CDM נתמכה על ידי איגוד המנתחים האמריקאי (ACS) מלגת מחקר תושב. MSH נתמכה על ידי המכון בקליפורניה רפואה רגנרטיבית (CIRM) מענק הכשרה עמית קליני TG2-01159. MSH, פורמייקה, ו MTL נתמכו על ידי האגודה האמריקנית של ולסת המנתחים (Asms) / ולסתות קרן המנתחים (MSF) מענק מחקר פרס. HPL נתמכה על ידי מענק NIH R01 GM087609 ואת מתנת אינגריד Lai וביל שו לכבוד אנתוני שו. HPL ו MTL נתמכו על ידי המעבדה Hagey עבור רפואה רגנרטיבית Pediatric וקרן אלון. MTL נתמכה על ידי קרן גאן / אוליבייה.

הפרוטוקול הבא אושר על ידי הטיפול בבעלי החיים מוסדי אונ&#39; סטנפורד ועדת שימוש (IACUC) ואת עומד בכל ההנחיות האתיות המוסדיות לגבי השימוש בבעלי חיים למחקר. 1. יצירת הידבקויות בטן <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את העכבר על דיאטה צ&#39;או אנטיביוטי שבוע לפני ההליך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חיטוי מכשירי ניתוח טרום חם פתרון ההשקיה המלוחה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את העכבר באמצעות 2% isoflurane בשאיפה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות גוזז שיער ואחריו יישום מהיר (5 - 10 שניות) של סוכן מקריח, להסיר את השיער מן הרוב של פני השטח של הבטן. ביסודיות להסיר את סוכן המקריח ידי מנגב בעדינות עם גזה רטובה, לחלופין, על ידי הטבילה בעיון את החצי התחתון של העכבר לתוך מים חמים. ביסודיות לייבש את החיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את האף של בעל החיים לתוך חרטומו הרדמה. במהלך הניתוח כולו, בזהירות לפקח על rשיעור espiratory של החיה לכייל את קצב זרימת ההרדמה כנדרש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש במכשיר התחממות, כגון כרית חימום או מנורת חימום, כדי למנוע היפותרמיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני prepping הבטן, לאבטח את העכבר עם רצועות של סרט להציב מעל ומתחת הבטן כדי למנוע את העכבר מן הסטה במהלך הניתוח. לחטא את הבטן עם בבטאדין, ולאחר מכן פעל עם 70% אתנול. כלול כמו הרבה שטח ככל האפשר הכנה, כולל השיער על הקצוות של האזור המגולח. מניחים וילון סטרילי על העכבר. (איור 1) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תת עורי להזריק 0.1 מ&quot;ג / ק&quot;ג עצירות, או 3 מיקרוגרם עבור עכבר 30 גרם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפוך את החתך בעור. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל קו אמצע הבטן התחתון, לתפוס את העור עם מלקחיים ולעשות חתך אנכי רדוד בעור באמצעות מספריים חדים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Carry הקיצוץ superiorly אל xyphoid עם המספריים. תשמור על עצמך כדי להזין רק את העור. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ככל השרירים בבטן הוא now גלוי מכסה את הקרביים, לתפוס את קו האמצע של השרירים עם מלקחיים ובזהירות מאוד לעשות חתך קטן לתוכו באמצעות מספריים חדים. ודא שלא לחתוך בטעות לתוך איבר בטן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר הזנת שטח הצפק עם חתך קטן רואה את השכבה השרירית להתרחק אברי בטן, להאריך את החתך superiorly ו inferiorly על ידי החדרה המספרית לתוך הפתח והחיתוך בזהירות בשני הכיוונים. הרחב את החתך מן xyphoid superiorly אל מעל השלפוחית ​​inferiorly. (איור 2) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עכשיו כי קרבים נחשפים, לאתר את cecum בעדינות exteriorize זה. הימנע לתפוס את cecum עם מלקחי שיניים או חדים. במקום להשתמש במלקחיים atraumatic כגון מלקחיים משוננים Adson. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגרד את cecum עם נייר זכוכית. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות לגרד את פני השטח של שני הצדדים של cecum עם 100 נייר זכוכית חצץ עבור 30 - 60 שניות עד פני השטח הופך פחות appea מבריק petechiaer על פני השטח. אם המנתח הוא ימני, זה עוזר לכוון את cecum עם הקצה מול ימינה לעטוף את cecum על אצבע המורה השמאלית של המנתח. (איור 3) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בצע את המלטש בעדינות, כפי שהוא קל לגרום ניקוב בטעות של קיר cecal הדק. כמות קטנה של חוליות אמורה להרגיש כמו הנייר הזכוכית מועברת על פני שטח cecal. אם נייר זכוכית מורגשת לתפוס שוב ושוב על cecum, זה צפוי להביא דמעה בקיר cecal. צפה בקפידה על מנת להבטיח כי חלקיקים של נייר זכוכית לא לעקור ולהישאר בבטן, מכיוון שהדבר עלול לגרום לתגובה גוף זר מוגזמת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם דמעה בקיר cecal מתרחשת, לסיים את ההליך להרדימו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם כלי דם cecal הוא טעון על ידי נייר הזכוכית וגורמים לדימום, להחזיק לחץ עד שתי דקות עם גזה. עם זאת, אם הדימום נמשך אחרי הפעם, במקום תפר הספרה שמונה 7-0 monofilament סביבנקודת הדימום. זה יעצור את הדימום באופן מהימן כמעט בכל המקרים. יש להיזהר שלא לשלב כמות גדולה של קיר cecal לתוך התפר, כמו זה סיכוני גרימת נימק של חלק המעורב של הקיר. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפצוע את דפנות בטן התקינות. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש ברב של נייר זכוכית כדי לגרד את פני השטח הצפק של השריר של דפנות בטן התקינות. להיות יותר אגרסיביים עם מלטש כאן מאשר על cecum ולהמשיך עד פני השטח של דפנות תקין בטן מופיע מחוסל. הימנע מלטש כל כך קשה כי העור גלוי דרך פתחים בשכבת השרירים. (איור 4) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש נהג מחט קסטרו-Viejo, למקם בין שתיים לארבע הספרה שמונה 4-0 תפרים משי לתוך שכבת השרירים של דפנות בטן תקין. השאר את הזנבות באורך 5 מ&quot;מ. יש להיזהר שלא לתפוס מעי קיר בטעות לתוך התפר. (איור 5) </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות מזרק 10 מ&quot;ל מלא wה- i חמם מלוח, להשקות את המעיים כמה פעמים. כוון את הזרם של מי מלח לתוך חלל הבטן כדי להשקות את פן גם כן. אם השטח מתחת העכבר הופך ספוג, להזיז את העכבר מעל או להחליף את השטח, כדי למנוע היפותרמיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש גזה סטרילי להציב על החתך כדי לספוג השקיה עודפת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קח קמצוץ של עמילן ומפזר אותו על פני השטח של הדפנות התקינים בטן על שני הצדדים של cecum. (איור 6) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא כי אין דימום פעיל. אם יש, להשתמש בספוג גזה להפעיל לחץ ישיר על נקודת הדימום עד שייעצר. אם הדימום לא נעצר בקלות, למקם תפר עוצר דמום כמתואר לעיל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש בקצה הקהה של מלקחי אצבע, בעדינות לדחוף את המעיים בחזרה לתוך חלל הבטן. מקם את cecum ליד התפרים בתוך דפנות הבטן הנכונות על מנת למקסם את היווצרות הידבקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Cלאבד את החתך בבטן. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות 6-0 תפר קלוע נספג, במקום תפר רץ לתוך השכבה השרירית בראש החתך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את התפר למטה לכיוון חלק התחתון של החתך, וקירוב השכבה השרירית. מסעות בכ -3 מ&quot;מימ ולקחת 3 ביסים מ&quot;מ עם כל תפר חדש. תשמור על עצמך לא לקחת בטעות ביס של מעי תוך שימת תפרים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בתחתית החתך, לעזוב לולאה של תפר מהנשיכה הקודמת ולהשתמש זה מכשיר לקשור התפר. חותך את התפר עוזב 5 מ&quot;מ זנבות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלושת השלבים לעיל עם תפר 6-0 ניילון monofilament כדי לסגור את העור. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנהל 20 מ&quot;ל / בולוס מלוחים תת עורית ק&quot;ג (בערך 0.5 מ&quot;ל עבור עכבר 30 גרם). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות גזה יבשה, לייבש את החיה כולה ביסודיות, כמו הפרווה הגבה נוטה להירטב במהלך השקיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> רופף לעטוף דבק ההלבשה סביב הבטן כדי לכסות את החתך. יש להיזהר שלא להגביל אהרגליים או מכניקת נשימה של nimal עם הרוטב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בזהירות לפקח על בעלי החיים כפי שהוא מתאושש מן ההרדמה. נהל עצירות כל 12 שעות במשך 2-3 ימים לאחר ההליך לשליטה בכאב. </li></ol> 2. רקמות קציר הדבקה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חכה לפחות שבעה ימים לאחר הניתוח הראשוני. שוב, חיטוי מכשירי ניתוח להרדים את העכבר עם isoflurane. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעקר את הבטן עם בבטאדין ואחריו אתנול 70%. להתגלח את שער שיער נוסף מהצד הימני של הבטן, כך דגימת ההידבקות המכילה עור לא תהיה מכוסית בשיער, מה שהופך היסטולוגיה יותר קשה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש חתך paramedian עזב, מאז מעי לעתים קרובות דבוק החתך המקורי. החל בקצה התחתון של הבטן, כ -5 מ&quot;מימ מהשמאל בתחתית החתך המקורי, לתפוס את העור עם מלקחיים קטנים שיניים וחותכים את העור עם מספריים חדים. הרחב זה לחתוך מעולהly אל בית החזה. (איור 7) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מספריים, לחתוך לתוך שכבת השרירים ואחרי הכניסה למקום הצפק, להאריך את לחתוך את החלק העליון והתחתון של החתך. תהיינה רקמות דבקות בגרימת cecum ואת המעי דק לדבוק דפנות ימין של הבטן ואולי גם החתך המקורי. (איור 8) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מספריים והחל מ קצה של החתך, מעל לרמה של cecum, להתחיל לחתוך לתוך דופן הבטן במעגל מסביב לאזור שבו המעי הוא חסיד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לסירוגין מעל ומתחת לרמה של cecum, בהדרגה לחתוך את כל הדרך סביב ההידבקות לסגור את המעגל, מניב &quot;אי&quot; של עור חסיד דופן בטן אל המעי. (איור 9) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שוב באמצעות מספריים, לחתוך לתוך המעי ולהפריד החלק חסיד משאר המעי, מניב כריך של רקמות שמורכבת העור דופן הבטןמצד אחד, מעי בצד השני, ורקמות דבקות מחבר בין שני שביניהם. (איור 10) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחלופין, להשתמש במספריים מחודדים כדי להפריד את העור בצורה חדה מן השריר בדופן בטן. עבור היסטולוגיה לשקול לעזוב את העור המצורף, אבל לבידוד עיכול תא העור ניתן להסיר. אם הרקמה ישמש היסטולוגיה, הקפד להסיר חומר תפר ככל האפשר מבלי להפריע ממשק דבק יתר על המידה. לעיכול לצינוק מקובל להשאיר את התפרים במקום כל עוד הרקמה לעכל מסונן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר מוציא רקמות הידבקות, להרדים את העכבר באמצעות שיטה הומנית שאושרה על ידי ועדת השימוש בבעלי חיים המוסדית שלך. </li></ol>

<ol>
	<li>Ellis, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adhesion-related+hospital+readmissions+after+abdominal+and+pelvic+surgery:+a+retrospective+cohort+study.">Adhesion-related hospital readmissions after abdominal and pelvic surgery: a retrospective cohort study.</a> Lancet. 353 (9163), 1476-1480 (1999).</li><li>Brochhausen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+strategies+and+future+perspectives+for+intraperitoneal+adhesion+prevention.">Current strategies and future perspectives for intraperitoneal adhesion prevention.</a> J Gastrointest Surg. 16 (6), 1256-1274 (2012).</li><li>diZerega, G. S., Campeau, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peritoneal+repair+and+post-surgical+adhesion+formation.">Peritoneal repair and post-surgical adhesion formation.</a> Hum Reprod Update. 7 (6), 547-555 (2001).</li><li>Hellebrekers, B. W., Kooistra, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathogenesis+of+postoperative+adhesion+formation.">Pathogenesis of postoperative adhesion formation.</a> Br J Surg. 98 (11), 1503-1516 (2011).</li><li>Herrick, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+peritoneal+adhesions+are+highly+cellular,+innervated,+and+vascularized.">Human peritoneal adhesions are highly cellular, innervated, and vascularized.</a> J Pathol. 192 (1), 67-72 (2000).</li><li>Beyene, R. T., Kavalukas, S. L., Barbul, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-abdominal+adhesions:+Anatomy,+physiology,+pathophysiology,+and+treatment.">Intra-abdominal adhesions: Anatomy, physiology, pathophysiology, and treatment.</a> Curr Probl Surg. 52 (7), 271-319 (2015).</li><li>ten Broek, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Benefits+and+harms+of+adhesion+barriers+for+abdominal+surgery:+a+systematic+review+and+meta-analysis.">Benefits and harms of adhesion barriers for abdominal surgery: a systematic review and meta-analysis.</a> Lancet. 383 (9911), 48-59 (2014).</li><li>Becker, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+postoperative+abdominal+adhesions+by+a+sodium+hyaluronate-based+bioresorbable+membrane:+a+prospective,+randomized,+double-blind+multicenter+study.">Prevention of postoperative abdominal adhesions by a sodium hyaluronate-based bioresorbable membrane: a prospective, randomized, double-blind multicenter study.</a> J Am Coll Surg. 183 (4), 297-306 (1996).</li><li>Cassidy, M. R., Sherburne, A. C., Heydrick, S. J., Stucchi, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combined+intraoperative+administration+of+a+histone+deacetylase+inhibitor+and+a+neurokinin-1+receptor+antagonist+synergistically+reduces+intra-abdominal+adhesion+formation+in+a+rat+model.">Combined intraoperative administration of a histone deacetylase inhibitor and a neurokinin-1 receptor antagonist synergistically reduces intra-abdominal adhesion formation in a rat model.</a> Surgery. 157 (3), 581-589 (2015).</li><li>Thaler, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coincidence+of+connective+tissue+growth+factor+expression+with+fibrosis+and+angiogenesis+in+postoperative+peritoneal+adhesion+formation.">Coincidence of connective tissue growth factor expression with fibrosis and angiogenesis in postoperative peritoneal adhesion formation.</a> Eur Surg Res. 37 (4), 235-241 (2005).</li><li>Hong, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+macrophage-dependent+peroxisome+proliferator-activated+receptor+gamma+signalling+on+adhesion+formation+after+abdominal+surgery+in+an+experimental+model.">Effects of macrophage-dependent peroxisome proliferator-activated receptor gamma signalling on adhesion formation after abdominal surgery in an experimental model.</a> Br J Surg. 102 (12), 1506-1516 (2015).</li><li>Whang, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+search+of+the+best+peritoneal+adhesion+model:+comparison+of+different+techniques+in+a+rat+model.">In search of the best peritoneal adhesion model: comparison of different techniques in a rat model.</a> J Surg Res. 167 (2), 245-250 (2011).</li><li>Buckenmaier, C. C., Pusateri, A. E., Harris, R. A., Hetz, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+antiadhesive+treatments+using+an+objective+rat+model.">Comparison of antiadhesive treatments using an objective rat model.</a> Am Surg. 65 (3), 274-282 (1999).</li><li>Rajab, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+model+for+the+induction+of+experimental+adhesions.">An improved model for the induction of experimental adhesions.</a> J Invest Surg. 23 (1), 35-39 (2010).</li></ol>

