JoVE Logo

登录

需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

开发了一种简单且可扩展的方法来评估Ube3a中错义变异的功能意义, Ube3a是一种基因,其功能的丧失和获得与Angelman综合征和自闭症谱系障碍有关。

摘要

测序在医学中的使用越来越多,已经在人类基因组中发现了数百万个编码变异。这些变异中的许多发生在与神经发育障碍相关的基因中,但绝大多数变异的功能意义仍然未知。本协议描述了Ube3a变异的研究, Ube3a是一种编码与自闭症和安格曼综合征相关的E3泛素连接酶的基因。 Ube3a 的重复或三重与自闭症密切相关,而其缺失会导致Angelman综合征。因此,了解UBE3A蛋白活性变化的效价对临床结果很重要。在这里,描述了一种快速的,基于细胞的方法,该方法将 Ube3a变体与Wnt 通路报告基因配对。这种简单的测定是可扩展的,可用于确定任何 Ube3a 变体中活性变化的价和幅度。此外,该方法的便利性允许产生丰富的结构功能信息,这些信息可用于深入了解UBE3A的酶机制。

引言

最近的技术进步使外显子组和基因组的测序成为临床环境中的常规12。这导致了大量遗传变异的发现,包括数百万个错义变异,这些变异通常会改变蛋白质中的一个氨基酸。了解这些变异的功能意义仍然是一个挑战,只有一小部分(~2%)已知的错义变异具有临床解释13

这个问题的一个突出例子是Ube3a,这是一种编码E3泛素连接酶的基因,该酶靶向底物蛋白进行降解4Ube3a 位于染色体 15q11-13 内,仅由母系遗传等位基因567 表达。疾病遗传学的观察强烈表明,UBE3A酶活性不足或过度会导致明显的神经发育障碍。母体染色体 15q11-13 缺失会导致安格曼综合征 (AS)8,这是一种以严重智力障碍、运动障碍、癫痫发作、快乐举止和频繁微笑和面部畸形特征为特征的疾病8910相比之下,母体染色体15q11-13的重复或三重会导致Dup15q综合征,这是一种被认为是自闭症最普遍的综合征形式之一的异质性疾病111213。此外,在Ube3a中发现了数百种错义变异,其中大多数被认为是具有不确定意义的变异(VUS),因为它们的功能和临床意义是未知的。因此,人们对开发能够实证评估Ube3a变异以确定它们是否有助于神经发育疾病的方法产生了相当大的兴趣。

UBE3A 酶属于 E3 泛素连接酶的 HECT(与 E6-AP C 末端同源)结构域家族,它们都具有同名的 HECT 结构域,其中包含接受来自 E2 酶的活化泛素并将其转移到底物蛋白所需的生化机制14。从历史上看,E3酶的表征依赖于需要纯化蛋白质集合体外重建系统4,1516这种方法缓慢且费力,不适合评估大量变体的活性。在以前的工作中,UBE3A被鉴定为通过调节蛋白酶体的功能来激活HEK293T细胞中的Wnt途径,以减缓β-连环蛋白17的降解。这种洞察力允许使用 Wnt 通路报告基因作为一种有效和快速的方法来识别 Ube3a18 的功能丧失和获得变体。下面的协议详细描述了一种生成Ube3a变体的方法以及基于荧光素酶的报告基因,用于评估Ube3a变体活性的变化。

