوريدية. تأكد من تثبيت الأنابيب الوريدية قبل ثقب الكيس لمنع الانسكاب.
2. قم بمحاذاة وتركيب الأنابيب التي تم وضعها في مضخة الأسطوانة IV ، وتحقق مما إذا كان الاتجاه المحدد على المضخة يتطابق مع اتجاه إدارة السوائل.
  ملاحظة: تأكد من توافق مجموعة الإدارة IV مع مضخة IV.
3. قم بتشغيل المضخة وحدد PRIME لإزالة كل الهواء في الخط.
ضع الأغنام لإجراء العملية.
1. من وضع الاستلقاء ، قم بتدوير الأغنام إلى وضع الاستلقاء الجانبي الأيمن الجزئي.
2. قم بتأمين القدم الأمامية اليمنى لأسفل وقم بتأمين القدم الأمامية اليسرى أثناء سحبها رأسيا وجانبيا بحبل أو أحزمة غير مؤلمة.
3. إجراء تخطيط صدى القلب عبر الصدر لتقييم خط الأساس لتشريح البطين ووظيفته. التصوير بالموجات فوق الصوتية مفيد أيضا لتحديد المساحة الوربية المثلى التي تسهل الوصول الجراحي إلى كل من الشريان الرئوي الرئيسي والشريان الرئوي الأيسر.
نظف المجال الجراحي خاليا من الأوساخ والملوثات الأخرى باستخدام الصابون أو فرشاة الفرك. قم بإعداد الرقبة والصدر بمحلول الكلورهيكسيدين أو البيتادين وقم بتغطية المجال الجراحي بطريقة معقمة.
باستخدام توجيه الموجات فوق الصوتية أو المعالم التشريحية ، يمكنك الوصول إلى الوريد الوداجي الداخلي الأيسر أو الأيمن باستخدام إبرة مكتشف أو وعائية. باستخدام تقنية Seldinger ، أدخل قسطرة وريدية مركزية ثلاثية التجويف فرنسية 7 فرنسية في الوريد الوداجي الداخلي للوصول عن طريق الوريد ومراقبة الضغط الوريدي المركزي.
1. استخدم المنفذ القريب لمراقبة الضغط والمنفذ البعيد لإدارة السوائل والأدوية.
إدارة 20 مغ/كغ من سيفازولين و 5 مغ/كغ من إنروفلوكساسين عن طريق الوريد. كرر جرعات سيفازولين كل 2-4 ساعات أثناء الإجراء.
قم بإعطاء بلعة 500 مل من محلول ملحي طبيعي لزيادة الحمل المسبق قبل الجراحة. ابدأ في الحفاظ على معدل السوائل الوريدية من 15 مل / كجم / ساعة.

