本研究得到了浙江省自然科学基金资助（Z23H290001，LY19H280001）;国家自然科学基金（82274364、81673607、81774011）;以及湖州市科技基金公益研究项目（2021GY49,2018GZ24）。感谢浙江中医药大学中医科学院医学研究中心公共平台的大力帮助、技术支持和实验支持。

1. 材料准备
<ol><li>在12mL的DMEM培养基（10%胎牛血清和100U / mL青霉素 - 链霉素）中培养2 x 106 Panc02细胞，并在5%二氧化碳和95%空气的气氛中保持在37°C和95%湿度48小时。</li>
	<li>收集Panc02细胞，以28× g 离心2分钟，然后弃去上清液。确保样品具有适当的大小（1 x 107 个细胞），否则，以下固定和脱水步骤将无法正常工作。</li>
	<li>加入1mL的2.5%戊二醛作为固定剂，将新鲜的Panc02细胞固定在4°C的1.5mL微量离心管中过夜。 注意：在以下每个步骤（步骤1.3-1.11）中，样品需要在1,006× g 下离心5分钟。</li>
	<li>吸出固定剂，并用0.1M磷酸盐缓冲盐水（PBS）冲洗样品两次，然后在室温下用双蒸水（ddH2O）冲洗两次，每次10分钟。</li>
	<li>加入50μL含有1%四氧化锇（OsO 4）和1.5%亚铁氰化钾的溶液，比例为1：1，在4°C下1小时。然后，用0.1M PBS冲洗两次，每次10分钟，并用ddH2O冲洗10分钟。</li>
	<li>加入 1 mL 的 1% 硫代碳酰肼 （TCH），在室温下孵育 30 分钟至 1 小时，然后用 ddH2O 冲洗四次，每次 10 分钟。</li>
	<li>加入 50 μL 的 1% OsO4，在室温下固定 1 小时，然后用 ddH2O 冲洗四次，每次 10 分钟。</li>
	<li>在4°C下加入1mL的2%乙酸铀酰过夜，然后用ddH2O冲洗四次，每次10分钟。</li>
	<li>在60°C下加入1mL沃尔顿溶液（0.066g硝酸铅溶解在10mL的0.03mol/L天冬氨酸储备溶液中），再孵育1小时。</li>
	<li>用ddH2O冲洗四次，每次10分钟，然后在分级酒精系列中脱水10分钟，每次：50%酒精，70%酒精，80%酒精和90%酒精1x和100%酒精2x。然后，在100%丙酮中脱水两次，每次10分钟。使用每种溶液 1 mL 进行脱水。</li>
	<li>将 200 μL 丙酮与 Pon 812 环氧树脂以 3：1、1：1 和 1：3 的比例混合。将样品分别在室温下浸泡在树脂中2h，4h和4h，然后取100%Pon 812环氧树脂浸渍过夜。 注意：执行染色和树脂包埋步骤时，重要的是在通风橱中操作，因为这些是有毒物质。此外，在实验过程中必须穿上实验室外套和耐溶剂手套。</li>
	<li>将试样放入包埋模具中，然后置于60°C的烘箱中48小时聚合。使用平面包埋29 来减少样品周围树脂的外观。这简化了试样安装，并减少了充电伪影对后续图像分割的影响。 注意： 为了随后生成水平切割表面，可以将少量树脂添加到模具孔中，注意不要过度填充。</li>
	<li>首先清洗硅片，然后用浓缩的H2SO4 / H 2 O2溶液亲水30分钟来制备硅片。使用超薄切片机在亲水硅晶片上收集厚度为70nm的连续切片条，并在60°C烘箱中干燥10分钟。 注意：当切片漂浮到晶圆表面时，请缓慢捕获切片，以防止切片丢失或变形。</li>