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

השלבים הקריטיים בהליך זה הם: ביסודיות ששרטו את cecum מבלי לגרום ניקוב, צבת תפרים בתוך דפנות הבטן, וליישם את הכמות הנכונה של עמילן. רק להחיל נייר זכוכית אל cecum, או לחלק מסוים קטן של המעי. שימוש רחב של נייר זכוכית על כמויות גדולות של מעי דק נוטה לגרום ileus משמעותי. תשמור על עצמ?...

הידבקויות בטן הן סוג של רקמה צלקתית היוצרות בבטן בתגובה לדלקת, בדרך כלל לאחר ניתוח או זיהום intraabdominal. הידבקויות הם גורם עיקרי של כאבי בטן כרוניים פוריות, והם הגורם השכיח ביותר של חסימה קטן מעי 1. הנוכחות של הידבקויות ומאפשרת לבצע פעולת בטן שנייה קשה יותר ומגדילה את הסיכון לסיבוכים 2. למרות שנים של מחקר, המנגנונים להיווצרות הידבקויות להישאר ממעטים להבין. זה ידוע כי פגיעה ראשונית אל פני שטח הצפק גורמת דיות של נוזל הפיברין-עשיר, אשר לאחר מכן יוצר קריש שקושר את פני השטח של מעי ואת דופן הבטן יחד 3. מאוחר יותר, פיברובלסטים ותאים אחרים נודדים לחלל דבק ומפרישי רקמת חיבור 4. במהלך חודשים ארוכים ואף שנתי ההידבקות מתבגרת על ידי פיתוח כלי דם ועצבים <sup&gt; 5. מוצרים מסחריים קיימים מספר אשר נועדו להפחית את היווצרות הידבקויות לאחר ניתוח בטן (למשל, Seprafilm). כל המוצרים הללו לשמש מחסומים מכניים לעצור היווצרות הידבקות על ידי מניעת מגע פיזי בין לולאות של המעי ואת 6,7 דופן הבטן. למרות ראיות מניסוי מבוקר מחסום הידבקות כירורגית מפחית את היווצרות של הידבקויות 8, רבים המנתחים כאנקדוטה התאכזבו עם האפקטיביות של מוצרי מחסום מכני. כיום אין טיפולים אנטי הידבקות מבוססת תרופה, אשר משקף את העובדה כי התהליכים המדויקים המעורבים ביצירת הדבקה הם הבינו היטב. פיתוח טיפול שמתמקד במיוחד סוכנים הסלולר או המולקולריים המעורבים ביצירת הידבקויות ידרוש הבנה טובה יותר של האירועים שבהם מעורבים היווצרות של הידבקות. בקבוצה קיים מספרהים זיהה מסלולים מולקולריים כי עשוי להיות חשוב עבור היווצרות הידבקות 9-11. במודלים של בעלי חיים לספק סביבה מעולה עבור חקר היווצרות הידבקויות. מחקרים רבים פורסמו המתאר ויצירה כירורגית של הידבקות בכמה חיות, בפרט חולדה ועכבר 6,12-14. בהינתן הניסיון שלנו עם לומד פיברוזיס העכבר ואת הזמינות הרחבה של עכברים טרנסגניים ונוגדנים מבוססי עכבר, בחרנו את העכבר כמודל שלנו לחקר הידבקויות. בזאת, אנו מדווחים על טכניקה שפיתחנו כדי reproducibly ומהימנה ליצור הידבקויות בטן בתוך העכבר.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="612">
	<tbody>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">Fisherbrand Absorbent Underpads, 20&#34; x 24&#34;</td>
			<td style="width:136px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:116px;">14-206-62</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Polylined Sterile Field, 18&#34; x 24&#34;</td>
			<td style="width:136px;">Busse Hospital Disposables</td>
			<td style="width:116px;">696</td>
			<td style="width:208px;">Cut a rectangular hole of the appropriate size</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:152px;">Isothesia isoflurane</td>
			<td style="width:136px;">Henry Schein&#160;</td>
			<td style="width:116px;">050033</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4&#34; x 4&#34;</td>
			<td style="width:136px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:116px;">22-415-469</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube</td>
			<td style="width:136px;">Dechra Veterinary Products</td>
			<td style="width:116px;">NDC 17033-211-38</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Nair depilatory cream</td>
			<td style="width:136px;">Church &#38; Dwight Co.</td>
			<td style="width:116px;">22339-05</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">Buprenex buprenorphine&#160; 0.3 mg/mL</td>
			<td style="width:136px;">Reckitt Benckiser Pharmaceuticals Inc.</td>
			<td style="width:116px;">NDC 12496-0757-5</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">1 cc insulin syringe, 27G</td>
			<td style="width:136px;">Becton&#160; Dickinson</td>
			<td style="width:116px;">329412</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Povidone Iodine Prep Solution</td>
			<td style="width:136px;">Medline</td>
			<td style="width:116px;">MDS093944H</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Webcol alcohol prep swabs</td>
			<td style="width:136px;">Covidien</td>
			<td style="width:116px;">6818</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">General-Purpose Labarotory Labeling tape</td>
			<td style="width:136px;">VWR</td>
			<td style="width:116px;">89097-912</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">BioGel PI surgical gloves</td>
			<td style="width:136px;">M&#246;lnlycke Health Care</td>