研究方案

1. 诱变克隆生成Ube3a 变体

  1. 将所有 Ube3a 变体克隆到pCIG2质粒中(图1A),这是一种双纤载体,其中包含鸡-β-肌动蛋白启动子和用于EGFP表达的内部核糖体进入位点(IRES)19。全长 Ube3a 构建体包含一个N端Myc标签序列,并使用5'SacI位点和3'XmaI位点克隆到pCIG2中。此外, Ube3a 编码序列中天然存在的EcoRI,EcoRV和PstI位点也用于亚克隆片段。
    注意: Ube3a 的去标识化变体可以通过文献和可公开访问的存储库(如 ClinVar 数据库1)获得。其他未报告的变异可以通过与医疗中心的个人沟通获得。
  2. 使用适应的两步巨引物诱变方法20 将突变引入 Ube3a 阅读框。在第一步中,设计包含所需突变的诱变寡核苷酸(本协议中显示的示例是生成UBE3A Q588E变体),两侧是至少30个与突变同源5′和3′的碱基对(bp)(图1B表1)。
  3. 使用诱变寡核苷酸和互补寡核苷酸进行第一轮PCR,以产生含有突变的200-400 bp巨型引物(图1C;表 2表 3)。使用整个 50 μL PCR 反应体积,使用 1% 凝胶进行琼脂糖凝胶电泳,然后进行凝胶纯化(材料表)。将 PCR 产物洗脱在 30 μL 去离子H2 O (diH2O) 中,用于下面的第二轮 PCR 步骤。
  4. 如图所示设置第二轮PCR(图1C;表 2表 3)。此步骤将产生更大的DNA片段(长度通常为~1-1.5 kb),其中包含适合亚克隆的突变和末端限制性位点(图1C)。
  5. PCR反应完成后,使用PCR纯化试剂盒纯化所得产物(材料表)。洗脱 30 μL 并用适当的限制性内切酶消化所有纯化产物和 pCIG2 Ube3a WT 构建体(示例显示了使用 EcoRI 和 XmaI 进行消化)。
  6. 在37°C下消化2小时后,通过琼脂糖凝胶电泳(1%凝胶)溶解消化产物,并对适当的产物进行凝胶纯化。根据制造商的方案(材料表)设置连接,将连接产物转化为DH10B细菌菌株(材料表),然后用氨苄青霉素(100μg/ mL)选择板。
  7. 第二天,挑选 2 到 4 个菌落接种含有 Luria 肉汤 (LB) 和 100 μg/mL 氨苄西林的 3 mL 培养物。让培养物在37°C下在振荡(225rpm)的轨道培养箱中生长过夜。
  8. 第二天,使用1-1.5 mL细菌培养物对质粒DNA进行小型制备(材料表)。通过将剩余的培养物置于4°C来保存它们。 使用寡核苷酸通过Sanger测序筛选小制备质粒,该寡核苷酸与所需突变结合~200 bp。
  9. 使用保存在4°C的细菌培养物重新接种50mL培养物以midiprep正确的质粒(材料表)。对 Ube3a 编码序列进行完全测序,以验证DNA的正确序列。
  10. 使用无菌 H2O 以 100 ng/μL 的浓度创建 Ube3a 变体质粒的工作储备,以及 β-连环蛋白活化报告基因 (BAR)21、TK-雷尼拉荧光素酶、连接酶-死 Ube3a(UBE3A C820A 突变)和 pCIG2 空载体,用于后续转染步骤。

2. 人胚胎肾293T(HEK293T)细胞的制备和转染

  1. 如前所述,在预补充有谷氨酰胺、10% 胎牛血清 (FBS) 和抗生素-抗真菌剂的 Dulbecco 改良 Eagle 培养基 (DMEM) 中生长的 HEK293T 细胞中进行测定17。在37°C的无菌加湿培养箱中用5%CO2培养细胞生长细胞。
  2. 使用生物安全柜,首先将悬浮的HEK293T细胞以每孔2.2×10 4个细胞的密度在100μL培养基中以每孔2.2104 个细胞的密度接种到组织培养处理的96孔平底板上,并让它们生长过夜。
  3. 第二天,用萤火虫和 雷尼拉 荧光素酶报告质粒(表4)和 Ube3a 质粒一式三份在生物安全柜中转染细胞。使用10:1:8比例的质粒(分别为每孔50 ng的BAR,5 ng的TK-Renilla和40 ng的 Ube3a 质粒),如前所述18和0.4 μL转染试剂(表4),每孔总体积为10 μL。
    注意:对于每个实验,还转染一个空载体(仅GFP)和编码连接酶死 Ube3a 的质粒作为阴性对照。
  4. 在 1.5 mL 微量离心管中为每个变体的转染创建预混液(表 4),并在室温 (RT) 下孵育 15 分钟。孵育后,通过敲击试管轻轻搅拌转染混合物,然后将 10 μL 转染混合物直接添加到孔中的现有生长培养基中。
  5. 之后,将细胞放回培养箱并让质粒表达48小时。无需更换生长培养基。
  6. 使用荧光显微镜通过GFP荧光监测转染效率。HEK293T细胞通过该方法高效转染,48小时后>80%的细胞应表达GFP。