4. الإجراء الجراحي

قم بإجراء بضع الصدر المصغر الذي يحافظ على العضلات (طوله < 8 سم) في المساحة الوربية الرابعة اليسرى للحصول على التعرض المنصفي. اختر بضع الصدر المصغر لتسريع التعافي بعد العملية الجراحية.
1. بعد تقسيم الجلد ، قم بتقسيم العضلات الأساسية (الصدرية الكبرى) طوليا على طول أليافها ، والتي تعمل بشكل مائل قليلا إلى الفضاء الوربي. ضع جهاز سحب ذاتي الاستبقاء لنشر طبقة العضلات وفضح جدار الصدر.
2. قسم السيراتوس الأمامي والعضلات الوربية الكامنة في المساحة الوربية المحددة ، مع الحرص على البقاء على الفور في الضلع.
3. أدخل الفضاء الجنبي ثم استمر في تحرير العضلات الوربية بالكامل خلفيا نحو العمود الفقري وأماميا نحو القص لمنع كسر الضلع غير المقصود أو الخلع في القص. تجنب إصابة الأوعية الثديية عن طريق الإنسي.
4. ضع السحبات ذاتية الاحتفاظ لفتح مساحة الضلع والأنسجة الرخوة الفوقية. استخدم متراجع Finochietto صغير أو متوسط لفصل الأضلاع ومنسحب Tuffier (شفرة تراجع 5 سم) للجلوس عموديا على Finochietto داخل المساحة الوربية ، والتي تسحب الأنسجة الرخوة داخل المساحة الوربية لتحسين التعرض.
شق التامور الأمامي للعصب الفريني دون إصابته وإنشاء بئر التامور مع 2-0 خيوط حريرية لفضح PA الرئيسي و RV. تحديد الزائدة الأذينية اليسرى داخل التعرض كمعلم لمستوى تشعب PA.
1. تقييم التعرض والتأكد مما إذا كان قد تم إدخال المساحة الوربية المناسبة. من الناحية المثالية ، يمكن رؤية PA القريبة والزائدة الأذينية اليسرى بسهولة أسفل الشق مباشرة ، مما يشير إلى أنه تم اختيار المساحة الوربية المثلى لتوفير التعرض لكل من PA الرئيسي و LPA.
2. إذا اعتبر التعرض غير كاف للوصول بأمان إلى كل من السلطة الفلسطينية الرئيسية و LPA ، فلا تتردد في فتح مساحة إضافية بين الوربية لإنجاز جميع الخطوات اللازمة للعملية ؛ ومع ذلك ، لن يكون هذا ضروريا مع اختيار الشق المناسب.
تشريح حول السلطة الفلسطينية الرئيسية وعزلها بشريط سري. ضمان التشريح الخلفي الكافي لوضع السد النهائي ومسبار تدفق PA بعيدا قدر الإمكان على PA الرئيسي.
1. ضع مسبار تدفق معقم في وعاء من الماء أو المالحة في الحقل المعقم لمعايرة برنامج الحصول على البيانات. قم بتسليم القابس الكهربائي الموجود على الطرف الآخر إلى شخص غير معقم لتوصيل المسبار بالعداد.
  1. ارجع إلى المستندات التكميلية للحصول على تفاصيل حول توصيل ومعايرة مسبار ومقياس تدفق PA.
2. ضع كمية سخية من هلام الموجات فوق الصوتية المعقم في أخدود مسبار تدفق PA.
3. ضع بطانة السيليكون في أخدود مسبار تدفق PA وقم بتطبيق طبقة إضافية من هلام الموجات فوق الصوتية على البطانة.
4. ضع مسبار تدفق PA على PA واحصل على قراءات تدفق PA على مقياس التدفق وواجهة الحصول على البيانات.
  1. قد يؤدي وضع مسبار تدفق PA إلى انسداد جزئي لل PA يمكن أن يقلل من الحمل المسبق للبطين الأيسر ويعني الضغط الشرياني. انتبه بعناية لديناميكا الدم أثناء اكتساب تدفق PA.
  2. تحقق من شاشة مقياس التدفق للتأكد من أن قوة إشارة تدفق PA هي 5 أشرطة. إذا كان العداد يعرض أقل من 5 أشرطة، فتأكد من الاتصال الكافي بين مسبار التدفق وPA الرئيسي. ضع جل الموجات فوق الصوتية الإضافي إذا لزم الأمر.
أكمل تشريح التامور ل LPA وأحاطه بشريط سري.
1. استخدم عصا إسفنجية صغيرة أو متراجعا رقيقا قابلا للطي للتراجع الذيلي للزائدة الأذينية اليسرى.
  ملاحظة: يتم تسهيل التعرض ل LPA عن طريق التراجع الذيلي للزائدة الأذينية اليسرى ، وتراجع الرأس من PA الرئيسي ، والتراجع الجانبي للتامور الأمامي مباشرة إلى حيث يخرج LPA من التامور.
ضع سدادة وعائية سيليكون للخدمة الشاقة حول PA الرئيسي (الشكل 2A ، B ، الدائرة). يمكن تعديل حجم Occluder بناء على قطر PA ؛ تأكد من أن الملاءمة مريحة. استخدم خياطة حريرية 0 على إبرة كيث لتأمين نهايات سدادة الأوعية الدموية مع غرزة U. بمجرد تأمينه حول السلطة الفلسطينية الرئيسية ، قم بتمرير السد بشكل بعيد على طول السلطة الفلسطينية الرئيسية.
قم بتطويق PA الرئيسي القريب بتصريف Penrose مقاس 1/2 بوصة لتسهيل التشريح وحجز مساحة لوضع مسبار تدفق في جراحة إعادة الجراحة اللاحقة. قم بتقليم استنزاف Penrose ليتناسب بشكل فضفاض حول PA وقم بتأمين Penrose لنفسه باستخدام خياطة Prolene 4-0 (الشكل 2B).
إنشاء خط ضغط RV لرصد ضغوط RV (الشكل 2B ، السهم الأبيض).
1. حدد موقعا لخط ضغط RV في جدار التدفق الخارجي RV الخالي من المسار. ضع خيطا من 5-0 خيوط أحادية اللون من البولي بروبيلين غير قابل للامتصاص مع التعهدات المحيطة بالموقع المحدد وقم بالجلوس في مكان وعائي. اصنع التعهدات من قفاز جراحي معقم.
