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摘要

本协议建立了葡萄糖酸氯己定(CG)诱导的腹膜纤维化的腹膜透析(PD)小鼠模型。与其他PD动物模型相比,目前的模型简单易用。

摘要

腹膜纤维化是腹膜透析(PD)的重要并发症。为了调查和解决这个问题,需要适当的PD动物模型。本协议建立了葡萄糖酸氯己定(CG)诱导的腹膜纤维化模型,该模型模拟PD患者的状况。 腹膜内注射0.1%的CG在15%乙醇中3周(每隔一天给药),在雄性C57BL / 6小鼠中总共9次诱导腹膜纤维化。然后在第22天进行腹膜功能测试。处死小鼠后,收获腹壁壁腹膜和肝脏内脏腹膜。在Masson的三色染色后进行显微镜分析时,它们更厚,纤维化更多。超滤速率降低,葡萄糖质量转运表明CG诱导的腹膜通透性增加。这样建立的PD模型在改善PD技术、透析疗效和延长患者生存期方面具有应用价值。

引言

腹膜透析(PD)是一种肾脏替代疗法。但是,PD存在无法解决的问题。例如,长期PD治疗可引起腹膜损伤,最终导致超滤失败和治疗停止1,23456腹膜纤维化是最严重的并发症之一78。腹膜纤维化的特征是间质内细胞外基质的沉积和积累,以及腹膜910的新血管生成和血管病变。

这些腹膜变化的主要原因是复发性腹膜炎和透析液的非生物相容性,它们是高渗、高葡萄糖、低pH和葡萄糖降解产物积累1112。因此,合适的动物实验模型可以帮助研究人员更好地研究PD治疗过程中腹膜的生理和病理变化。因此,建立动物PD模型对于提高PD技术和透析疗效,延长患者生存期具有重要意义。本研究旨在通过腹膜内(ip)注射葡萄糖酸氯己定(CG)来生成PD小鼠模型,如前所述1314。与其他PD动物模型相比,该PD小鼠模型简单,易于使用且可行。

研究方案

所有小鼠实验均由E-DA医院/义寿大学实验动物中心批准,并根据"实验动物护理和使用指南"(NRC,美国2011)进行处理。雄性C57BL / 6小鼠,7-8周龄,用于本研究。

1. 化学制剂

  1. 通过在15%乙醇中稀释0.1%葡萄糖酸氯己定(CG,见 材料表)来制备化学刺激物。

2. 动物治疗

  1. 指定三只小鼠作为对照组。每隔一天进行 1 mL/kg 0.9% 生理盐水 (NS) 的腹膜内注射 (ip),持续 3 周,共 9 次。
  2. 将三只小鼠分配到腹膜纤维化组。使用葡萄糖酸氯己定(CG)以12.5μL / g体重的剂量腹膜注射0.1%的CG在15%乙醇中(步骤1.1)诱导腹膜纤维化。每隔一天执行一次,持续 3 周,总共 9 次。

3. 腹膜功能检查(改良腹膜平衡试验)

  1. 制备含有4.25%葡萄糖的透析溶液。用注射器抽取0.5mL透析液样品,然后检查透析液样品中的葡萄糖浓度。
    注意:葡萄糖浓度根据己糖激酶/ G6PD方法测定。透析液样品进行L型Glu 2测定,并用生化分析仪进行研究(见 材料表)。这是初始透析液葡萄糖浓度。
  2. 通过肌肉注射唑莱地尔和赛拉嗪(以1:2体积的比例制备,参见 材料表)以20μL / 20gw的剂量麻醉小鼠。此外,在眼睛上使用兽医软膏以防止麻醉下干燥。
  3. 进行腹膜滴注透析溶液(2mL / 20g体重)。
  4. 30分钟后,评估并验证缺乏脚趾夹反射的麻醉深度。然后,在腹部中线(剑突下方)进行垂直切口,然后打开小鼠的腹部并用注射器收集腹膜内液(定义为"体积1")。然后,测量干净干燥的棉花的重量,并将棉花放入小鼠的腹腔中以吸收残留的腹腔内液。最后,再次测量棉花重量。
    注意:棉花的体重增加等于残留腹腔内液的重量。然后,转换为获得的体积(比重:1 g/cm3;定义为"体积2")。最终透析液体积为第 1 卷加第 2 卷。
  5. 使用 0.5 mL 透析液样品(最终透析液)测量葡萄糖浓度。这是最终的透析液葡萄糖浓度。
  6. 使用公式15 计算净超滤:
    figure-protocol-1185
  7. 使用以下公式15计算腹膜通透性:
    figure-protocol-1328