3. 荧光素酶活性的测定

注意:荧光素酶活性使用市售系统进行评估,该系统根据制造商的方案测定萤火虫和 雷尼拉 荧光素酶(材料表)。

  1. 小心地从转染的HEK293T细胞中吸出培养基,然后用冷磷酸盐缓冲盐水(PBS)洗涤细胞。吸出PBS并通过加入25μL非变性裂解缓冲液裂解细胞,并在冰上轻轻摇动孵育15分钟。
  2. 之后,将 20 μL 所得裂解物(无需离心)加入含有 100 μL 萤火虫荧光素酶底物试剂的新 96 孔测定板中。轻敲轻轻混合盘子。
  3. 将板装载到读板器上,并使用读数高度为1 mm,积分时间为1 s的顶部检测器测量发光。
    注意:探测器的增益可能需要根据信号强度进行调整。
  4. 读取萤火虫荧光素酶发光后,立即向孔中加入 100 μL Renilla 荧光素酶底物。此步骤同时淬灭萤火虫荧光素酶活性,同时评估雷尼拉荧光素酶活性。通过轻轻搅拌板混合样品并再次测量发光以评估 Renilla 荧光素酶活性。
    注意:虽然其他板可用于此测定,但使用带有黑框和白色孔的板将提供最灵敏的结果,因为这可以放大荧光素酶信号,同时最大限度地减少噪声。
  5. 将报告者的反应量化为萤火虫荧光素酶与雷尼 荧光素酶的比率(萤火虫/雷尼拉),并平均一式三份测量值。然后,将每个变体的Firefly/Renilla 值与表达野生型(WT) Ube3a 的细胞的值标准化,以比较变体蛋白的相对活性。

结果

Ube3a错义变异的大规模功能筛选确定了功能丧失和获得突变的广泛前景
先前对Ube3a突变体的研究表明,Wnt反应可以作为细胞 UBE3A 蛋白活性的报告基因。扩大了这些观察结果,并进行了额外的验证实验,以研究BAR测定是否适合报告细胞中的一系列UBE3A活性。首先,用编码人WT Ube3a的不同量的质粒DNA转染HEK293T细胞。该实验表明,BAR反应随转染到细胞中的 Ube3a ?...

讨论

此处描述的方案提供了一种有效且可扩展的方法来评估Ube3a变体的酶活性。使用该测定时,有几个技术细节值得仔细考虑。一个考虑因素是选择该测定中使用的Wnt报告质粒。这里描述的方案专门使用β-连环蛋白激活报告基因(BAR)21,该报告基因包含由专门设计的接头序列分隔的12个T细胞因子(TCF)响应元件的串联体,以最大限度地减少TCF结合位点的重组和丢失。文献中还...

