JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

تؤدي الإصابة العابرة (65 درجة مئوية ± 0.5 درجة مئوية ، 3 ثوان) من مخلب خلفي واحد إلى تقليل العتبة (ز) إلى تحفيز خيوط فون فراي للجانب الجانبي وتغير نمط المشية. إلى جانب ذلك ، تحفز إصابة الحروق سلوكا يشبه الاكتئاب في اختبار السباحة القسري.

Abstract

مياه السمط هي السبب الأكثر شيوعا لإصابة الحروق في كل من السكان المسنين والشباب. وهو أحد التحديات السريرية الرئيسية بسبب ارتفاع معدل الوفيات والعواقب في البلدان المنخفضة والمتوسطة الدخل. غالبا ما تحفز الحروق ألما عفويا شديدا وألودينيا مستمرة بالإضافة إلى مشكلة تهدد الحياة. الأهم من ذلك ، غالبا ما يكون الألم المفرط مصحوبا بالاكتئاب ، مما قد يقلل بشكل كبير من نوعية الحياة. توضح هذه المقالة كيفية تطوير نموذج حيواني لدراسة الألم الناجم عن الحروق والسلوك الشبيه بالاكتئاب. بعد التخدير ، تم إحداث إصابة الحروق عن طريق غمس مخلب خلفي واحد من الماوس في الماء الساخن (65 درجة مئوية ± 0.5 درجة مئوية) لمدة 3 ثوان. تم إجراء اختبار فون فراي وتحليل المشية الآلي كل 2 أيام بعد إصابة الحرق. بالإضافة إلى ذلك ، تم فحص السلوك الشبيه بالاكتئاب باستخدام اختبار السباحة القسري ، وتم إجراء اختبار قضيب الروتا للتمييز بين الوظيفة الحركية غير الطبيعية بعد إصابة الحرق. الغرض الرئيسي من هذه الدراسة هو وصف تطوير نموذج حيواني لدراسة الألم الناجم عن إصابة الحروق والسلوك الشبيه بالاكتئاب في الفئران.

Introduction

يرتبط تلف الأنسجة ، مثل الحروق والصدمات ، بشكل عام بتكرار حدوث الألم الحاد. إصابات الحروق والأعراض المرتبطة بالصدمات هي ما يقدر بنحو 1,80,000 حالة وفاة كل عام ناجمة عن الحروق - تحدث الغالبية العظمى في البلدان المنخفضة والمتوسطة الدخل من أنواع مختلفة من الحروق1. وفقا لتقرير عالمي ، فإن الحروق شائعة عند الأطفال وتمثل حوالي 40٪ -60٪ من المرضى في المستشفى 2,3. هذه الإصابات المحددة أكثر خطورة لأنها يمكن أن تحدث في الحياة اليومية ، مثل غليان أو مياه الاستحمام 4,5. على الرغم من أنه يمكن حل الألم الحاد تلقائيا بعد الشفاء من تلف الأنسجة في معظم الحالات ، فقد يكون من الممكن أن يصبح مزمنا بسبب التغيرات غير الطبيعية في الجهاز العصبي 6,7.

في الآونة الأخيرة ، اقترح أن الألم الحاد يمكن أن يحفز مزاج الاكتئاب ، والألم المزمن يمكن أن يسبب القلق والاكتئاب8،9،10،11. التعايش بين الألم والاكتئاب يجعل من الصعب علاج المريض. يميل الاكتئاب أيضا إلى زيادة حساسية الألم ، والتي من المرجح أن تحفز الاكتئاب والألم الأكثر حدة12. تظهر مضاعفات الألم والاكتئاب في النماذج الحيوانية للالتهابات الطرفية 13،14،15،16. الآليات التفصيلية الكامنة وراء الاكتئاب الناجم عن الألم ليست معروفة جيدا حتى الآن17. وبالتالي ، من الضروري تطوير علاجات أكثر فعالية للحروق للتخفيف من الآثار الجانبية والأعراض.

