The authors declare that they have no competing financial interests.

إيواء الحيوانات في منشأة حاجز الممرض الحر. جميع الحيوانات على رعاية الإنسان في الامتثال مع &quot;مبادئ رعاية الحيوان المعملية&quot; التي صاغتها الجمعية الوطنية للأبحاث الطبية &quot;و&quot; دليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية &quot;من قبل الأكاديمية الوطنية للعلوم أعدت ونشرت من قبل الوطني معاهد للصحة (NIH المنشور رقم 86-23، منقحة 1985). تمت الموافقة على جميع التجارب من قبل وزارة التعليم النمساوية والعلوم والثقافة. 1. مستلم إعداد <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الحيوان المتلقي مع حقنة ايم من زيلازين (5 ملغ / كغ من وزن الجسم) والكيتامين (100 ملغ / كغ من وزن الجسم). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة جميع الشعر من منطقة عنق الرحم الجانبية الحيوان وفرك مجال المنطوق ثلاث مرات باستخدام chlorhexdine. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضع الماوس في موقف ضعيف في مجال الجراحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بجانب إجراء شق الجلد من المؤتمر الوطني العراقي الوداجيision إلى انخفاض الفك السفلي الأيمن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وفي وقت لاحق، وحشد بصراحة الحق حبل الوريد الخارجي (EJV) وتقسيم الفروع بين الحروف المركبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ثم تقسيم EJV بين الحروف المركبة مع التأكد من ترك ما يكفي من طول الجذع إلى ايفرت القريبة أنحاء الجسم الكفة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التالي إزالة الفص الأيمن من الغدة تحت الفك السفلي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لمفاغرة وريدية تمرير نهاية القريبة من EJV من خلال الكفة البولي اثيلين وإصلاحه في مقبض الكفة مع المشبك الصغير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة ربطة في نهاية السفينة، ايفرت لمعة على الكفة واصلاحها مع الحرير 8-0 حلقة (الشكل 1A). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المسح الشامل لاحقا عضلة القصية الترقوية الخشائية اليمنى مع الكي ثنائي القطب للوصول إلى الشريان السباتي المشترك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بجانب حشد الشريان السباتي المشترك وقطع السفينة بين الحروف المركبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بجانب حشد الشريان السباتي المشترك وقطع السفينة بين الحروف المركبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تمرير ديسالتل نهاية السفينة من خلال صفعة واصلاحها مع المشبك الشريان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة ربطة في نهاية السفينة ويتمدد التجويف باستخدام dilatators الأوعية الدموية. المقبل، في قياسا على EJV، ايفرت الشريان على الكفة واصلاحها مع حلقة 8-0 الحرير. </li></ol> المشتريات 2. القلب <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الماوس المانحة مع حقنة ايم من زيلازين (5 ملغ / كغ من وزن الجسم) والكيتامين (100 ملغ / كغ من وزن الجسم). ثم إزالة كل الشعر من منطقة البطن من الحيوان. فرك المنطوق وقت الميدانية الثلاثة باستخدام chlorhexdine. مكان المقبل الماوس في موقف ضعيف في مجال المنطوق كما هو موضح سابقا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد شق البطن خط الوسط، سحب الأحشاء مع Q-نصائح إلى اليسار من أجل فضح الوريد الأجوف السفلي (IVC). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضخ 400 ميكرولتر من 1: 4 heparin- حل sodium- في IVC لتنقص معالجة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء بضع الصدر وأضعاف جدار الصدر الأمامي على cranially لكسب لجنة التنسيق الإداريةوفاق سطيف إلى القلب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المقبل، إزالة الغدة الصعترية وجعل التنفيس شقوق في اليسار واليمين الوريد الأجوف العلوي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد ذلك، يروي القلب بطريقة الوراء مع 4 درجات مئوية HTK حل عن طريق القسطرة من قوس الأبهر مع G 27 حقنة على مستوى الفرع العضدي الرأسي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate أدنى وأعلى الوريد الأجوف مع 8-0 الحرير وتقسيمها بشكل أقصى على الحروف المركبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بجوار تقسيم قوس الأبهر في مستوى القسطرة السابق وتشريح مجانا الجذع الرئوي وتقسيمه كما بشكل أقصى حد ممكن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد ذلك، ربط الأوردة الرئوية مع ربط السائبة وتقسيمها بشكل أقصى إلى الحروف المركبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أخيرا، وإزالة القلب من موقع المانحة وتخزينها في 4 درجات مئوية HTK حل (الشكل 1B). </li></ol> 3. زرع <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الكسب غير المشروع في قلب منطقة الرقبة المتلقي في موقف لأسفل الصاعد (الشكل 1C </strong&gt;). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بجانب سحب الجذع الرئوي للقلب خلال بناء الوريد صفعة للمتلقي واصلاحها مع حلقة الحرير (الشكل 1D). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء مفاغرة بين الشريان الأورطي من الكسب غير المشروع والشريان مقلوبة الحيوان المتلقي في نفس الشكل (الشكل 1E). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وفي وقت لاحق، وإزالة المشبك الوريدي أولا، تليها المشبك الشرياني. وإشباعها القلب ويبدأ الضرب في غضون 1-2 دقيقة. خلال ضخه بلل القلب مع الدافئة (35 درجة مئوية) المالحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أخيرا إغلاق الجرح الجراحي مع الغرز 6-0 مستمرة (الشكل 1E). </li></ol> 4. بعد العملية الجراحية العناية، نقطة النهاية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعطاء ما يصل إلى 0.3 مل العادي IP المالحة بعد العمل الجراحي لاستبدال السوائل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الحيوان تحت مصباح الحرارة حتى الاستيقاظ من التخدير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة واحدة مستيقظا، والعودة الحيوان إلى منشأة سكنية حيث يتلقون الغذاء والماء بالمال وبالشهرة أيضا الإعلانية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إلى ميألم nimize خلال 7 أيام بعد الجراحة الأولى بإدارة كاربروفين (4mg / كجم تحت الجلد كل 12 ساعة (الشوري)، بالإضافة إلى إعطاء Buprenorphin (0.1 ملغ / كلغ) الحق بعد العملية كل 12 ساعة لمدة 5 أيام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الحصول على الوزن (ز) من كل أسبوعية الحيوان المتلقي لتقييم للالحصة الغذائية المناسبة. إذا كان هناك دليل أكثر من 10-15٪ فقدان الوزن مقارنة الوزن في جراحة تاريخه، واللامبالاة، أو شل ظهر عازمة جدا، تضحية الحيوان باستخدام استنشاق الأيزوفلورين محطة قبل الوصول إلى نقطة النهاية السريرية. أيضا تضحية الحيوان بعد أن تم رفض القلب. </li></ol>