4.腹壁肌肉和肝脏的组织准备及组织学分析

  1. 通过心脏穿刺(静脉切开术) 死小鼠316
  2. 切开腹壁(1 cm x 1 cm)和全肝切除术。将小鼠的腹壁和肝组织在10%中性缓冲福尔马林中固定过夜。
  3. 准备腹壁肌肉和肝脏的3μm厚的石蜡切片,并根据先前发表的报告17进行组织学分析。
  4. 使用形态测量法评估小鼠腹壁的顶腹膜和肝脏表面的内脏腹膜18
  5. 使用统计和绘图软件进行统计分析(见 材料表)。将所有数据表示为平均值± SD,并使用t 检验 19 分析统计显著性。将 P < 0.05 的值定义为显著结果。

结果

在图1AB中,在Masson三色染色17下,腹壁壁壁腹膜明显增厚且纤维化更多,表明在CG暴露组中,腹膜纤维化比对照盐水组(NS)更严重。在图2AB中,肝脏表面的内脏腹膜也明显增厚且纤维化,从而证明在CG暴露组中,腹膜纤维化比对照盐水组(NS)更严重。在图3A中,CG组的超滤速率降低?...

讨论

本研究通过腹腔注射CG提出了小鼠PD模型,结果显示该模型存在腹膜纤维化和功能恶化,模拟PD患者的病情。

协议中有几个关键步骤。首先,为了进行CG或NS的腹腔注射,必须使用镊子拾取小鼠的腹壁皮肤,以防止穿刺引起的腹膜内器官损伤。其次,在收集腹壁腹膜进行组织学分析时,必须避免腹腔注射损伤的区域。

在腹膜纤维化的几种实验动物模型中,?...

披露声明

作者没有什么可透露的。

致谢

我们衷心感谢Shin-Han Tseng对这项研究的批判性讨论和部分执行。本研究得到了台湾E-DA医院研究基金和国立成功大学的EDAHP110003和NCKUEDA110002的支持。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
0.9% Normal SalineY F CHEMICAL CORP., New Taipei City, Taiwan-
10% neutral buffered formalinTaiwan Burnett International Co., Ltd., Taipei City, Taiwan00002A
Automatic biochemical analyzerHitachi Ltd., Tokyo, JapanLabospect Series 008for determining glucose concentration
Chlorhexidine digluconate solution, 20% in H2OSigma-Aldrich, MO, USAC9394diluted to 0.1% with 15% ethanol for injection
EthanolAvantor Performance Materials, LLC, PA, USABAKR8006-05diluted to 15% with normal saline for working concentration
Glucose (Dianeal)Baxter International, Inc., IL, USAFNB9896Commercial dialysis solution (4.25%)
GraphPad Prism 8.0GraphPad Software, Inc., CA, US
L-type Glu 2 assayFUJIFILM Wako, Japan461-32403
Xylazine 20Juily Pharmaceutical Co., Ltd., New Taipei City, Taiwan-
Zoletil 50Virbac Laboratories, Carros, France-

