猪的臂动脉插管

摘要

视频详细介绍了猪远端臂部动脉的导尿。此过程准确地测量动脉血压, 是一种简单而快速的方法来收集样本, 用于动脉血气测量。

摘要

视频详细介绍了猪远端臂部动脉的导尿。这项技术使研究人员能够持续测量动脉血压, 并收集动脉血样, 以评估动脉血气测量。动脉血压和动脉血气是实验过程中监测的重要生理参数。在猪中, 介绍了四种常见的动脉导管插入方法, 包括颈动脉导尿、股骨、耳系和内隐动脉。这些技术中的每一种都有其优点, 例如耳廓动脉容易进入, 缺点包括颈动脉导管插入术的深层组织解剖。描述的猪动脉导管插入的替代方法, 臂部动脉远端的导管插入术, 是一个快速的程序, 需要相对较少的组织解剖, 并提供与数据一致的信息从其他动脉导管插入点收集。该程序使用内侧方法沿下臂的斜平面, 位于鹰嘴和肘关节的屈曲方面之间, 这种方法允许研究人员的主要优势, 不受阻碍的自由的程序, 涉及猪的尾端、肩背背或后肢。由于导尿管血管上前肢的位置以及导管从动脉中取出后有效稳态的潜在挑战, 这种技术可能仅限于非恢复程序。

引言

手术干预被用于实验研究, 以开发促进科学发展的动物模型。科学文献中充满了新的外科动物模型^1,2,3的例子。手术是一个复杂的过程, 不仅涉及解剖结构的操作, 而且涉及复杂的生理相互作用与麻醉和镇痛所需的各种药物。这种相互作用会引起动物体内生理过程的重大变化, 因此需要对动物⁴进行警惕监测。临床上成功的手术结果与动脉血气和动脉血压^{的测量有关 5}。这些临床参数需要能够测量动脉血压和有效收集动脉血液, 这反过来又需要动脉^6,7的成功导尿。

动脉导管插入收集动脉血液和测量压力已用于各种动物物种^{5,6,7, 8},^{9, 10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21}和在动物在不同的发展^{年龄 19,20,21}并且被指挥了恢复 (临床和诊断) 规程^{4,5, 6、7、8}和非回收 (实验) 程序^{14、15、16、17、18}。此外, 在选择动脉血液测量时, 动脉通畅和动脉位置在外科手术中的位置也是重要的考虑因素。例如, 狗的中位尾动脉和马的面部动脉, 以及狗和马的踏板动脉, 用于在恢复过程^6,7,8. 相反, 猪的颈动脉和股动脉经常被导尿, 用于非恢复或长期导管植入实验^14、15、18。

在猪中, 用于测量动脉血压或聚集动脉血液的动脉导管插入术通常采用颈动脉、股骨、内侧隐或耳动脉²²,²³。对于专门的非常规手术, 其他更不寻常的动脉, 包括锁骨下动脉和胫骨动脉, 分别用于测量臂部动脉解剖扭转¹⁷和图像^{主动脉 16}。无论选择哪种动脉进行导尿, 每个动脉都有其使用的固有优点和缺点。例如, 耳动脉在解剖上很容易进入, 但它的使用可能仅限于其接近边缘^{耳脉 11,12}。相比之下, 颈动脉是相对较大和稳健的²⁴, 但它位于颈静脉沟深处, 需要实质性的组织解剖²⁵。因此, 确定另一个动脉, 可以导管测量动脉压力和收集动脉血液是必要的。这段视频和手稿详细地描述了猪远端臂动脉的导尿, 这是一种可应用于非恢复过程的技术。值得注意的是, 猪臂动脉导尿用于测量腰椎手术中的动脉血压和动脉血气参数与后肢测量 (这部分手术的数据没有提供)。