2. تحضير خط ضغط RV: اقطع الطرف الذكري لأنابيب الضغط المعقمة مقاس 36 بوصة بزاوية 30 درجة لتسهيل الإدخال عبر عضلة القلب. استخدم ربطة عنق حريرية 2-0 لتحديد خط الضغط على عمق مثالي لوضعه داخل RV.
3. باستخدام مشرط مكون من 11 شفرة ، قم بإجراء عملية استئصال قلب صغيرة في الجدار الخالي من RVOT داخل خياطة سلسلة المحفظة الموضوعة مسبقا. السيطرة على النزيف عن طريق الضغط اليدوي أو عن طريق تشديد الشخير على خياطة سلسلة المحفظة.
  ملاحظة: احصل على خزعة أساسية للجدار الخالي من RV في هذه الخطوة عن طريق أخذ عينات من أنسجة RV داخل خياطة سلسلة المحفظة. يمكن أن يكون موقع الخزعة هذا بمثابة نقطة دخول لخط ضغط RV.
4. أدخل وثبت الطرف المقطوع لأنبوب الضغط في مجرى التدفق الخارجي RV (RVOT). اربط سلسلة المحفظة ثم قم بتثبيت سلسلة المحفظة بأنبوب الضغط لتأمين خط الضغط.
قم بتمديد أنبوب RVOT عن طريق توصيل أنبوب ضغط إضافي بخط ضغط RVOT.
قم بتسليم أنبوب الضغط الإضافي إلى شخص غير معقم لتوصيل الأنبوب بمحول ضغط ومراقبة لقياس ضغط RV الأساسي. قم بإعداد محول الضغط على النحو التالي.
1. قم بتوصيل نهاية luer الذكرية لمجموعة إدارة IV بنهاية luer الأنثوية لمحول الطاقة.
2. قم بتوصيل نهاية luer الأنثوية لأنابيب الضغط بنهاية luer الذكرية لمحولات الطاقة.
3. قم برفع الإدارة الوريدية الموضوعة في كيس ملحي هيبارين (2 وحدة دولية / مل).
4. ضع الكيس الملحي في كيس ضغط وضخ كيس الضغط إلى 250-300 مم زئبق كما هو موضح في المقياس.
5. قم بتمهيد الخط بالكامل عن طريق تحرير الصمام الموجود على محول الطاقة ، مما يضمن إزالة الهواء بشكل صحيح.
6. اتبع الطرق التكميلية لمعايرة محول الطاقة.
بعد تشريح بعناية حول LPA ، قم بتطويقه بشريط سري. قم بربط LPA عن طريق ربط الشريط السري. لاحظ استجابة الحيوان الديناميكية الدموية للربط إذا كانت ذات صلة بالدراسة. قم بزيادة التهوية الدقيقة للتعويض عن زيادة تهوية المساحة الميتة الناتجة عن ربط LPA. هذه التعديلات على أجهزة التنفس الصناعي تخفف من الحماض التنفسي.
قم بحقن ما يصل إلى 3 مل من المياه المالحة ببطء في سدادة PA الرئيسية لضمان عدم وجود تسرب أثناء مراقبة ضغط RV من خط ضغط RVOT. بمجرد تأكيد استجابة RV ، اسحب المياه المالحة المغروسة.
أخرج خط الضغط RVOT وأنبوب انسداد PA من الصدر مساحة وربية واحدة أسفل شق بضع الصدر.
تشكل جيبين تحت الجلد على طول الطبقة اللفافة على الظهرية اليسرى للأغنام بقدر ما يكون ذلك ممكنا في الخلف نحو العمود الفقري قدر الإمكان داخل الحقل المعقم. هذه هي بمثابة مواقع لموانئ السكن (الشكل 2C).
باستخدام مجتذب أنبوب الصدر ، نفق خط الضغط RVOT وأنبوب الانسداد من شق الصدر إلى مواقع المنفذ الظهري الأيسر.
قم بتأمين كل من أنابيب الانسداد وخط ضغط RV إلى وصلات القضيب في المنفذ. قم بتثبيت أنبوب الانسداد والضغط حول موصلات المنفذ مع روابط إضافية. استخدم تركيب الموصل الشائك المرفق لحماية الاتصال (الشكل 1C). ضع المنافذ داخل الجيوب تحت الجلد المشكلة مسبقا.
قم بتثبيت الموانئ في ثلاثة مواقع حول حافتها إلى اللفافة الأساسية باستخدام خيوط البولي بروبيلين 3-0 لمنع هجرة الميناء. إعادة تقريب الأنسجة تحت الجلد والأدمة والجلد في طبقات مع خيوط البوليجلاكتين 910. أعد تأكيد قراءات الضغط من خلال الوصول عن طريق الجلد للموانئ. اغسل منفذ RVOT ب 5 مل (1000 وحدة دولية/مل، 5000 وحدة) من الصوديوم الهيبارين.
ضع أنبوب صدر 16 فرنسيا في التجويف الجنبي الأيسر من خلال شق منفصل ، وثبته على الجلد ، ثم قم بتوصيله بوحدة تصريف أنبوب الصدر المغلقة عند ضغط -20 سم ·_H2O. ضع غرزة U غير مقيدة حول الأنبوب لتسهيل الإغلاق بعد إزالة أنبوب الصدر.
إدارة كتلة عصبية وربية (0.5-1 مغ / كغ بوبيفاكايين) لتسكين ما بعد الجراحة.
أغلق بضع الصدر مع الرقم من ثمانية ، # 2 بوليجلاكتين 910 الغرز. أغلق طبقة العضلات الصدرية مع تشغيل # 0 polyglactin 910. أغلق الأنسجة تحت الجلد في طبقات من خيوط البولي جلاكتين 910 رقم 2-0 وقم بتدبيس الجلد.
إعادة وضع الحيوان إلى الاستلقاء الظهري ، وإزالة أنبوب الفم والمعدة ، ثم التوقف عن isoflurane.
استمر في التهوية الميكانيكية والرعاية الداعمة حتى > درجة الحموضة في الدم الشرياني 7.35 و _pCO2 < 55 مم زئبق.
قم بالتنبيب بمجرد أن يتنفس الحيوان تلقائيا ، ويرفع رأسه ، ويمضغ أنبوب القصبة الهوائية. قم بإزالة أنبوب الصدر قبل الشفاء الكامل من التخدير. اربط الغرزة U لإغلاق شق أنبوب الصدر.
نقل الحيوان إلى قفصه أثناء مراقبة تعافيه من التخدير. تأكد من توفر الأكسجين التكميلي (3-5 لتر / دقيقة بواسطة قناع الوجه) في جميع الأوقات بينما تظل الأغنام غير متحركة. راقب العلامات الحيوية كل ساعة لأول 4 ساعات ، وكل 8 ساعات لمدة 24 ساعة التالية ، ومرة واحدة يوميا بعد ذلك.