<ol>
	<li>Brandacher, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tetrahydrobiopterin+compounds+prolong+allograft+survival+independently+of+their+effect+on+nitric+oxide+synthase+activity.">Tetrahydrobiopterin compounds prolong allograft survival independently of their effect on nitric oxide synthase activity.</a> Transplantation. 81, 583-589 (2006).</li><li>Schneeberger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+secretory+leukocyte+protease+inhibitor+(SLPI)+on+ischemia/reperfusion+injury+in+cardiac+transplantation.">The effect of secretory leukocyte protease inhibitor (SLPI) on ischemia/reperfusion injury in cardiac transplantation.</a> Am J Transplant. 8, 773-782 (2008).</li><li>Sucher, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=IDO+and+regulatory+T+cell+support+are+critical+for+cytotoxic+T+lymphocyte-associated+Ag-4+Ig-mediated+long-term+solid+organ+allograft+survival.">IDO and regulatory T cell support are critical for cytotoxic T lymphocyte-associated Ag-4 Ig-mediated long-term solid organ allograft survival.</a> JImmunol. 188, 37-46 (2012).</li><li>Yamashita, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heme+oxygenase-1+is+essential+for+and+promotes+tolerance+to+transplanted+organs.">Heme oxygenase-1 is essential for and promotes tolerance to transplanted organs.</a> FASEB J. 20, 776-778 (2006).</li><li>Kienzl, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proteomic+profiling+of+acute+cardiac+allograft+rejection.">Proteomic profiling of acute cardiac allograft rejection.</a> Transplantation. 88, 553-560 (2009).</li><li>Aurora, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Registry+of+the+International+Society+for+Heart+and+Lung+Transplantation:+tenth+official+pediatric+lung+and+heart/lung+transplantation+report--2007.">Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: tenth official pediatric lung and heart/lung transplantation report--2007.</a> J Heart Lung Transplant. 26, 1223-1228 (2007).</li><li>H&#228;yry, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+allograft+vasculopathy+new+strategies+for+drug+development.">Chronic allograft vasculopathy new strategies for drug development.</a> Transplant Proc. 30, 3989-3990 (1998).</li><li>Hosenpud, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immune+mechanisms+of+cardiac+allograft+vasculopathy+an+update.">Immune mechanisms of cardiac allograft vasculopathy an update.</a> Transpl Immunol. 1, 237-249 (1993).</li><li>Libby, P., Pober, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+rejection.">Chronic rejection.</a> Immunity. 14, 387-397 (2001).</li><li>Kouwenhoven, E. A., de Bruin, R. W., Heemann, U. W., Marquet, R. L., Ijzermans, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Late+graft+dysfunction+after+prolonged+cold+ischemia+of+the+donor+kidney+inhibition+by+cyclosporine.">Late graft dysfunction after prolonged cold ischemia of the donor kidney inhibition by cyclosporine.</a> Transplantation. 68, 1004-1010 (1999).</li><li>Kouwenhoven, E. A., Ijzermans, J. N., de Bruin, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Etiology+and+pathophysiology+of+chronic+transplant+dysfunction.">Etiology and pathophysiology of chronic transplant dysfunction.</a> Transpl Int. 13, 385-401 (2000).</li><li>Chen, Z. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+of+cervical+heterotopic+heart+transplantation+in+mice.">A technique of cervical heterotopic heart transplantation in mice.</a> Transplantation. 52, 1099-1101 (1991).</li><li>Huang, X., Chen, D., Chen, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=[A+modified+model+of+cervical+heterotopic+cardiac+transplantation+for+chronic+rejection+research].">[A modified model of cervical heterotopic cardiac transplantation for chronic rejection research].</a> Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 22, 1508-1510 (2008).</li><li>Hasegawa, T., Visovatti, S. H., Hyman, M. C., Hayasaki, T., Pinsky, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterotopic+vascularized+murine+cardiac+transplantation+to+study+graft+arteriopathy.">Heterotopic vascularized murine cardiac transplantation to study graft arteriopathy.</a> Nat Protoc. 2, 471-480 (2007).</li><li>Wang, C. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Suppression+of+murine+cardiac+allograft+arteriopathy+by+long-term+blockade+of+CD40-CD154+interactions.">Suppression of murine cardiac allograft arteriopathy by long-term blockade of CD40-CD154 interactions.</a> Circulation. 105, 1609-1614 (2002).</li><li>Matsuura, A., Abe, T., Yasuura, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simplified+mouse+cervical+heart+transplantation+using+a+cuff+technique.">Simplified mouse cervical heart transplantation using a cuff technique.</a> Transplantation. 51, 896-898 (1991).</li><li>Tomita, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+technique+of+heterotopic+cervical+heart+transplantation+in+mice.">Improved technique of heterotopic cervical heart transplantation in mice.</a> Transplantation. 64, 1598-1601 (1997).</li><li>Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparative+study+on+suture+versus+cuff+anastomosis+in+mouse+cervical+cardiac+transplant.">A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant.</a> Exp Clin Transplant. 8, 245-249 (2010).</li><li>Corry, R. J., Winn, H. J., Russell, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primarily+vascularized+allografts+of+hearts+in+mice.+The+role+of+H-2D,+H-2K,+and+non-H-2+antigens+in+rejection.">Primarily vascularized allografts of hearts in mice. The role of H-2D, H-2K, and non-H-2 antigens in rejection.</a> Transplantation. 16, 343-350 (1973).</li><li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage.">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li><li>Zimmermann, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Techniques+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat+and+some+studies+of+the+immunologic+responses+to+fully+allogeneic+liver+grafts.">Techniques for orthotopic liver transplantation in the rat and some studies of the immunologic responses to fully allogeneic liver grafts.</a> Transplant Proc. 11, 571-577 (1979).</li><li>Maglione, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Donor+pretreatment+with+tetrahydrobiopterin+saves+pancreatic+isografts+from+ischemia+reperfusion+injury+in+a+mouse+model.">Donor pretreatment with tetrahydrobiopterin saves pancreatic isografts from ischemia reperfusion injury in a mouse model.</a> Am J Transplant. 10, 2231-2240 (2010).</li><li>Heron, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+for+accessory+cervical+heart+transplantation+in+rabbits+and+rats.">A technique for accessory cervical heart transplantation in rabbits and rats.</a> Actapathologica et microbiologica Scandinavica Section A, Pathology. 79, 366-372 (1971).</li></ol>