</ol>2. 图像采集与三维重建
<ol><li>在将硅晶圆安装到载物台上之前，用蒸馏水清洗切片三次，然后风干。切割尺寸为1 cm x 0.5 cm的导电碳带，并将其粘贴在硅晶片和SEM样品台之间以完成样品设置（图2E）。</li>
	<li>将 FE-SEM 加速电压参数设置为 2 kV，工作距离为 4 mm（图 3B 和 表 1）。 注意：为了提高信噪比并减少图像中的噪声，请尽可能以低放大倍率进行观察。随着倍数的增加，SEM的扫描范围减小，导致图像上的电荷积累增加。</li>
	<li>单击顶部菜单栏中的 H/L 图标 。首先，在低放大倍率下，定向目标切片条的第一部分，然后再次单击 H / L 选项（图3A）切换到高放大倍率模式;通过调整图像亮度、对比度和放大率，为感兴趣的结构收集适当的图像。</li>
	<li>选择“ 项目视图”>“开放数据”，然后将要分析的图像文件导入软件。</li>
	<li>通过单击对齐 切片>编辑 对齐图片（图 4B），并通过修改图像透明度来调整左下角菜单栏中的 强度范围 值。在这里，使用半自动对齐策略;具体来说，通过自动对齐，使图片与上一张图片重叠，然后进行手动微调。 注意：在这项工作中，在对齐过程中，使用先前的图像作为参考，并利用移动和旋转操作来最大程度地重叠两个图像的目标结构。单击对齐 当前切片对 可以帮助自动对齐图像，但可能会出现错位。</li>
	<li>选择 “提取子体积”模块，并裁剪对齐的数据集以适合整个堆栈重叠部分的大小。</li>
	<li>在 分割 子部分（图 4C）下，选择重新 采样>分割>保存。选择 魔棒 的阈值和 画笔 工具的大小以选择正确的范围。这里再次采用半自动分割方法，首先使用 魔杖 自动选择合适的大面积区域，然后使用 画笔 准确描述细节。 注意：通过更改遮罩值并使用绘制极限线，可以根据感兴趣结构与周围结构之间存在的像素强度的明显差异，将魔棒应用于分割图像。它无法区分图像采集过程中产生的充电伪影。因此，它可能会导致目标区域的分段不正确。画笔工具可用于手动分割以准确重建生物结构。</li>
	<li>在 “分割>选择”下，单击 + 图标以添加所选区域（图 4C）。</li>
	<li>重复上述步骤（2.8）以在不同的图像中选择相同的目标结构，直到选择完成以重建感兴趣的微观结构。 注意：在线粒体重塑过程中，必须从一组连续图像中间的图片中执行目标对象的选择。如果从第一张或最后一张图片中选择所需区域，则重建结果将无法呈现完整的 3D 可视化。</li>
	<li>完成区域分割后，根据对象大小和图片分辨率的最佳结果生成图像文件。单击 裁剪编辑器，然后在 虚拟滑块 框中输入数字 6（图 4C）。</li>
	<li>在左侧的下拉菜单中，右键单击“ 项目 ”子部分下的灰色区域，然后选择“ 生成曲面>创建>应用”。在生成的文件中，使用曲面视图模块创建 曲面 结构和 3D 表示。</li>
</ol>3. 量化
<ol><li>单击删除 小斑点>应用 （图 4D）。在 “项目 ”子部分下，右键单击灰色区域，然后选择 “标签分析”>“应用 ”（图 4D）。</li>
	<li>自定义列的名称，然后选择度量值组。从“本机测量”框中选择“Volume3d 和 Length3d”。 </li>
	<li>单击屏幕左下角的 “应用 ”按钮。复制数据，并在统计软件（如GraphPad）中绘制图形。</li>
</ol>