وهكذا ، تم تصميم هذه الدراسة لتطوير نموذج حيواني لدراسة الألم الحاد الناجم عن إصابات الحروق والسلوك الشبيه بالاكتئاب في الفئران. لهذا ، تم قياس حساسية اللمس غير الطبيعية المرتبطة بإصابات الحروق ، ونمط المشي المتغير ، والسلوك الشبيه بالاكتئاب. بالإضافة إلى ذلك ، تحاول هذه الدراسة التحقق من صحة النموذج باستخدام مضادات الالتهاب غير الستيروئيدية.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

تمت مراجعة جميع البروتوكولات التجريبية والموافقة عليها من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام الحيوانات في جامعة تشونغنام الوطنية في كوريا الجنوبية ، ثم أجريت بناء على المبادئ التوجيهية الأخلاقية للجمعية الدولية لدراسة الألم18.

1. تحريض إصابة حرق السمط على مخلب الخلفية

  1. قم بإيواء ذكور الفئران ICR التي تزن 20-25 جم في غرفة خفيفة يتم التحكم في درجة حرارتها (12/12 ساعة دورة الضوء والظلام ، 22.5 درجة مئوية ± 2.5 درجة مئوية) مع رطوبة 40٪ -60٪.
    ملاحظة: يمكن استخدام كل من الفئران الذكور والإناث لهذا البروتوكول.
  2. السماح للحيوان بحرية الوصول إلى الطعام والماء ، والتأقلم لمدة 1 أسبوع على الأقل قبل بدء التجربة.
    ملاحظة: تم إيواء جميع الحيوانات في مجموعات لاستبعاد متغيرات مثل إجهاد العزل.
  3. قم بتعيين الفئران عشوائيا إلى المجموعة التجريبية أو الضابطة وإجراء تجارب عمياء باستخدام أرقام الحيوانات كرموز.
  4. في يوم تحريض الحرق ، قم بتخدير الفأر عن طريق الحقن داخل الصفاق (i.p) من 300 ميكرولتر من alfaxalone بجرعة 100 مجم / كجم. ارتد ثوبا جراحيا وقفازات وقناعا أثناء إجراء تحريض الحروق.
  5. بعد تخدير الماوس بعمق ، قم بتطهير حول المخلب الخلفي الأيمن باستخدام 70٪ من الإيثانول.
    ملاحظة: تحقق من عدم الاستجابة لتحفيز قرصة المطبقة على أصابع القدم الخلفية أو الذيل لتأكيد حالة التخدير العميق.
  6. ضع مرهما للعيون على العينين لمنع تجفيف القرنية بعد تحريض التخدير.
  7. اغمر المخلب الخلفي الأيمن للماوس المخدر بعمق في الماء الساخن عند 65 درجة مئوية ± 0.5 درجة مئوية لمدة 3 ثوان. ضع علامة على كاحل كل ماوس قبل غمر المخلب الخلفي في الماء الساخن للحفاظ على الاتساق في المنطقة المحروقة.
  8. بعد تحريض الحروق ، أحضر الفئران في قفص منزلي نظيف وضعها على وسادة تدفئة حتى تتعافى الحيوانات من التخدير.
    ملاحظة: تم إعطاء العامل المسكن ، الأسيتامينوفين (200 مجم / كجم) ، داخل الصفاق مرة واحدة يوميا لمدة 7 أيام بدءا من يوم إصابة الحروق (فقط حرق + مجموعة الأسيتامينوفين). تم التعامل مع مجموعة Burn بمحلول ملحي كعنصر تحكم في السيارة. تم إجراء التجربة وفقا للطريقة الموضحة في دراسة سابقة4.