5. التعافي بعد العملية الجراحية

راقب مواقع استئصال الصدر وزرع المنفذ يوميا بحثا عن علامات العدوى. إدارة المضادات الحيوية طويلة المفعول (سيفتيوفور، 5 مغ/كغ في العضل) في غضون 24 ساعة بعد العملية وكل 3-4 أيام بعد ذلك لمدة 1 أسبوع.
استمر في رقعة الفنتانيل بعد العملية الجراحية لمدة 72 ساعة. بعد ذلك ، قدم تسكينا إضافيا (على سبيل المثال ، ميلوكسيكام ، 1 ملغم / كغ مرة واحدة يوميا في العضل) إذا استمر الحيوان في إظهار علامات الألم (أي طحن الأسنان ، وارتفاع معدل ضربات القلب).
قم بإزالة الغرز الخارجية والدبابيس الجلدية بعد 10-14 يوما من الجراحة أو على النحو الموصى به من قبل الموظفين البيطريين.
ضمان حماية موقع الميناء من فرك الحيوانات أو كشط مواقع الميناء ضد الهياكل المحيطة باستخدام ضمادة أنبوبية (الشكل 2D).

6. النطاقات PA المزمنة (9 - 10 أسابيع)

نقل الأغنام إلى حاوية صغيرة. قص الصوف الزائد حول المنافذ المزروعة.
نظف المناطق المحلوقة ب 70٪ من كحول الأيزوبروبيل. تطبيق رذاذ ليدوكائين موضعي للتخدير الموضعي.
قم بإعداد اثنين من محولات الضغط لمراقبة ضغوط الكفة RV و occluder (الشكل 3A).
1. لكلا المحولين: قم بتوصيل نهاية اللوير الأنثوية لأنابيب الضغط (36 بوصة أو أكثر) بنهاية اللوير الذكرية لمحول الطاقة. قم بتوصيل نهاية luer الذكرية لأنابيب الضغط بأحد وصلات luer الأنثوية على stopcock ثلاثي الاتجاهات. أخيرا ، قم بتوصيل إبرة Huber 22 G بنهاية luer الذكرية لهذا التوقف الثلاثي.
2. بالنسبة لمحول ضغط RV: قم بتعليق كيس ملحي هيباريني (2 وحدة دولية / مل) ، وثقب الكيس بمجموعة الإدارة IV ، وقم بتوصيل اتصال luer الذكري لمجموعة الإدارة IV باتصال luer الأنثوي لمحول ضغط RV. ثم اضغط على الكيس الملحي (على سبيل المثال، كيس الضغط).
3. بالنسبة لمحول الطاقة السدادي: قم بتزويد محول الطاقة وأنبوب الضغط بالكامل. ضع غطاء لوير ذكر على طرف اللوير الأنثوي لمحول الضغط لمنع تسرب سائل الكفة مرة أخرى إلى محول الطاقة.
4. قم بتوصيل كل من محولات الطاقة بأجهزة الحصول على البيانات باستخدام كبل أو محول مناسب.
معايرة محولات الطاقة كما هو محدد في الملف التكميلي 1.
انقر فوق ابدأ في أعلى يمين نافذة البرنامج لبدء تسجيل برنامج الحصول على البيانات لالتقاط الأشكال الموجية لضغط الكفة RV و PA عند 400 هرتز.
اطلب من مساعد توفير ضبط النفس الخفيف للحيوان قبل الوصول إلى الميناء. أدخل إبرة Huber من محول ضغط RV إلى منفذ RV. قم بتوصيل حقنة سعة 10 مل بجهاز التوقف ثلاثي الاتجاهات وحاول سحب الدم مرة أخرى إلى المحقنة من منفذ RV (الشكل 3B).
1. إذا كان من الصعب سحب المحقنة ، فقم أولا بحقن محلول ملحي 5-10 مل في منفذ RV لإزاحة مصدر الانسداد.
2. إذا استمر الانسداد ، فقم بغرس 2 ملغ من منشط بلازمينوجين الأنسجة (tPA) في المنفذ كعامل محلل للفيبرين واتركه طوال الليل. تحقق في اليوم التالي لشفط tPA.
بمجرد إنشاء خط ضغط RV ، قم بتوصيل إبرة Huber من محول الكفة PA.
التقط قيم البدء لضغوط الكفة RV و PA (الشكل 3C). لاحظ أي تغييرات جذرية من القراءات السابقة.
1. إذا انخفض ضغط PA و / أو RV بشكل كبير عن القراءة السابقة ، فقد يكون ذلك علامة على أن كفة PA تتسرب.
2. لاحظ علامة واضحة أخرى على تسرب الكفة PA من خلال دراسة الشكل الموجي للكفة PA. إذا انخفض متوسط ضغط الكفة PA بمعدل ملحوظ ، فهناك فرصة كبيرة لأن تتسرب الكفة.
  ملاحظة: أعد التحقق من أن جميع توصيلات luer الموجودة على محول الضغط والأنابيب و stopcock مشدودة. يمكن أن يتدفق محتوى السوائل عالي الضغط من كفة PA مرة أخرى ويتسرب من وصلات luer الفضفاضة.
  1. إذا كانت الكفة PA تتسرب ، فحدد مدى التسرب. إذا كان معدل التسرب بطيئا ، فيمكن لاستراتيجية النطاقات الأكثر تكرارا التغلب على التسرب لجعل نموذج المرض لا يزال فعالا.
حقن ببطء 3٪ من المياه المالحة مفرطة التوتر في منفذ السد مع الانتباه إلى RV وضغوط الكفة.
1. اضبط كمية الحقن بناء على شدة مرض الأس الهيدروجيني المطلوب والنمط الظاهري ل RV. تعد الزيادة الأسبوعية في ضغط الكفة بمقدار 100-150 مم زئبق هدفا معقولا لتطوير نمط ظاهري RV تعويضي قابل للتكيف.
2. من المرجح أن تؤدي الزيادات السريعة في ضغط الكفة (>250 مم زئبق في الأسبوع) إلى ظهور نمط ظاهري RV غير تعويضي.
بمجرد نفخ الكفة PA إلى الكمية المطلوبة ، قم بإزالة إبرة Huber من منفذ الكفة.
احصل على عينة دم من منفذ RV.
1. استنشاق 10 مل من الدم من منفذ RV بطريقة معقمة ووضعها جانبا.
2. ضع حقنة جديدة بدلا من حقنة الشفط واستنشق أكبر قدر ممكن من الدم حسب الحاجة دون تجاوز حد سحب الدم الأسبوعي البالغ 7.5٪ من إجمالي حجم الدم.
3. أعد توصيل المحقنة الأصلية بالدم المستنشق وأعاده عبر منفذ RV.
4. اسحب ذراع الصمام الخاص بمحول الضغط لطرد المحلول الملحي الهيباريني من الكيس الملحي إلى منفذ RV. استمر في التنظيف حتى يصبح الخط بأكمله واضحا وعديم اللون.
اغسل منفذ RV ب 10 مل من المياه المالحة. ثم ، قم بمسح المنفذ ب 5 مل من 1000 U / mL من الصوديوم الهيبارين.
كرر الخطوات 6.1-6.12 كل 1-4 أيام لمدة 9-10 أسابيع.

