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  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

我们提供一种简单而有效的方法,将治疗E18.5胸腺素的2'脱氧腺苷移植到裸鼠的肾胶囊中。该方法应辅助研究胸腺上皮细胞功能和T细胞成熟。

摘要

胸腺是重要的中央免疫器官,在T细胞的发育和分化中起着至关重要的作用。胸腺移植是研究胸腺上皮细胞功能和T细胞在体内成熟的重要方法。在这里,我们将描述在我们的实验室中使用的实验方法,将2'-脱氧腺苷(以耗尽供体的淋巴细胞)治疗胚胎胸腺移植到贫血裸鼠的肾脏胶囊中。此方法既简单又高效,不需要特殊技能或设备。通过这一简单方法获得的结果表明,移植胸腺能有效支持受体的T细胞生产。此外,还将进一步阐明与议定书有关的若干要点。

引言

胸腺是中央免疫器官,胸腺胸腺细胞内经过正阴性选择,成为成熟的T细胞1,2。异常阳性或阴性选择分别导致免疫缺陷或自身免疫性疾病3,4。因此,胸腺器官移植是研究供体胸腺中T细胞选择过程的重要途径。这种方法在分析由基因突变介导的胸腺上皮功能时尤为重要,基因突变在突变5时引起胚胎致命表型。

为了研究受体的T细胞在移植胸腺中的成熟,有必要消耗胸腺内的供体淋巴细胞。为此,胚胎14天、15天或16天(E14,E15,E16)胸腺通常选择6,7。从更成熟的阶段胸腺也可以成功地耗尽捐赠者的淋巴细胞,通过治疗2'-脱氧腺苷。然而,关于消耗淋巴细胞和使用较老胸腺培养的详细方案之前没有描述8,9。虽然移植协议已被几个研究10,11引入,但进一步修改和改进这些协议是必要的。

我们的协议分为两部分:(i) 在含有2'脱氧腺苷的培养物中,通过培养物从晚期E18.5胸腺中消耗T淋巴细胞。(二) 将培养的胸腺移植到接受者体内。在此过程中,我们开发了一种简单的方法,将大组织(E18.5胸腺)输送到肾胶囊中,降低了肾损伤的几率。在关注后期胸腺的同时,我们的方案也可以直接用于或修改胸腺移植,用于不同发育阶段或其他类似大小的组织。

研究方案

所提出的方案符合暨南大学伦理委员会关于动物护理的指导方针。

注:所用材料列在"材料表"中。

1.胚胎胸腺的分离

  1. 在实验前对所有手术器械进行高压灭菌,用70%乙醇对工作台/机进行灭菌。
  2. 使用二氧化碳,麻醉和安乐死怀孕的雌性小鼠(成功交配后18.5天)。然后用70%乙醇擦拭腹部区域。
    注: 在这里,我们交配Insm1+/lacZ女性和Insm1+/lacZ男性。在从子宫分离胚胎之前,对五巴比妥进行内胎内注射,并为每个胚胎进行斩首。
  3. 使用剪刀,从膀胱开始,在腹部做一个"V"形的切口,一直运行到子宫的每个角。
  4. 使用剪刀,切割中庭和子宫颈/阴道,并收集子宫。将子宫放入含有冷磷酸盐缓冲盐水(PBS)的培养皿中。接下来,通过将前子宫壁从一个子宫角切割到另一个子宫角,露出包裹中的胚胎。使用细钳子,剥去包裹的二叶精组织,并切断脐带以释放胚胎。将所有胚胎放在新的培养皿中,直到胸腺分离。
  5. 用70%的酒精擦拭胚胎,并将其放入新的培养皿中。从此步骤开始,确保保持无菌条件。
  6. 用剪刀剪下颚,取出胚胎的头部,用纸巾排血。接下来,将胚胎固定在同一个培养皿上。
    注:我们为Insm1和lacZ基因分型切出每个胚胎的尾部。
  7. 使用剪刀,沿轴线水平切割侧胸壁,然后切开隔膜以打开胸部。胸腺现在应该是两个白色的叶位于气管前面,毗邻心脏。
  8. 将弯曲的尖钳放在胸腺后面,然后轻轻拉出胸腺。请务必检查胸腺的完整性,以确认它包含两个关节叶。
  9. 用1x PBS清洗胸腺,并在立体显微镜下修剪结缔组织和血管。

2. 分离胚胎胸腺的培养

  1. 在24孔板的每口孔中加入500μL培养基(RPMI1640 + 15%胎儿牛血清(FBS)=100 U/mL青霉素和100μg/mL链霉素。将干净的胸腺米转移到井中,每口井有一个胸腺。图 1显示了培养基中分离的胸腺。
  2. 在每个胸腺中含有的井中,将2'-脱氧糖苷添加到1.25 mM的最终浓度中。
  3. 将孤立的胸腺培养8天,每两天刷新一次培养基质和2'脱氧核糖核糖核病。

