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Method Article
In diesem Protokoll beschreiben wir die technischen Verfahren zur Erzeugung von braunem Fettgewebe (BAT)-spezifischen Knockout-Mäusen unter Verwendung eines kombinierten Cre-LoxP-, CRISPR-Cas9- und Adeno-assoziierten Virus (AAV) Single-Guide RNA (sgRNA)-Systems. Die beschriebenen Schritte umfassen das Design der sgRNAs, die Herstellung der AAV-sgRNA-Partikel und die Mikroinjektion von AAV in die BAT-Lappen.
Braunes Fettgewebe (BAT) ist ein auf Energiedissipation spezialisiertes Fettdepot, das über die Sekretion bioaktiver Moleküle auch als endokrines Organ dienen kann. Die Züchtung von BVT-spezifischen Knockout-Mäusen ist einer der populärsten Ansätze, um den Beitrag eines Gens von Interesse zur BVT-vermittelten Energieregulation zu verstehen. Die konventionelle Gen-Targeting-Strategie unter Verwendung des Cre-LoxP-Systems war der Hauptansatz, um gewebespezifische Knockout-Mäuse zu erzeugen. Dieser Ansatz ist jedoch zeitaufwändig und mühsam. In dieser Arbeit beschreiben wir ein Protokoll für den schnellen und effizienten Knockout eines Gens, das für BAT von Interesse ist, unter Verwendung eines kombinierten Cre-LoxP-, CRISPR-Cas9- und Adeno-assoziierten Virus (AAV)-Single-Guide-RNA (sgRNA)-Systems. Die BAT interscapularis befindet sich in der tiefen Schicht zwischen den Muskeln. Daher muss die BVT freigelegt werden, um die AAV präzise und direkt in die BVT innerhalb des Gesichtsfeldes zu injizieren. Eine angemessene chirurgische Behandlung ist entscheidend, um Schäden an den sympathischen Nerven und Gefäßen zu vermeiden, wie z. B. der Sultzer-Vene, die mit dem BAT verbunden ist. Um Gewebeschäden zu minimieren, ist es von entscheidender Bedeutung, die dreidimensionale anatomische Lage des BVT und die chirurgischen Fähigkeiten, die in den technischen Schritten erforderlich sind, zu verstehen. Dieses Protokoll hebt die wichtigsten technischen Verfahren hervor, einschließlich des Designs von sgRNAs, die auf das interessierende Gen abzielen, der Herstellung von AAV-sgRNA-Partikeln und der Operation für die direkte Mikroinjektion von AAV in beide BAT-Lappen zur Erzeugung von BVT-spezifischen Knockout-Mäusen, die breit angewendet werden können, um die biologischen Funktionen von Genen in BAT zu untersuchen.
Adipositas nimmt weltweit deutlich zu und führt zu einem breiten Spektrum von Stoffwechselerkrankungen 1,2,3. Das Fettgewebe ist der Schlüssel zu diesen Pathologien. Die beiden funktionell unterschiedlichen Arten von Fettgewebe, die es gibt, sind weißes Fettgewebe (WAT), das überschüssige Kalorien speichert, und braunes Fettgewebe (BAT) und das damit verbundene beige/britische Fett, das Energie für die Thermogenese abführt. Während BAT für seine energieableitende Funktion anerkannt ist, hat es auch endokrine Funktionen durch die Produktion bioaktiver Moleküle, die de....
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Alle Tierversuche und Pflegeverfahren wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee des Joslin Diabetes Center genehmigt.
1. Screening effektiver sgRNAs in kultivierten Zellen
HINWEIS: Um den Assay kostengünstig zu gestalten, empfehlen wir, vor dem Verpacken der sgRNAs in AAV-Partikel verschiedene sgRNAs in kultivierten Zellen über ein Lentivirus-basiertes System auf Cas9/sgRNA-Expression zu testen (Abbildung 1) und die sgRNAs auszuwählen, die die höchste Knockdown-Effizienz für In-vivo-Experimente bieten.
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Bei den oben genannten Verfahren ist die präzise Abgabe von AAV-sgRNA an die BVT entscheidend für den Erfolg des Protokolls. Um die Wirkung der AAV-sgRNA zu maximieren und die Gewebeschädigung während der Operation zu minimieren, ist es wichtig, die dreidimensionale (3D) anatomische Lage des BVT zu verstehen. Wie in Abbildung 3E dargestellt, ist es schwierig, die genaue Position der BVT zu identifizieren, ohne das Gewebe freizulegen. Eine übermäßige BVT-Exposition kann jedoch das Gewe.......
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Die existierenden veröffentlichten Methoden für den AAV-vermittelten Gentransfer in den interscapularären BAT enthalten keine detaillierten Bilder und Videos, die die Operationstechniken und den Ansatz für die direkte AAV-Injektion in den BVT beschreiben. Bei den meisten publizierten Methoden33,34 wird das AAV in das Fettgewebe injiziert, das die interscapularäre BAT umgibt, und nicht in die BVT selbst. Daher gibt es mehrere wichtige Schritte in diesem Proto.......
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Die Autoren haben nichts zu verraten.
Diese Arbeit wurde teilweise durch die Zuschüsse der U.S. National Institutes of Health (NIH) R01DK122808, R01DK102898 und R01DK132469 (an Y.-H.T.) sowie P30DK036836 (an das Diabetes Research Center des Joslin Diabetes Center) unterstützt. T. T. wurde durch das SUNSTAR Research Fellowship (Hiroo Kaneda Stipendium, Sunstar Foundation, Japan) und das Stipendium der American Heart Association 903968 unterstützt. Y. Z. wurde durch das Charles A. King Trust Fellowship unterstützt. Wir danken Sean D. Kodani für das freundliche Korrekturlesen des Manuskripts.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Chemicals, Peptides and Recombinant Proteins | |||
OPTI-MEM serum-free medium | Invitrogen | 31985 | |
Polybrene Infection / Transfection Reagent | Sigma | TR-1003-G | |
TransIT-LT1 Transfection Reagent | Mirus | MIR 2300 | |
Recombinant DNA | |||
lentiCRISPR v2 vector | Addgene | 52961 | |
pAAV-U6-BbsI-gRNA-CB-EmGFP | Addgene | 89060 | |
pMD2.G envelope plasmid | Addgene | 12259 | |
psPAX2 packaging plasmid | Addgene | 12260 | |
Experimental Models: Cell Lines | |||
HEK-293 cells | ATCC | CRL-1573 | |
WT-1 cells | Developed in Tseng lab | PMID: 14966273 | |
Experimental Models: Organisms/Strains | |||
Cas9 knockin mice | Jackson Laboratories | 24857 | |
Ucp1-CRE mice | Jackson Laboratories | 24670 | |
Others | |||
Banamine | Patterson | 07-859-1323 | |
Hamilton syringe | Hamilton | Model 710 RN Syringe | |
Hydrogen peroxide solution | Fisher Scientific | H325-500 | |
Needle | Hamilton | 32 gauge, small hub RN needle, needle point style 2 | |
Suture 5-0 Unify PCL25 P-3 Undyed 18 inch Monofilament 12/Bx | Henry Schein | 1273504 | |
Suture 5-0 Unify Silk P-3 Black 18 inch 12/Bx | Henry Schein | 1294522 |
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