JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

הווידאו מתאר בפירוט את צנתור של העורק איחתי דיסטלי של החזירים. הליך זה במדויק מודד לחץ דם עורקי, היא שיטה פשוטה ומהירה לאסוף דגימות דם עורקי גז מעבדתיים.

Abstract

הווידאו מתאר בפירוט את צנתור של העורק איחתי דיסטלי של החזירים. טכניקה זו מאפשרת לחוקרים למדוד לחץ דם עורקי ברציפות ולאסוף דגימות דם עורקי להעריך מדידות גזים בדם עורקי. לחץ דם עורקי הגזים והסריקה פרמטרים פיזיולוגיים חשובים לעקוב במהלך הליכי ניסיוני בקרב אנשי עסקים ותיירים כאחד. בחזיר, ארבע שיטות נפוצות של צנתור עורקי תוארו, כולל צנתור של העורקים saphenous העורק הירך, אזני, המדיאלי. כל הטכניקות הללו יש יתרונות, כגון נוחות גישה עבור העורק אוריקולארית וכן חסרונות הכוללים רקמות עמוק לנתיחה על צנתור עורק הראש. שיטת חלופית שתואר צנתור עורקי בחזיר, צנתור של ההיבט הדיסטלי של העורק נחתכו, היא הליך מהיר זה דורש ניתוח רקמה קטנה יחסית, והיא מספקת מידע זה עולה בקנה אחד עם הנתונים נאסף מאתרים אחרים צנתור עורקי. ההליך משתמשת בגישה המדיאלי לאורך מטוס עקיפה של brachium התחתון, הממוקם בין את olecranon ואת ההיבט כופף של מפרק המרפק, ומאפשרת גישה זו חוקרים היתרון העיקרי של חופש ללא הפרעה להליכי המערבות caudoventral, caudodorsal האחורי, או הגפיים האחוריות של החזיר. בשל המיקום של forelimb העליון של כלי השיט catheterized ואתגרים פוטנציאלי של הומאוסטזיס יעיל בעקבות הסרת קטטר מן העורק, טכניקה זו עשוי להיות מוגבל ההליכים לשחזור שאינם.

Introduction

התערבות כירורגית משמש במחקר ניסיוני לפתח מודלים בעלי חיים המשפרים את פיתוח מדעי. הספרות המדעית היא מלאה בדוגמאות של הרומן חיה ניתוח מודלים1,2,3. הניתוחים הם תהליך מורכב מעורבים לא רק המניפולציה של מבנים אנטומיים, אלא גם מסובך פיזיולוגיים אינטראקציות עם תרופות שונות הדרושות הרדמה, שיכוך כאבים. הגומלין הזה יכול לגרום שינויים משמעותיים בתהליכים פיזיולוגיים בתוך החיה, ובתור שכזה דורש ניטור על המשמר של בעלי חיים4. תוצאות ניתוח מוצלח קלינית קושרו עם מדידות של גזים בדם, לחץ דם עורקי5. פרמטרים קליניים אלה דורשות את היכולת למדוד לחץ דם עורקי ולאסוף בדם באופן יעיל, אשר בתורו מחייב את צנתור מוצלחת של6,עורק7.

צנתור עורקי כדי לאסוף דם עורקי ולמדוד את הלחץ כבר בשימוש שונים מיני בעלי חיים5,6,7,8,9,10, 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 ו בבעלי חיים בגילאים שונים של פיתוח19,20,21 , יש כוון לעבר שני שחזור הליכים (קליניים, אבחון)4,5, 6,7,8 ו שחזור ללא הליכים (ניסיוני)14,15,16,17,18. יתר על כן, להקל על הגישה עורקי המיקום של העורק בהקשר של הליך כירורגי גם הם שיקולים חשובים בבחירת בעורק למדידות בדם. לדוגמה, העורק סימטרית החציוני אצל כלבים עורק הפנים אצל סוסים, וכן את העורק פדלים כלבים, סוסים, הן בשימוש למדידה לאבחון ולניטור במהלך השחזור הליכים6,7, 8. לעומת זאת, עורק הצוואר ואת שמנקזים הם לעתים קרובות catheterized ב החזירים גם ללא שחזור או לטווח ארוך קטטר השרשה ניסויים14,15,18.