2. قياس ألودينيا الميكانيكية

  1. أحضر الفئران إلى غرفة الاختبار السلوكي واتركها تتأقلم لمدة 30 دقيقة على الأقل قبل الاختبار. ارتد ثوبا جراحيا وقفازات وقناعا أثناء إجراء الاختبار.
  2. ضع الفئران في صندوق مربع (قطره: 13 سم ، ارتفاعه: 12 سم) على أرضية شبكية معدنية (حجم الشبكة: 0.7 سم × 0.7 سم) واتركها تتأقلم لمدة 30 دقيقة على الأقل.
  3. تقييم العتبة الميكانيكية للمخلب الخلفي باستخدام طريقة التحفيز التصاعدي19,20.
  4. كز بلطف سلسلة من خيوط فون فراي مع فترات 5-8 ثانية لتحفيز الأخمص الخلفي. احصل على قيم خط الأساس في اليوم السابق لتحريض الحرق.
    ملاحظة: تم استخدام خيوط فون فراي 0.16-1.2 جم في الاختبار لقياس عتبة سحب المخلب في جميع الحيوانات ، على التوالي. بدأ اختبار استجابة سحب المخلب بأقل قوة انحناء لخيوط فون فراي (0.16 جم في هذا البروتوكول). إذا لم تكن هناك استجابة ، تطبيق خيط بقوة الانحناء التالية.
  5. قم بإجراء خمس تجارب لتقييم العتبات الميكانيكية لكل مخلب خلفي (مصاب).
    ملاحظة: تم التعبير عن قوة الانحناء لخيوط فون فراي التي تنتج استجابة أكثر من ثلاثة أضعاف التجارب الخمس في كل كعتبة انسحاب مخلب (PWT، g). تم قياس العتبات الميكانيكية قبل يوم واحد وفي 1 و 3 و 5 و 7 أيام بعد إصابة الحروق. تم تقييم تأثير مسكن 1 ساعة بعد إعطاء الأسيتامينوفين في الحيوان.

3. تحليل المشية الآلي

  1. تأقلم الفئران في نظام تحليل المشية مرة واحدة يوميا لمدة 10-15 دقيقة من 5 أيام قبل إصابة الحرق. ارتد ثوبا جراحيا وقفازات وقناعا أثناء إجراء تحليل المشي.
  2. في يوم الاختبار ، أحضر الفئران إلى غرفة الاختبار السلوكية وتأقلم معها لمدة 30 دقيقة على الأقل قبل الاختبار.
    ملاحظة: قم بإجراء اختبارات التأقلم وتحليل المشي في بيئة مظلمة. قم بتعيين شروط قائمة البرنامج على النحو التالي.
    1. بعد تشغيل البرنامج ، انقر فوق القائمة إنشاء تجربة جديدة لتعيين المجلد لحفظ البيانات.
    2. بعد التعيين ، اضبط الحد الأقصى لوقت التشغيل على 5 ثوان والحد الأقصى المسموح به لتغيرات السرعة إلى 50٪.
    3. حدد كاميرا مسجلة واضبط طول الممر على 30 سم في علامة التبويب إعداد في البرنامج.
    4. في علامة التبويب اكتساب من قائمة البرنامج، حدد فتح اكتساب.
    5. استنادا إلى رسائل الحالة ، انقر فوق الزر Snap Background للحصول على صورة خلفية لممر فارغ.
  3. انقر فوق الزر " بدء الاستحواذ" ، ثم ضع الماوس عند مدخل الممر القابل للعبور من اليسار إلى اليمين. سيبدأ التسجيل تلقائيا بعد الحركة الحرة للماوس.
    ملاحظة: إذا تم تسجيل مشية الحيوان بنجاح وتم اكتشاف جميع الخطوات، وضع علامة عليها على أنها تشغيل متوافق مع رمز أخضر. إذا لم يكتشف البرنامج أي خطوات ، عرض رمز أحمر ، وفي هذه الحالة يوصى بإجراء التسجيل مرة أخرى. يوصي المؤلفون بجمع وتحليل ما لا يقل عن خمسة عمليات تشغيل متوافقة ناجحة يتم تنفيذها بسرعات تشغيل مماثلة.
  4. في علامة التبويب اكتساب من قائمة البرنامج، حدد تصنيف عمليات التشغيل.
    ملاحظة: بعد تحديد البيانات التي تم الحصول عليها من تشغيل الامتثال الناجح أعلاه، انتقل إلى شاشة تحليل الفيديو حيث تم تسجيل أنماط مشي الفئران.
  5. حدد التشغيل المراد تحليله وانقر فوق الزر تصنيف تلقائي .
  6. بعد إجراء التصنيف التلقائي ، قم بإزالة الأنف والتعرف على الأعضاء التناسلية والتعرف الخاطئ على الكفوف إلى البيانات غير المرغوب فيها في كل تشغيل ، ثم قم بتحليل البيانات.
    ملاحظة: يتم تحليل جميع المعلمات الإحصائية وحفظها تلقائيا في البرنامج، ويمكن العثور على قيم البيانات الخام في قائمة تحليل المجرب. تم إجراء تحليل المشي التلقائي قبل وفي 1 و 3 و 5 و 7 أيام بعد إصابة الحرق. تم إجراء التقييم بعد 30 دقيقة من إعطاء الأسيتامينوفين في مجموعة Burn + Acetaminophen و 30 دقيقة بعد العلاج الملحي في مجموعة Burn. تم إجراء هذه التجربة وفقا للطريقة الموضحة في الدراسات السابقة 4,21,22.

