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  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
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  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

该协议提出了一个改进的方法,以获得可吸收的缝合的瞬时心肌肥大,模拟左心室肥大减少后,消除压力过载。它可能对心肌肥大先天性研究很有价值。

摘要

基于小鼠两次横向主动脉收缩(TACs),证明心肌肥大预后(MHP)可以减轻心肌细胞肥大,减缓心力衰竭的进展。然而,对于新手来说,MHP模型通常很难建立,因为呼吸机操作的技术障碍,反复打开胸部,以及脱体引起的出血。为了促进这种模式,提高手术成功率和减少出血的发生率,我们改用可吸收的缝合线进行第一次TAC梳理,采用无呼吸机技术。使用2周的可吸收缝合,我们证明这个程序可能会导致严重的心肌萎缩在2周:手术后4周,心肌萎缩几乎完全退回到基线。使用此协议,操作员可以轻松掌握 MHP 模型,降低操作死亡率。

引言

缺血性先导是一种现象,诱发短暂的非致命性缺血发作和对心脏的再灌注,并有能力显著减少心肌损伤1。鉴于缺血性先决条件的明显临床意义,如限制心肌梗塞大小2和抑制心室心肌梗塞后心肌复明3,已经有很多研究来解剖机制潜在的心防作用诱导的先决条件4,5。相比之下,其他非缺血的先决条件却很少受到关注。心脏肥大可能钝化在主动脉狭窄患者进行主动脉瓣更换6。在存在病理心肌萎缩状态的地方,很少报告先决条件原理。

1991年,罗克曼等人首次建立了通过横向主动脉收缩(TAC)7导致左心室肥大的小鼠模型。通过在小鼠中两次操作TAC,我们先前已经证明心肌肥大预后(MHP)会导致心脏短暂性肥大刺激,从而使心脏在未来8月对持续的肥大压力更具抵抗力。MHP模型的特点已通过超声波生物显微镜和血动力学评估9得到验证。构建模型的要点是执行胸腔切除术三次,TAC 一周,解散一周,二级 TAC 6 周。然而,去组织可能导致出血,这使得新手难以掌握,也难以推广。此外,给小鼠进行管网也是一项技术挑战。不当的受管可能导致气管损伤、肺气管损伤,甚至导致小鼠死亡。因此,在构建MHP模型的同时,改进一些程序是必要和有价值的。

为了降低模型的难度并增加其成功率,我们切换到可吸收的缝合线为第一个TAC,并通过测量压力梯度通过回声心动图10下主动脉收缩监测模型的成功。根据我们的初步实验,在压力梯度过低的小鼠中很难诱发足够的心肌肥大,而压力梯度过高的小鼠会发展成急性心力衰竭甚至死亡。模型的理想压力梯度范围为 40–80 mmHg11。此外,这个实验没有依靠呼吸机,它可以有效地避免呼吸机相关的技术操作和伤害12。

研究方案

所有程序都是按照美国国家卫生研究院出版的《 实验室动物的护理和使用 指南》进行的(NIH出版物第85-23号,1996年修订)。C57BL/6J雄性小鼠(8~10周,20~25克)由南方医科大学动物中心提供。

1. 术前准备

  1. 用针架捏掉 25 G 针的尖端,用像支架这样的硬物将其钝化。
  2. 通过针头传递一个5+0可吸收的缝合线,然后弯曲到90°与持有人13。
    注:根据不同的研究目的,研究者可以选择吸收时间不同的可吸收线。在此协议中,我们使用 2 周的可吸收缝合收缩主动脉拱门。
  3. 将另一根 25 G 针弯曲至 120°,并用支架平滑尖端,用作配扎步骤中的垫片。
    注:25 G 针头用作体重 (BW) + 25 g 的小鼠的垫片。使用 26 G 针对小鼠与 19–24 g BW.
  4. 用75%的酒精对手术现场进行消毒。
  5. 将加热垫温度调整为 37 °C。
  6. 准备消毒手术器械(包括1把眼科剪刀、1把微剪刀、2把微手术肘钳、1个针架和1个微型针架)。

2. 麻醉和剃须的感应

  1. 通过在盐溶液中稀释的西拉津(5毫克/千克)和氯胺酮(100毫克/千克)的混合物(0.9%NaCl)进行腹膜注射,使小鼠麻醉。用负踏板戒断反射确认完全麻醉。
  2. 通过用缝合针固定切口和用胶带固定四肢,使鼠标保持超细位置。
  3. 涂抹脱毛霜,去除颈部和西福的头发。用碘对该地区进行消毒,然后用75%的酒精消毒。