בחזיר, צנתור עורקי כדי למדוד לחץ דם עורקי או או לאסוף דם עורקי העסיקה באופן שגרתי את עורק הצוואר, את עצם הירך, המדיאלי saphenous גדולות, או אוריקולארית העורקים22,23. לקבלת הליכים מיוחדים הלא-שגרתי, העורקים יותר יוצאי דופן אחרים שימשו, כולל subclavian ו- iliac העורקים, למדוד את ה tortuosity האנטומי של עורק הזרוע17 , תמונה של אבי העורקים16, בהתאמה. ללא קשר עורק נבחרת עבור צנתור, כל עורק יש היתרונות והחסרונות עבור השימוש. למשל, העורק אוריקולארית קל מבחינה אנטומית לגישה, אך השימוש בו עלולה להיות מוגבלת על קרבתו אוזן שולי ורידים11,12. לשם השוואה, העורק הראשי הוא יחסית גדול וחזק24, אבל זה נמצא עמוק בתוך פארו צוואר ודורש רקמות מהותית לנתיחה25. ככזה, זיהוי עורק אחר זה יכול להיות catheterized כדי למדוד את לחץ הדם בעורק ולאסוף בדם יש הצדקה זה כתב היד של וידאו לתאר בפירוט את צנתור של העורק איחתי דיסטלי של חזיר, בטכניקה יכול לחול על ההליכים לשחזור שאינם. ראוי לציין, צנתור עורק הזרוע חזיר שימש כדי למדוד לחץ דם עורקי ופרמטרים גזים בדם במהלך ניתוח עמוד השדרה המותני עם מדידות גפה הינד (המידע מהחלק הזה של הניתוח לא יוצג).

Protocol

כל ההליכים על חיות ניסוי המתוארים ' וידאו ' והן כתב היד אושרו על ידי טיפול בעלי חיים מוסדיים ועל שימוש הוועדה באוניברסיטת אלברטה

1. ניתוח בהרדמה והכנה כירורגי של החזירים.