This study has been supported by grant #207 of the &#8220;Medizinischer Forschungsfond Tirol&#8221;, grant #2010022010 of the &#8220;MUI-START F&#246;rderungsprogramm&#8221; of the Innsbruck Medical University.

رفض المغايرة أوعية دموية ينطوي على مجموعة كبيرة من الخطوات المختلفة التي لا يمكن تقييمها بشكل كاف باستخدام نماذج في المختبر. ظواهر مثل توعية المستفيدين، معالجة المستضد في الأجهزة اللمفاوية الثانوية ولكن أيضا تمايز وتكاثر الخلايا المناعية المختصة هي أفضل تتمي?...

زرع القلب يمثل العلاج المفضل للمرضى الذين يعانون من مختلف أمراض القلب في نهاية المرحلة. أدت التطورات في التقنيات الجراحية والوقاية من الالتهابات أكثر فعالية، ونظم مناعة جديدة في تحسن ملحوظ نتائج زراعة الأعضاء 6. ومع ذلك، فقد بقاء الكسب غير المشروع على المدى الطويل لم تتحسن بشكل صارم على مدى السنوات الماضية 7. استمر الرفض المزمن، وتتميز زرع تصلب الشرايين يشكل عقبة رئيسية أمام الكسب غير المشروع البقاء على المدى الطويل 8-11. نموذج منتبذ زرع القلب في الفئران يوفر أداة مهمة وصالحة للتحليل من خلال آلية مناعية حادة فضلا عن الرفض المزمن 12-15. حتى الآن نموذج زرع الأكثر شيوعا لا يزال البطن زرع قلب فأر باستخدام تقنية خياطة. هو anastomosed الأبهر الصاعد من قلب المانحين لللهو anastomosed bdominal الشريان الأورطي والشريان الرئوي إلى الوريد الأجوف السفلي المستلم. ويستند جزء كبير من صعوبة المجهرية من طراز خياطة على حجم صغير من السفن، والتي تخاط 16،17. على النقيض من النموذج خياطة يتم وضع القلب في منطقة الرقبة من المتلقي حيث هو anastomosed الوريد الوداجي الخارجي إلى الشريان الرئوي والشريان السباتي المشترك الشريان الأورطي من الجهة المانحة. كان المبرر لتطوير عنق الرحم نموذج زرع القلب باستخدام تقنية صفعة لنموذج حيواني، والذي يسمح بتحقيق معدلات نجاح عالية مع مهارات الأساسية المجهرية التي تسمح التطبيق الواسع لهذا النموذج. أهم مزايا هذه الطريقة هي مفاغرة تحدث أقل بكثير مضاعفات مثل النزيف والتجلط المتعلقة بالمقارنة مع النموذج خياطة 18.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Yasargil Clip Mini Permanent 7mm</td>
			<td>Aesculap</td>
			<td>FE720K</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro vessel clip</td>
			<td>S &#38; T</td>
			<td>B1 00396 V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscissor</td>
			<td>FST</td>
			<td>14075-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">Vesseldilatator</td>
			<td rowspan="2">S &#38; T</td>
			<td rowspan="2">D-5a.2 00125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microforceps</td>
			<td>FST</td>
			<td>Dumont 11271- 30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clipapplicator</td>
			<td>S &#38; T</td>
			<td>CAF-4 00072</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microvessel clip</td>
			<td>S &#38; T</td>
			<td>B1 00396 V</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