3D 技术可视化胰腺癌细胞中的线粒体嵴

作者声明不存在利益冲突。

这里介绍的方法是一个有用的分步指南，用于应用3D重建技术，该技术涉及将电子显微镜和图像处理技术应用于从连续超薄切片生成的2D断层扫描图像的堆叠和分割。该协议强调了可以通过细胞器超微结构的3D可视化来解决的2D图像的局限性，该图像具有高分辨率水平上结构的强可重复性和更高的精度的优点。更重要的是，这种3D可视化可以应用于肿瘤细胞，使病理机制的研究更加直接可靠。在这项...

线粒体是细胞中最重要的细胞器之一。它们是细胞生物能量学和代谢的中心枢纽1,2，并在癌症中起着关键作用3。胰腺癌（PC）由于其快速扩散和高死亡率，是最难治疗的癌症之一4。线粒体功能障碍主要由线粒体形态变化3,5,6,7引起，与PC8的疾病机制有关。线粒体也是高度动态的，这反映在其网络连接和嵴结构的频繁和动态变化上9。嵴结构的重塑可直接影响线粒体功能和细胞状态10,11，在肿瘤细胞生长、转移和肿瘤微环境变化过程中发生显著改变12,13。
近年来，科学家们使用EM观察研究了这种细胞器14,15,16,17;例如，研究人员使用3D重建技术分析了线粒体动力学6,7,18,19。电子显微镜图像三维重建的一般概念和方法早在196820年就正式确立，涉及结合电子显微镜、电子衍射和计算机图像处理来重建T4噬菌体尾巴。到目前为止，电子显微镜3D成像技术在图像分辨率21、自动化程度22和处理体积23方面取得了重大进展，并且在生物学研究中的应用越来越广泛，从组织水平到纳米尺度的细胞器超微结构水平24。近年来，电子显微镜3D成像也成为一种前景广阔的技术25,26,27。
对线粒体嵴的日益关注特别说明了超微结构体积成像的基本要求。透射电子显微镜（TEM）已被用于可视化在铜网格（400目）28上收集的样品，电子束穿过该切片。然而，由于铜网格的范围有限，不可能对同一样品29的连续切片进行完全成像。这使得TEM成像过程中靶标结构的研究变得复杂。此外，TEM依赖于耗时且容易出错的手动任务，包括切割和收集多个切片并按顺序成像21，因此它不适用于大体积样品的超微结构重建23。目前，大体积样品成像的高分辨率重建是通过使用专用设备实现的，例如TEM相机阵列（TEMCA）30 或两个第二代TEMCA系统（TEMCA2）31，可以在短时间内实现自动化高通量成像。然而，由于需要定制设备，这种类型的成像不具有易于获得和通用的优点。
与TEM相比，基于SEM 32,33自动生成大面积连续体积图像的方法提高了串行成像的效率和可靠性，并提供了更高的z分辨率34。例如，连续块面扫描电子显微镜（SBF-SEM）和聚焦离子束扫描电子显微镜（FIB-SEM）都使高速，高效和分辨率35,36的超微结构的3D重建成为可能。然而，不可避免地，通过SBF-SEM的金刚石刀或通过FIB-SEM33,37的聚焦离子束进行铣削，块表面被机械剃掉。由于两种方法对样品的破坏性，不可能再次重建相同的目标结构以进行进一步分析38,39,40。此外，很少有研究试图使用EM重建癌细胞的3D细胞器超微结构来观察病理变化12。基于这些原因，为了进一步阐明胰腺癌细胞等癌细胞的病理机制，我们提出了一种使用超薄切片机和场发射扫描电子显微镜（FE-SEM）在嵴水平分析线粒体超微结构的连续切片图像的3D重建新技术;通过这项技术，可以使用高效且可访问的方法获取高分辨率数据。使用超薄切片机制成的系列超薄切片可以半永久地存储在网格盒中，并在几年后多次重新成像41.FE-SEM因其能够提供高分辨率成像，高放大倍率和多功能性而作为各种研究领域的工具受到高度重视42。为了尝试以3D形式显示细胞器的精细结构，使用FE-SEM 43,44产生的背散射电子生成具有有用分辨率的串行2D图像堆栈的技术也可用于实现目标区域或其相关结构的高通量和多尺度成像，而无需特殊设备45.电荷伪影的产生直接影响采集图像的质量，因此保持较短的停留时间尤为重要。
因此，本研究详细阐述了该SEM技术中用于重建线粒体嵴46的3D结构的实验程序。具体来说，我们展示了使用Amira软件实现线粒体区域的半自动分割和数字化3D重建的过程，其中还包括使用传统的OTO标本制备方法44,47制作切片样品，使用超切片机切片完成切片收集，并通过FE-SEM获取顺序2D数据。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>(1S,3R)-RSL3</td>
			<td>MCE</td>
			<td>HY-100218A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetone</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>179124</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amira</td>
			<td>Visage Imaging</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aspartic acid</td>
			<td>MCE</td>
			<td>HY-42068</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#39;s modified Eagle&#8217;s medium</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11995115</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Merck</td>
			<td>100983</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ferrostatin-1</td>
			<td>MCE</td>
			<td>HY-100579</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10437010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Field emission scanning electron microscope</td>
			<td>HITACHI</td>
			<td>SU8010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>A10500.22</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lead nitrate</td>
			<td>SANTA CRUZ</td>
			<td>sc-211724</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Osmium Tetroxide</td>
			<td>SANTA CRUZ</td>
			<td>sc-206008B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Panc02</td>
			<td>European Collection of Authenticated Cell Cultures&#160;</td>
			<td>98102213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-streptomycin</td>
			<td>Biosharp</td>
			<td>BL505A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline</td>
			<td>Biosharp</td>
			<td>BL302A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pon 812 Epoxy resin</td>
			<td>SPI CHEM</td>
			<td>GS02660</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium ferrocyanide</td>
			<td>Macklin</td>
			<td>P816416</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thiocarbohydrazide</td>
			<td>Merck</td>
			<td>223220</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultramicrotome</td>
			<td>LEICA</td>
			<td>EMUC7</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Uranyl Acetate</td>
			<td>RHAWN</td>
			<td>R032929</td>
			<td>2020.2</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a three-dimensional technique for the visualization of mitochondrial ultrastructural changes in pancreatic cancer cells