			<td style="width:116px;">ALA42675Z</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Micro Forceps with teeth</td>
			<td style="width:136px;">Roboz</td>
			<td style="width:116px;">RS-5150</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:152px;">Fine scissors- sharp</td>
			<td style="width:136px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:116px;">14060-09</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Straight serrated forceps</td>
			<td style="width:136px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:116px;">11050-10</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">Castro-Viejo needle driver</td>
			<td style="width:136px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:116px;">12565-14</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">100 grit 1/4 sheet sandpaper</td>
			<td style="width:136px;">ACE Hardware</td>
			<td style="width:116px;">1010446</td>
			<td style="width:208px;">Cut into strips</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">4-0 silk suture, 30&#34;, SH needle</td>
			<td style="width:136px;">Ethicon</td>
			<td style="width:116px;">K831</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:152px;">7-0 PDS II absorbable monofilament suture, 30&#34;, BV-1 needle</td>
			<td style="width:136px;">Ethicon</td>
			<td style="width:116px;">Z135</td>
			<td style="width:208px;">Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:152px;">Rice starch</td>
			<td style="width:136px;">MP Biomedicals</td>
			<td style="width:116px;">102955</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:152px;">0.9% Sodium Chloride Irrigation</td>
			<td style="width:136px;">Baxter</td>
			<td style="width:116px;">BHL2F7121</td>
			<td style="width:208px;">Warm to 37&#176; C prior to use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:152px;">10 mL syringe</td>
			<td style="width:136px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:116px;">309604</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">6-0 Vicryl absorbable braided suture, 18&#34;, RB-1 taper needle</td>
			<td style="width:136px;">Ethicon</td>
			<td style="width:116px;">J212H</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:152px;">6-0 Ethilon nylon monofilament&#160; suture, 18&#34;, P-3 needle,&#160;</td>
			<td style="width:136px;">Ethicon</td>
			<td style="width:116px;">1698G</td>
			<td style="width:208px;"></td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:152px;">Tegaderm Transparent Film Dressing Frame Style, 6 cm x 7 cm</td>
			<td style="width:136px;">3M</td>
			<td style="width:116px;">1624W</td>
			<td style="width:208px;">Cut in half lengthwise</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

creation of abdominal adhesions in mice

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or intraabdominal infection. The precise mechanisms underlying adhesion formation are poorly understood. Many compounds and physical barriers have been tested for their ability to prevent adhesions after surgery with varying levels of success. The mouse and rat are important models for the study of abdominal adhesions. Several different techniques for the creation of adhesions in the mouse and rat exist in the literature. Here we describe a protocol utilizing abrasion of the cecum with sandpaper and sutures placed in the right abdominal sidewall. The mouse is anesthetized and the abdomen is prepped. A midline laparotomy is created and the cecum is identified. Sandpaper is used to gently abrade the surface of the cecum. Next, several figure-of-eight sutures are placed into the peritoneum of the right abdominal sidewall. The abdominal cavity is irrigated, a small amount of starch is applied, and the incision is closed. We have found that this technique produces the most consistent adhesions with the lowest mortality rate.

<html> בשבעה ימים לאחר ניתוח, את cecum ואולי עולה מעי גס, כבד, ולולאות של מעי דק אמורים להיות חסיד אל דופן הבטן הימנית צדדית. (איור 8) רקמת ניכרת יכול להיות מוטבעת מחולק ויניב שקופיות היסטולוגית מעולות. (איור 11, 12) <p class="jove_content" fo:keep-together.withi...

Watch this Scientific Journal Video about Creation of Abdominal Adhesions in Mice at JoVE.com

Creation of Abdominal Adhesions in Mice

Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

יצירת הידבקויות בטן עכברים

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or ...