النتائج

وتستخدم مجموعة تمثيلية من 12 خروفا لإظهار فعالية هذا النموذج في تطوير درجات متفاوتة من حمى الوادي المتصدع (PH-RVF). ومن بين هذه الأغنام، ارتفع متوسط ضغط الكفة PA من 32 ± 20 مم زئبق في الأسبوع 1 إلى 1002 ± 429 مم زئبق في الأسبوع 9. وأدى ذلك إلى زيادة متوسط RV والضغوط الانقباضية من 28 ± 5 و 57 ± 7 مم زئبق في الأسب...

Discussion

يمكن لنموذج PH-RVF المقدم أن يحفز بشكل موثوق مستويات متفاوتة من شدة المرض لتتناسب مع أهداف التحقيق. يتم استخدام نهجين مختلفين في تركيبة للحث على نموذج المرض هذا. أولا ، يعمل ربط LPA على زيادة مقاومة الأوعية الدموية الرئوية وتقليل سعة PA ^11,12 ، وبالتالي إنشاء نقطة ا...

Disclosures

وليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإفصاح عنه.

Acknowledgements

تم تمويل هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة R01HL140231. نشكر شعبة رعاية الحيوانات على تربية الحيوانات والرعاية البيطرية. نشكر مختبر SR Light وموظفيه ، جيمي أدكوك ، سوزان فولتز ، كودي فان روين ، وخوسيه دياز ، على دعمهم الفني المتفاني في العمليات الجراحية للحيوانات الكبيرة.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.9% Sodium Chloride Irrigation Pour Bottle by Baxter Healthcare, 1000 mL	Medline	BHL2F7124	Surgical Disposable
0.25% Bupivacaine	Hospira Inc	0409-1160-18	Medication, Intra-Operative
0.9% Normal Saline, 1000 mL	Baxter Healthcare Corp	0338-0049-04	Medication, Intra-Operative
0.9% Normal Saline, 500 mL	Baxter Healthcare Corp.,	0338-0049-03	Medication, Chronic PH
16 mm Heavy Duty Occluder with actuating tubing	Access Technologies	OC-16HD	Surgical Disposable
3-mL Skin Prep Applicator	Medline	MDF260400	Surgical Disposable
70% isopropyl alcohol prep pads	Medline	MDS090670	Disposable, Chronic PH
Adhesive bandage tape	Patterson Veterinary		Disposable, Chronic PH
Adson forceps	V. Mueller	NL1400	Surgical Instrument
Allis tissue forceps	V. Mueller	CH1560	Surgical Instrument
Aortic clamp, straight (bainbridge forceps)	V. Mueller	SU6001	Surgical Instrument
Backhaus towel forceps	V. Mueller	SU2900	Surgical Instrument
Bags, Infusion: Nonsterile Novaplus Infusion Bag, 500 mL	Medline	TCV4005H	Disposable, Chronic PH
Berry sternal needle holder	V. Mueller	CH2540	Surgical Instrument
Blades, Electrode: Electrode Blade, 6.5", with 0.24 cm Shaft	Medline	VALE15516	Surgical Disposable
Blades: Stainless-Steel Sterile Surgical Blade, Size #10	Medline	B-D371210	Surgical Disposable
Blades: Stainless-Steel Sterile Surgical Blade, Size #11	Medline	B-D371211	Surgical Disposable
Blades: Stainless-Steel Sterile Surgical Blade, Size #15	Medline	B-D371215	Surgical Disposable
BNC Male to BNC Male Cable	Digi-Key	415-0198-036	Equipment
Castroviejo needle holder	V. Mueller	CH8589	Surgical Instrument
Cefazolin	Apotex Corp	60505-6142-0	Medication, Intra-Operative
Ceftiofur Crystalline Free Acid	Zoetis Inc	54771-5223-1	Medication, Post-Operative
Chest Drain, with Dry Suction, Adult-Pediatric	Medline	DEKA6000LFH	Surgical Disposable
Chest tube passer	V. Mueller	CH04189	Surgical Instrument
COnfidence Flowprobes for Research (PAU-Series)	Transonic	24PAU	Equipment, Perivascular Flow Probe
Cooley tangential occlusion clamp	V. Mueller	CH6572	Surgical Instrument
Data Acquisition Hardware	ADInstruments	PowerLab 16/30	Equipment
DeBakey Aorta clamp	V. Mueller	CH7247	Surgical Instrument
DeBakey multi-purpose clamp	V. Mueller	CH7276	Surgical Instrument
Debakey tissue forceps, 12’’	V. Mueller	CH5906	Surgical Instrument
Debakey vascular tissue forceps 7 3/4’’	V. Mueller	CH5902	Surgical Instrument
Debakey vascular tissue forceps, 9’’	V. Mueller	CH5904	Surgical Instrument
Electrosurgical Generator	Covidien	Force FX-C	Equipment
Endotracheal Tube, 10mm	Patterson Veterinary	07-882-9008	Surgical Disposable
Enrofloxacin	Norbrook Laboratories Limited	55529-152-05	Medication, Intra-Operative
Fentanyl Transdermal Patch	Apotex Corp	60505-7007-2	Medication, Pre-Operative
Ferris smith tissue forceps	V. Mueller	SU2510	Surgical Instrument