披露声明

作者没有什么可透露的。

致谢

这项工作得到了西蒙斯基金会独立之桥奖(SFARI奖#387972;J.J.Y.),大脑和行为研究基金会(J.J.Y.)的NARSAD青年研究员奖,阿尔弗雷德·P·斯隆基金会(J.J.Y.)的研究奖学金,以及天使综合症基金会(J.J.Y.),白厅基金会(J.J.Y.)和NIMH(R01MH122786;杰杰)。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
0.05% Trypsin-EDTA (1x), phenol redGibco25300-054
1 Kb DNA ladderLambda BiotechM108-S
100 bp DNA LadderLambda BiotechM107
10x Buffer for T4 DNA Ligase with 10 mM ATPNew England BioLabsB0202A
5x Phusion HF Reaction BufferNew England BioLabsB0518S
Antibiotic-Antimycotic SolutionCorning30004CI
Black/White Isoplate-96 Black Frame White Well platePerkinElmer6005030
Carbenicillin Disodium SaltMidwest ScientificKCC46000-5
Countess cell counting chamber  slidesInvitrogen by Thermo Fisher ScientificC10283
Countess II Automated Cell Counter life technologiesCell counting machine
Custom DNA oligosIntegrated DNA Technologies (IDT)
Deoxynucleotide (dNTP) Solution MixNew England BioLabsN0447S
DMEM, high glucose, GlutaMAX Supplement, pyruvateGibco10569044Basal medium for supporting the growth of HEK293T cell line
DPBS (1x)Gibco14190-136
Dual-Luciferase Reporter Assay SystemPromegaE1910
EcoRI-HF New England BioLabsR3101SRestriction enzyme
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivatedGibco16140071Fetal bovine serum
Fisherbrand Surface Treated Tissue Culture DishesFisherbrandFB012924
FuGENE 6 Transfection ReagentPromegaE2691
Gel Loading Dye Purple (6x)New England BioLabsB7024A
HEK293T cellsATCCCRL-3216
High Efficiency ig 10B Chemically Competent CellsIntact Genomics1011-12E. coli DH10B cells
HiSpeed Plasmid Midi KitQiagen12643Midi prep
pCIG2 plasmid
pGL3 BAR plasmid
Phusion HF DNA PolymeraseNew England BioLabsM0530LDNA polymerase
ProFlex 3 x 32 well PCR SystemApplied biosystems by life technologiesThermocycler
pTK Renilla plasmid
QIAprep Spin Miniprep Kit (250)Qiagen27106Mini prep
QIAquick Gel Extraction Kit (250)Qiagen28706Gel purification
QIAquick PCR Purification Kit (250)Qiagen28106PCR purification
rCutSmart BufferNew England BioLabsB6004S
SacI-HFNew England BioLabsR3156SRestriction enzyme
Synergy HTX Multi-Mode ReaderBioTek Plate reader runs Gen5 software v3.08 (BioTek)
T4 DNA LigaseNew England BioLabsM0202LLigase
TAE Buffer, Tris-Acetate-EDTA, 50x Solution, ElectrophoresisFisher ScientificBP13324
Tissue Culture Plate 96 wells, Flat BottomFisherbrandFB012931
UltraPure Ethidium Bromide SolutionInvitrogen by Thermo Fisher Scientific15585011
XmaINew England BioLabsR0180SRestriction enzyme