murine cervical heart transplantation model using a modified cuff technique

<html> نماذج الماوس ذات أهمية خاصة في مجال البحوث منذ طائفة واسعة من الأجسام المضادة وحيدة النسيلة وحددت تجاريا والفطرية هي سلالات خروج المغلوب المتاحة لتنفيذ الآلية في الدراسات المجراة. في حين أن النماذج زرع القلب باستخدام تقنية خياطة وضعت لأول مرة بنجاح على الفئران، تم تحقيق الترجمة إلى ما يعادل الفئران المستخدمة على نطاق واسع على قدم المساواة أبدا بسبب التعقيد التقني الإجراء المجهرية. في المقابل، كانت تقنيات غير خياطة الكفة، وضعت أيضا في البداية في الفئران وتكييفها بنجاح لاستخدامها في الفئران 1-3. هذه التقنية لإعادة التوعي تتضمن خطوتين رئيسيتين I) مشنفة السفينة مستلم عبر صفعة البولي اثيلين. II) سحب السفينة المانحة على سفينة مقلوبة المتلقي سابقا وعقد في مكانه مع ربطة عنق كفافي. وهذا يضمن استمرارية الطبقة البطانية، والوقت قصير ومعدلات التشغيل المباح عالية جدا 4. ر &quot;&gt; استخدام هذه التقنية لمفاغرة وعائية أجرينا أكثر من 1،000 زرع القلب عنق الرحم مع نسبة النجاح الإجمالية 95٪. لتدفق الشرايين الشريان السباتي المشترك وتم anastomosed قوس الأبهر الداني مما أدى إلى الوراء التروية للقلب المزروع. لالتصريف الوريدي كان anastomosed الشريان الرئوي من الكسب غير المشروع مع الوريد الوداجي الخارجي للمتلقي 5. هنا، ونحن نقدم تفاصيل إضافية لهذه التقنية لاستكمال الفيديو.

ويبين الشكل 2 بيانات بقاء تمثيلية من المغايرة القلب من BALB / ج المانحين بعد زرع في MHC متطابقة تماما C57BL / 6 المتلقين. يتم رفض القلوب في يوم 7 ± 1 بعد الزرع. ملامسة إصبع من طعم خيفي زرع هو طريقة حساسة للكشف عن وبالطبع يعتمد وقت رفض طعم خيفي. كل زرع القلب مسانج أجريت في ...

Watch this Scientific Journal Video about Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique at JoVE.com

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

في الفئران عنق الرحم نموذج زرع القلب هو مناسبة تماما لالمناعية فضلا عن دراسات إصابة نقص التروية ضخه. نحن تعديل الإجراء باستخدام تقنية صفعة غير خياطة وتنفيذ أكثر من 1،000 عملية زرع ناجحة مع هذا النهج. هنا، ونحن نقدم تفاصيل إضافية لهذه التقنية لاستكمال الفيديو.

الفئران عنق الرحم القلب زرع نموذج باستخدام أزرار وتقنيات التعديل

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are ...

murine-cervical-heart-transplantation-model-using-modified-cuff

Research

JoVE Journal

Medicine

13.7K Views.  Innsbruck Medical University.  في الفئران عنق الرحم نموذج زرع القلب هو مناسبة تماما لالمناعية فضلا عن دراسات إصابة نقص التروية ضخه. نحن تعديل الإجراء باستخدام تقنية صفعة غير خياطة وتنفيذ أكثر من 1،000 عملية زرع ناجحة مع هذا النهج. هنا،...

Video: Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

Murine Model of Wound Healing

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. Impaired wound healing, which occurs in diabetic patients for example, can lead to severe unfavorable outcomes such as amputation. There is, therefore, an increasing impetus to develop novel agents that promote wound repair. The testing of these has been limited to large animal models such as swine, which are often impractical. Mice represent the ideal preclinical model, as they are economical and amenable to genetic manipulation, which allows for mechanistic investigation. However, wound healing in a mouse is fundamentally different to that of humans as it primarily occurs via contraction. Our murine model overcomes this by incorporating a splint around the wound. By splinting the wound, the repair process is then dependent on epithelialization, cellular proliferation and angiogenesis, which closely mirror the biological processes of human wound healing. Whilst requiring consistency and care, this murine model does not involve complicated surgical techniques and allows for the robust testing of promising agents that may, for example, promote angiogenesis or inhibit inflammation. Furthermore, each mouse acts as its own control as two wounds are prepared, enabling the application of both the test compound and the vehicle control on the same animal. In conclusion, we demonstrate a practical, easy-to-learn, and robust model of wound healing, which is comparable to that of humans.

