وأيد آلية التنمية النظيفة من قبل الكلية الأمريكية للجراحين (ACS) منحة بحثية المقيم. وأيد MSH من معهد كاليفورنيا للطب التجديدي (CIRM) التدريب زميل السريرية منحة TG2-01159. ودعمت MSH، هبل، وMTL من قبل الجمعية الأمريكية لجراحي الوجه والفكين (ASMS) / مؤسسة جراحي الوجه والفكين (أطباء بلا حدود) جائزة منحة بحثية. وأيد هبل من قبل منحة المعاهد الوطنية للصحة R01 GM087609 وهدية من إنغريد لاي وبيل شو تكريما لأنتوني شو. ودعمت هبل وMTL من قبل مختبر Hagey للأطفال الطب التجديدي، ومؤسسة أوك. وأيد MTL من الصندوق غن / أوليفييه.

تمت الموافقة على بروتوكول التالية من قبل لجنة جامعة ستانفورد المؤسسية رعاية الحيوان واستخدام (IACUC) ويتوافق مع جميع المبادئ التوجيهية الأخلاقية المؤسسية فيما يتعلق باستخدام حيوانات التجارب. 1. إنشاء البطن الالتصاقات <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدء تشغيل الماوس على نظام غذائي طعام المضادات الحيوية قبل أسبوع واحد لهذا الإجراء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعقيم الأدوات الجراحية وقبل دافئ الحل الري بالمياه المالحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الماوس باستخدام 2٪ الأيزوفلورين استنشاقه. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام المقص الشعر تليها تطبيق سريع (5-10 ثانية) وكيل مزيل الشعر، إزالة الشعر من الغالبية العظمى من سطح البطن. تماما إزالة عامل مزيل الشعر عن طريق المسح برفق مع الشاش الرطب، واختياريا، عن طريق التغميس بعناية النصف السفلي من الفأرة في الماء الدافئ. تجف تماما والحيوان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضع خطم الحيوان في مخروط الأنف مخدر. أثناء الجراحة بأكملها، ترصد بدقة صمعدل espiratory الحيوان وعاير معدل التدفق مخدر حسب الحاجة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام جهاز الاحتباس الحراري، مثل وسادة التدفئة أو مصباح الاحتباس الحراري، لمنع انخفاض حرارة الجسم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قبل الإستعداد البطن، وتأمين الفأر مع شرائح من الشريط وضعت فوق وتحت البطن لمنع الماوس من التحول أثناء الجراحة. تطهير البطن مع betadine، ثم اتبع مع 70٪ من الإيثانول. تشمل أكبر قدر من مساحة ممكنة في الإعدادية، بما في ذلك الشعر على حواف منطقة حلق. وضع الستارة العقيمة على الماوس. (الشكل 1) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحت الجلد حقن 0.1 ملغم / كغم البوبرينورفين، أو 3 ميكروغرام لمدة 30 ز الماوس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل شق الجلد. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدءا من خط الوسط أسفل البطن، فهم الجلد بالملقط واجراء خفض الضحلة العمودي في الجلد باستخدام مقص حاد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حمل قطع متفوق إلى سيفي الشكل مع مقص. احرص على إدخال فقط الجلد. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كما أن عضلات البطن هي نآه مرئية تغطي الأحشاء، فهم خط الوسط من العضلات مع ملقط وبعناية فائقة وجعل قطع صغير في ذلك باستخدام مقص حاد. تأكد من عدم قطع طريق الخطأ في جهاز البطن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد دخول الفضاء البريتوني مع قطع صغيرة ورؤية الطبقة العضلية سحب بعيدا عن أعضاء البطن، وتمديد خفض متفوق ودون المستوى عن طريق إدراج مقص في افتتاح وقطع بعناية في كلا الاتجاهين. تمديد شق من سيفي الشكل متفوق إلى فوق المثانة دون المستوى. (الشكل 2) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الآن التي تتعرض الأمعاء، حدد موقع الأعور والداخل للظاهر برفق. تجنب استيعاب الأعور مع ملقط مسنن أو حادة. بدلا من ذلك استخدام ملقط ارضحي مثل أدسون ملقط مسنن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كشط الأعور مع الصنفرة. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كشط بلطف على كامل سطح جانبي الأعور مع 100 الصنفرة حصى ل30 - 60 ثانية حتى يصبح السطح أقل لامعة ونمشات appear على السطح. إذا كان الجراح هو اليد اليمنى، فإنه يساعد على توجيه الأعور مع طرف تواجه للحق وثنى الأعور على السبابة اليسرى الجراح. (الشكل 3) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أداء الرملي بلطف، لأنه من السهل أن تسبب بطريق الخطأ ثقب في جدار الأعور رقيقة. يجب أن يرى وهناك كمية صغيرة من رمل كما يتم نقل الصنفرة على طول سطح الأعور. إذا شعرت الصنفرة مرارا وتكرارا على التقاط الأعور، وهذا من المرجح أن يؤدي إلى تمزق في جدار الأعور. مشاهدة بعناية للتأكد من أن جزيئات من ورق زجاج لا طرد ويبقى في البطن، لأن هذا قد يسبب الإفراط في رد فعل جسم غريب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في حالة حدوث تمزق في جدار الأعور، إنهاء إجراءات والموت ببطء الحيوان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إذا تم المنفصمة والأوعية الدموية الأعور بواسطة الصنفرة ويسبب النزيف، واجراء الضغط لمدة تصل إلى دقيقتين مع الشاش. ومع ذلك، إذا استمر النزيف بعد هذا الوقت، ضع الرقم ثمانية و7-0 حيدة الخيط حولدرجة النزيف. هذا سيوقف موثوق النزيف في جميع الحالات تقريبا. الحرص على عدم إدراج كمية كبيرة من جدار الأعور إلى خياطة، لأن ذلك المخاطر تسبب نخر من جانب المعنيين من الجدار. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تجرح جدار البطن الصحيح. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام شريط من ورق زجاج لكشط سطح البريتوني لعضلات جدار البطن الصحيح. أن تكون أكثر عدوانية مع الرملي هنا من التركيز على الأعور وتستمر حتى كامل سطح جدار البطن الصحيح يبدو بخشونة. تجنب الرملي من الصعب جدا أن الجلد هو واضح من خلال الفتحات الموجودة في الطبقة العضلية. (الشكل 4) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام برنامج تشغيل إبرة كاسترو فيجو، تضع بين اثنين وأربعة الرقم ثمانية و4-0 غرز الحرير في الطبقة العضلية لجدار البطن الصحيح. ترك ذيول حوالي 5 ملم طويلة. الحرص على عدم قبض بطريق الخطأ جدار الأمعاء في خياطة الجروح. (الشكل 5) </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام حقنة 10 مل شغل ثاستعد إيث المالحة، لري الأمعاء عدة مرات. توجيه تيار من المياه المالحة في تجويف البطن للري الداخل أيضا. إذا كان السطح تحت الماوس يصبح غارقة، حرك الماوس فوق أو استبدال السطح، من أجل تجنب انخفاض حرارة الجسم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام شاش معقم وضعت على الجرح لامتصاص الري الزائد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خذ قليل من النشا ويرشه على سطح جدار البطن اليمنى على كلا الجانبين من الأعور. (الشكل 6) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تأكد من عدم وجود نزيف نشط. إذا كان هناك استخدام اسفنجة الشاش لممارسة الضغط مباشرة على درجة النزيف حتى يتوقف. إذا لم يتوقف النزيف بسهولة، ضع خياطة مرقئ كما هو موضح أعلاه. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام نهاية حادة من الملقط وإصبع، ودفع بلطف الأمعاء مرة أخرى إلى تجويف البطن. ضع الأعور بجانب الغرز في جدار البطن الصحيح من أجل تحقيق أقصى قدر من تشكيل الالتصاق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Cتفقد شق البطن. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام 6-0 امتصاص خياطة مضفر، وضع غرزة الوقوع في الطبقة العضلية في الجزء العلوي من شق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشغيل خياطة أسفل باتجاه الجزء السفلي من شق، والجمع بين طبقة العضلات. السفر حوالي 3 ملم ويستغرق 3 لدغات ملم مع كل غرزة جديدة. الحرص على عدم اتخاذ قصد لدغة من الأمعاء في حين وضع الغرز. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في الجزء السفلي من شق، وترك حلقة من الخيط من لدغة السابقة، واستخدام هذا لأداة ربط الخيط. قطع الخيط وترك 5 ملم ذيول. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كرر الخطوات الثلاث المذكورة أعلاه مع 6-0 النايلون حيدة خياطة لإغلاق الجلد. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدارة 20 مل / كغ تحت الجلد المالحة بلعة (حوالي 0.5 مل لمدة 30 ز الماوس). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام شاش جافة، يجف تماما الحيوان كله، والفراء ظهري يميل إلى الحصول على الرطب أثناء الري. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فضفاضة التفاف لاصقة خلع الملابس حول البطن لتغطية الجرح. الحرص على عدم تقييد لالساقين نيمال أو الميكانيكا التنفس مع الملابس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ترصد بدقة الحيوان لأنه يتعافى من التخدير. إدارة البوبرينورفين كل 12 ساعة لمدة 2-3 أيام بعد العملية للسيطرة على الألم. </li></ol> 2. حصاد التصاق الأنسجة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الانتظار مدة لا تقل عن سبعة أيام بعد الجراحة الأولية. مرة أخرى، الأوتوكلاف الأدوات الجراحية وتخدير الماوس مع isoflurane. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعقيم البطن مع betadine تليها الايثانول 70٪. حلاقة ويزيل الشعر الشعر إضافية من الجانب الأيمن من البطن بحيث لن تكون مشمولة في عينة التصاق يحتوي الجلد في الشعر، مما يجعل الأنسجة أكثر صعوبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام شق ناصف اليسار، منذ الأمعاء غالبا ما تمسك شق الأصلي. بدءا من النهاية السفلية من البطن، حوالي 5 ملم إلى اليسار من أسفل شق الأصلي، فهم الجلد بالملقط مسننة الصغيرة وقطع في الجلد مع مقص حاد. تمديد هذا خفض متفوقةلاي إلى القفص الصدري. (الشكل 7) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام مقص، وقطع في الطبقة العضلية وبعد دخول الفضاء البريتوني، تمديد خفض إلى أعلى وأسفل من شق. سيكون هناك أنسجة لاصقة تسبب الأعور والأمعاء الدقيقة على التمسك جدار الأيمن من البطن، وربما أيضا إلى شق الأصلي. (الشكل 8) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام مقص والبدء على حافة الجرح، فوق مستوى الأعور، البدء في قطع في جدار البطن في دائرة حول المنطقة حيث الأمعاء هو ملتصقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بالتناوب فوق وتحت مستوى الأعور، وقطع تدريجيا على طول الطريق نحو الالتصاق وإكمال الدائرة، العائد في &quot;الجزيرة&quot; من الجلد والبطن ملتصقة الجدار إلى الأمعاء. (الشكل 9) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة أخرى باستخدام مقص، وقطع في الأمعاء وفصل جزء ملتصقة عن بقية الأمعاء، مما أسفر عن شطيرة من الأنسجة التي تتكون من الجلد وجدار البطنعلى جانب واحد، الأمعاء على الجانب الآخر، والأنسجة لاصقة يربط بين اثنين من بينهما. (الشكل 10) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> اختياريا، واستخدام مقص وأشار إلى فصل حاد في الجلد من العضلات جدار البطن. لالأنسجة النظر في ترك الجلد المرفقة، ولكن للهضم وزنزانة انفرادية الجلد يمكن إزالتها. إذا كان سيتم استخدام الأنسجة لالأنسجة، تأكد من إزالة أكبر قدر ممكن من المواد خياطة ممكن من دون إزعاج بشكل مفرط واجهة لاصقة. للهضم والعزلة خلية من المقبول ترك الغرز في مكان طالما أن الأنسجة التي تمت تصفيتها هضم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد استئصال الأنسجة التصاق، الموت ببطء الماوس باستخدام طريقة إنسانية افقت لجنة استخدام الحيوان المؤسسية الخاص بك. </li></ol>