3. 在肾胶囊中建立下帽空间

  1. 要准备针头和夹紧的输液管(图2),请用剪刀以45°角切割管部分上的头皮静脉针。
  2. 称量裸鼠,然后用五巴比妥麻醉它(1.5%)注射(75微克/克体重)。
  3. 当未观察到脚趾捏合后有反射时,将鼠标放在操作台上的右侧位置。
  4. 用0.5%的波维酮碘拭子,在手术区从身体内到外侧对皮肤进行两次消毒。
  5. 使用剪刀,使一个5-9毫米的皮肤切口平行于脊柱在左肾区域(在最后一根肋骨和iliac峰之间)。接下来,通过切开皮下组织和肌肉打开腹腔,并暴露肾脏。
  6. 肾脏暴露后,一手使用一对钳子将肌肉和脂肪组织从脊柱侧切口边缘提起。用另一只手,轻轻地挤压肾脏(或者,肾脏可以用双手的手指挤出)。
  7. 为确保肾胶囊在手术过程中潮湿,用盐水(0.9%NaCl)润湿肾脏表面。
  8. 在肾胶囊中创建一个刻痕,并使用步骤 3.1 中准备的针头轻轻划伤右下角的肾胶囊。刻痕的大小应为肾脏的1⁄2⁄2/3宽度;不要划伤肾脏。
  9. 将步骤 3.1 中准备的输液管滑入肾胶囊上的缺口中。沿着肾脏的长侧轻轻分离肾胶囊,直到在肾胶囊内达到3⁄4mm。拉回输液管;建立肾下囊空间。

4. 移植胚胎鼠胸腺

  1. 洗涤在步骤 2.3 中两次培养的胸腺,以耗尽培养基。
  2. 将步骤 3.1 中准备的夹击输液管连接到注射器连接接口处的注射器。将准备好的胸腺缓慢吸入输液管。
  3. 轻轻地将夹紧的输液管插入肾胶囊,并到达上部杆。将胸腺送入肾胶囊;缓慢收回管,同时轻轻推动注射器的柱塞。
  4. 使用酒精灯,稍微加热步骤 3.1 中准备的针头。在确保整个胸腺位于下盖空间内后,使用加热针烧结刻痕。
  5. 烧灼后,恢复腹腔的肾脏。缝合围肠和肌肉。
  6. 使用经过修改的中断式床垫缝合线,关闭皮肤切口(至少系三节,并切掉任何多余的线)。
  7. 使用波维酮碘拭子,消毒切口。为了减轻疼痛,在手术过程中进行皮下注射氟辛(2微克/克体重),然后在手术后3天进行。
  8. 直到完全从麻醉中恢复过来,在红外灯下保持小鼠温暖。
  9. 在解剖移植的胸腺和进行前文型分析之前,将胸腺留在受体的肾胶囊中8周,并进行前所述5、8、9的体称性分析。

结果

这里我们展示的分离的E18.5胸腺包含两个完整的叶 (图1)。此外,我们显示头皮静脉针被剪切,形成输液管的斜面 (图 2)。接下来,我们还展示了在受体小鼠生长8周后移植在肾胶囊(图3A)和胸腺中所状的胸腺位置的代表性图像(图3B)。为了确定T细胞是否在移植胸腺的裸小鼠中产生,在移植的胸腺和外周血液中,我们使?...

讨论

胚胎胸腺肾下囊移植是研究胸腺上皮细胞功能和T细胞在体内成熟过程的重要方法。虽然对胚胎胸腺器官培养和移植有若干实验性研究6,7,我们的方案提供了一个简单的替代程序,对小鼠胚胎胸腺培养和肾下囊移植较老的胸腺组织。

我们的协议通过合并几个不同的修改6,7,10,11来改进以前的协议。 ...