4. قياس السلوك الشبيه بالاكتئاب

ملاحظة: تم قياس السلوك القائم على اليأس ، ووقت الجمود في الماء من خلال اختبار السباحة القسري.

  1. أحضر الفئران إلى غرفة الاختبار السلوكي وتأقلم معها لمدة 30 دقيقة على الأقل قبل الاختبار. ارتد ثوبا جراحيا وقفازات وقناعا أثناء إجراء اختبار السباحة القسري.
  2. ضع الماوس في أسطوانة زجاجية شبكية شفافة (10 سم × 25 سم) تحتوي على 15 سم من الماء (25 درجة مئوية ± 0.5 درجة مئوية) لمدة 15 دقيقة.
  3. بعد 24 ساعة ، ضع الماوس في الأسطوانة من نفس الظروف وقم بقياس وقت الجمود.
    ملاحظة: تم قياس وقت عدم الحركة لمدة 5 دقائق من وقت الاختبار ، وتم تسجيل الوقت الذي توقفت فيه الفئران عن التسلق أو السباحة وطفت فقط للحفاظ على رأسها فوق سطح الماء. تم إجراء اختبار السباحة القسري في اليوم 7 بعد إصابة الحرق. تم إجراء التقييم بعد 1 ساعة من إعطاء الأسيتامينوفين في مجموعة Burn + Acetaminophen ، و 1 ساعة بعد العلاج الملحي في مجموعة Burn. تم إجراء التجربة وفقا للطريقة الموضحة في الدراسات السابقة23,24.

5. قياس الوظيفة الحركية العادية

ملاحظة: تم إجراء اختبار قضيب الروتا للتمييز بين الوظيفة الحركية غير الطبيعية بعد إصابة الحرق.

  1. أحضر الفئران إلى غرفة الاختبار السلوكي وتأقلم معها لمدة 30 دقيقة على الأقل قبل الاختبار. ارتد ثوبا جراحيا وقفازات وقناعا أثناء إجراء اختبار السباحة القسري.
  2. ضع الحيوانات على منصة أسطوانية متداولة (بعرض 5.7 سم ؛ قطر 3 سم) معلقة على ارتفاع 16 سم فوق الجزء السفلي من الجهاز.
  3. اسمح لكل بالتدريب مرة واحدة في اليوم على قضيب روتا لمدة 5 أيام على الأقل قبل تحريض إصابة الحروق.
  4. قم بإجراء اختبار قضيب الروتا كل 20 دقيقة لمدة 2 ساعة بعد تناول الدواء. اضبط وقت القطع على 2 دقيقة.
  5. قم بقياس المدة الزمنية التي يعمل فيها الماوس على قضيب دوار بسرعة ثابتة تبلغ 15 دورة في الدقيقة دون سقوط.
    ملاحظة: تم إجراء اختبار قضيب الروتا بعد 7 أيام من تحريض إصابة الحروق. تم إجراء التقييم مباشرة بعد إعطاء الأسيتامينوفين في مجموعة Burn + Acetaminophen وبعد العلاج الملحي في مجموعة Burn. تم استخدام Alfaxalone كعنصر تحكم إيجابي للأدوية المعالجة تجريبيا في هذا الاختبار. أثناء اختبار الروتارود ، يتم قياس المدة الزمنية التي يعمل فيها الماوس على القضيب الدوار دون السقوط. تم إجراء التجربة وفقا للطريقة الموضحة في الدراسات السابقة22,25.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

النتائج

من أجل تقليل معاناة الحيوانات وتقليل عدد الحيوانات المستخدمة وفقا لإرشادات Three Rs (الاستبدال والتخفيض والصقل) ، تم تصميم هذه الدراسة بأقل عدد ممكن من الحيوانات لجمع البيانات المهمة التي تم إنشاؤها من خلال التجربة الأولية. في هذه الدراسة ، أجريت التجارب السلوكية بشكل مستقل مرتين على النحو ا...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