参考文献

  1. Han, S. H., et al. Improving outcome of CAPD: twenty-five years' experience in a single Korean center. Peritoneal Dialysis International. 27 (4), 432-440 (2007).
  2. Kawaguchi, Y., Hasegawa, T., Nakayama, M., Kubo, H., Shigematu, T. Issues affecting the longevity of the continuous peritoneal dialysis therapy. Kidney International Supplements. 62, 105-107 (1997).
  3. Lee, Y. C., et al. Vitamin D can ameliorate chlorhexidine gluconate-induced peritoneal fibrosis and functional deterioration through the inhibition of epithelial-to-mesenchymal transition of mesothelial cells. BioMed Research International. 2015, 595030 (2015).
  4. Nakamoto, H., Kawaguchi, Y., Suzuki, H. Is technique survival on peritoneal dialysis better in Japan. Peritoneal Dialysis International. 26 (2), 136-143 (2006).
  5. Schaefer, F., Klaus, G., Muller-Wiefel, D. E., Mehls, O. Current practice of peritoneal dialysis in children: results of a longitudinal survey. Mid European Pediatric Peritoneal Dialysis Study Group (MEPPS). Peritoneal Dialysis International. 19, 445-449 (1999).
  6. Woodrow, G., Turney, J. H., Brownjohn, A. M. Technique failure in peritoneal dialysis and its impact on patient survival. Peritoneal Dialysis International. 17 (4), 360-364 (1997).
  7. Schmidt, D. W., Flessner, M. F. Pathogenesis and treatment of encapsulating peritoneal sclerosis: basic and translational research. Peritoneal Dialysis International. 28, 10-15 (2008).
  8. Augustine, T., Brown, P. W., Davies, S. D., Summers, A. M., Wilkie, M. E. Encapsulating peritoneal sclerosis: clinical significance and implications. Nephron Clinical Practice. 111 (2), 149-154 (2009).
  9. Di Paolo, N., Nicolai, G. A., Garosi, G. The peritoneum: from histological studies to mesothelial transplant through animal experimentation. Peritoneal Dialysis International. 28, 5-9 (2008).
  10. Fusshoeller, A. Histomorphological and functional changes of the peritoneal membrane during long-term peritoneal dialysis. Pediatric Nephrology. 23 (1), 19-25 (2008).
  11. Goffin, E. Peritoneal membrane structural and functional changes during peritoneal dialysis. Seminars in Dialysis. 21 (3), 258-265 (2008).
  12. Ito, T., Yorioka, N. Peritoneal damage by peritoneal dialysis solutions. Clinical and Experimental Nephrology. 12 (4), 243-249 (2008).
  13. Io, K., et al. SAHA suppresses peritoneal fibrosis in mice. Peritoneal Dialysis International. 35 (3), 246-258 (2015).
  14. Yoh, K., Ojima, M., Takahashi, S. Th2-biased GATA-3 transgenic mice developed severe experimental peritoneal fibrosis compared with Th1-biased T-bet and Th17-biased RORgammat transgenic mice. Experimental Animals. 64 (4), 353-362 (2015).
  15. Karl, Z. J. T., et al. Peritoneal Equilibration Test. Peritoneal Dialysis International. 7 (3), 138-148 (1987).
  16. Lee, Y. C., et al. The clinical implication of vitamin D nanomedicine for peritoneal dialysis-related peritoneal damage. International Journal of Nanomedicine. 14, 9665-9675 (2019).
  17. Goldner, J. A. Modification of the masson trichrome technique for routine laboratory purposes. The American Journal of Pathology. 14 (2), 237-243 (1938).
  18. Cheng, F. Y., et al. Novel application of magnetite nanoparticle-mediated vitamin D3 delivery for peritoneal dialysis-related peritoneal damage. International Journal of Nanomedicine. 16, 2137-2146 (2021).
  19. Ross, A., Willson, V. L. . Basic and Advanced Statistical Tests: Writing Results Sections and Creating Tables and Figures. , 13-16 (2017).
  20. Suga, H., et al. Preventive effect of pirfenidone against experimental sclerosing peritonitis in rats. Experimental and Toxicologic Pathology. 47 (4), 287-291 (1995).
  21. Ishii, Y., et al. An experimental sclerosing encapsulating peritonitis model in mice. Nephrology Dialysis Transplantation. 16 (6), 1262-1266 (2001).
  22. Nishino, T., et al. Antisense oligonucleotides against collagen-binding stress protein HSP47 suppress peritoneal fibrosis in rats. Kidney International. 64 (3), 887-896 (2003).
  23. Mishima, Y., et al. Enhanced expression of heat shock protein 47 in rat model of peritoneal fibrosis. Peritoneal Dialysis International. 23 (1), 14-22 (2003).
  24. Kushiyama, T., et al. Effects of liposome-encapsulated clodronate on chlorhexidine gluconate-induced peritoneal fibrosis in rats. Nephrology Dialysis Transplantation. 26 (10), 3143-3154 (2011).
  25. Nishino, T., et al. Involvement of lymphocyte infiltration in the progression of mouse peritoneal fibrosis model. Renal Failure. 34 (6), 760-766 (2012).
  26. Lua, I., Li, Y., Pappoe, L. S., Asahina, K. Myofibroblastic conversion and regeneration of mesothelial cells in peritoneal and liver fibrosis. The American Journal of Pathology. 185 (12), 3258-3273 (2015).
  27. Kitamura, M., et al. Epigallocatechin gallate suppresses peritoneal fibrosis in mice. Chemico-Biological Interactions. 195 (1), 95-104 (2012).

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