3. 手术

  1. 用手术刀在超胸缺口和胸部之间的中线位置切口超过 10 毫米。然后,将皮肤和表面筋膜分开。
  2. 通过从骨部角度计算肋骨来识别第一个间距空间。在第一个间歇空间中执行切口,并尽可能靠近胸骨。用肘部钳子模糊地穿透它, 打开这个空间。
  3. 轻轻地将帕奇马和胸腺分开,直到可以看到横向主动脉拱门。
    注意:不要损坏胸膜,以避免肺气管。
  4. 通过主动脉之间的主动脉拱门下的5–0可吸收缝合,用闩锁针14。请确保手术场内可见胸动脉、左侧普通胡萝卜动脉和左下腹动脉。
  5. 将垫片放在第 1.3 步准备的隔横主动脉上,并在垫片上执行双结,并在第 3.4 步中用缝合线进行。
    注意:垫片的尖端必须钝,以避免在取出横向主动脉时损坏它。
  6. 快速但轻轻地拆下垫片,然后切开缝合线的末端。
  7. 使用 5–0 尼龙缝合线关闭第一个间歇空间和皮肤。用75%的酒精再次消毒皮肤。
  8. 将鼠标放在加热垫上,以促进恢复。手术后头3天静脉注射丁丙诺啡(0.1毫克/千克,q12h)。
  9. 当老鼠恢复知觉时,将鼠标放回笼子,在12小时光/暗循环室中。
  10. 执行与上述所有步骤相同的虚假手术,但没有收缩(步骤 3.5)。
  11. 为丝绸缝合组执行手术,与上述所有步骤相同,但在第 1.2 步使用 5–0 丝缝合。

4. 成功配对和测量的回声心电图评估

  1. 手术后在日(D)7进行心电图评估。
  2. 麻醉小鼠3%通过吸入吸入感应,1.5%保持麻醉深度,0.5+1 L/分钟氧气流速。
  3. 将鼠标置于平台上的超平位置,保持在 37 °C,并将四肢贴在电极上。
  4. 用脱毛霜去除胸毛,在鼠标的胸部涂抹超声波耦合剂。
  5. 使用 30 MHz 探头评估横向主动脉收缩。
    1. 将平台向最左边倾斜。将探针保持垂直位置,并沿着右侧栏杆线将其放在胸部。然后,在 B 模式下操纵 X 轴和 Y 轴,直到主动脉拱门清晰可见。
    2. 通过B模式定位收缩以获得主动脉拱视图11。使用彩色多普勒模式和脉冲波测量峰值流速,并选择速度超过 3,000 mm/s 的小鼠作为 TAC 组(值基于初步实验)。
    3. 根据伯努利方程11的修改版本计算压力梯度:
      压力梯度 =4 x V最大2
      注:横向主动脉收缩模型的理想压力梯度范围为40-80 mmHg11。
    4. 使用 Cine 商店和帧存储保存数据和图像。
  6. 使用 30 MHz 探头评估左心室 (LV) 的尺寸和收缩度。
    1. 将平台重置为水平位置。相对于左侧的抛物线,将探头保持在 30° 逆时针。
    2. 使用 B 模式并操纵 X 和 Y 以获得清晰而完整的心轴视图。
    3. 按 M 模式显示指示线。使用 Cine 商店和框架存储获取图像,以以后测量 LV 腔室尺寸、部分缩短和 LV 壁厚度。
  7. 一旦完成,停止异氟烷吸入,让小鼠从麻醉中恢复过来。然后,将动物送回笼子,在12小时光/暗循环室。
  8. 在手术后的D14和D28上,重复上述步骤测量心脏参数,然后收获心脏进行组虫学研究。

结果

在这项研究中,我们随机将45只小鼠分成三组,分别是假象组、丝缝组和可吸收缝合组(TAC之后D0(基线)、D14和D28上每组的数量分别为15、10和5)。手术后的D7、D14、D21和D28,收缩的峰值速度由心电图确定。我们发现,在TAC之后的第二周,收缩处的血流速度仍然大于3,000毫米/秒,即使使用可吸收的缝合线收缩主动脉拱门(图1A)。此外,可吸收缝合组收缩时的压力梯度在2周...

讨论

在心脏非缺血预科中,仍然存在着一个大大不足的区域。根据我们以前的研究,我们改用可吸收的缝合线来改善心肌肥大预后模式。

在先前的报告中,许多调查人员使用丝绸缝合来收缩主动脉拱门8、14、15号。丝绸缝合很容易获得,经常用于手术伤口缝合,组织结块和组织固定。在此协议中,我们用?...