Research

JoVE Journal

Medicine

12.5K Views.  Stanford University School of Medicine. Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

Video: Creation of Abdominal Adhesions in Mice

The C-seal: A Biofragmentable Drain Protecting the Stapled Colorectal Anastomosis from Leakage

Colorectal anastomotic leakage (AL) is a serious complication in colorectal surgery leading to high morbidity and mortality rates1. The incidence of AL varies between 2.5 and 20% 2-5. Over the years, many strategies aimed at lowering the incidence of anastomotic leakage have been examined6, 7. 
The cause of AL is probably multifactorial. Etiological factors include insufficient arterial blood supply, tension on the anastomosis, hematoma and/or infection at the anastomotic site, and co-morbid factors of the patient as diabetes and atherosclerosis8. Furthermore, some anastomoses may be insufficient from the start due to technical failure.
Currently a new device is developed in our institute aimed at protecting the colorectal anastomosis and lowering the incidence of AL. This so called C-seal is a biofragmentable drain, which is stapled to the anastomosis with the circular stapler. It covers the luminal side of the colorectal anastomosis thereby preventing leakage.
The C-seal is a thin-walled tube-like drain, with an approximate diameter of 4 cm and an approximate length of 25 cm (figure 1). It is a tubular device composed of biodegradable polyurethane. Two flaps with adhesive tape are found at one end of the tube. These flaps are used to attach the C-seal to the anvil of the circular stapler, so that after the anastomosis is made the C-seal can be pulled through the anus. The C-seal remains in situ for at least 10 days. Thereafter it will lose strength and will degrade to be secreted from the body together with the gastrointestinal natural contents.
The C-seal does not prevent the formation of dehiscences. However, it prevents extravasation of faeces into the peritoneal cavity. This means that a gap at the anastomotic site does not lead to leakage.
Currently, a phase II study testing the C-seal in 35 patients undergoing (colo-)rectal resection with stapled anastomosis is recruiting. The C-seal can be used in both open procedures as well as laparoscopic procedures. The C-seal is only applied in stapled anastomoses within 15cm from the anal verge. In the video, application of the C-seal is shown in an open extended sigmoid resection in a patient suffering from diverticular disease with a stenotic colon.

The C-seal is a biofragmentable drain protecting the stapled colorectal anastomosis. In this video, details of the manufacturing, deployment and use are shown.

C-חותם: מסננים Biofragmentable הגנה על השקה של המעי הגס תפוסים דליפה

Colorectal anastomotic leakage (AL) is a serious complication in colorectal surgery leading to high morbidity and mortality rates1. The incidence of AL ...

Thermal Ablation for the Treatment of Abdominal Tumors

Percutaneous thermal ablation is an emerging treatment option for many tumors of the abdomen not amenable to conventional treatments. During a thermal ablation procedure, a thin applicator is guided into the target tumor under imaging guidance. Energy is then applied to the tissue until temperatures rise to cytotoxic levels (50-60 &deg;C). Various energy sources are available to heat biological tissues, including radiofrequency (RF) electrical current, microwaves, laser light and ultrasonic waves. Of these, RF and microwave ablation are most commonly used worldwide.
During RF ablation, alternating electrical current (~500 kHz) produces resistive heating around the interstitial electrode. Skin surface electrodes (ground pads) are used to complete the electrical circuit. RF ablation has been in use for nearly 20 years, with good results for local tumor control, extended survival and low complication rates1,2. Recent studies suggest RF ablation may be a first-line treatment option for small hepatocellular carcinoma and renal-cell carcinoma3-5. However, RF heating is hampered by local blood flow and high electrical impedance tissues (eg, lung, bone, desiccated or charred tissue)6,7. Microwaves may alleviate some of these problems by producing faster, volumetric heating8-10. To create larger or conformal ablations, multiple microwave antennas can be used simultaneously while RF electrodes require sequential operation, which limits their efficiency. Early experiences with microwave systems suggest efficacy and safety similar to, or better than RF devices11-13.
Alternatively, cryoablation freezes the target tissues to lethal levels (-20 to -40 &deg;C). Percutaneous cryoablation has been shown to be effective against RCC and many metastatic tumors, particularly colorectal cancer, in the liver14-16. Cryoablation may also be associated with less post-procedure pain and faster recovery for some indications17. Cryoablation is often contraindicated for primary liver cancer due to underlying coagulopathy and associated bleeding risks frequently seen in cirrhotic patients. In addition, sudden release of tumor cellular contents when the frozen tissue thaws can lead to a potentially serious condition known as cryoshock 16.
Thermal tumor ablation can be performed at open surgery, laparoscopy or using a percutaneous approach. When performed percutaneously, the ablation procedure relies on imaging for diagnosis, planning, applicator guidance, treatment monitoring and follow-up. Ultrasound is the most popular modality for guidance and treatment monitoring worldwide, but computed tomography (CT) and magnetic resonance imaging (MRI) are commonly used as well. Contrast-enhanced CT or MRI are typically employed for diagnosis and follow-up imaging.