Finochietto rib spreaders, large	V. Mueller	CH1220-1	Surgical Instrument
Finochietto rib spreaders, medium	V. Mueller	CH1215-1	Surgical Instrument
Flexsteel ribbon retractor, 1” x 13”	V. Mueller	SU3340	Surgical Instrument
Flexsteel ribbon retractor, 2” x 13”	V. Mueller	SU3346	Surgical Instrument
Foerster sponge forceps, curved	V. Mueller	GL660	Surgical Instrument
Gauze Sponges: Sterile X-ray Compatible Gauze Sponges, 16-Ply, 4" x 4"	Medline	PRM21430LFH	Surgical Disposable
Gerald-DeBakey forceps	V. Mueller	CH04242	Surgical Instrument
Glassman Allis	V. Mueller	SU6152	Surgical Instrument
Halsted mosquito forceps	V. Mueller	SU2702	Surgical Instrument
Harken clamp	V. Mueller	CH6462	Surgical Instrument
Heat Therapy Pump	Gaymar/Stryker	TP-400	Equipment
Heparin	Fresenius Kabi,	63323-540-31	Medication, Chronic PH
Hospira Primary IV Sets, 80"	Patterson Veterinary	07-835-0123	Surgical Disposable
Hypertonic saline 3%	Baxter Healthcare Corp.,	0338-0054-03	Medication, Chronic PH
Hypodermic Needle with Bevel and Regular Wall, 20 G x 1"	Medline	B-D305175Z	Disposable, Chronic PH
Interface Cable, Edwards LifeScience Transducer to ADInstruments Bridge Amplifier	Fogg System	0395-2434	Equipment
Intravenous Infusion Pump	Heska	Vet/IV 2.2 Infusion Pump	Equipment
Isoflurane	Patterson Veterinary	14043-704-06	Medication, Pre-Operative
Kantrowitz thoracic clamp, 9-1/2”	V. Mueller	CH1722	Surgical Instrument
Kelly hemostats	V. Mueller	88-0314	Surgical Instrument
Lidocaine HCl, 2.46%	PRN Pharmacal,	49427-434-04	Medication, Chronic PH
Ligaclip Multiple-Clip Appliers by Ethicon	Medline	ETHMCS20	Surgical Disposable
Loop, Vessel, Mini, Red, 2/pk, Sterile	Medline	DYNJVL12	Surgical Disposable
Lorna non-perforating towel forceps	V. Mueller	SU2937	Surgical Instrument
Mayo dissecting scissors, curved	V. Mueller	SU1826	Surgical Instrument
Mayo dissecting scissors, straight	V. Mueller	SU1821	Surgical Instrument
Medipore Dress-It Pre-Cut Dressing Covers by 3M	Medline	MMM2955Z	Surgical Disposable
Meloxicam	Patterson Veterinary	14043-909-10	Medication, Post-Operative
Mixter thoracic forceps, 9”	V. Mueller	CH1730-003	Surgical Instrument
Mosquito hemostats	V. Mueller	88-0301	Surgical Instrument
Multi-Channel Research Consoles	Transonic	T402/T403	Equipment, Perivascular Flow Meter
Multi-Lumen Central Venous Catheterization Kits	Medline	ARW45703XP1AH	Surgical Disposable
Multi-Parameter Vital Signs Monitor	Smiths Medical	SurgiVet Advisor 3	Equipment
Needles: Hypodermic Needle with Regular Bevel, Sterile, 18 G x 1.5"	Medline	B-D305185Z	Surgical Disposable
No. 3 knife handle	V. Mueller	SU1403-001	Surgical Instrument
No. 7 knife handle	V. Mueller	SU1407	Surgical Instrument
Non-Vented Male Luer Cap	Qosina	13614	Disposable, Chronic PH
Octal Bridge Amplifier	ADInstruments	FE228	Equipment
Ophthalmic Ointment	Akorn Animal Health	59399-162-35	Medication, Pre-Operative
Penrose Tubing, 6 mm x 46 cm, 11 mm Flat	Medline	SWD514604H	Surgical Disposable
Perma-Hand Black Braided Silk: 2-0 SH Taperpoint Needle, Control Release, 30"	Medline	ETHD8552	Surgical Disposable
Perma-Hand Suture, Black Braided, Size 0, 6 x 30”	Medline	ETHA306H	Surgical Disposable
Perma-Hand Suture, Black Braided, Size 4-0, 12 x 30"	Medline	ETHA303H	Surgical Disposable
Phenylephrine	West-Ward	0641-6142-25	Medication, Intra-Operative
Polyhesive Cordless Patient Return Electrodes, Adult	Medline	SWDE7509	Surgical Disposable
Port-A-Cath Huber Needle, Straight, 22 G x 1-1/2"	Medline	AAKM21200724	Disposable, Chronic PH
PROLENE Monofilament Suture, Blue, Size 4-0, 36", Double Arm, RB-1 Needle	Medline	ETHD7143	Surgical Disposable
PROLENE Polypropylene Monofilament Suture, Blue, Double-Armed, RB-1 Needle, Size 5-0, 24"	Medline	ETH8555H	Surgical Disposable
Regional Block Needles, 22-gauge	Medline	B-D408348Z	Surgical Disposable
Schnidt tonsil artery forceps	V. Mueller	M01700	Surgical Instrument