<ol>
	<li>Ellis, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adhesion-related+hospital+readmissions+after+abdominal+and+pelvic+surgery:+a+retrospective+cohort+study.">Adhesion-related hospital readmissions after abdominal and pelvic surgery: a retrospective cohort study.</a> Lancet. 353 (9163), 1476-1480 (1999).</li><li>Brochhausen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+strategies+and+future+perspectives+for+intraperitoneal+adhesion+prevention.">Current strategies and future perspectives for intraperitoneal adhesion prevention.</a> J Gastrointest Surg. 16 (6), 1256-1274 (2012).</li><li>diZerega, G. S., Campeau, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peritoneal+repair+and+post-surgical+adhesion+formation.">Peritoneal repair and post-surgical adhesion formation.</a> Hum Reprod Update. 7 (6), 547-555 (2001).</li><li>Hellebrekers, B. W., Kooistra, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathogenesis+of+postoperative+adhesion+formation.">Pathogenesis of postoperative adhesion formation.</a> Br J Surg. 98 (11), 1503-1516 (2011).</li><li>Herrick, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+peritoneal+adhesions+are+highly+cellular,+innervated,+and+vascularized.">Human peritoneal adhesions are highly cellular, innervated, and vascularized.</a> J Pathol. 192 (1), 67-72 (2000).</li><li>Beyene, R. T., Kavalukas, S. L., Barbul, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-abdominal+adhesions:+Anatomy,+physiology,+pathophysiology,+and+treatment.">Intra-abdominal adhesions: Anatomy, physiology, pathophysiology, and treatment.</a> Curr Probl Surg. 52 (7), 271-319 (2015).</li><li>ten Broek, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Benefits+and+harms+of+adhesion+barriers+for+abdominal+surgery:+a+systematic+review+and+meta-analysis.">Benefits and harms of adhesion barriers for abdominal surgery: a systematic review and meta-analysis.</a> Lancet. 383 (9911), 48-59 (2014).</li><li>Becker, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+postoperative+abdominal+adhesions+by+a+sodium+hyaluronate-based+bioresorbable+membrane:+a+prospective,+randomized,+double-blind+multicenter+study.">Prevention of postoperative abdominal adhesions by a sodium hyaluronate-based bioresorbable membrane: a prospective, randomized, double-blind multicenter study.</a> J Am Coll Surg. 183 (4), 297-306 (1996).</li><li>Cassidy, M. R., Sherburne, A. C., Heydrick, S. J., Stucchi, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combined+intraoperative+administration+of+a+histone+deacetylase+inhibitor+and+a+neurokinin-1+receptor+antagonist+synergistically+reduces+intra-abdominal+adhesion+formation+in+a+rat+model.">Combined intraoperative administration of a histone deacetylase inhibitor and a neurokinin-1 receptor antagonist synergistically reduces intra-abdominal adhesion formation in a rat model.</a> Surgery. 157 (3), 581-589 (2015).</li><li>Thaler, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coincidence+of+connective+tissue+growth+factor+expression+with+fibrosis+and+angiogenesis+in+postoperative+peritoneal+adhesion+formation.">Coincidence of connective tissue growth factor expression with fibrosis and angiogenesis in postoperative peritoneal adhesion formation.</a> Eur Surg Res. 37 (4), 235-241 (2005).</li><li>Hong, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+macrophage-dependent+peroxisome+proliferator-activated+receptor+gamma+signalling+on+adhesion+formation+after+abdominal+surgery+in+an+experimental+model.">Effects of macrophage-dependent peroxisome proliferator-activated receptor gamma signalling on adhesion formation after abdominal surgery in an experimental model.</a> Br J Surg. 102 (12), 1506-1516 (2015).</li><li>Whang, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+search+of+the+best+peritoneal+adhesion+model:+comparison+of+different+techniques+in+a+rat+model.">In search of the best peritoneal adhesion model: comparison of different techniques in a rat model.</a> J Surg Res. 167 (2), 245-250 (2011).</li><li>Buckenmaier, C. C., Pusateri, A. E., Harris, R. A., Hetz, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+antiadhesive+treatments+using+an+objective+rat+model.">Comparison of antiadhesive treatments using an objective rat model.</a> Am Surg. 65 (3), 274-282 (1999).</li><li>Rajab, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+model+for+the+induction+of+experimental+adhesions.">An improved model for the induction of experimental adhesions.</a> J Invest Surg. 23 (1), 35-39 (2010).</li></ol>