A murine model of cutaneous wound healing that can be used to assess therapeutic compounds in physiological and pathophysiological settings.

نموذج الفئران من التئام الجروح

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. ...

Murine Heterotopic Heart Transplant Technique

It is now over forty years since this technique was first reported by Corry, Wynn and Russell. Although it took some years for other labs to become proficient in and utilize this technique, it is now widely used by many laboratories around the world. A significant refinement to the original technique was developed and reported in 2001 by Niimi. Described here are the techniques that have evolved over more than a decade in the hands of three surgeons (Plenter, Grazia, Pietra) in our center. These techniques are now being passed on to a younger generation of surgeons and researchers.
Based largely on the Niimi experience, the procedures used have evolved in the fine details - details which we will endeavor to relate here in such a way that others may be able to use this very useful model. Like Niimi, we have found that a video aid to learning is a priceless resource for the beginner.

The manuscript describes the steps required to perform the heterotopic heart transplant in the mouse.

الفئران غيري مكاني القلب زرع تقنية

It is now over forty years since this technique was first reported by Corry, Wynn and Russell. Although it took some years for other labs to become ...

Transplantation of Pulmonary Valve Using a Mouse Model of Heterotopic Heart Transplantation

Tissue engineered heart valves, especially decellularized valves, are starting to gain momentum in clinical use of reconstructive surgery with mixed results. However, the cellular and molecular mechanisms of the neotissue development, valve thickening, and stenosis development are not researched extensively. To answer the above questions, we developed a murine heterotopic heart valve transplantation model. A heart valve was harvested from a valve donor mouse and transplanted to a heart donor mouse. The heart with a new valve was transplanted heterotopically to a recipient mouse. The transplanted heart showed its own heartbeat, independent of the recipient&#8217;s heartbeat. The blood flow was quantified using a high frequency ultrasound system with a pulsed wave Doppler. The flow through the implanted pulmonary valve showed forward flow with minimal regurgitation and the peak flow was close to 100 mm/sec. This murine model of heart valve transplantation is highly versatile, so it can be modified and adapted to provide different hemodynamic environments and/or can be used with various transgenic mice to study neotissue development in a tissue engineered heart valve.

In order to understand the cellular and molecular mechanisms underlying neotissue formation and stenosis development in tissue engineered heart valves, a murine model of heterotopic heart valve transplantation was developed. A pulmonary heart valve was transplanted to recipient using the heterotopic heart transplantation technique.

زرع صمام الرئوي عن طريق نموذج الفأر من غيري مكاني القلب زرع

Tissue engineered heart valves, especially decellularized valves, are starting to gain momentum in clinical use of reconstructive surgery with mixed ...

Murine Corneal Transplantation: A Model to Study the Most Common Form of Solid Organ Transplantation

Corneal transplantation is the most common form of organ transplantation in the United States with between 45,000 and 55,000 procedures performed each year. While several animal models exist for this procedure and mice are the species that is most commonly used. The reasons for using mice are the relative cost of using this species, the existence of many genetically defined strains that allow for the study of immune responses, and the existence of an extensive array of reagents that can be used to further define responses in this species. This model has been used to define factors in the cornea that are responsible for the relative immune privilege status of this tissue that enables corneal allografts to survive acute rejection in the absence of immunosuppressive therapy. It has also been used to define those factors that are most important in rejection of such allografts. Consequently, much of what we know concerning mechanisms of both corneal allograft acceptance and rejection are due to studies using a murine model of corneal transplantation. In addition to describing a model for acute corneal allograft rejection, we also present for the first time a model of late-term corneal allograft rejection.