  1. Premedicate 50 ק ג צמחי תרבות מסורתיים-יורקשייר חזירים מסחרי intramuscularly עם הסם הרדמה. קוקטייל המכיל קטמין הידרוכלוריד (22 מ"ג/ק"ג,), חריגות השירותים הווטרינריים הידרוכלוריד (2.2 מ"ג/ק"ג), glycopyrrolate הידרוכלוריד (10 µg/kg).
  2. להגדיר את כל הציוד מעורב עם ניטור פרמטרים קליניים בסוף הטבלה ליד ראש החזיר. ודא שהציוד לא להגביל את הגישה החזיר. לייצר מדידת לחץ דם עורקי מדויק על-ידי הצבת מתמר לחץ במישור האופקי, הלב.
  3. עזים ומתנגד החזירים עם גז איזופלוריין בשאיפה (4%-5% איזופלוריין-500-1000 mL/min O2) באמצעות מסיכת פנים בגודל תקין. רואה את מיתרי עם laryngoscope וטרינרי (17-25 ס מ להב ישרה) ולהחיל אקטואלי 10% לידוקאין לעיקור אל מיתרי להגביל את הסיכון של חסימת עווית בית הקול ואת דרכי הנשימה.
  4. לצנרר את החזירים על ידי החדרת צינור אנדוטרכאליות בעצור (9.0 מ מ קוטר פנימי (ID)) דרך מיתרי ולתחזק הרדמה בגז איזופלוריין (0.5% - 3.0% איזופלוריין-1000-2000 mL/min O2). לאוורר את החזיר מחוברת למכונת הנשמה מכניות (18-22 נשימות לדקה), להבטיח כל גז הרדמה שפג תוקפם לנקות וכי פרקו מחוץ חבילת כירורגית. להעריך את הרמה של הרדמה על ידי הטון הלסת, ואת הדוושה והן palpebral תגובות רפלקס.
    הערה: להזריק עירוי תמיסת הרטמן (מס הכנסה, 10-50 מ"ל/ק"ג/שעה; ראה שלב 1.6) כדי לשפר את תפקוד והמודינמיקה ולהפחית איזופלוריין גז הרדמה המושרה דיכאון של פלט לב וכלי דם חזיר26.
  5. מאובטחת אוקסימטר השטח הרירית של הלשון עם קלטת רפואי על קצב הלב צג ורוויה של חמצון הדם ההיקפיים (SpO2). הוספה חום בדיקה כ 2-4 ס מ לתוך חלל האף כדי לפקח על טמפרטורת הגוף. מקם את החזירים בשולחן מחומם כדי לשמור על טמפרטורת גוף נורמלית (38-40 מעלות צלזיוס) במהלך הליך כירורגי.
  6. ודא עקרות כירורגית עם הכנת הרקמה הנכונה.
    1. לנקות את השטח החיצוני של האוזן להתכונן צנתור ורידי עם 10% povidone-יוד בניתוחים כירורגיים פתרון ולאפשר את הפתרון אוויר יבש.
    2. עם 20 גרם, 1 אינץ ' קטטר תוך ורידי, catheterize וריד שולית האוזן כדי לספק נוזלים תוך ורידי או (מס הכנסה; 10-50 מ"ל/ק"ג/שעה) או התוספת של עוד סוכנים הרדמה.
    3. לשפר את החזיר והרדמה שיכוך כאבים במידת הצורך עבור הליכים פולשניים עם אינפוזיה הידרוכלוריד remifentanil תוך ורידי רציפה (0.05-0.14 µg/kg/min).
  7. למקם את החזיר במצב שכיבה לרוחב ומתחו בעדינות הקדמי רגל כ 10-12 ס מ מן הכתף. קליפ על השיער על פני העור של האספקט המדיאלי של brachium (forelimb העליון). ציון דרך הדופק הדיסטלי של העורק נחתכו על ידי מישוש.
    הערה: המיקום landmarked של העורק האמתית מטוס אלכסונית עם brachium כ – 9 ס מ olecranon, ו- 5 ס מ ההיבט כופף של מפרק המרפק. עורק הזרוע נוסע הציר הקרוב לקראת השלישי סימטרית של הסקאפולה וחוצה את עצם הזרוע.
  8. בדומה לשלב 1.6, ודא עקרות כירורגית עם הכנת הרקמה הנכונה. נקי לפני השטח של העור עם 10% povidone-יוד כירורגי לקרצף פתרון ולאפשר לפתרון אוויר יבש. לעטוף את האתר צנתור עורק הזרוע עם ארבעה קטנים וילונות כירורגי חד פעמיות.