了解细胞器超微结构的动态特征，不仅具有丰富的未知信息，而且从三维（3D）角度来看也很复杂，对于机制研究至关重要。电子显微镜（EM）具有良好的成像深度，并允许重建高分辨率图像堆栈，以研究细胞器的超微结构形态，即使在纳米尺度上也是如此;因此，3D重建因其无与伦比的优势而变得越来越重要。扫描电子显微镜（SEM）提供了一种高通量图像采集技术，允许在连续切片中从相同的感兴趣区域重建3D大型结构。因此，SEM在大规模三维重建中的应用，以恢复细胞器的真实三维超微结构变得越来越普遍。在该协议中，我们建议结合连续超薄切片和3D重建技术来研究胰腺癌细胞中的线粒体嵴。该协议以逐步的方式描述了如何执行这些技术的详细信息，包括锇 - 硫代碳酰肼 - 锇（OTO）方法，连续超薄切片成像和可视化显示。

Mitochondria are one of the most important organelles in the cell. They serve as the central hub of cellular bioenergetics and metabolism1,2 and play a critical role in cancer3. Pancreatic cancer (PC) is one of the most difficult cancers4 to treat due to its rapid spread and high mortality rate. Mitochondrial dysfunction, which is mainly caused by changes in the mitochondrial morphology3,5,6,7, has been linked to the disease mechanisms underlying PC8. Mitochondria are also highly dynamic, which is reflected by the frequent and dynamic changes in their network connectivity and cristae structure9. The reshaping of the cristae structure can directly impact the mitochondrial function and cellular state10,11, which are significantly altered during tumor cell growth, metastasis, and tumor microenvironment changes12,13.
In recent years, scientists have studied this organelle using EM observation14,15,16,17; for example, researchers have analyzed the mitochondrial dynamics using 3D reconstruction techniques6,7,18,19. The general concept and method for the 3D reconstruction of electron microscopy images were formally established as early as 196820 and involved combining electron microscopy, electron diffraction, and computer image processing to reconstruct the T4 phage tail. Up until now, electron microscopy 3D imaging technology has made significant advancements in terms of the image resolution21, degree of automation22, and processing volume23 and has been used on an increasingly broad scale in biological research, from the tissue level to the organelle ultrastructure level at the nanometer scale24. In recent years, electron microscopy 3D imaging has also become a promising technology for a wide range of applications25,26,27.
The growing attention on mitochondrial cristae particularly illustrates the essential requirements for ultrastructural volume imaging. Transmission electron microscopy (TEM) has been used to visualize samples collected on a copper grid (400 mesh)28, with the electron beam passing through the section. However, due to the limited range of the copper grid, it is impossible to fully image continuous slices of the same sample29. This complicates the study of target structures during TEM imaging. Additionally, TEM relies on time-consuming and error-prone manual tasks, including cutting and collecting multiple slices and imaging them sequentially21, so it is not adapted for ultrastructural reconstructions of large-volume samples23. At present, the high-resolution reconstruction of large-volume sample imaging is achieved through the use of specialized equipment, such as the TEM camera array (TEMCA)30 or two second-generation TEMCA systems (TEMCA2)31, which enable automated high-throughput imaging in a short time. However, this type of imaging does not have the advantage of being easy to obtain and universal due to the requirement for customized equipment.
Compared with TEM, the method for automatically generating thousands of serial volumetric images for large areas based on SEM32,33 enhances the efficiency and reliability of serial imaging and delivers higher z-resolutions34. For example, serial block-face scanning electron microscopy (SBF-SEM) and focused ion beam scanning electron microscopy (FIB-SEM) have both made it possible to achieve the 3D reconstruction of ultrastructure with high speed, efficiency, and resolution35,36. However, it is inevitable that the block surface is mechanically shaved off by the diamond knife of the SBF-SEM or by milling with the focused ion beam of FIB-SEM33,37. Due to the destructiveness of the two methods to the samples, it is not possible to reconstruct the same target structure again for further analysis38,39,40. In addition, few studies have attempted to reconstruct the 3D organelle ultrastructure of cancer cells using EM to observe pathological changes12. For these reasons, in order to further elucidate the pathological mechanisms of cancer cells, such as pancreatic cancer cells, we propose a novel technology for the 3D reconstruction of serial section images using an ultramicrotome and a field emission scanning electron microscope (FE-SEM) to analyze the mitochondrial ultrastructure at the cristae level; with this technology, high-resolution data can be acquired using an efficient and accessible method. The serial ultrathin sections made using an ultramicrotome can be semi-permanently stored in a grid case and reimaged multiple times, even after several years41. FE-SEM is highly valued as a tool in various research fields due to its ability to provide high-resolution imaging, high magnification, and versatility42. In an attempt to display the fine structure of organelles in 3D, the technique for producing serial 2D image stacks with useful resolution using back-scattered electrons produced by FE-SEM43,44 can also be used to achieve high-throughput and multi-scale imaging of target regions or their associated structures without special equipment45. The generation of charge artifacts directly affects the quality of the acquired images, so it is particularly important to keep the dwell time short.
Thus, the present study elaborates on the experimental procedures employed in this SEM technique to reconstruct the 3D structure of mitochondrial cristae46. Specifically, we show the process developed to achieve the semi-automatic segmentation of mitochondrial regions and digitize the 3D reconstruction using Amira software, which also involves making slice samples using the conventional OTO specimen preparation method44,47, completing the section collection using ultramicrotome slicing, and acquiring sequential 2D data by FE-SEM.