Mice have been used as a model for studying many forms of transplantation, including corneal transplantation. We describe in this report a murine model for both acute and late-term corneal transplantation.

الفئران زرع القرنية: نموذج لدراسة الشكل الأكثر شيوعا من الصلبة زراعة الأعضاء

Corneal transplantation is the most common form of organ transplantation in the United States with between 45,000 and 55,000 procedures performed each ...

Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice

The heterotopic cervical heart transplantation in mice is a valuable tool in transplant and cardiovascular research. The cuff technique greatly simplifies this model by avoiding challenging suture anastomoses of small vessels thereby reducing warm ischemia time. In comparison to abdominal graft implantation the cervical model is less invasive and the implanted graft is easily accessible for further follow-up examinations. Anastomoses are performed by pulling the ascending aorta of the graft over the cuff with the recipient&#8217;s common carotid artery and by pulling the main pulmonary artery over the cuff with the external jugular vein. Selection of appropriate cuff size and complete mobilization of the vessels are important for successful revascularization. Ischemia-reperfusion (I/R) injury can be minimized by perfusing the graft with a cardioplegic solution and by hypothermia. In this article, we provide technical details for a simplified and improved cuff technique, which should allow surgeons with basic microsurgical skills to perform the procedure with a high success rate.

The cuff technique shortens and facilitates the model of heterotopic cervical heart transplantation in mice by avoiding technically challenging suture anastomoses of small vessels. The technical details shown in this video paper should allow researches to establish this model in their laboratories.

منتبذ عنق الرحم القلب زرع في الفئران

The heterotopic cervical heart transplantation in mice is a valuable tool in transplant and cardiovascular research. The cuff technique greatly simplifies ...

Using the Sleeve Technique in a Mouse Model of Aortic Transplantation - An Instructional Video

Orthotopic aortic transplantation using the sleeve technique reduces injury to the aorta with failure rate of only 10-20%. The time to anastomose the aorta in mice using the sleeve method was short and easy averaging 20 min, permitting studies of iso/allo grafts. The following article describes the aortic transplantation procedure used in our laboratory. The mice were anesthetized with a mixture of 1.5% volume isoflurane and 100% oxygen through a face mask. At this point, the segment of the aorta between the renal arteries and its bifurcation was separated from the vena cava, freely prepared and clampedat the proximal and distal segments with a single silk suture. Prior to the removal of the aorta, a saline solution containing heparin was injected into the inferior vena cava. Then the aorta was cut between the clamps and a saline heparin solution was used to flush the lumen. The sleeve technique with monofilament sutures was used in order to transplant the abdominal aorta in the orthotopic position.

We present an orthotopic aortic transplantation model using the sleeve technique in mice. It is a very rapid anastomosis method, which can be employed in studies of vascular disease.

باستخدام هذه التقنية الأكمام في نموذج ماوس لزرع الابهري-فيديو التعليمية

Orthotopic aortic transplantation using the sleeve technique reduces injury to the aorta with failure rate of only 10-20%. The time to anastomose the ...

Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the availability of the widest range of molecular probes and reagents to perform in vivo as well as in vitro studies. Based on our experience with various murine transplantation models, we developed a heterotopic pancreas transplantation model in mice with the intent to analyze mechanisms underlying severe ischemia reperfusion injury-associated early graft damage. In contrast to previously described techniques using suture techniques, herein we describe a new procedure using a non-suture cuff technique. 
In recent years, we have performed more than 300 pancreas transplantations in mice with an overall success rate of &gt;90%, a success rate never described before in mouse pancreas transplantation. The backbone of this non-suture cuff technique for graft revascularization consists of two major steps: (I) pulling the recipient vessel over a polyethylene/polyamide cuff and fixing it with a circumferential ligature, and (II) placing the donor vessel over the everted recipient vessel and fixing it with a second circumferential ligature. The resultant continuity of the endothelial layer results in less thrombogenic lesions with high patency rates and, finally, high success rates.
In this model, arterial anastomosis is achieved by pulling the abdominal aorta of the donor graft over the everted common carotid artery of the recipient animal. Venous drainage of the graft is achieved by pulling the portal vein of the graft over the everted external jugular vein of the recipient. This manuscript provides details and crucial steps of the organ recovery and organ implantation procedures, which will allow researchers with microsurgical skills to perform the transplantation successfully in their laboratories.