2. רקמת לנתיחה, צנתור של העורק נחתכו

  1. עושים חתך בעור 6 ס מ עם להב סכין כדי לחשוף את הרקמה הבסיסית. בלשון בוטה לנתח עם קורות חיים לאורך משטחים המדיאלי של הזרוע הדו-ראשי, העמקת הקרע, עד העורק פועמת מזוהה.
  2. השתמש ספוגיות כותנה בעדינות להקניט משם את adventitia מבתי עורק הזרוע, עצב התווך, וריד איחתי; מבנים הנמצאים בסמיכות ובתוך אותו מטוס fascial. דיסקציה עדינה נדרש, חשוב להבטיח פגיעה מינימלית עצב התווך במהלך ההליך. עורק הזרוע נמצא כ 2.0-2.5 ס מ מתחת לעור המדיאלי החרטום והזרוע, לרוחב כדי antibrachii fasciae טנזור ויש מ מקטע קטן של ראש המדיאלי שריר הסובך27,28.
    הערה: במקום מפסק לשמור את החתך בעור פתוח, ומאפשר גישה קלה יותר עורק הזרוע. במקום מפסק השני (אופציונלי) לסייע עוד יותר כלי חשיפה.
  3. להרטיב כל רקמות עם מלחית (37 מעלות צלזיוס) רוברט כולו לשמור על שלמות מבנית יותר ורקמות משופרת טיפול במהלך ההליך.
  4. ליצור מנהרה מתחת העורק עם מלקחיים קהות, ולאחר מכן לעבור שלושה 2-0 polyglactin התפרים מתחת העורק. במכוון, השאירו את הקצוות של. התפר ארוך יחסית (3-4 ס מ) כדי לאבטח את הצנתר העורק. להוסיף "תפר רופף עניבה" המאפשר קטטר מהירה והידק, התפרים הראשון שני מופרדים 1.0 ס מ אחד מהשני, הם קרובים התפר דיסטלי השלישית כ 1.5-2.0 ס"מ. מאתרים ומפסיקים את התפר דיסטלי ביותר תחילה כדי occlude את העורק.
  5. הוספת G 22, 1 אינץ ' קטטר ורידי היקפיים לתוך העורק, ואז להתקדם הקטטר (לחלוטין הרכזת קטטר) הנחה stylet לתוך הכלי. חלקית למשוך את stylet הצנתר להמחיש דם עורקי, להבטיח את מיקום כלי נאותה של הקטטר. לאחר מכן, בחוזקה לאבטח את הצנתר בתוך הכלי על ידי קשירת את התפר באמצע. הסר את stylet, במהירות קאפ הקטטר כדי למזער את הדימום.
  6. לרוקן את החתך ואת קטטר עם מלחית (37 מעלות צלזיוס). לקשור את התפר מקורב ביותר, חשוב לוודא כי התפר דיסטלי בחוזקה מאובטח סביב ה-hub קטטר זה משפר את יציבות קטטר, מפחיתה גלישה מקרית של הקטטר העורק (קרי, במהלך שינוי מיקום חזיר).
    הערה: אם המיקום הראשוני של הקטטר לתוך העורק נכשלת, או הכלי פצוע, יחזירו את הצנתר לתוך העורק במיקום כ 0.25 ס מ proximal לאתר הכנסת קטטר הראשונית.
  7. לצרף לקו סיומת תוך ורידי מס הכנסה מלא עם מתמר לחץ הדם בעורק מחובר צנתר ולאחר מכן שטיפה באתר כירורגית עם מלחית (37 מעלות צלזיוס), שמירה על לחות, רקמות ובמהירות לנקות כל דם נשפך לתוך הרקמה שמסביב . לרוקן את הקטטר עם תמיסת מלח כדי להבטיח patency קטטר למנוע קרישי דם ויוצרים לאורך הקיר קטטר.
    הערה: לבדוק אם כשל בקו מתמר לחץ דם עורקי (קרי, דליפות), צור מתמר בסיסית על-ידי מכוונת מדידות לחץ הדם בעורק צג ולהבטיח תצורות גל תקין לחץ דם עורקי.
  8. ודא קטטר המשך patency על ידי שמירה על יציאת סומק של הקו סיומת מווסת מעל 250 מ מ כספית, עם שקית ותחבר לחץ אספקת 3-5 mL/min מס הכנסה.
    1. אופציונלי: מקום שני 2-0 פוליפרופילן או שני תפרים polyglactin 2-0 סביב קטטר לרכזת או סיומת תוך ורידי רכזת הקו כדי לשפר את יציבות קטטר בתוך העורק.

3. רקמות הסגר ואת מיקום הגוף

  1. סגור את השריר שכבות עם דפוס פשוטה בתפר רצוף עם polyglactin 2-0 תפר על מחט חיתוך או מחודדות ולסגור את העור בתבנית בתפר פשוט קטע 2-0 בתפר פוליפרופילן על מחט חיתוך.
    הערה: לסירוגין, polyglactin 2-0 או 2-0 פוליפרופילן התפרים ניתן לסגור שריר ועור.
  2. מקם את החזיר recumbency הגחוני על-ידי סיבוב בבטן של חזיר שכיבה לרוחב לכיוון השולחן כירורגי. שמאל צלעות חזיר שכיבה לרוחב הוא לסובב בכיוון השעון, תוך זכות צלעות חזיר שכיבה לרוחב מסובבים עם כיוון השעון של מונה.
  3. מקם את forelimb catheterized בזווית של 40° ' עד האמצע של עמוד השדרה של החזיר. המיקום forelimb הזה יוצר את זרימת הדם בעורקים הטוב ביותר, את המידות המדויקות ביותר של לחץ דם עורקי.