披露声明

作者没有什么可透露的。

致谢

这项工作得到了中国国家自然科学基金委员会(81770271:给Y,廖),中国国家自然科学基金联合基金(U1908205:给Y,廖)和广州市科技规划项目(201804020083:廖博士)的资助。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Absorbable suture (5-0)Shandong Kang Lida Medical Products Co., Ltd5-0Ligation
Animal ultrasound system VEVO2100Visual SonicVEVO2100Echocardiography
Cold light illuminatorOlympusILD-2Light
Heat pad- thermostatic surgical system (ALC-HTP-S1)SHANGHAI ALCOTT BIOTECH COALC-HTP-S1Heating
IsofluraneRWD life scienceR510-22Inhalant anaesthesia
Matrx VIP 3000 Isofurane VaporizerMidmark CorporationVIP 3000Anesthetization
Medical nylon suture (5-0)Ningbo Medical Needle Co.5-0Close the skin
Pentobarbital sodium saltMerck25MGAnesthetization
Precision electronic balanceDenver InstrumentTB-114Weighing sensor
Self-made spacer25-gauge needle
Silk suture (5-0)Yangzhou Yuankang Medical Devices Co., Ltd.5-0Ligation
Small animal microsurgery equipmentNapoxMA-65Surgical instruments
Transmission GelGuang Gong pai250MLEchocardiography
Veet hair removal creamReckitt BenchiserRQ/B 33 Type 2Remove hair of mice
Vertical automatic electrothermal pressure steam sterilizerHefei Huatai Medical Equipment Co.LX-B50LAuto clean the surgical instruments

参考文献

  1. Murry, C. E., Jennings, R. B., Reimer, K. A. Preconditioning with ischemia: a delay of lethal cell injury in ischemic myocardium. Circulation. 74 (5), 1124-1136 (1986).
  2. Ban, K., et al. Phosphatidylinositol 3-kinase gamma is a critical mediator of myocardial ischemic and adenosine-mediated preconditioning. Circulation Research. 103 (6), 643-653 (2008).
  3. Wu, Z. K., Iivainen, T., Pehkonen, E., Laurikka, J., Tarkka, M. R. Ischemic preconditioning suppresses ventricular tachyarrhythmias after myocardial revascularization. Circulation. 106 (24), 3091-3096 (2002).
  4. Hausenloy, D. J., Yellon, D. M. Preconditioning and postconditioning: underlying mechanisms and clinical application. Atherosclerosis. 204 (2), 334-341 (2009).
  5. Heusch, G. Molecular basis of cardioprotection: signal transduction in ischemic pre-, post-, and remote conditioning. Circulation Research. 116 (4), 674-699 (2015).
  6. Lund, O., Emmertsen, K., Dorup, I., Jensen, F. T., Flo, C. Regression of left ventricular hypertrophy during 10 years after valve replacement for aortic stenosis is related to the preoperative risk profile. European Heart Journal. 24 (15), 1437-1446 (2003).
  7. Rockman, H. A., et al. Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy. Proceedings of the National Academy of Sciiences of the United States of America. 88 (18), 8277-8281 (1991).
  8. Wei, X., et al. Myocardial hypertrophic preconditioning attenuates cardiomyocyte hypertrophy and slows progression to heart failure through upregulation of S100A8/A9. Circulation. 131 (17), 1506-1517 (2015).
  9. Huang, J., et al. Ultrasound biomicroscopy validation of a murine model of cardiac hypertrophic preconditioning: comparison with a hemodynamic assessment. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 313 (1), 138-148 (2017).
  10. Oka, T., et al. Cardiac-specific deletion of Gata4 reveals its requirement for hypertrophy, compensation, and myocyte viability. Circulation Research. 98 (6), 837-845 (2006).
  11. Li, L., et al. Assessment of cardiac morphological and functional changes in mouse model of transverse aortic constriction by echocardiographic imaging. Journal of Visualized Experiments. (112), e54101 (2016).
  12. Veldhuizen, R. A., Slutsky, A. S., Joseph, M., McCaig, L. Effects of mechanical ventilation of isolated mouse lungs on surfactant and inflammatory cytokines. The European Respiratory Journal. 17 (3), 488-494 (2001).
  13. Wang, Q., et al. Induction of right ventricular failure by pulmonary artery constriction and evaluation of right ventricular function in mice. Journal of Visualized Experiments. (147), e59431 (2019).
  14. Eichhorn, L., et al. A closed-chest model to induce transverse aortic constriction in mice. Journal of Visualized Experiments. (134), e57397 (2018).
  15. Tavakoli, R., Nemska, S., Jamshidi, P., Gassmann, M., Frossard, N. Technique of minimally invasive transverse aortic constriction in mice for induction of left ventricular hypertrophy. Journal of Visualized Experiments. (127), e56231 (2017).

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