Among abdominal solid organ transplantation, pancreatic grafts are prone to develop severe ischemia reperfusion injury-associated graft damage, leading eventually to early graft loss. This protocol describes a model of murine pancreas transplantation using a non-suture cuff technique, ideally suited for analyzing these early, deleterious damages.

نموذج الماوس لزرع البنكرياس باستخدام تقنية تعديل الكفة

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the ...

A Pre-Clinical Porcine Model of Orthotopic Heart Transplantation

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart failure. Multiple small-animal models of heart transplantation have been used to study the acute and long-term effects of novel therapies. However, few are tested and demonstrated success in clinical trials. It is of critical importance to evaluate new therapies in a clinically relevant large-animal model for efficient and reliable translation of basic studies&#39;&#160;findings. Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and previously used to investigate novel cardioprotective strategies. This procedure focuses on acute ischemia-reperfusion injury and is a reliable method to investigate novel interventions which have been tested and validated in smaller experimental models, such as the murine model. We demonstrate its usefulness in assessing cardiac performance during the early post-transplantation period and other potential possibilities enabled by the model.

Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and utilized to investigate novel cardioprotective strategies.

نموذج بورسين ما قبل السريرية لزراعة القلب التقويمي

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart ...

Murine Cervical Aortic Transplantation Model using a Modified Non-Suture Cuff Technique

With the introduction of powerful immunosuppressive protocols, distinct advances are possible in the prevention and therapy of acute rejection episodes. However, only minor improvement in the long-term results of transplanted solid organs could be observed over the past decades. In this context, chronic allograft vasculopathy (CAV) still represents the leading cause of late organ failure in cardiac, renal and pulmonary transplantation.
Thus far, the underlying pathogenesis of CAV development remains unclear, explaining why effective treatment strategies are presently missing and emphasizing a need for relevant experimental models in order to study the underlying pathophysiology leading to CAV formation. The following protocol describes a murine heterotopic cervical aortic transplantation model using a modified non-suture cuff technique. In this technique, a segment of the thoracic aorta is interpositioned in the right common carotid artery. With the use of the non-suture cuff technique, an easy to learn and reproducible model can be established, minimizing the possible heterogeneity of sutured vascular micro anastomoses.

Here, we present a protocol of heterotopic aortic transplantation in mice using the non-suture cuff technique in a cervical murine model. This model can be used to study the underlying pathology of chronic allograft vasculopathy (CAV) and can help evaluate new therapeutic agents in order to prevent its formation.

نموذج زرع الشريان الاورطي لعنق الرحم من murine باستخدام تقنيه الكفة المعدلة غير الخياطة

With the introduction of powerful immunosuppressive protocols, distinct advances are possible in the prevention and therapy of acute rejection episodes. ...

A Simplified Model for Heterotopic Heart Valve Transplantation in Rodents

There is an urgent clinical need for heart valve replacements that can grow in children. Heart valve transplantation is proposed as a new type of transplant with the potential to deliver durable heart valves capable of somatic growth with no requirement for anticoagulation. However, the immunobiology of heart valve transplants remains unexplored, highlighting the need for animal models to study this new type of transplant. Previous rat models for heterotopic aortic valve transplantation into the abdominal aorta have been described, though they are technically challenging and costly. For addressing this challenge, a renal subcapsular transplant model was developed in rodents as a practical and more straightforward method for studying heart valve transplant immunobiology. In this model, a single aortic valve leaflet is harvested and inserted into the renal subcapsular space. The kidney is easily accessible, and the transplanted tissue is securely contained in a subcapsular space that is well vascularized and can accommodate a variety of tissue sizes. Furthermore, because a single rat can provide three donor aortic leaflets and a single kidney can provide multiple sites for transplanted tissue, fewer rats are required for a given study. Here, the transplantation technique is described, providing a significant step forward in studying the transplant immunology of heart valve transplantation.

This protocol describes a simple and efficient method for the transplantation of aortic valve leaflets under the renal capsule to allow for the study of alloreactivity of heart valves.