Skin staple extractor	Medline	CND3031	Disposable, Chronic PH
Skin stapler 35 wide, with counter	Medline	STAPLER35W	Surgical Disposable
Sphygmomanometer	Medline		Equipment
Sponge bowl	V. Mueller	GE-75	Surgical Instrument
Sponge, Lap: X-Ray Detectable Sterile Lap Sponge, 18" x 18", 5/Pack	Medline	MDS241518HH	Surgical Disposable
Sponge, Peanut: X-Ray Detectable Sterile Peanut Sponge, Small, 3/8"	Medline	MDS72038	Surgical Disposable
Sterile Disposable Deluxe OR Towel, Blue, 17'' x 27'', 2/Pack	Medline	MDT2168202	Surgical Disposable
Sterile Luer-Lock Syringe, 3 mL	Medline	SYR103010Z	Disposable, Chronic PH
Sterile Luer-Lock Syringe, 5 mL	Medline	SYR105010Z	Disposable, Chronic PH
Sterile Surgical Equipment Probe Covers	Medline	DYNJE5930	Surgical Disposable
Stopcock: 3-Way Stopcock with Handle in OFF Position, Rotating Adaptor Male Collar Fitting, 45 PSI	Medline	DYNJSC301	Surgical Disposable
Stopcock: 3-Way Stopcock with Handle in OFF Position, Rotating Adaptor Male Collar Fitting, 45 PSI	Medline	DYNJSC301	Disposable, Chronic PH
Subcutaneous Port with 5-French Connector and Blue Boot	Access Technologies	CP2AC-5NC	Surgical Disposable
Super cut metzenbaum dissecting scissors	V. Mueller	CH2032-S	Surgical Instrument
Super cut nelson-metzenbaum dissecting scissors	V. Mueller	CH2025-S	Surgical Instrument
Syringes: Sterile Luer-Lock Syringe, 10 mL	Medline	SYR110010Z	Surgical Disposable
Thoracic Catheter, Straight, 28 Fr x 20"	Medline	SWD570549H	Surgical Disposable
Three-quarter surgical drape	Medline	DYNJP2414H	Surgical Disposable
Tiletamine + Zolazepam	Zoetis Inc	54771-9050-1	Medication, Pre-Operative
TourniKwik Tourniquet Set with Four 7.5" Bronze-Colored Tubes and 1 Snare, 12 French	Medline	CVR79013	Surgical Disposable
Transducer clip	Edwards LifeScience	TCLIP05	Equipment
Trigger Aneroid Gauge (Sphygmomanometer)	Patterson Veterinary	07-815-0464	Equipment
TruWave Disposable Pressure Transducer Kits by Edwards Lifesciences	Medline	VSYPX260	Surgical Disposable and Chronic PH
TS420 Perivascular Flow Module	Transonic	TS420	Equipment, Perivascular Flow Meter
Tubing, Suction: Sterile Universal Suction Tubing with Straight Ribbed Connectors, 1/4" x 12'	Medline	OR612	Surgical Disposable
Tubing: Pressure Monitoring Tubing with Fixed Male Luer Lock and Female Fitting, Low Pressure, 72" L	Medline	DYNJPMTBG72MF	Surgical Disposable
Tubing: Pressure Monitoring Tubing with Fixed Male Luer Lock and Female Fitting, Low Pressure, 72" L	Medline	DYNJPMTBG72MF	Disposable, Chronic PH
Tubular Elastic Dressing Retainer	Medline	DERGL711	Disposable, Chronic PH
Tuffier rib retractor	V. Mueller	CD1101	Surgical Instrument
Tygon E-3603 Flexible Tubings	Fisher Scientific	14-171-227	Surgical Disposable
U.S.A retractor	V. Mueller	SU3660	Surgical Instrument
Umbilical Tape, Cotton, 3-Strand, 1/8 x 36"	Medline	ETHU12TH	Surgical Disposable
Valleylab Button Switch Pencil	Medline	VALE2516H	Surgical Disposable
Vanderbilt deep vessel forceps	V. Mueller	CH1687	Surgical Instrument
Veterinary Anesthesia Machine	Midmark	Matrx VMC	Equipment
Veterinary Anesthesia Ventilator	Hallowell EMC	Model 2000	Equipment
Vicryl: Undyed Coated Vicryl 0 CT-1 36" Suture	Medline	ETHVCP946H	Surgical Disposable
Vicryl: Undyed Coated Vicryl 2 TP-1 Taper 54" Suture	Medline	ETHVCP880T	Surgical Disposable
Vicryl: Undyed Coated Vicryl 2-0 CT-1 18" Suture	Medline	ETHVCP739D	Surgical Disposable
Vital crile-wood needle holder, 10-3/8”	V. Mueller	CH2427	Surgical Instrument
Vital mayo-hegar needle holder, 7-1/4”	V. Mueller	CH2417	Surgical Instrument
Vital metzenbaum dissecting scissors, 14’’	V. Mueller	CH2009	Surgical Instrument
Vital metzenbaum dissecting scissors, 9”	V. Mueller	CH2006	Surgical Instrument
Vital ryder needle holder, 9”	V. Mueller	CH2510	Surgical Instrument
Yankauer, Bulb Tip: Sterile Rigid Yankauer with Bulb Tip, No Vent	Medline	DYND50130	Surgical Disposable

References

Campo, A., et al. Outcomes of hospitalization for right heart failure in pulmonary arterial hypertension. European Respiratory Journal. 38 (2), 359-367 (2011).
Tonelli, A. R., et al. Causes and circumstances of death in pulmonary arterial hypertension. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 188 (3), 365-369 (2013).
Urashima, T., et al. Molecular and physiological characterization of RV remodeling in a murine model of pulmonary stenosis. American Journal of Physiology- Heart and Circulatory Physiology. 295 (3), (2008).
Sato, H., et al. Large animal model of chronic pulmonary hypertension. ASAIO Journal. 54 (4), 396-400 (2008).
Pohlmann, J. R., et al. A low mortality model of chronic pulmonary hypertension in sheep. Journal of Surgical Research. 175 (1), 44-48 (2012).
Noly, P. -. E., Guihaire, J., Coblence, M., Dorfmuller, P., Fadel, E., Mercier, O. Chronic thromboembolic pulmonary hypertension and assessment of right ventricular function in the piglet. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (105), e53133 (2015).
Pereda, D., et al. Swine model of chronic postcapillary pulmonary hypertension with right ventricular remodeling: Long-term characterization by cardiac catheterization, magnetic resonance, and pathology. Journal of Cardiovascular Translational Research. 7 (5), 494-506 (2014).
Silva, K. A. S., Emter, C. A. Large animal models of heart failure: A translational bridge to clinical success. JACC: Basic to Translational Science. 5 (8), 840-856 (2020).
Ukita, R., et al. Left pulmonary artery ligation and chronic pulmonary artery banding model for inducing right ventricular - pulmonary hypertension in sheep. ASAIO Journal (American Society for Artificial Internal Organs: 1992. 67 (1), 44-48 (2020).
Ukita, R., et al. Progression toward decompensated right ventricular failure in the ovine pulmonary hypertension model. ASAIO Journal (American Society for Artificial Internal Organs: 1992. , (2021).
Mercier, O., et al. Piglet model of chronic pulmonary hypertension. Pulmonary Circulation. 3 (4), 908-915 (2013).
Guihaire, J., et al. Right ventricular plasticity in a porcine model of chronic pressure overload. Journal of Heart and Lung Transplantation. 33 (2), 194-202 (2014).
Tang, K. J., Robbins, I. M., Light, R. W. Incidence of pleural effusions in idiopathic and familial pulmonary arterial hypertension patients. Chest. 136 (3), 688-693 (2009).
Luo, Y. F., et al. Frequency of pleural effusions in patients with pulmonary arterial hypertension associated with connective tissue diseases. Chest. 140 (1), 42-47 (2011).
Brixey, A. G., Light, R. W. Pleural effusions occurring with right heart failure. Current Opinion in Pulmonary Medicine. 17 (4), 226-231 (2011).
Bovine High-mountain Disease. Merck and the Merck Veterinary Manual Available from: https://www.merckvetmanual.com/circulatory-system/bovine-high-mountain-disease/bovine-high-mountain-disease (2019)
Van De Veerdonk, M. C., et al. Progressive right ventricular dysfunction in patients with pulmonary arterial hypertension responding to therapy. Journal of the American College of Cardiology. 58 (24), 2511-2519 (2011).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

173

This article has been published

Video Coming Soon

Keep me updated:

Method Article