A thermal tumor ablation procedure is described. The entire procedure is detailed, including pretreatment planning and imaging studies, anesthesia, adjuvant techniques to facilitate a percutaneous approach, imaging guidance of the ablation device to the tumor, thermal treatment, post-treatment care and follow-up.

אבלציה תרמית לטיפול גידולים בטן

Percutaneous thermal ablation is an emerging treatment option for many tumors of the abdomen not amenable to conventional treatments. During a thermal ...

Creation of Reversible Cholestatic Rat Model

Cholestasis is a clinical condition commonly encountered by both surgeons and gastroenterologists. Cholestasis can cause various physiological changes and affect the nutritional status and surgical outcomes. Study of the pathophysiological changes occurring in the liver and other organs is of importance. Various studies have been done in cholestatic rat models.
We used a reversible cholestatic rat model in our recent study looking at the role of methylprednisolone in the ischemia reperfusion injury. Various techniques for creation of a reversible cholestatic model have been described. Creation of a reversible cholestatic rat model can be challenging in view of the smaller size and unique hepatopancreatobiliary anatomy in rats. This video article demonstrates the creation of a reversible cholestatic model.
This model can be used in various studies, such as looking at the changes in nutritional, physiological, pathological, histological and immunological changes in the gastrointestinal tract. This model can also be used to see the effects of cholestasis and various therapeutic interventions on major hepatic surgeries.

Cholestasis is a clinical condition commonly encountered by both surgeons and gastroenterologists. Creation of a reversible cholestatic rat model can be challenging in view of the smaller size and unique hepatopancreatobiliary anatomy in rats. This video article demonstrates the creation of a reversible cholestatic model.

יצירתו של מודל הפיך עכברוש Cholestatic

Cholestasis is a clinical condition commonly encountered by both surgeons and gastroenterologists. Cholestasis can cause various physiological changes and ...

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

השתלת כבד Orthotopic בחולדות

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Ascending Aortic Constriction in Rats for Creation of Pressure Overload Cardiac Hypertrophy Model

Ascending aortic constriction is the most common and successful surgical model for creating pressure overload induced cardiac hypertrophy and heart failure. Here, we describe a detailed surgical procedure for creating pressure overload and cardiac hypertrophy in rats by constriction of the ascending aorta using a small metallic clip. After anesthesia, the trachea is intubated by inserting a cannula through a half way incision made between two cartilage rings of trachea. Then a skin incision is made at the level of the second intercostal space on the left chest wall and muscle layers are cleared to locate the ascending portion of aorta. The ascending aorta is constricted to 50&#8211;60% of its original diameter by application of a small sized titanium clip. Following aortic constriction, the second and third ribs are approximated with prolene sutures. The tracheal cannula is removed once spontaneous breathing was re-established. The animal is allowed to recover on the heating pad by gradually lowering anesthesia. The intensity of pressure overload created by constriction of the ascending aorta is determined by recording the pressure gradient using trans-thoracic two dimensional Doppler-echocardiography. Overall this protocol is useful to study the remodeling events and contractile properties of the heart during the gradual onset and progression from compensated cardiac hypertrophy to heart failure stage.

We describe a stepwise procedure for creating pressure overload and left ventricular hypertrophy in Wistar rats by constriction of the ascending aorta using a small metallic clip. This model is extensively used for studying remodeling changes during cardiac hypertrophy and for identifying and evaluating strategies for regression of such changes.

עולה אבי העורקים תעוקה בחולדות ליצירת עומס יתר לחץ לב היפרטרופיה הדגם

Ascending aortic constriction is the most common and successful surgical model for creating pressure overload induced cardiac hypertrophy and heart ...

Carotid Artery Infusions for Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Analysis of Taxanes in Mice

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study model. As the use of mouse models are often a vital step in preclinical drug discovery and drug development1-8, it is necessary to design a system to introduce drugs into mice in a uniform, reproducible manner. Ideally, the system should permit the collection of blood samples at regular intervals over a set time course. The ability to measure drug concentrations by mass-spectrometry, has allowed investigators to follow the changes in plasma drug levels over time in individual mice1, 9, 10. In this study, paclitaxel was introduced into transgenic mice as a continuous arterial infusion over three hours, while blood samples were simultaneously taken by retro-orbital bleeds at set time points. Carotid artery infusions are a potential alternative to jugular vein infusions, when factors such as mammary tumors or other obstructions make jugular infusions impractical. Using this technique, paclitaxel concentrations in plasma and tissue achieved similar levels as compared to jugular infusion. In this tutorial, we will demonstrate how to successfully catheterize the carotid artery by preparing an optimized catheter for the individual mouse model, then show how to insert and secure the catheter into the mouse carotid artery, thread the end of the catheter out through the back of the mouse&#8217;s neck, and hook the mouse to a pump to deliver a controlled rate of drug influx. Multiple low volume retro-orbital bleeds allow for analysis of plasma drug concentrations over time.

This method was developed with the goal of delivering a steady drug solution via the carotid artery, to assess the pharmacokinetics of novel drugs in mouse models.

חליטות עורק הראשי לpharmacokinetic וpharmacodynamic ניתוח של taxanes בעכברים

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study ...

A Model of Cardiac Remodeling Through Constriction of the Abdominal Aorta in Rats

Heart failure is one of the leading causes of death worldwide. It is a complex clinical syndromethat includes fatigue, dyspnea, exercise intolerance, and fluid retention. Changes in myocardial structure, electrical conduction, and energy metabolism develop with heart failure, leading to contractile dysfunction, increased risk of arrhythmias, and sudden death. Hypertensive heart disease is one of the key contributing factors of cardiac remodeling associated with heart failure. The most commonly-used animal model mimicking hypertensive heart disease is created via surgical interventions, such as by narrowing the aorta. Abdominal aortic constriction is a useful experimental technique to induce a pressure overload, which leads to heart failure. The surgery can be easily performed, without the need for chest opening or mechanical ventilation. Abdominal aortic constriction-induced cardiac pathology progresses gradually, making this model relevant to clinical hypertensive heart failure. Cardiac injury and remodeling can be observed 10 weeks after the surgery. The method described here provides a simple and effective approach to produce a hypertensive heart disease animal model that is suitable for studying disease mechanisms and for testing novel therapeutics.

A rat model of abdominal aortic constriction that induces cardiac hypertrophy and remodeling is described. An efficient, highly-reproducible, and minimally-invasive method is used to provide a simple yet useful platform for research in myocardial hypertrophy and dysfunction.

מודל של שיפוץ לב באמצעות התכווצות של אבי העורקים בבטן בחולדות

Heart failure is one of the leading causes of death worldwide. It is a complex clinical syndromethat includes fatigue, dyspnea, exercise intolerance, and ...

Creation of a Rodent Model of Abdominal Aortic Aneurysm by Blocking Adventitial Vasa Vasorum Perfusion

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic aneurysms (AAAs). This article introduces and describes a standard protocol used to induce AAAs through adventitial VV hypoperfusion created with a combination of polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the infrarenal abdominal aorta.
The protocol involves the use of male rats weighing 300-400 g, which are provided food and water ad libitum. After laparotomy with a ventral midline abdominal incision, exfoliation of the aorta is performed, which blocks blood flow from the perivascular tissue. Aortotomy involving a small incision adjacent to the renal artery branches is performed, and a polyurethane catheter is inserted using an 18-gauge indwelling needle. After repairing the incision, tight ligation of the aorta over the catheter blocks VV blood flow from the proximal direction through the aortic wall without disturbing the aortic blood flow. This technique can induce an AAA with progressive aortic dilatation.
The greatest benefit of this model is that VV hypoperfusion causes tissue hypoxia and the development of an infrarenal AAA, which has morphological and pathological characteristics similar to those of a human AAA.

Polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the aorta induce chronic hypoxia due to hypoperfusion of the adventitial vasa vasorum. This article describes a novel animal model of abdominal aortic aneurysm (AAA) with characteristics similar to those of AAA in humans.

יצירת מודל מכרסם של מפרצת אבי העורקים בבטן על ידי חסימת ואסה Adventitial וזורום זלוף

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic ...

Balloon-based Injury to Induce Myointimal Hyperplasia in the Mouse Abdominal Aorta

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine balloon denudation model, which is comparable with established vessel injury models in large animals. The aorta denudation model with balloon catheters mimics the clinical setting and leads to comparable pathobiological and physiological changes. Briefly, after performing a horizontal incision in the aorta abdominalis, a balloon catheter will be inserted into the vessel, inflated, and introduced retrogradely. Inflation of the balloon will lead to intima injury and overdistension of the vessel. After removing the catheter, the aortic incision will be closed with single stiches. The model shown in this article is reproducible, easy to perform, and can be established quickly and reliably. It is especially suitable for evaluating expensive experimental therapeutic agents, which can be applied in an economical fashion. By using different knockout-mouse strains, the impact of different genes on MH development can be assessed.

This article demonstrates a murine model to study the development of myointimal hyperplasia (MH) after aortic balloon injury.

מבוסס על בלון פציעה לזירוז היפרפלזיה Myointimal באבי העורקים בטן העכבר

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine ...

Creation of Colonic Anastomosis in Mice

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of colonic surgeries and can occur in up to 26% of surgical anastomoses, with mortality being up to 39% for patients with such a leak. Currently, there remains a paucity of data detailing the cellular mechanisms of anastomotic healing. Devising preventative strategies and treatment modalities for anastomotic leak could be greatly potentiated by a better understanding of appropriate anastomotic healing.
A murine model is ideal as previous studies have shown that the murine anastomosis is the most clinically similar to the human case as compared with other animal models. We offer an easily reproducible murine model of colonic anastomosis in mice that will allow for further illustration of anastomotic healing.

Anastomotic leak or breakdown after surgery is a major cause of postoperative morbidity and mortality. Our surgery for creating a colonic anastomosis is a reliable and reproducible method for studying the healing mechanisms of anastomoses.

יצירה של השקה שטיפת המעי הגס בעכברים

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of ...