研究方案

视频和手稿中描述的所有实验动物程序都得到了阿尔伯塔大学动物护理和使用机构委员会的批准

1. 猪的外科麻醉和手术准备。

1. 用含有盐酸氯胺酮 (22 mg/kg)、盐酸木唑嗪 (2.2 mg/kg) 和盐酸甘油酯 (10μgkg) 的麻醉药物鸡尾酒对50公斤的 landrace-yorkshire 商业猪进行肌肉注射。
2. 在靠近猪头的桌子末端设置所有与监测临床参数有关的设备。确保设备不会限制对猪的访问。通过将压力传感器放置在水平平面上, 与心脏持平, 实现准确的动脉血压测量。
3. 用适当大小的面膜对猪吸入异氟醚气体 (在 500-1000 mL/min O 2 下吸入异氟醚气体 (4%-5%异氟醚) 进行麻醉。用兽医喉镜 (17-25 厘米长的直刀片) 显示声带, 并将局部10% 的利多卡因喷剂涂在声带上, 以限制喉部痉挛和气道阻塞的风险。
4. 通过声带插入一个袖口气管插管 (9.0 mm 内径 (id)), 并保持异氟醚气体的麻醉 (0.5%-3.0% 异氟醚, 在 1000-2000 mlp O 2).用机械呼吸机 (18-22 呼吸) 给猪通风, 确保所有过期的麻醉气体在手术套间外清除和排出。通过下颌张力和踏板反射反应来评估麻醉的水平。
   注: 在猪26中, 用于增强血流动力学功能和减少异氟拉烷气体麻醉引起的心血管输出抑制.
5. 用医用胶带将脉搏血氧仪固定在舌头的粘膜表面, 以监测心率和外周血氧合饱和度 (_spo2)。将温度探头插入鼻腔约2-4 厘米, 以监测体温。将猪放在加热的桌子上, 以保持正常体温 (38-40°c)。
6. 通过适当的组织准备, 确保手术不育。
   1. 用10% 的 povidone-iodine 手术擦洗液清洁耳朵的外表面, 为静脉置管做准备, 并允许溶液风干。
   2. 用 20 G, 1 英寸静脉注射导管, 导管在一个边缘耳静脉, 以提供静脉输液 (LRS; 10-50 Ml/gg h) 或添加其他麻醉剂。
   3. 通过连续静脉盐酸瑞芬太尼 (0.0.14μgqg/min), 在侵入性手术中需要, 加强猪麻醉和镇痛。
7. 将猪置于侧向卧位, 轻轻将前腿伸出约10-12 厘米, 远离肩部。将头发夹在臂内侧的皮肤表面 (上前肢)。通过触诊标记臂部远端动脉脉搏。
   注: 动脉的陆地位置沿着一平面倾斜, 臂距小叶约9厘米, 距离肘关节屈曲面5厘米。臂部动脉向穿过肱骨的肩骨的尾状三分之一的方向移动。
8. 与步骤1.6 类似, 确保手术不孕, 并进行适当的组织准备。用10% 的 povidone-iodine 手术擦洗液清洁皮肤表面, 并使溶液风干。用四个小的一次性手术窗帘擦拭臂部动脉导管插入部位。

2. 臂部动脉的组织解剖和导管插入

1. 用手术刀刀片做一个6厘米长的皮肤切口, 露出底层组织。用 Metzenbaum 剪刀沿着二头肌的内侧表面进行模糊解剖, 加深解剖, 直到脉动动脉被识别。
2. 用棉签轻轻梳理离臂部动脉、中位神经和臂静脉的外膜;在同一筋膜平面内的结构。需要进行温和的解剖, 重要的是确保在手术过程中对中位神经的伤害最小。臂部动脉位于皮肤下方约 2.0-2.5 厘米, 是内侧的花冠和侧向张量筋膜抗臂部和覆盖的三头肌内侧头 27,²⁸的一小部分。
   注: 放置一个牵引器, 以保持皮肤切口开放, 使更容易进入臂部动脉。放置第二台牵引器 (可选), 以进一步协助船只接触。
3. 在整个解剖过程中, 用温暖的盐水 (37°c) 使所有组织湿润, 以保持更好的结构完整性和更好的组织处理。
4. 用钝钳在动脉下创建一个隧道, 然后通过动脉下的三个2-0 的夜胶缝合线。有意, 离开这个缝合线的两端相对较长 (3-4 厘米), 以确保导管到动脉。添加一个 "松散缝合领带", 允许快速导管紧固, 前两个缝合线是彼此分离1.0 厘米, 约 1.5-2.0 厘米近端到第三远端缝合。结扎最远端的缝合首先闭塞动脉。
5. 将 22 G、1英寸外周静脉导管插入动脉, 然后将导管 (完全推进导管集线) 从导管进入血管。部分从导管中取出导管, 以显示动脉血液, 确保导管的适当血管放置。然后, 通过缝合中间缝合线, 牢固地固定血管中的导管。取下导管, 快速封盖导管, 以最大限度地减少出血。
6. 用温盐水 (37°c) 冲洗切口和导管。系紧最近端缝合线, 重要的是确保远端缝合线紧紧固定在导管枢纽周围, 因为这可以提高导管的稳定性, 并减少导管从动脉的意外滑移 (即, 在猪重新定位期间)。
   注: 如果导管最初进入动脉失败, 或血管受伤, 则将导管重新插入动脉, 位置靠近初始导管插入部位约0.25 厘米。
7. 快速将 LRS 填充的静脉延长线与连接的动脉压力传感器连接到导管上, 然后用温盐水 (37°c) 清洗手术部位, 保持组织湿润, 并清洁任何溢出到周围组织中的血液.用盐水冲洗导管, 以确保导管通畅, 防止血块沿导管壁形成。
   注: 检查换能器动脉血压线故障 (即泄漏), 通过归零动脉压力监测测量建立传感器基线, 并确保适当的动脉血压波形成。
8. 通过保持延长线的冲洗端口加压超过250毫米汞柱, 并使用压力注入袋, 提供 3-5 mlmmin LRS, 确保导管的持续通畅。
   1. 可选: 将两个2-0 聚丙烯或两个2-0 的聚手套缝合线周围的导管集线或静脉延长线轮毂, 以进一步提高导管内的稳定性。

3. 组织闭合和身体定位

1. 用切割或锥形针头上的2-0 聚视合物缝合用简单的连续缝合图案关闭肌肉层, 并在切割针上用2-0 聚丙烯缝合线关闭皮肤。
   注: 可互换, 2-0 聚乐素或2-0 聚丙烯缝合线可用于关闭肌肉和皮肤。
2. 将猪置于腹侧的后向级, 方法是将侧向卧式猪的腹部向手术台旋转。左侧侧向卧式猪按顺时针方向旋转, 而右侧侧向卧式猪按逆时针方向旋转。
3. 将导管前腔放置在40°角, 至猪的脊椎中线。这种前肢定位可产生最佳的动脉血流量和最准确的动脉血压测量。

4. 监测临床参数

1. 使用适当的监测设备, 测量整个麻醉和外科过程中的血流动力学和呼吸参数以及温度。

结果

臂动脉导尿允许持续监测动脉血压和间歇性采样动脉血液在延长手术程序在猪。测量的参数是从7头50公斤的兰德拉克-约克郡商业猪收集的。从最初的动脉登陆到最后的手术切口闭合, 将臂部动脉导尿所需的总时间为35.2±4.4 分钟 (图 1)。动脉压力测量超过 120分钟, 收缩压、舒张压和平均动脉压力分别为102.99±1.76、61.2 ±0.92 和74.8±0.89 毫米汞柱 (

讨论

动脉导管插入测量动脉血压和收集血液样本的动脉血气测量已建立在广泛的动物物种^5,6,^{7,8,9,10,11,12,13,14,15,}

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.9% NaCl (Saline) Solution	EMRN	JB1322P	1 x1 liter bag
10% Lidocaine spray	AstraZeneca		DIN:02039508 / 1 x  50 ml  bottle
10% Povidone-Iodine scrub	Purdue Pharma	521232	1 x 500 ml bottle
20 ga 1-inch angiocatheter	Becton Dickinson	381433	1 x angiocatheter
2-0 polyglactin suture (Vicryl)	Ethicon	J339H	2-0 vicryl / 1 packet of suture
2-0 polypropylene suture (Prolene)	Ethicon	8833H	2-0 prolene / 1 packet of suture
22 ga 1-inch angiocatheter	Becton Dickinson	381423	1 x angiocatheter
9 ID mm endotracheal tube	Jorvet	J0835P	1 x endotracheal tube
Arterial blood pressure IV line	Argon Medical Devices	112411	1 x arterial blood pressure IV line
Disposable drapes	Halyard Sales LLC	89731	4-8 x disposable drapes
Glycopyrrolate hydrochloride	Sandoz		DIN:02039508 / 1 x 20ml vial
Isoflurane	Abbott Animal  Health	05260-5	1 x 250ml bottle
Kelly forceps-curved (14cm)	Stevens	162-7-38	8-10  instruments
Ketamine hydrochloride	Vetoquinol		DIN:02374994 / 1 x 10ml vial
Lactated Ringer's Solution	Hospira	0409-7953-09	4 x1 liter bag
Metzenbaum scissors	Fine Science	14518-18
Miller laryngoscope blade	Welch Allyn	68044	182 mm length  / 1 instrument
Nasal temperature probe	Surgivet	V3417	1 probe
Needle Drivers	Stevens	162-V98-42	2 instruments
Q tip applicators	Fisher Scientific	22-037-960	20-40  app
Remifentanil hydrochloride	TEVA		DIN:0234432 / 1 mg vial
Surgivet advisor: Vital signs monitor	Surgivet	V9203	1 monitor
Weitlaner retractor	Stevens	162-11-602	2 retractors
Xylazine hydrochloride	Bayer		DIN:02169606 1 x 50ml bottle