参考文献

  1. Landrum, M. J., et al. ClinVar: Public archive of relationships among sequence variation and human phenotype. Nucleic Acids Research. 42, 980-985 (2014).
  2. Lek, M., et al. Analysis of protein-coding genetic variation in 60,706 humans. Nature. 536 (7616), 285-291 (2016).
  3. Starita, L. M., et al. Variant interpretation: Functional assays to the rescue. American Journal of Human Genetics. 101 (3), 315-325 (2017).
  4. Scheffner, M., Huibregtse, J. M., Vierstra, R. D., Howley, P. M. The HPV-16 E6 and E6-AP complex functions as a ubiquitin-protein ligase in the ubiquitination of p53. Cell. 75 (3), 495-505 (1993).
  5. Albrecht, U., et al. Imprinted expression of the murine Angelman syndrome gene, Ube3a, in hippocampal and Purkinje neurons. Nature Genetics. 17 (1), 75-78 (1997).
  6. Rougeulle, C., Glatt, H., Lalande, M. The Angelman syndrome candidate gene, UBE3A/E6-AP, is imprinted in brain. Nature Genetics. 17 (1), 14-15 (1997).
  7. Vu, T. H., Hoffman, A. R. Imprinting of the Angelman syndrome gene, UBE3A, is restricted to brain. Nature Genetics. 17 (1), 12-13 (1997).
  8. Kishino, T., Lalande, M., Wagstaff, J. UBE3A/E6-AP mutations cause Angelman syndrome. Nature Genetics. 15 (1), 70-73 (1997).
  9. Jiang, Y. H., et al. Mutation of the Angelman ubiquitin ligase in mice causes increased cytoplasmic p53 and deficits of contextual learning and long-term potentiation. Neuron. 21 (4), 799-811 (1998).
  10. Mabb, A. M., Judson, M. C., Zylka, M. J., Philpot, B. D. Angelman syndrome: Insights into genomic imprinting and neurodevelopmental phenotypes. Trends in Neuroscience. 34 (6), 293-303 (2011).
  11. Hogart, A., Wu, D., LaSalle, J. M., Schanen, N. C. The comorbidity of autism with the genomic disorders of chromosome 15q11.2-q13. Neurobiology of Disease. 38 (2), 181-191 (2010).
  12. Urraca, N., et al. The interstitial duplication 15q11.2-q13 syndrome includes autism, mild facial anomalies and a characteristic EEG signature. Autism Research. 6 (4), 268-279 (2013).
  13. de la Torre-Ubieta, L., Won, H., Stein, J. L., Geschwind, D. H. Advancing the understanding of autism disease mechanisms through genetics. Nature Medicine. 22 (4), 345-361 (2016).
  14. Scheffner, M., Staub, O. HECT E3s and human disease. BMC Biochemistry. 8, (2007).
  15. Cooper, E. M., Hudson, A. W., Amos, J., Wagstaff, J., Howley, P. M. Biochemical analysis of Angelman syndrome-associated mutations in the E3 ubiquitin ligase E6-associated protein. Journal of Biological Chemistry. 279 (39), 41208-41217 (2004).
  16. Yi, J. J., Barnes, A. P., Hand, R., Polleux, F., Ehlers, M. D. TGF-beta signaling specifies axons during brain development. Cell. 142 (1), 144-157 (2010).
  17. Yi, J. J., et al. The autism-linked UBE3A T485A mutant E3 ubiquitin ligase activates the Wnt/beta-catenin pathway by inhibiting the proteasome. Journal of Biological Chemistry. 292 (30), 12503-12515 (2017).
  18. Weston, K. P., et al. Identification of disease-linked hyperactivating mutations in UBE3A through large-scale functional variant analysis. Nature Communications. 12 (1), 6809 (2021).
  19. Hand, R., Polleux, F. Neurogenin2 regulates the initial axon guidance of cortical pyramidal neurons projecting medially to the corpus callosum. Neural Development. 6, 30 (2011).
  20. Karginov, A. V., Ding, F., Kota, P., Dokholyan, N. V., Hahn, K. M. Engineered allosteric activation of kinases in living cells. Nature Biotechnology. 28 (7), 743-747 (2010).
  21. Biechele, T. L., Moon, R. T. Assaying beta-catenin/TCF transcription with beta-catenin/TCF transcription-based reporter constructs. Methods in Molecular Biology. , 99-110 (2008).
  22. Yi, J. J., et al. An Autism-linked mutation disables phosphorylation control of UBE3A. Cell. 162 (4), 795-807 (2015).
  23. Kuhnle, S., et al. Angelman syndrome-associated point mutations in the Zn(2+)-binding N-terminal (AZUL) domain of UBE3A ubiquitin ligase inhibit binding to the proteasome. Journal of Biological Chemistry. 293 (47), 18387-18399 (2018).
  24. Yamamoto, Y., Huibregtse, J. M., Howley, P. M. The human E6-AP gene (UBE3A) encodes three potential protein isoforms generated by differential splicing. Genomics. 41 (2), 263-266 (1997).
  25. Avagliano Trezza, R., et al. Loss of nuclear UBE3A causes electrophysiological and behavioral deficits in mice and is associated with Angelman syndrome. Nature Neuroscience. 22 (8), 1235-1247 (2019).
  26. Bossuyt, S. N. V., et al. Loss of nuclear UBE3A activity is the predominant cause of Angelman syndrome in individuals carrying UBE3A missense mutations. Human Molecular Genetics. 30 (6), 430-442 (2021).

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

188 UBE3A Wnt

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。