الكتاب تعلن أنه ليس لديهم مصالح مالية المتنافسة.

الخطوات الحاسمة في هذا الإجراء هي: الكشط بدقة الأعور دون التسبب في ثقب، وضع خيوط في جدار البطن، وتطبيق كمية مناسبة من النشا. تنطبق إلا الصنفرة لالأعور، أو لجزء معين صغير من الأمعاء. استخدام واسع من الصنفرة على كميات كبيرة من الأمعاء الدقيقة يميل إلى أن يسبب الشلل اللف...

التصاقات في البطن هي شكل من أشكال ندبا التي تشكل في البطن ردا على الالتهابات، عادة بعد الجراحة أو العدوى داخل البطن. الالتصاقات هي سبب رئيسي من آلام في البطن المزمن والعقم، وهي السبب الأكثر شيوعا لانسداد الأمعاء الدقيقة 1. وجود التصاقات يجعل تنفيذ عملية في البطن الثانية أكثر صعوبة ويزيد من احتمال حدوث مضاعفات 2. وعلى الرغم من سنوات من البحث، والآليات الكامنة وراء تشكيل الالتصاقات لا تزال غير مفهومة. ومن المعروف أن إصابة الأولية لسطح البريتوني يؤدي إلى نضح السوائل الليفين الغني، الذي ثم تشكل الجلطة التي تربط أسطح الأمعاء وجدار البطن معا 3. وفي وقت لاحق، الخلايا الليفية والخلايا الأخرى تهاجر في الفضاء لاصقة وتفرز النسيج الضام 4. وعلى مدى أشهر إلى سنوات التصاق ينضج من خلال تطوير الأوعية الدموية والأعصاب <suع&gt; 5. وتوجد العديد من المنتجات التجارية التي تم تصميمها للحد من تشكيل الالتصاقات بعد عملية جراحية في البطن (على سبيل المثال، Seprafilm). جميع هذه المنتجات تعمل كحواجز الميكانيكية ووقف تشكيل التصاق عن طريق منع الاتصال الجسدي بين حلقات من الأمعاء وجدار البطن 6،7. رغم وجود أدلة من المحاكمة للرقابة التي حاجزا التصاق الجراحية يقلل من تشكيل الالتصاقات 8، العديد من الجراحين الروايات المتناقلة قد أصيب بخيبة أمل مع فعالية المنتجات حاجز الميكانيكية. حاليا لا توجد علاجات مضادة للالتصاق القائم على المخدرات، وهو ما يعكس حقيقة أن العمليات الدقيقة التي تدخل في تشكيل التصاق وغير مفهومة. تطوير العلاج الذي يستهدف على وجه التحديد وكلاء الخلوية أو الجزيئية تشارك في تشكيل الالتصاقات سوف تحتاج إلى فهم أفضل للأحداث التي تشارك في تشكيل الالتصاق. عدة مجموعةحددت الصورة المسارات الجزيئية التي قد تكون مهمة لتكوين الالتصاق 9-11. توفر النماذج الحيوانية بيئة رائعة لدراسة تشكيل الالتصاقات. وقد نشرت العديد من الدراسات التي تصف خلق الجراحي من التصاق في العديد من الحيوانات، ولا سيما في الجرذان والفئران 6،12-14. نظرا تجربتنا مع دراسة تليف في الماوس وتوافر واسعة من الفئران المعدلة وراثيا والأجسام المضادة القائمة على الماوس، اخترنا الماوس كما نموذجنا لدراسة التصاقات. هنا، نحن تقرير تقنية أننا قد وضعت لإنشاء بتكاثر وموثوق التصاقات في البطن في الماوس.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="612">
	<tbody>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">Fisherbrand Absorbent Underpads, 20&#34; x 24&#34;</td>
			<td style="width:136px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:116px;">14-206-62</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Polylined Sterile Field, 18&#34; x 24&#34;</td>
			<td style="width:136px;">Busse Hospital Disposables</td>
			<td style="width:116px;">696</td>
			<td style="width:208px;">Cut a rectangular hole of the appropriate size</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:152px;">Isothesia isoflurane</td>
			<td style="width:136px;">Henry Schein&#160;</td>
			<td style="width:116px;">050033</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4&#34; x 4&#34;</td>
			<td style="width:136px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:116px;">22-415-469</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube</td>
			<td style="width:136px;">Dechra Veterinary Products</td>
			<td style="width:116px;">NDC 17033-211-38</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Nair depilatory cream</td>
			<td style="width:136px;">Church &#38; Dwight Co.</td>
			<td style="width:116px;">22339-05</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">Buprenex buprenorphine&#160; 0.3 mg/mL</td>
			<td style="width:136px;">Reckitt Benckiser Pharmaceuticals Inc.</td>
			<td style="width:116px;">NDC 12496-0757-5</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">1 cc insulin syringe, 27G</td>
			<td style="width:136px;">Becton&#160; Dickinson</td>
			<td style="width:116px;">329412</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Povidone Iodine Prep Solution</td>
			<td style="width:136px;">Medline</td>
			<td style="width:116px;">MDS093944H</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Webcol alcohol prep swabs</td>
			<td style="width:136px;">Covidien</td>
			<td style="width:116px;">6818</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">General-Purpose Labarotory Labeling tape</td>
