资料来源:埃瓦·布科夫斯卡-法尼班德1号,蒂尔德·安德斯森1号,罗尔夫·卢德1号
1临床科学隆德系,感染医学系,生物医学中心,隆德大学,221 00 隆德,瑞典
地球是数百万种细菌的栖息地,每种细菌物种都有其特殊特征。细菌物种的鉴定在微生物生态学中广泛用于确定环境样本的生物多样性和医学微生物学,以诊断受感染的患者。细菌可以使用传统的微生物学方法进行分类,如显微镜、特定介质的生长、生化和血清学测试以及抗生素敏感性检测。近几十年来,分子微生物学方法彻底改变了细菌鉴定。一个流行的方法是16S核糖体RNA(rRNA)基因测序。该方法不仅比传统方法更快、更准确,而且能够识别在实验室条件下难以生长的菌株。此外,在分子水平上对菌株进行分化,使表性相同的细菌(1-4)之间具有鉴别力。
16S rRNA 与 19 种蛋白质的复合物结合,形成细菌核糖体 (5) 的 30S 亚单位。它由16S rRNA基因编码,由于其在核糖体组装中的基本功能,在所有细菌中都存在并高度保存;然而,它也包含可变区域,可以作为特定物种的指纹。这些特征使16S rRNA基因成为理想的基因片段,可用于细菌的鉴定、比较和遗传分类(6)。
16S rRNA基因测序基于聚合酶链反应(PCR)(7-8),然后是DNA测序(9)。PCR 是一种分子生物学方法,用于通过一系列周期来扩增 DNA 的特定片段,其中包括:
i) 双绞合DNA模板的变性
ii) 与模板互补的引物(短寡核苷酸)的退火
iii) DNA聚合酶的引物延伸,合成新的DNA链
方法的原理图概述如图1所示。
图 1:PCR 反应的原理概述。请点击此处查看此图的较大版本。
有几个因素对成功的PCR反应很重要,其中之一是DNA模板的质量。使用标准协议或商业试剂盒从细菌中分离染色体DNA。应特别注意获得不含污染物的DNA,这些污染物可以抑制PCR反应。
16S rRNA基因的保存区域允许设计通用引物对(一个正向和一个反向),可以结合和放大任何细菌物种的目标区域。目标区域的大小可能有所不同。虽然一些引热剂对可以扩增大多数16S rRNA基因,但其他仅扩增部分。常用引种示例如图1所示,其绑定位点如图2所示。
引种名称 | 序列 (5'~3') | 前进/后退 | 参考 |
8F b) | 阿加加特加特格格格格格格格股份公司 | 向前 | -1 |
27F | 阿加加特·加·加金茨格格格股份公司 | 向前 | -10 |
515F | 格格格格·CMGCCGGGTA | 向前 | -11 |
911R | 海合会加特克特科特加特加 | 反向 | -12 |
1391R | GACGGGGTGTGTRCA | 反向 | -11 |
1492R | GGTTACCTGTTT | 反向 | -11 |
表 1:用于扩增16S rRNA基因a)的标准寡核苷酸的例子。
a)通过计算正向和反向底漆的装订位点之间的距离(见图2),可以估计使用不同引漆组合生成的PCR产品的预期长度,例如PCR的大小使用底漆对 8F-1492R 的产品为 ±1500 bp,对于底漆对 27F-911R =900 bp。
b)也称为 fD1
图 2:16S rRNA序列和引结位点的代表性图。保留区域为灰色,可变区域用对角线填充。为了达到最高分辨率,引基8F和1492R(基于rRNA序列位置的名称)用于放大整个序列,从而允许对基因的几个可变区域进行测序。请点击此处查看此图的较大版本。
PCR 的循环条件(即脱氧核糖核酸变性、引物退火和合成所需的温度和时间)取决于所使用的聚合酶类型和引物的特性。建议遵循制造商针对特定聚合酶的指南。
PCR程序完成后,通过胶质电泳对产品进行分析。成功的 PCR 产生一个预期大小的单个波段。在测序之前,必须对产品进行纯化,以去除PCR反应中存在的残留底漆、脱氧核苷酸、聚合酶和缓冲液。纯化的DNA片段通常被发送到商业测序服务;然而,一些机构在他们自己的核心设施进行DNA测序。
DNA 序列由计算机从 DNA 色谱图自动生成,必须仔细检查质量,因为有时需要手动编辑。按照此步骤,将基因序列与沉积在16S rRNA数据库中的序列进行比较。识别相似区域,并传递最相似的序列。
1. 设置
2. 议定书
注意:演示的规程适用于纯细菌培养的16S rRNA基因测序。它不适用于基因组学研究。
图 3:从亚蒂利杆菌中分离出的gDNA的甘蔗糖凝胶电泳。车道 1:M - 分子质量标记(从上到下:10000 bp、8000 bp、6000 bp、5000 bp、4000 bp、3500 bp、3000 bp、2500 bp、2000 bp、1500 bp、1000 bp)。巷2:gDNA-基因组DNA从杆菌分离。请点击此处查看此图的较大版本。
组件 | 最终浓度 | 每个反应的体积 | 每 x 反应的体积(主混合) |
5x反应缓冲液 | 1x | 10 μL | 10 μL × x |
10 mM dNTP | 200 μM | 1 μL | 1 μL × x |
10 μM 底漆 8F | 0.5 μM | 2.5 μL | 2.5 μL × x |
10 μM 底漆 1492R | 0.5 μM | 2.5 μL | 2.5 μL × x |
磷聚合物酶 | 1 个单位 | 0.5 μL | 0.5 μL × x |
模板DNA | | - | 1 μL | - |
ddH2O | - | 32.5 μL | 32.5 μL × x |
总体积 | 50 μL | 49 μL × x |
表 2:PCR 反应组分。• 使用步骤 2.3 中的 10 倍、100 倍或 1000x 稀释 gDNA。
步 | 温度 | 时间 | 周期 |
初始变性 | 98°C | 30 秒 | |
变性 | 98°C | 10 秒 | 25-30 |
退火 | 60°C | 30 秒 | |
扩展 | 72°C | 45 秒 | |
最终扩展 | 72°C | 7分钟 | |
保持 | 4°C | ∞ |
表 3:用于16S rRNA基因扩增的PCR程序。
图 4:以引体8F、1492R和gDNA为模板的PCR产物的Agarose凝胶电泳。B. subtilis的 gDNA 样本(见图 3)被稀释了 10、100 和 1000 次,以测试最佳结果。车道 1: M - 分子质量标记(从上到下:10000 bp、8000 bp、6000 bp、5000 bp、4000 bp、3500 bp、3000 bp、2500 bp、2500 bp、1500 bp、1500 bp、750 bp、500 bp、250 bp)。车道 2:PCR反应与10倍稀释模板。车道 3:PCR反应与100倍稀释模板。车道 4:PCR反应与1000x稀释模板。车道5:(C-) - 阴性对照(无DNA模板的反应)。请点击此处查看此图的较大版本。
3. 数据分析和结果
注意:PCR 产品使用正向(此处为 8F)和反向(此处为 1492R)引漆进行排序。因此,生成两组数据序列,一组用于正向,一组用于反向引注。对于每个序列,至少生成两种类型的文件:i) 包含 DNA 序列的文本文件;ii) DNA 色谱图,显示测序运行的质量。
图 5:DNA测序故障排除示例。A) 质量色谱图序列的示例(均匀间距、明确的峰值)。B) 质量较差的序列,通常发生在色谱图的开头。灰色区域被视为低质量,由排序软件自动删除。可以手动修剪更多基。C) 存在双峰(用箭头表示)。由红色箭头指示的核苷酸已被序列器读取为"T"(红色峰值),但蓝色峰值更强,也可以解释为"C"。D) 重叠峰表示DNA污染(即多个模板)。E) 分辨率损失和所谓的"宽峰"(以矩形标记),阻止可靠的基点调用。请点击此处查看此图的较大版本。
图 6:核苷酸BLAST结果示例。16S rRNA基因序列来自纯培养B.subtilis 168作为查询序列。命中顶部显示 100% 标识 (下划线) 到B. subtilis应变 168, 如预期.请点击此处查看此图的较大版本。
识别细菌物种对于不同的研究人员以及医疗保健人员都很重要。16S rRNA测序最初被研究人员用于确定细菌之间的遗传关系。随着时间的推移,它已被实施在基因组学研究中,以确定环境样本的生物多样性和临床实验室作为一种识别潜在病原体的方法。它能够快速准确地识别临床样本中的细菌,促进早期诊断和加快患者治疗。
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