4. ניטור פרמטרים קליניים

  1. למדוד פרמטרים והמודינמיקה, מערכת הנשימה, כמו גם הטמפרטורה לאורך כל הליך הרדמה וכירורגי כולו באמצעות ציוד ניטור תקין.

תוצאות

צנתור עורק הזרוע מאפשר ניטור רציף של לחץ דם עורקי, לסירוגין דגימה של דם עורקי במהלך ניתוחים המורחבת בחזיר. נמדדו פרמטרים שנאספו מ 50 ק ג צמחי תרבות מסורתיים-יורקשייר שבע חזירים מסחרי כפי שמתואר. הזמן הכולל הנדרש כדי catheterize את עורק הזרוע היה 35.2 ± 4.4 דקה landmarking העורק הראשונית ס...

Discussion

צנתור עורקי כדי למדוד לחץ דם עורקי ולאסוף דגימות דם למדידות גזים בדם עורקי הקימה במגוון רחב של מיני בעלי חיים5,6,7,8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 1...

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי מוסדות הקנדי למחקר בריאות וקרן קנדה חדשנות מענק כדי Mushahwar ק (פ'). א Toossi נתמכה על ידי וניהר קנדה במלגה ללימודי תואר שני, אלברטה מחדשת - פתרונות בריאות Studentship לתואר שני, המלכה אליזבת השנייה במלגה ללימודי תואר שני. V.K. Mushahwar הוא כיסא מחקר קנדה שיחזור פונקציונלי. ברצוננו להודות מר ג'יי ערימת הפקות רחוב מוס על עזרתו עם הפקה שמע, צוות של מכון מחקר רפואי כירורגי לסיוע שלהם עם ההליכים.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
0.9% NaCl (Saline) SolutionEMRNJB1322P1 x1 liter bag
10% Lidocaine sprayAstraZenecaDIN:02039508 / 1 x  50 ml  bottle
10% Povidone-Iodine scrubPurdue Pharma5212321 x 500 ml bottle 
20 ga 1-inch angiocatheterBecton Dickinson3814331 x angiocatheter
2-0 polyglactin suture (Vicryl)EthiconJ339H2-0 vicryl / 1 packet of suture
2-0 polypropylene suture (Prolene) Ethicon8833H2-0 prolene / 1 packet of suture
22 ga 1-inch angiocatheterBecton Dickinson3814231 x angiocatheter
9 ID mm endotracheal tubeJorvetJ0835P1 x endotracheal tube
Arterial blood pressure IV lineArgon Medical Devices1124111 x arterial blood pressure IV line
Disposable drapesHalyard Sales LLC897314-8 x disposable drapes 
Glycopyrrolate hydrochloride SandozDIN:02039508 / 1 x 20ml vial
IsofluraneAbbott Animal  Health05260-51 x 250ml bottle
Kelly forceps-curved (14cm)Stevens162-7-388-10  instruments
Ketamine hydrochlorideVetoquinolDIN:02374994 / 1 x 10ml vial
Lactated Ringer's SolutionHospira0409-7953-094 x1 liter bag
Metzenbaum scissorsFine Science14518-18
Miller laryngoscope bladeWelch Allyn68044182 mm length  / 1 instrument
Nasal temperature probeSurgivetV34171 probe
Needle DriversStevens162-V98-422 instruments
Q tip applicatorsFisher Scientific22-037-96020-40  app
Remifentanil hydrochlorideTEVADIN:0234432 / 1 mg vial
Surgivet advisor: Vital signs monitorSurgivetV92031 monitor
Weitlaner retractorStevens162-11-602 2 retractors
Xylazine hydrochlorideBayerDIN:02169606 1 x 50ml bottle

References

  1. Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
  2. Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
  3. Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
  4. Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
  5. Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now?. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
  6. McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
  7. Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
  8. Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
  9. Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology - Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
  10. Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
  11. Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
  12. Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
  13. Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
  14. Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
  15. Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
  16. Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
  17. Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
  18. Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
  19. Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
  20. Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
  21. Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
  22. Malavasi, L. M. . Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , (2015).
  23. Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
  24. Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
  25. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 636-638 (1930).
  26. Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
  27. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 302-304 (1930).
  28. Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
  29. Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
  30. Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
  31. Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
  32. Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
  33. Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
  34. Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
  35. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 804-810 (1930).
  36. Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
  37. Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

145

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved