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摘要

本研究表明定量细胞膜延伸测量的实用性和易用性, 及其与细胞粘附能力的相关性。作为一个代表性的例子, 我们在这里表明, Dickkopf 相关蛋白 3 (DKK3) 促进增加 lobopodia 形成和细胞粘附在肾上腺皮质癌细胞在体外

摘要

细胞膜的扩展曲目调节癌细胞的各种恶性行为, 包括它们的粘合剂和迁移电位。准确分类和量化细胞扩展的能力和测量细胞的粘附能力对确定细胞信号事件如何影响癌细胞的行为和侵略性至关重要。在这里, 我们描述了体外的设计和使用的细胞扩展量化方法结合的黏附能力检测在建立的体外模型的肾上腺皮质癌 (ACC)。具体来说, 我们测试 DKK3, 一个假定的肿瘤抑制物和赞成分化因子, 对 ACC 细胞系, SW-13 的膜扩张表型的影响。我们建议这些化验提供相对简单, 可靠, 容易解释的指标, 以衡量这些特点在各种实验条件下。

引言

失调 wnt 信号在肾上腺皮质恶性肿瘤中起重要作用1。本研究中使用的方法研究了 DKK3 的沉默, 即 WNT 信号的负调节因子, 是否代表肾上腺皮质的分化事件, 并在细胞扩展曲目变化的背景下促进肿瘤的形成。DKK3 是一个 38 kDa 分泌糖蛋白与 n-终端信号肽和以往的研究表明, 其强迫表达导致细胞周期骤停, 抑制侵袭性恶性行为, 并逆转上皮间充质转换2

肾上腺皮质癌 (ACC) 和其他癌症的恶性行为在某种程度上受肿瘤细胞与周围表面相互作用的能力的影响, 包括细胞外基质, 进而促进肿瘤细胞侵袭和迁移3。特定细胞膜延伸在癌症进展中的作用正越来越多地表现在不同的语境中, 主要是通过丝状伪足的形成。例如, L 型钙通道的过度表达诱导丝状伪足形成, 促进肿瘤细胞侵袭 4.同样, 在正常组织中最小表达的肌动蛋白结合蛋白 Fascin 也抗原与丝状伪足形成5相关联的癌细胞.Lobopodia 的形成使非恶性成纤维细胞能够有效地通过超细胞基质迁移, 然而, 它已经表明, 肉瘤细胞依靠金属蛋白酶的活动代替 Lobopodia, 以促进细胞迁移和入侵6。我们已经表明, 肿瘤抑制器, 包括 Ras 协会域家族1异构体 A (RASSF1A) 和 DKK3, 可以发挥作用, 以改变骨架元素和促进 lamellipodia 形成和阻碍侵入性属性7,8

因此, 重要的是要描述发生癌变的基因的影响及其与细胞膜延长改变的关系, 特别是评估丝状伪足、lobopodia 和 lamellipodia 在试验条件下的形成。目前的先进技术包括使用越来越复杂的显微方法、荧光标记和/或复杂的计算机算法来获取和解释数据。虽然这些方法提供了新的强大的分析工具, 但它们的复杂性限制了它们在细胞生物学实验中的广泛应用和适应性。此外, 对单元格扩展形态学变化的精确量化和观察通常不被测量9,10。相比之下, 我们在这里引入了一种技术, 通过标准显微技术和易于适应的体外方法, 精确地量化细胞扩展的变化。这些方法还量化每个细胞的扩展类型同时为每个细胞分析和确定的整体变化的细胞膜延长曲目。我们还展示了这些变化如何与细胞黏附性质有关。

作为一个实验性的例子, 我们将使用以前创建的 SW-13 细胞系, 指定的 SW-DDK3, 它已经稳定地转染了 pCMV6-Entry/DKK3 质粒载体和组成性 overexpresses DKK3, 一个区别因素在肾上腺。非转染的 SW-13 细胞和 SW-13 细胞稳定转染的空载体 (pCMV6-Entry), 指定的 SW, 将作为实验控制。

研究方案

1. 细胞扩展特性

  1. 在标准的37.0 摄氏度和 5% CO2中, 用10% 胎牛血清和 1万 U/毫升青霉素和链霉素 (指定为 "生长培养基"), 将 SW-13、SW 和 SW-DKK3 细胞维持在标准化的湿润孵化箱中, 并在 Dulbecco 的改良后的鹰培养基中补充。
    1. 使用 hemocytometer 计数细胞, 并将5000个细胞 SW-13, SW-新, SW-DKK3 线分成单独的6井板, 在无菌玻璃盖玻片的生长培养基中一夜之间生长。
  2. 在一夜之间生长, 为每井, 吸入生长培养基, 洗涤细胞与1毫升温暖磷酸盐缓冲盐水 (PBS), 然后修复细胞与1毫升3.7% 甲醛为10分钟。
  3. 吸入甲醛和染色细胞在每个井与1毫升0.05% 水晶紫30分钟. 用三洗涤1毫升去离子水清洗过量染料。
    注意: 根据染料摄取的水平, 可能需要额外的一些洗涤来去除背景染色, 以促进细胞的可视化。
    1. 使用细尖钳, 检索盖玻片, 并把他们脸上的标签玻璃幻灯片与一滴清晰的安装试剂。
  4. 在光镜下, 随机选择20个不同的细胞, 从每个盖玻片的细胞延伸试验。
    1. 以每个视野的400x 放大倍数显微照片。直接计算20个代表单元格中每个扩展类型的数目。
      注: 因此, 应检查每一个测试的条件, 20 个独立的细胞, 以确保可靠的结果。丝状伪足是由细胞扩展定义的, 其基部为5微米或更小, 单顶点。Lobopodia 是由细胞扩展定义的, 其基数为5到20微米, 包含有多个顶端的扩展。Lamellipodia 的定义是细胞扩展, 长度大于20微米, 有或没有顶端。根据已测试的单元格类型, 单元格扩展的大小可能会有所不同, 并且可能需要对识别参数进行细化。
  5. 确定每个单元格类型中每个单元格扩展的平均数目 (、SW-13、sw-DDK), 并检查了6个水井。
  6. 采用单向方差分析 (方差) 统计试验, 比较不同试验细胞类型间细胞膜延长平均百分率的差异。