حرق السمط هو نوع من الحرق الحراري الذي تسببه السوائل الساخنة. وقد اقترح أن حروق الدرجة الأولى أو الثانية تحدث في معظم الحالات ، ولكن الاتصال طويل الأجل مع مصادر الحرارة يمكن أن يسبب حروق من الدرجة الثالثة26. في هذه الدراسة ، تم إحداث إصابة الحروق عن طريق تعريض المخلب الخلفي الأ?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

Acknowledgements

تم دعم هذا البحث من قبل جامعة تشونغنام الوطنية ومنحة المؤسسة الوطنية للبحوث الكورية (NRF) الممولة من حكومة كوريا (NRF-2019R1A6A3A01093963 و NRF-2021R1F1A1062509).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
1 mL syringeBD307809
1.5 mL tubeAxygenMCT-150-C
50 mL tubeSPL50050
Acetaminophen BioXtra, ≥99.0%Sigma-AldrichA7085-100GThis analgesic agent is used as a positive control.
Alfaxan multidose (Alfaxalone)JUROX Pty.LimitedIn this experiment, this material was used for animal anesthesia, and was used as a positive control for experimentally treated drugs in the rota-rod test.
CatWalk automated gait analysis systemNoldusCatWalk XTGait analysis in freely walking rodents is used to study the changes in limb movement and positioning in models with sensory-motor dysfunction
OPTISHIELD (Cyclosporin ophthalmic ointment)Ashish Life ScienceThis material was used for an ointment to prevent corneal drying after induction of anesthesia.
Plexiglass cylinderSCITECH KOREAcustom made productsUsed in forced swimming test
Rota-rod systemSCITECH KOREAAccelerating rota rodUsed in the measurement of Normal Motor Function
von Frey filamentsNorth Coast MedicalNC12775Used in the measurement of Mechanical Allodynia
WaterbathCHANGSHIN SCIENCEC-WBEUsed in the burn injury induction