披露声明

未声明任何利益冲突。

致谢

这项工作得到了暨南大学对S.J.的启动包和中国广州科技项目(授权号201704020209至S.J.)的支持。我们感谢Amy Botta(多伦多约克大学生物学系,加拿大M3J 1P3)对手稿进行校对和编辑。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
0.5% Povidone iodineShanghai Likang Distinfectant Hi-Tech Co.Ltd20171113
0.9% Sodium Chloride InjectionShandong Qilu Pharmaceuyical Co.Ltd2C17112101
1 mL Sterile syringeSolarbioYA1090
2’-DeoxyguanosineMECHY-175631M in DMSO, 1:800 using (final 1.25mM)
24 Well PlateCorning IncorporatedCostar 3524
4-0 Surgical suture needles with threadNingBo Cheng-He Microsurgical Instruments Factory ChinaYY0166-2002
60mm Cell Culture DishCorning Incorporated430166
70% ETOHLIRCON20181221
APC anti-mouse CD8a antibodiesBiolegend1007111:100
Bent-tip fine forceps, JZ 10 cmShanghai Medical Devices Group Co.,Ltd.JD1060To sterilize before use
Cefmetazole Sodium for InjectionSichuan Hexin Pharmaceutical co,Ltd17062111 0796mg in 0.5ml 0.9% NaCl solution, 7.5ul/g body weight
Dissecting scissors, JZ 10 cmShanghai Medical Devices Group Co.,Ltd.JC2303To sterilize before use
Fetal bovine serum (FBS?GIBCO10270-106
Fine forceps, JZ 10 cmShanghai Medical Devices Group Co.,Ltd.JD1050To sterilize before use
Flow cytometryBDFACSCanto II
Flunixin meglumineMACLINF8101471mg in 1ml 0.9% NaCl solution,2ul/g body weight
Forceps, Dumont#5World Precision Instruments14098To sterilize before use
Infrared lampOTLANMT-810
Needle holder, JZ 14 cmShanghai Medical Devices Group Co.,Ltd.J32010To sterilize before use
PE anti-mouse CD4Biolegend1005111:100
Penicillin-Streptomycin mixtureGIBCO151401221:100
Pentobarbital sodium saltSigmaP37611.5% solution in PBS, 75ug/g body weight
RPMI1640 MediumGIBCOC14-11875-093
Scalp vein needleShanghai Kindly Medical Instruments Co., LtdXC001
Spring scissorsVANNASS11014-12To sterilize before use
stereomicroscopeOLYMPUSSZ61
Sterile 15cm cotton swabGuangzhou Haozheng20150014
Sterile gauze 5 cm x 7 cm-8PGuangzhou Haozheng20172640868
Sterile PBS (1x)GENOMGNM20012
Tissue forceps, JZ 12.5 cmShanghai Medical Devices Group Co.,Ltd.J41010To sterilize before use

参考文献

  1. Klein, L., Kyewski, B., Allen, P. M., Hogquist, K. A. Positive and negative selection of the T cell repertoire: what thymocytes see (and don't see). Nature Reviews Immunology. 14, 377-391 (2014).
  2. Hogquist, K. A., Baldwin, T. A., Jameson, S. C. Central tolerance: learning self-control in the thymus. Nature Reviews Immunology. 5, 772-782 (2005).
  3. Spits, H., Touraine, J. L., Yssel, H., de Vries, J. E., Roncarolo, M. G. Presence of host-reactive and MHC-restricted T cells in a transplanted severe combined immunodeficient (SCID) patient suggest positive selection and absence of clonal deletion. Immunological Reviews. 116, 101-116 (1990).
  4. Nagamine, K., et al. Positional cloning of the APECED gene. Nature Genetics. 17, 393-398 (1997).
  5. Yanagihara, T., et al. Intronic regulation of Aire expression by Jmjd6 for self-tolerance induction in the thymus. Nature Communications. 6 (8820), (2015).
  6. Jenkinson, W., Jenkinson, E., Anderson, G. Preparation of 2-dGuo-Treated Thymus Organ Cultures. Journal of Visualized Experiments. (18), (2008).
  7. Bosselut, R., Vacchio, M. S. . T-Cell Development: Methods and Protocols. , (2016).
  8. Anderson, M. S., et al. Projection of an immunological self shadow within the thymus by the aire protein. Science. 298 (5597), 1395-1401 (2002).
  9. Takaba, H., et al. Fezf2 Orchestrates a Thymic Program of Self-Antigen Expression for Immune Tolerance. Cell. 163 (4), 975-987 (2015).
  10. Morillon, Y. M. 2. n. d., Manzoor, F., Wang, B., Tisch, R. Isolation and transplantation of different aged murine thymic grafts. Journal of Visualized Experiments. (99), e52709 (2015).
  11. Caetano, S. S., Teixeira, T., Tadokoro, C. E. Intravital imaging of the mouse thymus using 2-photon Microscopy. Journal of Visualized Experiments. (59), e3504 (2012).
  12. JoVE Science Education Database. Blood Withdrawal I. Lab Animal Research. , (2019).
  13. Gierl, M. S., Karoulias, N., Wende, H., Strehle, M., Birchmeier, C. The zinc-finger factor Insm1 (IA-1) is essential for the development of pancreatic beta cells and intestinal endocrine cells. Genes & Development. 20 (17), 2465-2478 (2006).
  14. Tao, W., et al. Haploinsufficiency of Insm1 Impairs Postnatal Baseline β-Cell Mass. Diabetes. 67 (12), 2615-2625 (2018).

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