			<td style="width:136px;">VWR</td>
			<td style="width:116px;">89097-912</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">BioGel PI surgical gloves</td>
			<td style="width:136px;">M&#246;lnlycke Health Care</td>
			<td style="width:116px;">ALA42675Z</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Micro Forceps with teeth</td>
			<td style="width:136px;">Roboz</td>
			<td style="width:116px;">RS-5150</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:152px;">Fine scissors- sharp</td>
			<td style="width:136px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:116px;">14060-09</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Straight serrated forceps</td>
			<td style="width:136px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:116px;">11050-10</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Castro-Viejo needle driver</td>
			<td style="width:136px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:116px;">12565-14</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">100 grit 1/4 sheet sandpaper</td>
			<td style="width:136px;">ACE Hardware</td>
			<td style="width:116px;">1010446</td>
			<td style="width:208px;">Cut into strips</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">4-0 silk suture, 30&#34;, SH needle</td>
			<td style="width:136px;">Ethicon</td>
			<td style="width:116px;">K831</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:152px;">7-0 PDS II absorbable monofilament suture, 30&#34;, BV-1 needle</td>
			<td style="width:136px;">Ethicon</td>
			<td style="width:116px;">Z135</td>
			<td style="width:208px;">Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:152px;">Rice starch</td>
			<td style="width:136px;">MP Biomedicals</td>
			<td style="width:116px;">102955</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">0.9% Sodium Chloride Irrigation</td>
			<td style="width:136px;">Baxter</td>
			<td style="width:116px;">BHL2F7121</td>
			<td style="width:208px;">Warm to 37&#176; C prior to use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:152px;">10 mL syringe</td>
			<td style="width:136px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:116px;">309604</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">6-0 Vicryl absorbable braided suture, 18&#34;, RB-1 taper needle</td>
			<td style="width:136px;">Ethicon</td>
			<td style="width:116px;">J212H</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">6-0 Ethilon nylon monofilament&#160; suture, 18&#34;, P-3 needle,&#160;</td>
			<td style="width:136px;">Ethicon</td>
			<td style="width:116px;">1698G</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:152px;">Tegaderm Transparent Film Dressing Frame Style, 6 cm x 7 cm</td>
			<td style="width:136px;">3M</td>
			<td style="width:116px;">1624W</td>
			<td style="width:208px;">Cut in half lengthwise</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

creation of abdominal adhesions in mice

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or intraabdominal infection. The precise mechanisms underlying adhesion formation are poorly understood. Many compounds and physical barriers have been tested for their ability to prevent adhesions after surgery with varying levels of success. The mouse and rat are important models for the study of abdominal adhesions. Several different techniques for the creation of adhesions in the mouse and rat exist in the literature. Here we describe a protocol utilizing abrasion of the cecum with sandpaper and sutures placed in the right abdominal sidewall. The mouse is anesthetized and the abdomen is prepped. A midline laparotomy is created and the cecum is identified. Sandpaper is used to gently abrade the surface of the cecum. Next, several figure-of-eight sutures are placed into the peritoneum of the right abdominal sidewall. The abdominal cavity is irrigated, a small amount of starch is applied, and the incision is closed. We have found that this technique produces the most consistent adhesions with the lowest mortality rate.

<html> في سبعة أيام بعد الجراحة، والأعور وربما القولون الصاعد، والكبد، وحلقات من الأمعاء الدقيقة ينبغي أن تكون ملتصقة إلى اليمين من جانب وجدار البطن. (الشكل 8) الأنسجة رفعه يمكن أن تكون جزءا لا يتجزأ ومقطوع وسوف تسفر عن الشرائح النسيجية ممتازة....

Watch this Scientific Journal Video about Creation of Abdominal Adhesions in Mice at JoVE.com

Creation of Abdominal Adhesions in Mice

Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

إنشاء البطن التصاقات في الفئران

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or ...

Research

JoVE Journal

Medicine

12.5K Views.  Stanford University School of Medicine. Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

Video: Creation of Abdominal Adhesions in Mice

The C-seal: A Biofragmentable Drain Protecting the Stapled Colorectal Anastomosis from Leakage

Colorectal anastomotic leakage (AL) is a serious complication in colorectal surgery leading to high morbidity and mortality rates1. The incidence of AL varies between 2.5 and 20% 2-5. Over the years, many strategies aimed at lowering the incidence of anastomotic leakage have been examined6, 7. 
The cause of AL is probably multifactorial. Etiological factors include insufficient arterial blood supply, tension on the anastomosis, hematoma and/or infection at the anastomotic site, and co-morbid factors of the patient as diabetes and atherosclerosis8. Furthermore, some anastomoses may be insufficient from the start due to technical failure.
Currently a new device is developed in our institute aimed at protecting the colorectal anastomosis and lowering the incidence of AL. This so called C-seal is a biofragmentable drain, which is stapled to the anastomosis with the circular stapler. It covers the luminal side of the colorectal anastomosis thereby preventing leakage.
The C-seal is a thin-walled tube-like drain, with an approximate diameter of 4 cm and an approximate length of 25 cm (figure 1). It is a tubular device composed of biodegradable polyurethane. Two flaps with adhesive tape are found at one end of the tube. These flaps are used to attach the C-seal to the anvil of the circular stapler, so that after the anastomosis is made the C-seal can be pulled through the anus. The C-seal remains in situ for at least 10 days. Thereafter it will lose strength and will degrade to be secreted from the body together with the gastrointestinal natural contents.
The C-seal does not prevent the formation of dehiscences. However, it prevents extravasation of faeces into the peritoneal cavity. This means that a gap at the anastomotic site does not lead to leakage.
Currently, a phase II study testing the C-seal in 35 patients undergoing (colo-)rectal resection with stapled anastomosis is recruiting. The C-seal can be used in both open procedures as well as laparoscopic procedures. The C-seal is only applied in stapled anastomoses within 15cm from the anal verge. In the video, application of the C-seal is shown in an open extended sigmoid resection in a patient suffering from diverticular disease with a stenotic colon.

The C-seal is a biofragmentable drain protecting the stapled colorectal anastomosis. In this video, details of the manufacturing, deployment and use are shown.

سي الختم : استنزاف Biofragmentable حماية القولون من التحام مدبس التسرب

Colorectal anastomotic leakage (AL) is a serious complication in colorectal surgery leading to high morbidity and mortality rates1. The incidence of AL ...

Thermal Ablation for the Treatment of Abdominal Tumors

Percutaneous thermal ablation is an emerging treatment option for many tumors of the abdomen not amenable to conventional treatments. During a thermal ablation procedure, a thin applicator is guided into the target tumor under imaging guidance. Energy is then applied to the tissue until temperatures rise to cytotoxic levels (50-60 &deg;C). Various energy sources are available to heat biological tissues, including radiofrequency (RF) electrical current, microwaves, laser light and ultrasonic waves. Of these, RF and microwave ablation are most commonly used worldwide.
During RF ablation, alternating electrical current (~500 kHz) produces resistive heating around the interstitial electrode. Skin surface electrodes (ground pads) are used to complete the electrical circuit. RF ablation has been in use for nearly 20 years, with good results for local tumor control, extended survival and low complication rates1,2. Recent studies suggest RF ablation may be a first-line treatment option for small hepatocellular carcinoma and renal-cell carcinoma3-5. However, RF heating is hampered by local blood flow and high electrical impedance tissues (eg, lung, bone, desiccated or charred tissue)6,7. Microwaves may alleviate some of these problems by producing faster, volumetric heating8-10. To create larger or conformal ablations, multiple microwave antennas can be used simultaneously while RF electrodes require sequential operation, which limits their efficiency. Early experiences with microwave systems suggest efficacy and safety similar to, or better than RF devices11-13.
Alternatively, cryoablation freezes the target tissues to lethal levels (-20 to -40 &deg;C). Percutaneous cryoablation has been shown to be effective against RCC and many metastatic tumors, particularly colorectal cancer, in the liver14-16. Cryoablation may also be associated with less post-procedure pain and faster recovery for some indications17. Cryoablation is often contraindicated for primary liver cancer due to underlying coagulopathy and associated bleeding risks frequently seen in cirrhotic patients. In addition, sudden release of tumor cellular contents when the frozen tissue thaws can lead to a potentially serious condition known as cryoshock 16.
Thermal tumor ablation can be performed at open surgery, laparoscopy or using a percutaneous approach. When performed percutaneously, the ablation procedure relies on imaging for diagnosis, planning, applicator guidance, treatment monitoring and follow-up. Ultrasound is the most popular modality for guidance and treatment monitoring worldwide, but computed tomography (CT) and magnetic resonance imaging (MRI) are commonly used as well. Contrast-enhanced CT or MRI are typically employed for diagnosis and follow-up imaging.

A thermal tumor ablation procedure is described. The entire procedure is detailed, including pretreatment planning and imaging studies, anesthesia, adjuvant techniques to facilitate a percutaneous approach, imaging guidance of the ablation device to the tumor, thermal treatment, post-treatment care and follow-up.

تذرية الحرارية لعلاج أورام البطن

Percutaneous thermal ablation is an emerging treatment option for many tumors of the abdomen not amenable to conventional treatments. During a thermal ...

Creation of Reversible Cholestatic Rat Model

Cholestasis is a clinical condition commonly encountered by both surgeons and gastroenterologists. Cholestasis can cause various physiological changes and affect the nutritional status and surgical outcomes. Study of the pathophysiological changes occurring in the liver and other organs is of importance. Various studies have been done in cholestatic rat models.
We used a reversible cholestatic rat model in our recent study looking at the role of methylprednisolone in the ischemia reperfusion injury. Various techniques for creation of a reversible cholestatic model have been described. Creation of a reversible cholestatic rat model can be challenging in view of the smaller size and unique hepatopancreatobiliary anatomy in rats. This video article demonstrates the creation of a reversible cholestatic model.
This model can be used in various studies, such as looking at the changes in nutritional, physiological, pathological, histological and immunological changes in the gastrointestinal tract. This model can also be used to see the effects of cholestasis and various therapeutic interventions on major hepatic surgeries.

Cholestasis is a clinical condition commonly encountered by both surgeons and gastroenterologists. Creation of a reversible cholestatic rat model can be challenging in view of the smaller size and unique hepatopancreatobiliary anatomy in rats. This video article demonstrates the creation of a reversible cholestatic model.

إنشاء عكسية النموذجي الجرذ الركودي

Cholestasis is a clinical condition commonly encountered by both surgeons and gastroenterologists. Cholestasis can cause various physiological changes and ...

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

زراعة كبد في الفئران

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Ascending Aortic Constriction in Rats for Creation of Pressure Overload Cardiac Hypertrophy Model

Ascending aortic constriction is the most common and successful surgical model for creating pressure overload induced cardiac hypertrophy and heart failure. Here, we describe a detailed surgical procedure for creating pressure overload and cardiac hypertrophy in rats by constriction of the ascending aorta using a small metallic clip. After anesthesia, the trachea is intubated by inserting a cannula through a half way incision made between two cartilage rings of trachea. Then a skin incision is made at the level of the second intercostal space on the left chest wall and muscle layers are cleared to locate the ascending portion of aorta. The ascending aorta is constricted to 50&#8211;60% of its original diameter by application of a small sized titanium clip. Following aortic constriction, the second and third ribs are approximated with prolene sutures. The tracheal cannula is removed once spontaneous breathing was re-established. The animal is allowed to recover on the heating pad by gradually lowering anesthesia. The intensity of pressure overload created by constriction of the ascending aorta is determined by recording the pressure gradient using trans-thoracic two dimensional Doppler-echocardiography. Overall this protocol is useful to study the remodeling events and contractile properties of the heart during the gradual onset and progression from compensated cardiac hypertrophy to heart failure stage.

We describe a stepwise procedure for creating pressure overload and left ventricular hypertrophy in Wistar rats by constriction of the ascending aorta using a small metallic clip. This model is extensively used for studying remodeling changes during cardiac hypertrophy and for identifying and evaluating strategies for regression of such changes.

تصاعدي الأورطي انقباض في الفئران لخلق الضغط الزائد تضخم القلب النموذجي

Ascending aortic constriction is the most common and successful surgical model for creating pressure overload induced cardiac hypertrophy and heart ...

Carotid Artery Infusions for Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Analysis of Taxanes in Mice

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study model. As the use of mouse models are often a vital step in preclinical drug discovery and drug development1-8, it is necessary to design a system to introduce drugs into mice in a uniform, reproducible manner. Ideally, the system should permit the collection of blood samples at regular intervals over a set time course. The ability to measure drug concentrations by mass-spectrometry, has allowed investigators to follow the changes in plasma drug levels over time in individual mice1, 9, 10. In this study, paclitaxel was introduced into transgenic mice as a continuous arterial infusion over three hours, while blood samples were simultaneously taken by retro-orbital bleeds at set time points. Carotid artery infusions are a potential alternative to jugular vein infusions, when factors such as mammary tumors or other obstructions make jugular infusions impractical. Using this technique, paclitaxel concentrations in plasma and tissue achieved similar levels as compared to jugular infusion. In this tutorial, we will demonstrate how to successfully catheterize the carotid artery by preparing an optimized catheter for the individual mouse model, then show how to insert and secure the catheter into the mouse carotid artery, thread the end of the catheter out through the back of the mouse&#8217;s neck, and hook the mouse to a pump to deliver a controlled rate of drug influx. Multiple low volume retro-orbital bleeds allow for analysis of plasma drug concentrations over time.

This method was developed with the goal of delivering a steady drug solution via the carotid artery, to assess the pharmacokinetics of novel drugs in mouse models.

الحقن الشريان السباتي لوأضافا الدوائية وتحليل Taxanes في الفئران

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study ...

A Model of Cardiac Remodeling Through Constriction of the Abdominal Aorta in Rats

Heart failure is one of the leading causes of death worldwide. It is a complex clinical syndromethat includes fatigue, dyspnea, exercise intolerance, and fluid retention. Changes in myocardial structure, electrical conduction, and energy metabolism develop with heart failure, leading to contractile dysfunction, increased risk of arrhythmias, and sudden death. Hypertensive heart disease is one of the key contributing factors of cardiac remodeling associated with heart failure. The most commonly-used animal model mimicking hypertensive heart disease is created via surgical interventions, such as by narrowing the aorta. Abdominal aortic constriction is a useful experimental technique to induce a pressure overload, which leads to heart failure. The surgery can be easily performed, without the need for chest opening or mechanical ventilation. Abdominal aortic constriction-induced cardiac pathology progresses gradually, making this model relevant to clinical hypertensive heart failure. Cardiac injury and remodeling can be observed 10 weeks after the surgery. The method described here provides a simple and effective approach to produce a hypertensive heart disease animal model that is suitable for studying disease mechanisms and for testing novel therapeutics.

A rat model of abdominal aortic constriction that induces cardiac hypertrophy and remodeling is described. An efficient, highly-reproducible, and minimally-invasive method is used to provide a simple yet useful platform for research in myocardial hypertrophy and dysfunction.

نموذج من القلب إعادة عرض من خلال انقباض البطن الأورطي في الجرذان

Heart failure is one of the leading causes of death worldwide. It is a complex clinical syndromethat includes fatigue, dyspnea, exercise intolerance, and ...

Creation of a Rodent Model of Abdominal Aortic Aneurysm by Blocking Adventitial Vasa Vasorum Perfusion

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic aneurysms (AAAs). This article introduces and describes a standard protocol used to induce AAAs through adventitial VV hypoperfusion created with a combination of polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the infrarenal abdominal aorta.
The protocol involves the use of male rats weighing 300-400 g, which are provided food and water ad libitum. After laparotomy with a ventral midline abdominal incision, exfoliation of the aorta is performed, which blocks blood flow from the perivascular tissue. Aortotomy involving a small incision adjacent to the renal artery branches is performed, and a polyurethane catheter is inserted using an 18-gauge indwelling needle. After repairing the incision, tight ligation of the aorta over the catheter blocks VV blood flow from the proximal direction through the aortic wall without disturbing the aortic blood flow. This technique can induce an AAA with progressive aortic dilatation.
The greatest benefit of this model is that VV hypoperfusion causes tissue hypoxia and the development of an infrarenal AAA, which has morphological and pathological characteristics similar to those of a human AAA.

Polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the aorta induce chronic hypoxia due to hypoperfusion of the adventitial vasa vasorum. This article describes a novel animal model of abdominal aortic aneurysm (AAA) with characteristics similar to those of AAA in humans.

إنشاء نموذج القوارض من الابهر البطني عن طريق حظر أدفينتيتيال Vasa Vasorum التروية

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic ...

Balloon-based Injury to Induce Myointimal Hyperplasia in the Mouse Abdominal Aorta

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine balloon denudation model, which is comparable with established vessel injury models in large animals. The aorta denudation model with balloon catheters mimics the clinical setting and leads to comparable pathobiological and physiological changes. Briefly, after performing a horizontal incision in the aorta abdominalis, a balloon catheter will be inserted into the vessel, inflated, and introduced retrogradely. Inflation of the balloon will lead to intima injury and overdistension of the vessel. After removing the catheter, the aortic incision will be closed with single stiches. The model shown in this article is reproducible, easy to perform, and can be established quickly and reliably. It is especially suitable for evaluating expensive experimental therapeutic agents, which can be applied in an economical fashion. By using different knockout-mouse strains, the impact of different genes on MH development can be assessed.

This article demonstrates a murine model to study the development of myointimal hyperplasia (MH) after aortic balloon injury.

إصابة القائم على البالون لحمل ميوينتيمال تضخم في الشريان الاورطي البطني الماوس

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine ...

Creation of Colonic Anastomosis in Mice

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of colonic surgeries and can occur in up to 26% of surgical anastomoses, with mortality being up to 39% for patients with such a leak. Currently, there remains a paucity of data detailing the cellular mechanisms of anastomotic healing. Devising preventative strategies and treatment modalities for anastomotic leak could be greatly potentiated by a better understanding of appropriate anastomotic healing.
A murine model is ideal as previous studies have shown that the murine anastomosis is the most clinically similar to the human case as compared with other animal models. We offer an easily reproducible murine model of colonic anastomosis in mice that will allow for further illustration of anastomotic healing.

Anastomotic leak or breakdown after surgery is a major cause of postoperative morbidity and mortality. Our surgery for creating a colonic anastomosis is a reliable and reproducible method for studying the healing mechanisms of anastomoses.

إنشاء ملامسة Colonic في الفئران

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of ...