作者聚焦：胰腺癌细胞线粒体超微结构变化可视化的三维技术  

一种可视化胰腺癌细胞线粒体超微结构变化的三维技术

在细胞培养过程中（图1A），我们首先将胰腺癌细胞分为用完整培养基培养的对照组，（1S，3R）-RSL348（RSL3，铁死亡激活剂，100nM）组和RSL3（100nM）加铁抑素-149（Fer-1，铁死亡抑制剂，100nM）组。通过上述实验步骤，扫描电镜分别获取对照组、RSL3组和抑制剂组（RSL3+Fer-1组）的38张（补充图1）、43张（补充图2）和44?...

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该协议描述了如何重建线粒体嵴以实现高精度，高分辨率和高通量的3D成像。

Understanding the dynamic features of the cell organelle ultrastructure, which is not only rich in unknown information but also sophisticated from a ...

本项目旨在通过在亚细胞纳米尺度上改变结构，建立细胞器形态与癌症病理机制之间的联系，来评价药物的抗癌作用。该技术将传统的电子显微镜技术与三维重建技术相结合，无需专用设备。与其他技术相比，它可以提高成像效率和重建灵活性，并随时对目标结构进行现实生活中的重建。因此，它非常简单且通用。这种连续超薄载玻片的三维重建技术可以反复还原真实的立体化学，而无需特定的昂贵设备。它可以随时用于所有细胞器的定性和定量分析。实现了观察的简便操作。

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Research

JoVE Journal

Cancer Research

A Three-Dimensional Technique for the Visualization of Mitochondrial Ultrastructural Changes in Pancreatic Cancer Cells

1.2K 次观看.  School of Pharmaceutical Science of Zhejiang Chinese Medical University. 本项目旨在通过在亚细胞纳米尺度上改变结构，建立细胞器形态与癌症病理机制之间的联系，来评价药物的抗癌作用。该技术将传统的电子显微镜技术与三维重建技术相结合，无需专用设备。与其他技术相比，它可以提高成像效率和重建灵活性，并随时对目标结构进行现实生活中的重建。因此，它非常简单且通用。这种连续超薄载玻片的三维重建技术可以反复还原真实?...

视频: 作者聚焦：胰腺癌细胞线粒体超微结构变化可视化的三维技术  

Understanding the dynamic features of the cell organelle ultrastructure, which is not only rich in unknown information but also sophisticated from a three-dimensional (3D) perspective, is critical for mechanistic studies. Electron microscopy (EM) offers good imaging depth and allows for the reconstruction of high-resolution image stacks to investigate the ultrastructural morphology of cellular organelles even at the nanometer scale; therefore, 3D reconstruction is gaining importance due to its incomparable advantages. Scanning electron microscopy (SEM) provides a high-throughput image acquisition technology that allows for reconstructing large structures in 3D from the same region of interest in consecutive slices. Therefore, the application of SEM in large-scale 3D reconstruction to restore the true 3D ultrastructure of organelles is becoming increasingly common. In this protocol, we suggest a combination of serial ultrathin section and 3D reconstruction techniques to study mitochondrial cristae in pancreatic cancer cells. The details of how these techniques are performed are described in this protocol in a step-by-step manner, including the osmium-thiocarbohydrazide-osmium (OTO) method, the serial ultrathin section imaging, and the visualization display.

This protocol describes how to reconstruct mitochondrial cristae to achieve 3D imaging with high accuracy, high resolution, and high throughput.