2. 黏附力试验

  1. 在37.0 摄氏度和 5% CO2的生长培养基中, 维持 SW-13、SW 和 SW-DKK3 细胞。
    1. 使用 hemocytometer, 计数和板10万细胞的 SW-13, SW-新, 和 SW-DKK3 每井成单独的6井板和生长在一夜之间生长培养基。
    2. 种子6井板为每个细胞类型测试, 使用一个板材为每6指定的时间点测试下面。
      注意: 不同的单元格类型的时间点可能会有所不同。
  2. 夜间孵化后, 用温暖的 PBS 冲洗细胞, 然后加入0.5 毫升的1x 非酶细胞离解溶液, 每一个井。
    1. 旋转板块, 传播细胞离解溶液。在已定义的时间点 (1、2、3、5、10和15分钟) 中吸入指定的板, 然后用1毫升温 PBS 解决方案三次清洗。
    2. 在洗涤之间, 轻轻地敲击盘子以分离松散附着的细胞。
  3. 吸入任何剩余的 PBS, 并固定在板上剩余的细胞与1毫升3.7% 甲醛10分钟。
  4. 染色细胞与1毫升0.05% 晶体紫30分钟然后用1毫升的去离子水洗涤多余的染料。滴定洗涤促进细胞可视化。
    注意: 根据染料摄取的水平, 可能需要额外的一些洗涤来促进细胞的可视化。
  5. 使用光显微镜在100x 放大倍数, 计数剩余的连接的细胞在每个井为每个板材。
    注意: 使用透明标尺或在板的底部标记细笔参考线将有助于避免重复计数相同的单元格。
  6. 确定每个板块每个井的平均附着单元数。
  7. 采用双向方差分析统计试验, 比较 SW-13、SW、SW-DDK3 细胞在给定时间段内的细胞脱离率。

结果

采用上述检测方法, 对建立的 ACC 细胞系 SW-13、体外进行了 DKK3 过度表达对细胞增殖形态学和细胞黏附性能的影响。细胞 overexpressing DKK3 是由稳定的转染 SW-13 细胞与 c-myc DDK 标记 pCMV6-Entry/DKK3 质粒载体, 并指定为 SW-DKK3。同样地, 以空矢量 pCMV6-Entry 稳定转染的细胞也被创建为传代控制, 并被定义为 SW-尼奥。SW-13 细胞被用作额外的父细胞控制。定量实时 PCR 和西方印迹技...

讨论

在这里, 我们描述了一个体外定量的方法来表征细胞扩展的简便, 少坑瀑布, 可靠的重现性, 可用于各种测试条件。此外, 简单, 可量化的黏附力和/或运动分析可以同时执行, 以关联潜在的功能意义的观察改变的细胞膜延长。

然而, 这些方法可能会带来一些潜在的限制。首先, 这里指定的标准, 以确定不同类型的细胞扩展是基于肾上腺皮质 SW-13 细胞形态学, 因此可能需要细?...

披露声明

作者没有什么可透露的。

致谢

Ohse 赠款基金会资助了这项工作。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)ThermoFisher11965-092Supplemented with fetal bovine serum and penicllin and streptomycin
Deulbeco's Phosphate Buffered SalineSigma-AldrichD85371X solution, used directly
3.7% formaldehyde Sigma-AldrichF8775Dilute stock solution
0.05% crystal violet Harleco192-12Dilute stock solution
De-ionized waterNANANA
Microscope with 400X magnification NANANA
6-well platesCorning353046NA
Cell dissociation solution non-enzymatic 1XSigma-AldrichC5914 1X solution, used directly

参考文献

  1. Libe, R., Fratticci, A., Bertherat, J. Adrenocortical cancer: pathophysiology and clinical management. Endocrine-related cancer. 14 (1), 13-28 (2007).
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  4. Jacquemet, G., et al. L-type calcium channels regulate filopodia stability and cancer cell invasion downstream of integrin signalling. Nat Commun. 7, 13297 (2016).
  5. Machesky, L. M., Li, A. Fascin: Invasive filopodia promoting metastasis. Commun Integr Biol. 3 (3), 263-270 (2010).
  6. Petrie, R. J., Harlin, H. M., Korsak, L. I., Yamada, K. M. Activating the nuclear piston mechanism of 3D migration in tumor cells. J Cell Biol. 216 (1), 93-100 (2017).
  7. Korah, R., et al. Epigenetic silencing of RASSF1A deregulates cytoskeleton and promotes malignant behavior of adrenocortical carcinoma. Molecular cancer. 12, 87 (2013).
  8. Cheng, J. Y., et al. A novel FOXO1-mediated dedifferentiation blocking role for DKK3 in adrenocortical carcinogenesis. BMC cancer. 17 (1), 164 (2017).
  9. Barry, D. J., Durkin, C. H., Abella, J. V., Way, M. Open source software for quantification of cell migration, protrusions, and fluorescence intensities. J Cell Biol. 209 (1), 163-180 (2015).
  10. Cliffe, A., et al. Quantitative 3D analysis of complex single border cell behaviors in coordinated collective cell migration. Nat Commun. 8, 14905 (2017).

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