References

  1. Peck, M. D. Epidemiology of burns throughout the World. Part II: intentional burns in adults. Burns. 38 (5), 630-637 (2012).
  2. Tracy, L. M., Cleland, H. Pain assessment following burn injury in Australia and New Zealand: Variation in practice and its association on in-hospital outcomes. Australasian Emergency Care. 24 (1), 73-79 (2021).
  3. Montgomery, R. K. Pain management in burn injury. Critical Care Nursing Clinics of North America. 16 (1), 39-49 (2004).
  4. Kang, D. W., Choi, J. G. Bee venom reduces burn-induced pain via the suppression of peripheral and central substance P expression in mice. Journal of Veterinary Science. 22 (1), 9(2021).
  5. Abdi, S., Zhou, Y. Management of pain after burn injury. Current Opinion in Anaesthesiology. 15 (5), 563-567 (2002).
  6. Ullrich, P. M., Askay, S. W. Pain, depression, and physical functioning following burn injury. Rehabilitation Psychology. 54 (2), 211-216 (2009).
  7. Patwa, S., Benson, C. A. Spinal cord motor neuron plasticity accompanies second-degree burn injury and chronic pain. Physiological Reports. 7 (23), 14288(2019).
  8. Michaelides, A., Zis, P. Depression, anxiety and acute pain: links and management challenges. Postgraduate Medicine. 131 (7), 438-444 (2019).
  9. Doan, L., Manders, T., Wang, J. Neuroplasticity underlying the comorbidity of pain and depression. Neural Plasticity. 2015, 504691(2015).
  10. Vachon-Presseau, E., Centeno, M. V. The emotional brain as a predictor and amplifier of chronic pain. Journal of Dental Research. 95 (6), 605-612 (2016).
  11. Apkarian, A. V., Baliki, M. N. Predicting transition to chronic pain. Current Opinion in Neurology. 26 (4), 360-367 (2013).
  12. Yin, W., Mei, L. A Central amygdala-ventrolateral periaqueductal gray matter pathway for pain in a mouse model of depression-like behavior. Anesthesiology. 132 (5), 1175-1196 (2020).
  13. Deng, Y. T., Zhao, M. G., Xu, T. J. Gentiopicroside abrogates lipopolysaccharide-induced depressive-like behavior in mice through tryptophan-degrading pathway. Metabolic Brain Disease. 33 (5), 1413-1420 (2018).
  14. Zhang, G. F., Wang, J. Acute single dose of ketamine relieves mechanical allodynia and consequent depression-like behaviors in a rat model. Neuroscience Letters. 631, 7-12 (2016).
  15. Edwards, R. R., Smith, M. T. Symptoms of depression and anxiety as unique predictors of pain-related outcomes following burn injury. Annals of Behavioral Medicine. 34 (3), 313-322 (2007).
  16. Pincus, T., Vlaeyen, J. W. Cognitive-behavioral therapy and psychosocial factors in low back pain: directions for the future. Spine. 27 (5), 133-138 (2002).
  17. Laumet, G., Edralin, J. D. CD3(+) T cells are critical for the resolution of comorbid inflammatory pain and depression-like behavior. Neurobiology of Pain. 7, 100043(2020).
  18. Zimmermann, M. Ethical guidelines for investigations of experimental pain in conscious animals. Pain. 16 (2), 109-110 (1983).
  19. Deuis, J. R., Dvorakova, L. S. Methods used to evaluate pain behaviors in rodents. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 284(2017).
  20. Scholz, J., Broom, D. C. Blocking caspase activity prevents transsynaptic neuronal apoptosis and the loss of inhibition in lamina II of the dorsal horn after peripheral nerve injury. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 25 (32), 7317-7323 (2005).
  21. Kang, D. W., Choi, J. G. Automated gait analysis in mice with chronic constriction injury. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (128), e56402(2017).
  22. Kang, D. W., Moon, J. Y. Antinociceptive profile of levo-tetrahydropalmatine in acute and chronic pain mice models: Role of spinal sigma-1 receptor. Scientific Reports. 6, 37850(2016).
  23. Huang, W., Chen, Z. Piperine potentiates the antidepressant-like effect of trans-resveratrol: involvement of monoaminergic system. Metabolic Brain Disease. 28 (4), 585-595 (2013).
  24. Can, A., Dao, D. T. The mouse forced swim test. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (59), e3638(2012).
  25. Choi, J. G., Kang, S. Y. Antinociceptive effect of Cyperi rhizoma and Corydalis tuber extracts on neuropathic pain in rats. Korean Journal of Physiology & Pharmacology. 16 (6), 387-392 (2012).
  26. Mosby's. Mosby's Dictionary of Medicine, Nursing & Health Professions - Seventh edition, Nursing Standard. 20 (22), RCN Publishing Company Ltd. 36(2006).
  27. Vandeputte, C., Taymans, J. M. Automated quantitative gait analysis in animal models of movement disorders. BMC Neuroscience. 11, 92(2010).
  28. Isvoranu, G., Manole, E. Gait analysis using animal models of peripheral nerve and spinal cord injuries. Biomedicines. 9 (8), 1050(2021).
  29. Yankelevitch-Yahav, R., Franko, M. The forced swim test as a model of depressive-like behavior. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (97), e52587(2015).
  30. Yan, H. C., Cao, X. Behavioral animal models of depression. Neuroscience Bulletin. 26 (4), 327-337 (2010).
  31. Papp, M., Willner, P. An animal model of anhedonia: attenuation of sucrose consumption and place preference conditioning by chronic unpredictable mild stress. Psychopharmacology. 104 (2), 255-259 (1991).
  32. Seminowicz, D. A., Laferriere, A. L. MRI structural brain changes associated with sensory and emotional function in a rat model of long-term neuropathic pain. Neuroimage. 47 (3), 1007-1014 (2009).
  33. Yalcin, I., Barthas, F. Emotional consequences of neuropathic pain: insight from preclinical studies. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 47, 154-164 (2014).
  34. Choi, J. W., Kang, S. Y. Analgesic effect of electroacupuncture on paclitaxel-induced neuropathic pain via spinal opioidergic and adrenergic mechanisms in mice. American Journal of Chinese Medicine. 43 (1), 57-70 (2015).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

175

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved